Association d’aide à long terme à la biologie médicale

des pays en développement

Association Loi 1901 enregistrée à la Préfecture du Rhône

sous le n° W691058983 (JO du 1 .4 .1992). Association reconnue d’utilité publique

(décret du 18 février 2010)

Rapport

d’intervention

MISSION A DOLISIE, CONGO BRAZZAVILLE

Mission du 30/01/2017 au 09/02/2017 BIOLOGIE SANS FRONTIERE

Réalisée par Marie Hélène Castaldi et Michèle Bongarçon

Résumé : Amélioration des pratiques et des techniques existantes dans le laboratoire du

centre de santé Caritas et appui technique au nouveau laboratoire du poste de santé de Tahiti.

Formation du personnel à de nouvelles analyses de biochimie grâce à l’apport de nouveau

matériel.

Intervenants : Marie Hélène Castaldi et Michèle Bongarçon

Mots clés : BSF, Congo Brazzaville, Dolisie, centre de santé Caritas, formation, Kenza Max,

Biolabo

Amélioration du fonctionnement d’un laboratoire de niveau 1 et mise en place d’un nouveau petit

laboratoire au poste de santé catholique Sainte Famille de Tahiti, à Dolisie, République du Congo

Brazzaville

2ème mission BSF de 10 jours du 30/01/2017 au 09/02/02017

Lieu de la mission :

Dolisie, anciennement appelée Loubomo, 3ème ville de la république du CONGO, chef lieu du

NIARI, à 160 Kms de Pointe Noire (2H30 de route) et à 400kms de Brazzaville (6 H de route)

La nouvelle route de la côte à la capitale construite par les chinois facilite les communications à

l’intérieur du pays.

Exploitation de la forêt par des sociétés malaisiennes

Exploitation du pétrole par des sociétés françaises et italiennes

Exploitation de minerai

Ressource hydraulique et barrages sur les grands fleuves (Niari)

2

1. OBJET DE LA MISSION Le but de cette mission a été d’apporter du matériel pour compléter celui qui était déjà sur place et

ainsi par la formation du personnel, développer de nouvelles analyses et améliorer les techniques

existantes.

Cette mission a été réalisée par 2 techniciennes de laboratoire Marie Hélène Castaldi et Michèle

Bongarçon à la demande du médecin responsable du centre, le docteur Jean Baptiste Ngoyi Ngoma, et

de Sœur Agnès responsable du poste de santé de Tahiti.

2. ETAT DES LIEUX 2.1 Le centre de santé de Caritas

Il est situé à 10 minutes à pied du grand marché ce qui le rend accessible à un public le plus souvent

démuni. Il est ouvert du lundi au vendredi de 8 heures à 14 heures et le samedi de 8 heures à 12

heures.

Il est composé d’un bâtiment principal comprenant le cabinet de consultation du médecin, une salle

d’accueil des patients, la pharmacie, le laboratoire et une salle d’hospitalisation de jour.

Le gros œuvre du bâtiment de la maternité est terminé mais l’aménagement intérieur est en attente de

financement.

Un nouveau bâtiment est en fin de réalisation et abrite la consultation de planning familial et de

vaccination. Une consultation d’aide à la procréation a lieu une fois par semaine.

Le laboratoire est composé de trois pièces d’environ 25 m², la première servant de salle d’attente et à

l’arrière une salle de prélèvement suivie du laboratoire d’une surface de 9 m². Le tout est propre et

bien entretenu bien qu’il n’y ait pas d’eau courante. Le projet est de récupérer une partie de la salle

d’attente pour agrandir le laboratoire.

Voir annexe 1 : plans des laboratoires

Le personnel du laboratoire est composé de 2 techniciens : Edith en poste depuis plusieurs années qui

est major, et Aymar en poste depuis moins d’un an et qui a fait une école de laboratoire. Pendant notre

séjour, Sylvie, ayant une formation d’infirmière, fait un stage au laboratoire et n’a que peu de

connaissance en labo. Tous les trois font la réception des patients, l’enregistrement des analyses et les

prélèvements. Seuls Edith et Aymar rendent les résultats.

