Aucun titre de diapositive · Immobilisation avec une colonie qui provient d’une seule cellule...
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Hématopoïèse
Dr Elodie LAINEY
Service d’Hématologie Biologique
Hôpital Robert Debré - APHP
L2-UE6-Hématologie-2017
Plan
• Introduction : Les cellules sanguines
• Hématopoïèse versus Ontogenèse
• Les différents compartiments médullaires
• Détails lignée par lignée des différentes cellules hématopoïétiques
• Régulation de l’hématopoïèse
• Exploration de l’hématopoïèse en pratique clinique
Quelles cellules retrouve-t-on dans le sang?
Monocytes
Neutrophile
Polynucléaires Eosinophile
Basophile
Cellule T
Cellule B
Natural Killer
Lymphocytes Immunité cellulaire
Immunité humorale
Défense de l ’organisme, surveillance immunitaire
(précurseur des macrophages)
Défense de l’organisme (Phagocytose et Bactéricidie)
Défense de l’organisme (Parasites, Allergies)
Inflammation et allergie
Quelles cellules retrouve-t-on dans le sang?
Erythrocytes /Globules Rouges
Plaquettes
Monocytes
Neutrophile
Polynucléaires Eosinophile
Basophile
Cellule T
Cellule B
Natural Killer
Lymphocytes Immunité cellulaire
Immunité humorale
Défense de l ’organisme, surveillance immunitaire
(précurseur des macrophages)
Défense de l’organisme (Phagocytose et Bactéricidie)
Défense de l’organisme (Parasites, Allergies)
Inflammation et allergie
Coagulation
Véhiculent l’oxygène
Quantité de cellules dans le sang ?
Erythrocytes /Globules Rouges
Plaquettes Neutrophile
Basophile
Cellule T
Cellule B
Natural Killer
0.1 à 1 .109/L 100-1000/µl
1.7 à 7.109/L = 1500 à 8000/µl
0.05 à 0.5.109/L = 50 à 500/µl
< à 0.1.109/L <100/µl
150 à 450.109/L
1 à 4.109/L 1500 – 4500/µl
4 à 6.1012/L
Monocytes
Polynucléaires Eosinophile
Lymphocytes
Durée de vie des cellules sanguines
Erythrocytes /Globules Rouges
Plaquettes
Monocytes
Neutrophile
Polynucléaires Eosinophile
Basophile
Cellule T
Cellule B
Natural Killer
Lymphocytes
2 jours (sang)
6-8 heures (sang) < 3 jours (tissus)
8-12 heures (sang) < 10 jours (tissus)
3-4 jours
8-10 jours
120 jours Fonctions hétérogènes: durées de vie hétérogènes exemple: fonction mémoire durée de vie = années
Morphologies différentes
Fonctions différentes
Durée de vie différente
Quantités différentes
Répartitions différentes
Cellules matures incapables de se
renouveler
28 grammes de sang nouveau par jour
2 millions de globules rouges produits par seconde
Tissu hématopoiétique: 4 à 6% du poids corporel
Un mécanisme physiologique doit permettre le remplacement des cellules sanguines…
- une capacité de prolifération et de renouvellement (quantitatif)
- une capacité de diversification (qualitatif = différenciation) - une capacité de régulation : équilibre/homéostasie
Morphologies différentes
Fonctions différentes
Durées de vie et séjours vasculaires
différents
Quantités différentes
Répartitions différentes
Cellules matures incapables de se
renouveler
Hématopoïèse
Ensemble des mécanismes qui assurent la production
constante et régulée des différentes cellules sanguines
Hématopoïèse
