MASTER Pathologie Humaine: Spécialité SSA

“Sécurité Sanitaire des Aliments” ANNEE M1 PRE-RENTREE

Responsable Spécialité SSA: Ajandouz El-Hassan Responsable M1 SSA: Robert Viviane

MASTER Pathologie Humaine: Spécialité SSA

“Sécurité Sanitaire des Aliments” ANNEE M1 PRE-RENTREE

Responsable Spécialité SSA: Ajandouz El-Hassan (sciences-master-m2ssa@univ-amu.fr) Responsable M1 SSA: Robert Viviane (sciences-master-m1ssa@univ-amu.fr) Secrétariat: Tanda Christiane (sciences-master-m1ssa@univ-amu.fr ou sciences-master-m2ssa@univ-amu.fr)

Horaires d’ouverture: 9h30-12h30 et 13h30-16h30 tous les jours SAUF le mardi matin et le jeudi après-midi Site Web: http://ssa.ism2.univ-cezanne.fr

Semestre 1 et 2 du M1 SSA (60 ECTs)

MASTER = 2 ANS

M1 SSA

M2 Pro SSA

Autre M2

Comment valider le Master PH Spécialité Sécurité Sanitaire

des Aliments?

 60 Crédits d’enseignement en M1

 60 Crédits d’enseignement en M2 (et Maîtriser une langue étrangère: TOIC, TOEFEL, ou UE d’Anglais)

L’année M1 = 60 ECTS

 30 ECTS au Semestre 1: choix d’UEs optionnelles de 3 ou 6 ECTS

 30 ECTS au Semestre 2: dont 1 UE obligatoire de 12 ECTS et des UEs optionnelles de 3 ECTS

Choix d’ UEs optionnelles parmi 9 = 30 ECTS au Semestre 1

Semestre 1 M1 SSA (30 ECTs)

Exemple: UE1+UE2+UE3+UE4+UE6+UE7+UE8=30 crédits

UE20 obligatoire et choix de 6 UEs optionnelles parmi 10 =

30 ECTS au Semestre 2

Semestre 2 M1 SSA (30 ECTs)

Exemple: UE10+UE12+UE14+UE15+UE17+UE19 +UE20Stage=30 crédits

L’ UE obligatoire au S2

UE 20 : Stage en laboratoire de recherche ou en milieu professionnel (Avril-Juin, 12 crédits)

Stage en labo de 2 à 3 mois Rédaction du mémoire Présentation orale des résultats

Comment valider les 2 semestres Toutes les UEs validées

Semestre validé

Compensation entre UE

UE 2

V

UE 4

V

UE 3

V

UE 7

V

ou

UE 1

V

UE 6

V

Semestre validé

UE 8

V

UE 2

NV

UE 4

NV

UE 3

V

UE 7

V

UE 1

V

UE 6

V

UE 8

V

Comment valider le M1?

  Les 2 semestres ne se compensent pas

  Deux sessions par semestre:

o  Semestre 1: session 1 en décembre et session 2 en février

o  Semetre 2: session 1 en mars et session 2 en juin/juillet

Bonus ! - Culture - Sport - Engagement étudiant …

Les UEs du Semestre 1

 Cours (18h): - Rappels : protéines, glucides, lipides, polyphénols, caroténoïdes, vitamines, minéraux - Aspects historiques et socio-culturels de l’alimentation - Groupes d’aliments, regards biochimique et économique : o Lait et produits laitiers o Œufs et ovo-produits o Viandes et poissons o Produits d’origine végétale: fruits, légumes, céréales…

  Travaux dirigés (12h) : Projet personnel : traitement par binômes de sujets libres sur l’aliment et l’alimentation. Choix du sujet –>recherches –> présentation : un tiers de la note

UE01- Analyse des aliments Responsable : El Hassan Ajandouz

Objectif : connaître l’aliment et l’alimentation aussi loin que possible

UE02: Biochimie alimentaire

Responsable : V Robert Intervenants: V Robert/ M Lafond/ L Tarrago

Objectif : Comprendre la physico-chimie des traitements technologiques des aliments et les conséquences fonctionnelles, nutritionnelles et toxicologiques pour le consommateur

Cours : - Importance de l’eau dans les aliments (VR) - Propriétés fonctionnelles et  nutritionnelles des constituants alimentaires (ML) - Revue des principaux traitements technologiques des aliments (ML) - Exemple de la technologie de l’amidon (ML) - Conséquences biochimiques et toxicologiques des traitements des aliments (VR)

o  Interactions protéines-protéines o  Brunissement non enzymatique o  Brunissement enzymatique o  Oxydation des lipides o  Autres réactions et produits

  Travaux dirigés : analyses d’articles par binôme (VR & LT)

UE 03: Mécanismes moléculaires de la digestion des protéines, des

glucides et des lipides alimentaires

 Enzymes de la digestion des protéines et des glucides. Métabolisme et transport des lipides Cours, 18h: Pr T. Giardina TD, 12h: Dr L Tarrago

Responsable: Thierry Giardina

Objectif: Bases moléculaires de la digestion des aliments.   Programme: •  Enzymes de la digestion luminale des protéines et des glucides:

-Pepsine – Chymosine – Trypsine – Chymotrypsine – Elastase - Protésae E – Carboxypeptidases – Entéropeptidase - Aminopeptidases – Peptidases cytosoliques entérocytaires - Inhibiteurs de protéases – Amylases et disaccharidases

•  Métabolisme et transport des lipides : Stéréochimie des lipides - Propriétés physico-chimiques – Digestion, transport et stockage des lipides – Enzymes de la lipolyse – Lipoprotéines plasmatiques – Films monomoléculaires – Micelles.