3

2.2 Bilan d’activité

Au cours de l’année 2016, le laboratoire a enregistré 6163 dossiers/ patients pouvant comprendre

plusieurs analyses (exemple : recherche de palu + Numération globulaire)

L’activité de la première semaine de janvier 2017 était de 94 dossiers/ patients et pour la totalité du

mois : 446 dossiers/ patients. Ces données ont été récupérées en consultant le registre d’enregistrement

bien tenu.

EXAMEN 1 ère semaine de

janvier 2017

Extrapolation pour

un mois en 2017

Rappel activité pour

1 mois en 2015

GERH paludisme 54 216 240

Parasitologie des selles 3 12 12

Cyto-bactério des urines 10 40 30

Prélèvement vaginal 6 24 20

Glycémie 18 72 35

Numération globulaire 18 72 47

Hématocrite 18 72 0

VS 11 44 45

Test d’Emmel 2 8 3

Groupe sanguin 1 4 0

Test de grossesse 0 0 5

Albumine/ sucre urinaire 2 8 3

CRP 3 12 0

Sérologie HIV 1 4 6

Sérologie typhoïde 4 16 20

Sérologie hélico bacter 1 4 0

Sérologie BW 0 0 2

2.3 Le matériel

Le laboratoire possède :

- 2 réfrigérateurs en bon état (contrôle des températures correctes dont un avec un compartiment

freezeur servant de congélateur).

- 2 microscopes dont un était un don de BSF, l’autre étant un prêt

- une centrifugeuse à hématocrite don de BSF en bon état

- une petite centrifugeuse de paillasse en location car celle amenée lors de la mission de septembre

2015 est hors service

- des pipettes automatiques don de BSF toutes en bon état

Lors de cette mission, nous avons amené :

- un appareil de biochimie Kenza Max neuf avec les réactifs et contrôles pour effectuer les analyses

suivantes : transaminases, bilirubine totale et directe, créatinine, calcium, glycémie et hémoglobine.

- une centrifugeuse de paillasse pour remplacer celle défectueuse

- un jeu de 3 pipettes automatiques

- du petit matériel de laboratoire

- un microscope pour le poste de santé de Tahiti

Voir annexe 5 : Certificat de session matériel BSF

2.4 – Le nouveau laboratoire du poste de santé de Tahiti

Ce poste de santé est situé dans un quartier défavorisé à la périphérie de Dolisie. Le bâtiment est de

bonne facture, sans problème d’approvisionnement en eau courante, bonne disposition des différentes

salles, accès cimenté, très propre et agréable ; toilette extérieure avec une douche, un WC pour les

patients et un pour le personnel.

4

Voir annexe 1 : plan des laboratoires

Il est dirigé par Sœur Agnès, aidé par deux infirmiers qui reçoivent les patients. Roger, laborantin,

effectue les analyses de bactériologie et parasitologie, des glycémies, quelques tests rapides

(paludisme, BW, VIH, typhoïde) mais a besoin d’une remise à niveau qu’il a reçu en participant à la

formation que nous avons donné les après- midi au centre Caritas. Les autres examens sont envoyés au

centre de santé Caritas. Avant notre arrivée, Roger travaillait sur un microscope en location.

Le matériel est composé du microscope apporté par nos soins, d’une centrifugeuse de prêt et de

consommables.

3. DEROULEMENT DE LA MISSION

Notre mission s’est composée de 3 activités :

3.1 Installation du laboratoire dans le poste de santé de Tahiti

Grâce au microscope que l’on a fourni, les techniques de parasitologie, et les examens de bactériologie

ont été revus et une remise à niveau des connaissances de Roger a permis d’améliorer la qualité de

rendu des résultats. Les différentes techniques de coloration ont été revues. L’interprétation des lames

lues au microscope a été ré expliquée.