Ensemble des mécanismes qui assurent la production
constante et régulée des différentes cellules sanguines
Ontogénèse
Etude de la croissance et le développement d’un individu (ou
d’un tissu) depuis la fécondation de l’œuf jusqu’à l’âge adulte
Succession de territoires hématopoïétiques au cours de l’ontogenèse
Sac vitellin
7.5 J 10.5 J 12.5 J 15.5 J naissance
AGM
Placenta
Artère vitelline
Veine vitelline
Artère ombilicale Veine ombilicale
Production de CSH
Hématopoïèse
Primitive
Extra-embryonnaire
Hématopoïèse
définitive
Intra-embryonnaire AGM= Aorte-gonado-
mesonephros (aorte, ébauches
des crêtes génitales et
ébauche du rein)
Succession de territoires hématopoïétiques au cours de l’ontogenèse
Sac vitellin
7.5 J 10.5 J 12.5 J 15.5 J naissance
AGM
Placenta
Foie foetal
Moelle osseuse 4ème-5ème mois
Artère vitelline
Veine vitelline
Artère ombilicale Veine ombilicale
Production de CSH
Expansion des CSH
Rate
Thymus
Hématopoïèse
Primitive
Extra-embryonnaire
Hématopoïèse
définitive
Intra-embryonnaire AGM= Aorte-gonado-
mesonephros (aorte, ébauches
des crêtes génitales et
ébauche du rein) Résidence des CSH
Dés le début du
2ème mois
1 2 3 4 5 6 7 8 9 mois gestation adulte
Sac vitellin
Foie
Rate
Moelle osseuse
(os plats chez l’adulte)
Mésoderme
Sièges de l’hématopoïèse
Les compartiments hématopoïétiques
4 compartiments :
Les Cellules souches hématopoïétiques (CSH)
Autorenouvellement, multipotence et différenciation
Les progéniteurs
Cellules engagées dans un/des lignage(s) cellulaire(s)
Les précurseurs
Cellules qui se divisent et qui maturent
Les cellules matures
Cellules fonctionnelles qui passent dans le sang
Les 4 compartiments de cellules hématopoïétiques
autorenouvellement
MATURATION
DIFFERENCIATION
PROLIFERATION
Précurseurs
Caractéristiques des CSH
• Cellules peu nombreuses (0.01-0.1% des cellules de la moelle)
( 150 sollicitées chaque jour)
• Cellules indifférenciées localisées dans la moelle osseuse
• Cellule encore imparfaitement caractérisée (fonctionnelle et profil antigènique)
• Non reconnaissables morphologiquement (contrairement aux précurseurs)
• En majorité quiescentes (G0 du cycle)= dormance (10% du pool en cycle)
• Processus de division cellulaire asymétrique = 2 cellules filles aux caractéristiques différentes (cellule souche qui pourra continuer le cycle (autorenouvellement) et une cellule progénitrice (multipotence))
Toutes les cellules d’une même colonie
proviennent d’une même cellule souche
(Anomalie chromosomique)
Linéarité entre le nombre de cellules
injectées et le
nombre de colonies
CFU-S sont multipotentes
= colonies contiennent plusieurs types de
lignages cellulaires
CFU-S ont un potentiel d’auto-renouvellement
= Injection d’une colonie splénique permet la
reconstitution de
l’ensemble de l’hématopoïèse
Caractérisation phénotypique des CSH
Souris Homme
c-kit+ c-kit+
CD117 Thy-1low Thy-1low
CD90
Sca-1+
CD34+
+ négatives pour :
B220 (lymphocytes B)
CD3, CD4, CD8 (lymphocytes T)
Mac-1 (macrophages et NK)
GR-20 (granulocytes)
Ter119 (Gr)
Lin-
+ négatives pour :
CD10, CD19, CD20 (lymphocytes B)