UE 4 : Chimie des processus biologiques Responsable: Renaud Hardré

Objectifs: Analyser et comprendre différents aspects de la biologie. Programme de cours (18h): Notion d’équilibre chimique, notion de pH. Réaction redox et échange d’électrons. Les différentes fonctions de chimie organique et leurs implications biologiques. La chimie sera abordée avec de nombreux exemples tirés des processus biologiques

Programme de TD (12h): Exercices et annales d’examen

UE5 : Construire son projet professionnel, un projet industriel et maitriser les outils

informatiques nécessaires Responsable: Mickael Lafond

Intervenants: MD Monteil/ M Lafond

Deux parties: -Construire son projet professionnel et un projet industriel (MD Monteil) -Maitriser la rédaction/ le traitements des données (word/excel) (M Lafond)

Partie 1 : Construire son projet professionnel et un projet industriel

Intervenant: MD Monteil Objectifs: • Appliquer une méthode pour définir son projet professionnel et s’y préparer. • Acquérir les principes de la méthodologie de projet en entreprise

Programme de cours (12h) : Analyser son parcours : ses compétences, ses motivations Se préparer : le C.V., la lettre de motivation, le plan d’action, l’entretien de recrutement Construire le projet : les phases, les acteurs du projet, Gérer le projet : La planification et ses outils

Programme de TD (12h) : • Préparation de son CV, entrainement à un entretien de recrutement • Mise en application sur un projet industriel en équipe.

Partie 2 : Pack-Off

Intervenant: M Lafond Objectifs: • Maitriser les outils informatiques dédiés au traitement de texte et des données expérimentales • Acquérir les méthodes de rédaction des résultats et d’analyse des données

Programme (8h TD) : Traitement et analyse de données expérimentales à l’aide de la réflection en équipe et des logiciels Excel/Word Rédaction d’un rapport basé sur les données expérimentales traitées et analysées

 Cours : I- Historique et classification des enzymes (EHA, 3h) II- Systèmes d’expression et de production des protéines recombinantes (TG, 10h)

Système procaryote (E. coli) Système levure (Pichia pastoris) Système cellules de mammifères (insectes) Système plante (Arabidopsis thaliana) et les plantes transgéniques

III- Purification des protéines à partir de matériel biologique (TG, 6h) Extraction, centrifugation, chromatographies (échanges d’ions, tamisage moléculaire, affinité, hydrophobe…) IV- Rappels de thermodynamique et pouvoir catalytique des enzymes (EHA, 3h) V- Relations structure-fonction de quelques enzymes (EHA, 4h) VI- Cinétique enzymatique avec un substrat en présence ou non d’un inhibiteur (EHA, 6h) V- Régulation de l’activité biologique des enzymes (EHA, 4h)   Travaux dirigés : TG : analyse d’articles de recherche (12h) L Tarrago: exercices et annales (12h)

UE06- Enzymologie: production, relations structure-fonction, cinétique enzymatique

Responsable : El Hassan Ajandouz Enseignants :Thierry Giardina, L Tarrago, El Hassan Ajandouz

Objectifs : Connaître les techniques de production et de purification des enzymes et les bases moléculaires de leur fonction

UE 07: TP de Biochimie

•  Préparation de solutions de réactifs et de tampons

•  Purification de l’alpha-amylase pancréatique de porc (APP)

•  Détermination des paramètres cinétiques de l’APP

•  Electrophorèse sur gel de poly-acrylamide en présence de dodécyl sulfate de sodium (SDS-PAGE)

•  Brunissement non enzymatique dans des systèmes modèles

•  Immuno-dosage d’un allergène alimentaire (la gliadine)

•  Extraction de la vitamine E du foie et du jaune d'œuf et analyse par HPLC

Responsable: M Lafond Enseignants : M Lafond ,EH Ajandouz, P Stocker, N Vidal, L Tarrago

(Blouse et Carte d’étudiant obligatoire)

Objectif: apprendre à planifier, manipuler, réfléchir et rédiger

6 travaux pratiques de biochimie

UE 08: Biologie moléculaire

 Cours de Biologie moléculaire

Prof T. Giardina (10 h Cours)

 TP de Biologie moléculaire

  Dr V Robert   Prof T. Giardina (50 h TP)

Responsable: Viviane Robert (Blouse et Carte d’étudiant obligatoire)

Objectif: Acquérir des techniques courantes utilisées en biologie

moléculaire, sur le plan théorique et pratique.   Programme :Clonage d'un gène d'intérêt •  Amplification du gène d’intérêt par PCR •  Digestion du gène par des enzymes de restriction •  Clonage du gène: Ligature du gène au plasmide •  Transformation de bactéries compétentes •  Sélection des clones positifs par screening blanc/bleu •  Extraction du plasmide porteur du gène d'intérêt •  Vérification du clonage

Objectif : Connaître les bases moléculaires de la thrombose et des maladies métaboliques telle que l’obésité ou le diabète de type 2

Site des enseignements : Timone

UE09- Bases moléculaires des maladies métaboliques et vasculaires Responsable : Anne Dutour

Campus Timone

Contacts •  Secrétariat SSA

ChristianeTanda (service D31) sciences-master-m1ssa@univ-amu.fr sciences-master-m2ssa@univ-amu.fr ; 04 91 28 86 29

Site Web: http://ssa.ism2.univ-cezanne.fr Horaires d’ouverture: tous les jours SAUF le mardi matin et le jeudi après-midi

•  Responsable M1 SSA Viviane Robert (service 341) sciences-master-m1ssa@univ-amu.fr ; 04 91 28 28 66

•  Responsable spécialité SSA El Hassan Ajandouz (service 342) sciences-master-m2ssa@univ-amu.fr ; 04 91 28 81 36