3.2 Mise en place des analyses de biochimie

La formation du personnel a été de donner les bases de la spectrophotométrie, de se familiariser à

l’utilisation de l’automate Kenza Max et réaliser les analyses suivantes avec les réactifs Biolabo :

calcium, bilirubine totale et directe, hémoglobine, transaminases et créatinine, glycémie.

Des réactifs de marque Cypress et Spinreact avaient été achetés avant notre arrivée, ce qui a permis de

mettre au point les analyses de magnésium, acide urique et LDL à la demande du médecin.

Voir annexe 2 : analyses de biochimie

La formation au paramétrage de nouvelles analyses va permettre d’utiliser des réactifs de plusieurs

fournisseurs en fonction de l’approvisionnement.

La bonne compréhension des différents types d’analyse va les rendre autonome face à de nouvelles

situations : chimie en point final, cinétiques de dosages d’enzymes. L’utilisation des contrôles de

qualité à chaque série d’analyses a été instituée.

Les notions sur la linéarité, les constantes, les normales hautes et basses, la longueur d’onde ont été

acquises. Par contre, on note un peu de difficulté pour le calcul des dilutions.

Le dosage du glucose a permis de comparer le résultat avec celui rendu par le glucomètre.

Voir annexe 3 : formation à la biochimie

3.3 Amélioration des pratiques du laboratoire et de l’existant

Les numérations sont faites sur tube EDTA mais elles sont rendues sans les formules. La coloration au

May Grunwald a été revue grâce à un réapprovisionnement en réactifs.

Le rendu des globules blancs était trop élevé et la technique de dilution a été revue.

Grace au dosage de l’hémoglobine, le calcul des constantes érythrocytaires a été amélioré.

En parallèle avec le test rapide, la recherche de paludisme par la goutte épaisse et le frottis a été

généralisée. La coloration de Giemsa a été revue car l’ancien réactif avait des précipités de colorant et

des faux positifs étaient rendus.

La cytobactériologie des urines est faite après centrifugation mais le recueil des urines n’est pas fait

toujours dans de bonnes conditions.

Pour les frottis vaginaux et urétraux, l’examen au microscope doit être fait rapidement, ce qui n’est pas

toujours le cas par manque d’organisation. Le prélèvement sur écouvillon coton tige sans utilisation de

spéculum donne des résultats faussés par contamination externe.

Les examens des selles sont amenés au laboratoire tardivement et dans des contenants non adaptés à ce

type d’examen, posant des problèmes d’interprétation des résultats.

5

4. RAPPORT DE MISSION

4.1 Locaux

Le projet d’agrandissement du laboratoire en prenant une partie sur la salle d’attente va améliorer les

conditions de travail du personnel.

Si une solution n’est pas trouvée pour équiper tout le centre de santé en eau courante, ce sera un frein à

la bonne exécution des analyses.

Le laboratoire du poste de santé de Tahiti a de bonnes capacités pour faire un travail de qualité.

4.2 Matériel

Le principal problème a été l’utilisation de colorant de mauvaise qualité.

Pour la recherche d’hématozoaires par la goutte épaisse, l’achat de réactif neuf de Giemsa a permis de

ne plus rendre de faux positifs.

L’entretien des microscopes a été fait pour les rendre plus performants (beaucoup de poussières sur les

objectifs). Les centrifugeuses sont bien utilisées.

4.3 Hygiène

Nous avons montré comment utiliser les différentes dilutions d’eau de Javel en fonction de leurs

pouvoirs de désinfection : nettoyage des paillasses, nettoyage du matériel etc.

Nous avons aussi revu l’utilisation des gants qui étaient portés tout au long de la journée pour les

différentes fonctions d’enregistrement, prélèvements et manipulation au laboratoire.