CD3, CD4, CD8 (lymphocytes T)
CD14 (monocytes/macrophages)
CD15 (granulocytes)
= Lin-Sca1+Kit+THy1+/-CD34-CD48-CD150+ = Lin-CD34+CD38- CD90+ CD117+
Les Progéniteurs
• 1% des cellules de la moelle osseuse
• Descendants des CS multipotentes = premier stade de différenciation
• PERTE progressive des propriétés d’autorenouvellement et de multipotentialité (notion de progéniteur primitif et différencié)
= CAPACITÉ D’ENGAGEMENT ET DE PROLIFERATION
• Existent des progéniteurs Multipotents (donnent naissance à plusieurs lignées mais déjà engagés), Bipotents (deux lignées, ex BFU-e/MK) et Monopotent (BFU-e immature)
• Non reconnaissables morphologiquement mais marqueurs Ag de Surface
Les progéniteurs
LT-HSC MPP
ST-HSC
CSH
CLP
CMP CFU-GEMM
Pro-T
Pro-B
GMP CFU-GM
MEP
Progéniteurs Précurseurs
CFU-M, CFU-G, CFU-Eo
BFU-E , BFU-Mk
Progéniteurs
primitifs
Progéniteurs
tardifs
Progéniteurs
différenciés
Progéniteurs
multipotents
Mise en évidence indirecte: culture in vitro
– Test clonogénique quantitatif en milieu semi-solide (methycellulose): en
l’absence de stroma et en présence de facteurs de croissance, durée chez
l’homme: 2 semaines. Immobilisation avec une colonie qui provient d’une seule
cellule
– Culture à long-terme en milieu liquide: en présence de stroma sans facteur de
croissance, durée: 8-10 semaines, intérêt: culture de progéniteurs plus immatures
pour réaliser des tests clonogéniques ensuite.
14 jours
+ cytokines
CFU-Mixte
CFU-GM
CFU-Mk
BFU-E
Colonies
Méga Erythro Mixte GM
Les précurseurs médullaires
• Perte totale de la capacité d’auto-renouvellement
• Multiplication et maturation terminale de l’hématopoïèse
(3 à 5 mitoses selon la lignée = 8 à 32 cellules matures)
• Reconnaissables morphologiquement pour chaque lignée et par
des ag de surface, spécifique de lignées :
– Glycophorine A pour la lignée érythroïde,
– CD19 pour les lymphocytes B,
– CD3 et CD7 pour les lymphocytes T
– CD13 et CD33 pour la lignée granulomonocytaire…
Les différentes lignées
hématopoïétiques:
- Lignée érythroblastique = Globules Rouges
- Lignée mégacaryocytaire = Plaquettes
- Lignée granulo-monocytaire = PNN et Monocytes
- Lignée lymphocytaire = Lymphocytes
Processus de production des Globules Rouges = Erythropoïèse
CFU-E
Proérythroblaste
Erythroblaste
Basophile
x x x x
Erythroblaste
Polychromatophile II
Erythroblaste
Acidophile
4 -7 jours
24 heures
Erythroblaste
Polychromatophile I
Réticulocyte
Erythrocyte
La lignée Erythroblastique 15-30% des éléments médullaires
(Différenciation dans la moelle
osseuse)
PROER
Proérythroblaste
(1-2%)
ERB
Érythroblaste basophile
(4 à 8%)
ERP
Érythroblaste
Polychromatophile
(6-10%)
ERA
Érythroblaste acidophile
(4 à 10%) Îlots érythroblastiques
Différenciation Erythroïde Terminale
Proerythroblast
Extruded
Nucleus
Immature
Reticulocyte
Enucleating
Erythroblast Orthochromatic
Erythroblast
(ribosomes
et mitochondries)
Régulation de l’érythropoïèse
Production = 200 milliards de GR/J
Perte (hémolyse physiologique) = 200 milliards de GR/J
Fer, vitamines (B12, B9),
Hormones (T4, Androgènes, IGF-1,..)
