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Dr Manel Chaâbane MCA en Hématologie
Centre National de Transfusion Sanguine Faculté de Pharmacie de Monastir
Gabès, le 12 avril 2016è
Société Tunisienne de Biologie Clinique Journée de formation
La sécurité tranfusionnelle
Démarche à entreprendre devant un test de compatibilité au
laboratoire positif
1
1- Eviter la rencontre d’un antigène érythrocytaire (CGR) avec son anticorps spécifique (plasma du receveur)
2- Ne pas apporter au receveur des antigènes qu’il ne possède pas
Prévenir le conflit immunologique
Prévenir l’allo-immunisation 2
Généralités
Sécurité immunologique de la transfusion de CGR
L’épreuve directe de compatibilité au laboratoire (EDC)
Vérifier la compatibilité des CGR à transfuser avec le sérum ou le plasma du receveur
3
Généralités
Éviter le conflit immunologique entre le donneur et le receveur
Peut être responsable d’hémolyse
Effets néfastes sur le receveur (anurie, IRC, état de choc, CIVD, décès)
Inefficacité transfusionnelle
Si le CGR est incompatible
Examens immunohématologiques
complémentaires
Conduite transfusionnelle adéquate
4
Généralités
L’épreuve directe de compatibilité au laboratoire (EDC)
5
• Fait partie des contrôles biologiques pré-don
• Obligatoire avant toute transfusion de CGR (législation
tunisienne)
• Tester les GR à transfuser avec le sérum ou le plasma du
receveur (ou de la mère si âge < 3 mois)
• Attribution nominative du CGR compatible
• Validité 72 h après la date de prélèvement
• Techniques ?
L’épreuve directe de compatibilité au laboratoire (EDC)
6
Anticorps naturels réguliers (IgM+IgG)
1
Anticorps naturels irréguliers (IgM+++)
2
Anticorps d’alloimmunisation (IgG)
3
Les différents types d’anticorps anti-érythrocytaires
Les anticorps complets (directs) Les anticorps incomplets (indirects)
Agglutination directe GR sensibilisés
IgM :anti-A, anti-B,
anti-H, anti-P1 …
IgG : anti-D, anti-JKa..
Nécessité de recours aux techniques d’agglutination
artificielle 7
Les différents types d’anticorps anti-érythrocytaires
Techniques utilisées
8
Test de Coombs Indirect (TCI)
En tube
• Lavage des hématies à tester
• 1 goutte de la suspension d’hématies à 3% en salin ou en BFI
• 2 gouttes du sérum du receveur
• Incubation : 45 mn à 37°C (15 mn si BFI)
• 3 lavages
• 1 goutte d’antiglobuline
• Centrifugation 20 s à 1500 trs/mn
• Lecture
En gel filtration
• Etape de lavage des hématies n’est pas nécessaire
• 50 µL de la suspension d’hématies à 0.8 % en BFI
• 25 µL du sérum du receveur
• Gel dans des microtubes contenant l’antiglobuline
• Incubation : 15 mn à 37°C
• Centrifugation 10 mn à 800 trs/mn
• Lecture
9
Techniques utilisées
TCI: Modalités pratiques
Techniques utilisées
10
Technique enzymatique • Enzymes: Papaïne, Broméline , Trypsine
• Hydrolyser les glycoprotéines riches en acide sialique à la surface des GR
• Diminuer de la charge électrique superficielle des
GR
• Rendre plus accessibles les sites antigéniques
• GR traités sont alors agglutinables par des Ac IgG
initialement non agglutinants
En tube
• Lavage des hématies à tester
• 1 goutte de la suspension d’hématies traitées à l’enzyme à 3% en salin
• 2 gouttes du sérum du receveur
• Incubation :37°C, 30 mn
• Centrifugation 20 s à 1500 trs/mn
• Lecture
En gel filtration (gel test)
• Etape de lavage des hématies n’est
pas nécessaire
• 50 µL de la suspension d’hématies à 0,8 % en BFI
• 25 µL du sérum du receveur
• 25 µL enzyme
• Gel dans des microtubes
• Incubation :37°C, 15 mn
• Centrifugation 10 mn à 800 trs/mn
• Lecture
11
Techniques utilisées
Technique enzymatique: Modalités pratiques
Techniques utilisées
12
Technique enzymatique: avantages et inconvénients
• Avantages:
Technique plus sensible pour les Acs du système RH
• Inconvénients:
Certains Ag de groupe sanguins sont détruits ou inactivés après