4.4 Elimination des déchets

La gestion des déchets s’est améliorée depuis notre dernier passage. Les aiguilles de prélèvements sont

mises dans une bouteille en plastic puis sont récupérées avec les autres déchets coupants du centre de

santé par une société spécialisée au niveau de la ville de Dolisie. Les déchets communs sont brûlés sur

place et enfouis dans une fosse sécurisée dans un enclos grillagé et fermé par un cadenas. Les embouts

de pipettes, les lames et lamelles, les tubes sont trempés dans une eau de Javel avant d’être lavés.

5. PERSPECTIVE A COURT TERME

L’embauche récente d’un nouveau technicien Aymar va dynamiser l’activité du laboratoire, et

l’augmentation du panel d’analyses par la mise au point de la biochimie va permettre de répondre aux

attentes du docteur Jean Baptiste.

L’embauche prochaine d’un deuxième médecin va permettre de répondre à plus de demandes de soins

de la population et l’ouverture de la maternité va amener encore plus d’activité.

Depuis notre précédent passage, la tenue du registre d’enregistrement avec un numéro chronologique

en début d’année, un en début de mois et un journalier a été mis en place, permettant un suivi des

analyses en évitant des erreurs d’identification.

Voir annexe 4

Les cahiers de paillasse par type d’analyses sont un outil important de traçabilité des résultats.

Toutes ces consignes ont bien été mises en place, preuve de la volonté d’amélioration et d’efficacité.

La journée mériterait une organisation avec un peu plus de rigueur pour optimaliser le temps de

travail :

De 8h à 9 heures : rendu des résultats de la veille aux patients

De 9 heures à 11 heures : enregistrement et prélèvement des patients

De 11 heures à 14 heures : exécution des analyses

La gestion du matériel devra être optimalisée pour qu’elle ne soit pas un frein à l’augmentation de

l’activité : un seul des 2 microscopes était en bon état de marche.

6. CONCLUSION DE LA MISSION*

Cette mission a été fructueuse et enrichissante pour les deux parties, que ce soit pour nous, Marie-

hélène et Michèle, ainsi que pour l’ensemble du personnel qui nous a fait sentir son intérêt dans le

travail effectué dans le centre de santé.

6

Le déroulement de notre intervention a été facilité par une logistique irréprochable dans la gestion des

déplacements et l’accueil à l’évêché et dans la communauté de religieuses.

Il est souhaitable que BSF maintienne son aide aux deux structures car Sœur Agnès et le docteur Jean

Baptiste sont des personnes de confiance.

Il nous a été demandé de soutenir un projet de forage pour alimenter en eau potable le centre de santé

en donnant des conseils pour des demandes de financement auprès d’ONG spécialisée dans

l’adduction d’eau ou des bailleurs de fonds ou des fondations.

Une nouvelle intervention peut être envisagée lorsque la maternité sera ouverte et que l’eau courante

sera installée.

7. ANNEXES

Annexe 1 : plans des deux laboratoires

Annexe 2 : les analyses de biochimie avec valeurs normales

Annexe 3 : formation à la biochimie

Annexe 4 : modèle du cahier d’enregistrement des patients

Annexe 5 : Certificat de session matériel BSF

Annexe 6 : Recommandations

Annexe 7 : Photos

LABORATOIRE CENTRE DE SANTE CARITAS - DOLISIE

Date :

Nom :

Prénom :

EXAMEN BIOCHIMIE

TRANSAMINASES ASAT (VN= 13-31 UI/l)

ALAT (VN=10-40 UI/l)

BILIRUBINE TOTALE (VN= 3-12 mg/l)

DIRECTE

CREATININE (VN=8-12 mg/l)

CALCIUM (VN= 86-100 mg/l)

GLYCEMIE (VN= 0.8-1.10 g/l)

HEMOGLOBINE (VN=12-16 g/dl)

MAGNESIUM (VN= 16-25 mg/l)

ACIDE URIQUE (VN=30-7 mg/l)

LDL (VN = 1-1,29 g/l)