Anémie
Hypoxie Rénale Polyglobulie
Hyperviscosité
Stroma
Cytokines +
Equilibre Stable
EPO
Lignées granuleuse et monocytaire
CFU-GM
CFU-G
CFU-M
monoblaste myéloblaste
promyélocyte
myélocyte
méta-
myélocyte
PNN
promonocyte
monocyte
2-4
jou
rs
7-1
0 jo
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Co
mp
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Et
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10
-14
jou
rs
MB
Myéloblaste
0,5 à 3%
PML
Promyélocyte
1 à 8%
MLN
Myélocyte neutrophile
5 à 19%
MMLN
Métamyélocyte
13 à 32%
PN
Polynucléaire neutrophile
10 à 10%
La lignée granuleuse neutrophile
(coloration MGG) (50 à 70% des éléments médullaires)
1 myéloblaste
16-32 PNN
Marqueurs d’immaturité:
• CD34/CD38/CD133/CD90
• CD117
• HLA-DR
•CD7(+/-)
• CD123
Marqueurs de maturité:
• CD18/CD10
• CD11b
• CD66/CD65
• CD16
•CD35/CD24/CD87
Marqueurs constamment
présents :
• CD33/CD55/CD59/CD62
• CD13/CD15/CD44/CD49
• CD11c/CD11a/CD82
• MPO
Modulation du niveau d’expression des principaux marqueurs au cours de la
maturation granulocytaire
Promégacaryoblaste
mégacaryoblaste
mégacaryocyte
basophile
mégacaryocyte
granuleux
mégacaryocyte
mature
Processus de production des plaquettes
= Mégacaryopoïèse: mécanisme de production des mégacaryocytes
et Thrombopoïèse : mécanisme de formation des plaquettes
plaquettes
2000 à 5000 plaquettes/MK
Cytokines les + importantes:
TPO, SCF, IL-11 et EPO
2N à 128N
(majorité de stade 16N
Moelle adulte)
La lignée Mégacaryocytaire 0,02-0,05% des elements medullaires
(Différenciation dans la moelle
osseuse)
Mégacaryoblaste
(30 microns)
Mégacaryocyte
Basophile
Mégacaryocyte
Plaquettogène
(100 microns)
Plaquettes
150-450 G/L
(2 à 5 microns)
Lymphopoïèse
Précurseur lymphoïde commun
(CLP)
Précurseur B
Précurseur T
THYMUS
MOELLE OSSEUSE
ORGANES LYMPHOIDES
PERIPHERIQUES
- Rate
- Ganglions
- Formations lymphoïdes des
muqueuse (amygdales)
Expansion clonale
Des cellules mature
Contact antigénique
= Réponse immunitaire
Lymphopoïèse
primitive
Lymphopoïèse
primitive
Lymphopoïèse secondaire
- Facteurs Intrinsèques: Régulation Transcriptionnelle et Epigénétique
- Facteurs Extrinsèques: Interaction entre les CSH et le micro-
environnement des niches médullaires:
• Interactions directes cellules-cellules via des molécules d’adhérence
(intégrines/cadherines)
• Interactions indirectes (cytokines, chimiokines, facteurs
environnementaux (tension en oxygène…) et éléments de la matrice
extracellulaire (fibronectine, laminine, collagène….))
GATA-2
CSH
Progéniteur
pluripotent
Ikaros
PU.1 E2A EBF Pax 5
AML1
PU.1
C/EBP
MafB
GATA-1
NFE-2
cellule B cellule T
Monocytes
PMN
Mastocyte
Erythrocyte
Mégacaryocyte Plaquette
MafG/MafK
NK
C/EBP
FLI-1 FOG
GATA-1
GATA-3
PU.1
Expression des régulateurs de transcription
(Facteurs de transcription)
GATA-1
Rôle du stroma
dans la régulation de l’hématopoïèse
• Arguments:
– Anomalies hématologiques secondaires à des anomalies du microenvironnement en cas de mutation du gène du SCF (souris Sl/Sld ou W/Ww)
– Inefficacité des greffes de moelle osseuse en cas d’anomalies du stroma
– Culture in vitro
• Source de facteurs de croissance, de molécules inhibitrices, molécules d’adhésion:
– Secrétés et relargués sous forme soluble