traitement enzymatique : Systèmes (MNS, Duffy)
Technique inappropriée lorsque ces Ag sont impliqués
Démarche devant une EDC positive
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RAI Receveur
Demande de transfusion de CGR
Choix de CGR ABO/Phénocompatible
Test de compatibilité au laboratoire
Agglutination
Conduite transfusionnelle
Transfusion
La recherche d’anticorps irréguliers (RAI)
14
• Rechercher des anticorps autres que anti-A et anti-B
• Tester le sérum du receveur vis à vis d’un panel de GR
tests O
•Techniques
Test de Coombs indirect (TCI)
Technique enzymatique
Technique en salin à 22°C (ou 4°C) salin
• Met en evidence les anticorps immuns et naturels
La recherche d’anticorps irréguliers (RAI)
15
• Deux temps
Dépistage (2 à 4 GR)
Identification (10 à 12 GR)
• Panel: GR homozygotes (Fya, Fyb, Jka, Jkb, S, s)
Exemple: Fya+Fyb-
Détection des Ac de titre faible
• Bon moment: 7 à 21 jours après une transfusion
• Validité: 72h
RAI positive
16
• Systèmes immunogènes :RH, KEL, FY, JK, MNS
• Allo-immunisation : transfusion ou grossesse
• Chauds, IgG
• Fréquents chez les polytransfusés (thalassémiques,
drépanocytaires, …)
• Réactions hémolytiques retardées ou immédiates,
inefficacité transfusionnelle
Allo-anticorps
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Allo-anticorps
• Respecter les allo-Ac au moment de la transfusion
• Faire l’EDC avec d’autres CGR
• La compatibilité du CGR ne garantit pas l’absence de
l’Ag correspondant à l’Allo Ac identifié (effet dose)
• Ac anti- Fya, Fyb, Jka, Jkb, S, s
• Phénotypage ciblé du CGR
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• Anti-M, anti-N, anti-P1, anti-Lea
• Anti-H des sujets A1 et A1B
• IgM
• Optimum thermique à 4°C
• Ne pas respecter ces anticorps au moment de la
transfusion de CGR
• Attention: Certains anti-Lea sont actifs à 37°C et
hémolysants
Anticorps naturels irréguliers
19
• Réagissent à différentes températures
• Dirigés contre des antigènes publics (> 99 % des
donneurs)
Toutes les transfusions sont incompatibles
• N’induisent jamais d’accidents cardio-vasculaires
ou rénaux gravissimes
• Transfuser?
Auto-anticorps
20
• Association auto-Ac (chauds+++) + Allo-Ac : fréquente
• Difficile de détecter les allo-Ac cachés par les auto-Ac
• Avant toute transfusion: Vérifier l’absence d’allo-Ac
cachés par les auto-Ac
• Comment?
Auto-anticorps
21
Auto-anticorps
• Adsorption de l’auto-Ac
Si auto-Ac chaud de type IgG
Sur des hématies autologues ou des hématies
homologues
Identifier l’allo-Ac dans l’adsorbat
• Technique qui consomme beaucoup de temps,
pratiquée dans des laboratoires de référence
22
23
Adsorption autologue ou homologue
+
Ag public cible de l’auto-Ac
Sérum du patient
Incubation
GR autologue ou homologue
Auto-Ac Allo-Ac
Centrifugation
Adsorbat
Auto-anticorps
• Traitement au Dithiothréitol (DTT)
Si Auto-Ac de type IgM
Identifier l’allo-Ac après traitement au DTT
•Phénotypage élargi du patient avant toute transfusion
(Fya, Fyb, Jka, Jkb,S,s)
• Fournir des CGR compatibles
24
• Toutes les hématies tests sont agglutinées
• Témoin auto négatif
• 3 types
Allo-Ac publics naturels réguliers
- Anti-H :sujets Bombay Oh
- Anti-Tja: sujets p
Allo-Ac publics immuns
-Anti-Vel
-Anti-Cellano
Anti-public
25
Anti-public
26
• Rares mais dangereux en transfusion
• Vérifier si Allo-Ac asscociés (adsorptions sélectives)
• Transfuser avec des CGR compatibles
Don autologue
Don familial
Banque de sang de phénotype rare
• Confirmation:
Panel de GR de phénotype rare
Phénotypage pour l’Ag correspondant: anti-sérums rares
Génotypage
HTLA “High Titer Low Avidity”
- Chido, Rodgers
-Panagglutination en TCI
- RAI négative en enzyme
Anticorps sans signification transfusionnelle
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• Faire TC en TCI: Si même intensité que RAI: Transfuser