LABORATOIRE CENTRE DE SANTE CARITAS – DOLISIE

Date :

Nom :

Prénom :

EXAMEN BIOCHIMIE

TRANSAMINASES ASAT (VN= 13-31 UI/l)

ALAT (VN=10-40 UI/l)

BILIRUBINE TOTALE (VN= 3-12 mg/l)

DIRECTE

CREATININE (VN=8-12 mg/l)

CALCIUM (VN= 86-100 mg/l)

GLYCEMIE (VN= 0.8-1.10 g/l)

HEMOGLOBINE (VN=12-16 g/dl)

MAGNESIUM (VN= 16-25 mg/l)

ACIDE URIQUE (VN=30-7 mg/l)

LDL (VN = 1-1,29 g/l)

1

PROGRAMME BIOCHIMIE DOLISIE 2017

Principe de la spectrophotométrie

Beaucoup de substances absorbent la lumière dans le domaine du visible ou ultraviolet du spectre. On

peut utiliser cette propriété pour estimer une concentration. L’importance de l’absorption dépend du

type et de la concentration de la substance mais également de la longueur d’onde de la lumière utilisée.

C’est pourquoi on utilise de la lumière monochromatique, c'est-à-dire de la lumière de longueur

d’onde définie, que l’on peut isoler à partir de la lumière blanche à l’aide d’un monochromateur. La

lumière monochromatique d’intensité I 0 traverse un récipient carré fait de verre ou de quartz (une

cuve) où se trouve une substance absorbante. L’intensité I de la lumière atténuée, transmise, sera

mesurée par un détecteur. La loi de Lambert- Beer indique que l’absorption A est proportionnelle à la

concentration C de la substance absorbante et à l’épaisseur D de la cuve. Le coefficient d’absorption ∑

dépend du type de substance et de la longueur d’onde.

Schéma de principe du spectrophotomètre UV-visible monofaisceau

Schéma du spectre visible et invisible

Rappel de définition : Couleur complémentaire

Proportionnalité

Absorbance

Limite de linéarité

2

Utilisation du kenza max

Démarrage quotidien :

Allumer l’appareil à l’aide de l’interrupteur situé à l’arrière de l’appareil.

A la mise sous tension, l’appareil effectue sa calibration et un auto-test. Cette opération permet de

prévenir l’encrassement de la cellule de lecture (susceptible d’altérer la transmission du faisceau

lumineux) et d’éviter ainsi à l’utilisateur un remplacement fréquent de la cellule de lecture. A cette fin,

l’affichage indique d’introduire 1.5 ml d’eau distillée dans le tuyau d’aspiration pour effectuer la

calibration et l’autotest.

En appuyant sur la touche [PUSH], l’appareil aspire automatiquement l’eau distillée dans la cellule de

lecture.

Sélection d’une analyse

Quand l’appareil est mis sous tension, après l’autotest, l’analyseur affiche le menu principal.

Sélectionner l’analyse en utilisant les flèches de déplacement situées sur le clavier.

Appuyer sur la touche [ENTER/YES] pour confirmer le choix de l’analyse.

Avec les flèches de déplacement HAUT et BAS, le curseur se déplace ligne par ligne sur une même

page du menu« Analyses ».

Avec les flèches de déplacement DROITE et GAUCHE, le curseur se déplace page par page dans le

menu “Analyses” (les120 analyses programmables sont distribuées sur 20 pages).

Sur l’écran d’affichage, la première ligne indique le nom de l’analyse, le symbole et la valeur K.

La deuxième ligne indique les valeurs limites hautes et basses et l’unité de mesure.

En fonction du type d’analyse, suivre les instructions affichées à l’écran en utilisant la touche « push »

Face avant de l’appareil

Vue détaillée du clavier

3

Arrêt de l’appareil

Après avoir rincé l’appareil en utilisant la touche « wash »permettant d’aspirer en continu une grande

quantité d’eau distillée, revenir dans le menu principal, puis couper l’alimentation à l’aide de

l’interrupteur situé à l’arrière de l’appareil.