– Secrétés et réabsorbés sur la MEC (protéoglycane)
– Secrétés en restant ancrés à la membrane de la cellules stromale (SCF)
• Adhésion des cellules hématopoïètiques au microenvironnement
Niche Hématopoéïtique = Stroma + MEC + CSH
Tissu de soutient et de nutrition de toutes les cellules
hématopoïétiques constitué de différents types de cellules (stroma)
baignant dans une matrice extra-cellulaire (MEC)
Niche Hématopoéïtique = Stroma + MEC + CSH
Tissu de soutient et de nutrition de toutes les cellules
hématopoïétiques constitué de différents types de cellules (stroma)
baignant dans une matrice extra-cellulaire (MEC)
Cellules endothèliales des sinusoïdes
= Niche vasculaire
Cellules stromales mesenchymateuse
= Niche périvasculaire
Ostéoblastes
= Niche endostéale
Axe neuro-sympatique
Lymphocytes Treg
Fibroblastes et Adipocytes
Monocytes/Macrophages
Ostéoclastes
Cellules musculaires lisses
Niche Hématopoéïtique = Stroma + MEC + CSH
Tissu de soutient et de nutrition de toutes les cellules
hématopoïétiques constitué de différents types de cellules (stroma)
baignant dans une matrice extra-cellulaire (MEC)
MEC =
Structure dynamique composée
de protéoglycanes, glycanes:
• Fibres de collagènes I/III/IV
• Protéines des membranes
basales (Laminine,Entactine)
• Composants interstitiels
(Fibronectine,Nestine,Thromb
ospondine,Osteopontine…)
Cellules endothèliales des sinusoïdes
= Niche vasculaire
Cellules stromales mesenchymateuse
= Niche périvasculaire
Ostéoblastes
= Niche endostéale
Axe neuro-sympatique
Lymphocytes Treg
Fibroblastes et Adipocytes
Monocytes/Macrophages
Ostéoclastes
Cellules musculaires lisses
Niche Hématopoéïtique = Stroma + MEC + CSH
Tissu de soutient et de nutrition de toutes les cellules
hématopoïétiques constitué de différents types de cellules (stroma)
baignant dans une matrice extra-cellulaire (MEC)
MEC =
Structure dynamique composée
de protéoglycanes, glycanes:
• Fibres de collagènes I/III/IV
• Protéines des membranes
basales (Laminine,Entactine)
• Composants interstitiels
(Fibronectine,Nestine,Thromb
ospondine,Osteopontine…)
Cellules endothèliales des sinusoïdes
= Niche vasculaire
Cellules stromales mesenchymateuse
= Niche périvasculaire
Ostéoblastes
= Niche endostéale
Axe neuro-sympatique
Lymphocytes Treg
Fibroblastes et Adipocytes
Monocytes/Macrophages
Ostéoclastes
Cellules musculaires lisses
CSH CSH
CSF
Chimiokines
Gradient de Ca2+
Pression d’O2 (1%)
Vitamines B9/B12
Oligoélèments…
Fibroblastes Myofibroblastes
Endothélium
Cytokines
Macrophages
CSH
Protéoglycane
(MEC)
Adipocytes
Chimiokines
ACTION DES FACTEURS DE CROISSANCE INTERACTIONS CELLULES/MATRICE
EXTRA-CELLULAIRE (MEC)
INTERACTIONS CELLULES/CELLULES
Niche hématopoïétique : Structure anatomique
et fonctionnelle
MAINTENANCE
MOBILISATION
PROTECTION
REGULATION
Cellules souches
mésenchymateuses (MSC)
• Glycoprotéines (8-90KDa)
• Mono ou hétérodimériques (1 seule sous-unité = classe I) et 2 sous-unités distinctes
(classe II)
• Synthèse par le stroma (sauf EPO-rein et TPO-foie)
• Mode d’action paracrine ou autocrine à trés faible concentration
• Action hiérarchisée et parfois synergique, Redondance d’activité, Régulation positive et
négative