• Faire TC en technique enzymatique
Anti-public
• Panagglutination en technique enzymatique
Temoin autologue positif en technique enzymatique
Absence d’agglutination en technique Coombs indirect
Anticorps sans signification transfusionnelle
28
Auto-enzymes
CGR compatible en TCI
RAI négative
29
RAI négative
• Incompatibilité ABO ( si agglutination 4+)
Mauvaise attribution du CGR : ABO incompatible
Erreur de prélèvement : Vérifier le GS ABO de
l’échantillon du receveur
• Vérifier que l’agglutination n’est pas due au CGR
1/10 000 donneurs de sang sains TCD positif
Faire le TCD du CGR
Si TCD (+), choisir un autre CGR
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• Anticorps ABO naturels irréguliers
Anti-A1 des sujets A2, A2B, Af, AfB
Propriétés
- Faible titre
- Optimum thermique = +4°C
- Difficultés de groupage
- Sans signification clinique
Ne pas respecter au moment de la transfusion de CGR
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RAI négative
• Anticorps anti-privé
A respecter au moment de la transfusion de CGR
32
RAI négative
Dirigés contre un Ag privé: rare +++
Agglutinent au plus une hématie test
Transfusions inefficaces
Choisir un CGR compatible
Pour résumer
33
Démarche devant une EDC au laboratoire positive
(+) (-)
34
RAI Receveur
Transfusion
TCD CGR
Demande de transfusion de CGR
Choix de CGR ABO/Phénocompatible
Test de compatibilité au laboratoire
(-) (+)
Est-ce que c’est suffisant?
Vérifier GS ABO D et R
Ac anti-privé
Spécificité de l’Ac?
CAT
Anti-A1
Oui si RAI (-)
Démarche devant une RAI positive (1)
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Acs naturels irréguliers
IgM +++ MNS (anti-M, anti-N) P (anti-P1) Lewis (anti-Lea) ABO (Anti-A1, Anti-H des sujets A1 et A1B)
Sans incidence transfusionnelle sauf certains anticorps hémolysants (anti-Lea)
Acs immuns
IgG +++ Grossesse,transfusion Anti-D, anti-K, anti-Jka…
Hémolyse post-transfusionnelle
Auto-Acs
IgG et/ou IgM
Pas d’accidents graves
Vérifier l’absence d’Allo-Ac
Si absence d’Allo-Ac
Transfuser en incompatible
Ne pas transfuser CGR incompatibles
Transfuser en incompatible
!
Démarche devant une RAI positive (2)
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Anti-public
HTLA
Sans incidence transfusionnelle Hémolyse post-transfusionnelle
Vérifier l’absence d’autres Allo-Ac
Transfuser en incompatible
• Naturels réguliers (anti-Tja, anti-H des sujets Bombay) • Immuns (anti-Vell, anti-Cellano
Ne pas transfuser CGR incompatibles
Cas pratique
37
Cas pratique
Y M, 17 ans, β-thalassémique
Demande de 2 CGR
GS: O+
Phénotype RH KEL: D+C+c+E-e+K-
2 CGR: O+/ D+C-c+E-e+K-
EDC en gel Liss : incompatibles (3+)
RAI du receveur: Panagglutination (Liss et enzyme)
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TA: positif (Liss et enzyme)
Auto-Ac: ne sont pas responsables d’accidents
transfusionnels graves
Transfuser?
Vérifier l’absence d’Allo-Ac
RAI après adsorptions autologues: Anti-Jka (1+)
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Cas pratique
Comment faire l’EDC?
Sérum natif?
EDC avec adsorbat sur 2 CGR
2 CGR compatibles
Transfuser?
Phénotypage Jka: 1 CGR Jka (-), 1 CGR Jka (+)
40
Un auto-Ac peut cacher un allo-Ac Attention à l’effet dose
Cas pratique
Conclusion
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L’EDC au laboratoire
• Obligatoire avant toute transfusion de CGR
• Met en évidence une incompatibilité entre les Acs du
receveur et les Ag du donneur
• Limites
Ne décèle pas les anticorps de faible réactivité si
les GR du donneur sont hétérozygotes
Ne remplace pas la RAI mais la complète
Conclusion
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L’EDC au laboratoire ne dispense pas du contrôle ultime au lit du malade et vice
versa
MERCI POUR VOTRE ATTENTION ! DES QUESTIONS?
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