Utilisation de la spectrométrie ou colorimétrie pour déterminer la concentration d’une

substance dans une solution : exemple du glucose : lecture en point final

Réaction chimique colorée : transformation d’un substrat (le glucose) en produit coloré sous l’action

d’une enzyme. L’intensité de la coloration est proportionnelle à la concentration en glucose

Exemple de proportionnalité entre l’absorbance (ou intensité de la coloration) et la concentration en

glucose.

Si l’absorbance d’une solution à 1,6 g/l est à 0,5, alors une solution qui a une absorbance de 0,3 a une

concentration à 0,96g/l.

La constante K définit la pente de la droite qui doit passer par le point zéro

Au-delà d’une certaine concentration, la proportionnalité ne s’applique plus ; on parle de limite de

linéarité. Dans ce cas de figure il faudra diluer l’échantillon afin de se trouver dans la zone de linéarité

de la réaction.

Définition : concentration

K : constante

Standard ou étalon

Dilution d’un échantillon

4

Dosage du glucose

Préparation des réactifs

Flacon R1 et R2 : si nécessaire, utiliser un objet non coupant pour enlever la capsule aluminium.

Mesurer le volume d’eau déminéralisée indiqué sur l’étiquette du flacon R1 (Tampon-Enzymes) à

l’aide d’un récipient gradué.

Verser le contenu du flacon R1 dans le récipient et mélanger doucement jusqu'à complète dissolution

(environ 2 minutes).

Ajouter ensuite le contenu du flacon R2 et mélanger doucement. Stocker à l’abri de la lumière dans un

flacon plastique exempt de toute contamination.

Mode opératoire

Ramener les réactifs et sérums à température ambiante.

Mesurer dans des tubes

à essais bien identifiés

Blanc standard Dosage

Réactif 1 ml 1 ml 1 ml

Eau distillée 10µl

Standard 10 µl

Sérum 10 µl

Bien mélanger. Incuber 10 minutes à 37°C ou 20 minutes à température ambiante.

Sélectionner la chimie 13 correspondant au dosage du glucose.

Le message suivant s’inscrit alors à l’écran : Calibration?

Oui=ENTER Non=STOP

Utiliser les touches [ENTER/YES] ou [STOP/NO] pour choisir de réaliser ou non une nouvelle

calibration. Si le choix est NON, l’instrument utilise le facteur K calculé lors de la précédente

calibration. Si le choix est OUI, l’analyseur réalise une nouvelle calibration. Quand le message «

Insérer blanc » apparaît à l’écran, aspirer le contenu du tube Blanc en appuyant sur « push ». Quand le

message « Insérer standard » apparaît à l’écran, aspirer le contenu du tube standard en appuyant sur

« push »

Le message « Insérer échantillon.» apparaît ensuite à l’écran : aspirer le contenu du tube dosage en

appuyant sur « push »

Le résultat de l’analyse est ensuite affiché, et imprimé. Le numéro ID de l’échantillon, l’unité de

mesure et la valeur sont affichés sur la deuxième ligne de l’écran.

Répéter cette opération pour tous les tubes échantillon

La coloration est stable 15-20 minutes à 37°C, puis décroît lentement.

La lettre H à côté du résultat indique que la valeur est au dessus de la normale, la lettre B en dessous

de la normale ; la lettre D indique que la valeur est au dessus de la limite de linéarité.

La réaction est linéaire jusqu’à 5 g/l.

Au-delà, diluer le sérum avec une solution NaCl à 9 g/l et refaire le dosage en tenant compte de la

dilution dans le calcul du résultat.

Intervalles de référence ou Normale de la glycémie

Nouveau-né : 0,50-0,80 g/l

Enfant : 0,60-1,00 g/l

Adulte : 0,8- 1,10 g/l

5

Dosage du calcium par méthode à l’arzenaso

Les réactifs sont prêts à l’emploi

Mode opératoire

L’intensité de la réaction varie en fonction de la température.