Les cytokines ou CSF (facteurs de croissance)
• Glycoprotéines (8-90KDa)
• Mono ou hétérodimériques (1 seule sous-unité = classe I) et 2 sous-unités distinctes
(classe II)
• Synthèse par le stroma (sauf EPO-rein et TPO-foie)
• Mode d’action paracrine ou autocrine à trés faible concentration
• Action hiérarchisée et parfois synergique, Redondance d’activité, Régulation positive et
négative
3 grandes catégories:
• Facteurs de Promotion (Prolifération, Survie, entrée en cycle des CSH et
Sensibilisation aux autres cytokines)
• Facteurs de Régulation de l’Hématopoïèse (Multiplication, Différenciation et
maturation)
•
Les cytokines ou CSF (facteurs de croissance)
Facteurs multipotents
Agissant sur différentes
lignées déjà sensibilisées
= étapes précoces
Facteurs restreints à une lignée
déjà engagée
= étapes tardives
Facteurs de Promotions
SCF, FLT3-L, IL-3, famille IL-6
Facteurs multipotents:
IL3, GM-CSF, IL7
Facteurs restreints :
G-CSF (Granulocytes)
M-CSF (Monocytes)
EPO (Erythrocyte)
TPO (Plaquettes)
IL-5 (Eosinophiles)
IL-7 (Lymphocytes B)
IL-4 et2 (Lymphocytes T)
Transduction du signal
TK
Jak
STAT
Ras
MAP-K
Transcription
Noyau
STAT STAT
Récepteurs à
Activités Tyrosine
Kinase
cytokine
Récepteurs dépourvus
d’activités Tyrosine
Kinase Intrinsèque
Les 4 compartiments de cellules hématopoïétiques
Cellule souche multipotente
Progéniteur myéloïde (CFU-GEMM) Progéniteur lymphoïde
BFU-e/ MK
BFU-E
CFU-E
CFU-MK
CFU-GM
CFU-M CFU-G CFU-Eo CFU-bas
érythrocyte plaquette
macrophage Cell. dendritique
monoblaste
neutrophile éosinophile basophile Cellule T Cellule B NK
érythroblaste
mégacaryocyte
CFU-B CFU-T
autorenouvellement
Monocyte
tissu
s
sa
ng
myéloblastes
promyélocytes
myélocytes
métamyélocytes
plasmocyte
Reconstitution
à long terme in vivo
Cultures à long
terme
+(immunophénotypa
ge CD34)
Cultures
Progéniteurs
+
(immunophénotypage)
Myélogramme
et
Biopsie ostéo-
médullaire
Hémogramme
Moelle osseuse normale
• Répartition harmonieuse entre les éléments des différentes lignées: granuleuse, érythroïde, mégacaryocytaire
• Pyramide de maturation : plus d’éléments matures que de cellules jeunes !!
– Myéloblastes : 0.3 à 5%
– Promyélocytes : 1 à 8%
– Myélocytes : 5 à 19%
– Métamyélocytes : 13 à 32%
– Polynucléaires neutrophiles : 7 à 30%
– Myélocytes éosinophiles : 0.5 à 3%
– Métamyélocytes et polynucléaires éosinophiles : 0.5 à 4%
– Basophiles : 0 à 1%
– Monocytes : <10 %
– Erythroblastes : 7 à 32%
– Lymphocytes : < 20%
Rapport M/E:
3/1 à 4/1
• Facilité
• Visualisation des Cellules
• Délai de rendu
• Appréciation de la richesse
• Appréciation de la fibrose
• Architecture
+++
+++
+++
+++
+++
+++
+
-
+
-
+
+
Myélogramme
= cytologie
Myélogramme/BOM… en résumé
Biopsie ostéo-médullaire
= histologie
Cytopénie
(Anémie, Thrombopénie, Neutropénie isolée ou
bicytopénie ou pancytopénie)
Mécanisme central Mécanisme périphérique
1. Défaut de production (carence,
anomalie constitutionnelle….)
2. Destruction centrale (toxique, Rx,
Virus, immunologique)
3. Envahissement tumoral (leucémies,
Tumeurs solides, métastases)
1. Trouble de répartition (hypersplénisme,
augmentation du Pool marginal des PN)
2. Destruction périphérique
(alloimmunité, auto-immunité)
3. Consommation (ex CIVD)