Maintenir la température constante pendant toute la série de mesure.

Mesurer dans des tubes

à essais bien identifiés

Blanc standard Dosage

Réactif R1 1 ml 1 ml 1 ml

Eau distillée 20µl

Standard 20 µl

Sérum 20 µl

Bien mélanger, incuber 1minute à température ambiante.

La réaction est stable 60 minutes à l’abri de la lumière.

Sélectionner la chimie 23 correspondant au dosage du calcium méthode arsenazo et procéder comme

pour le dosage du glucose.

La réaction est linéaire jusqu’à 150 mg/l.

Au-delà, diluer le sérum avec une solution NaCl à 9 g/l et refaire le dosage en tenant compte de la

dilution dans le calcul du résultat.

Intervalles de référence ou Normale de la calcémie

Nouveau-né : 76-104 mg/l

Enfant : 88-108 mg/l

Adulte : 86-100 mg/l

Dosage de l’hémoglobine par méthode colorimétrique (cyanméthémoglobine)

Les réactifs sont prêts à l’emploi

La constante K est donnée par le constructeur donc il n’y a pas d’étalonnage

Mode opératoire

Mesurer dans des tubes à essais

bien identifiés

Blanc Dosage

Réactif 2,5 ml 2,5 ml

Eau distillée 10µl

Sang total homogénéisé 10 µl

Bien rincer l’embout de la pipette dans le réactif.

Bien mélanger et incuber au moins 3 minutes à température ambiante.

A l’abri de la lumière, la réaction est stable au moins 1 heure.

Sélectionner la chimie 41 correspondant au dosage de l’hémoglobine et suivre les instructions sur le

cadran

La réaction est linéaire jusqu’à 25 g/dl.

Intervalles de référence ou Normale de l’hémoglobinémie

Nouveau-né : 13-19 g/dl

Enfant : 11-15g/dl

Adulte : 12-16 g/dl

6

Dosage de la bilirubine totale et directe par méthode acide sulfanilique.

Les réactifs sont prêts à l’emploi

La constante K est donnée par le constructeur donc il n’y a pas d’étalonnage

Mode opératoire

Ramener les réactifs et sérums à température ambiante.

Dans un premier temps, faire uniquement le dosage de la bilirubine totale. Si le résultat est au dessus

de 12 mg/l pour un enfant ou un adulte faire ensuite le dosage de la bilirubine directe.

Si le prélèvement est ictérique ou si le sérum est en quantité limitée, faire le dosage en utilisant 20µl

de sérum et multiplier le résultat par 5.

Préparer un tube blanc et un tube dosage pour chaque échantillon

Mesurer dans des tubes à

essais

BILIRUBINE

blanc

TOTALE

dosage

BILIRUBINE

blanc

DIRECTE

dosage

Réactif R1 1 ml 1 ml

Réactif R2 1 ml 1 ml

Eau distillée 50 µl 50 µl

Réactif R3 nitrite 50 µl 50 µl

mélanger

Sérum 100 µl 100 µl 100 µl 100 µl

Bien mélanger, incuber 3 minutes à 37 °C.

Sélectionner la chimie 05 correspondant au dosage de la bilirubine acide sulfanilique et suivre les

instructions sur le cadran.

La réaction est linéaire jusqu’à 200 mg/l

Au-delà, refaire le dosage en utilisant 20 µl de sérum et multiplier le résultat par 5.

Intervalles de référence ou Normale pour la bilirubine totale

Dans le sérum

Nouveau-né : 15-120 mg/l

Enfant et adulte: 3-12 mg/l

Dosage de la créatinine par méthode colorimétrie à l’acide picrique en milieu alcalin (méthode

de Jaffé).

Ce dosage a été optimalisé par le développement d’une méthode cinétique 2 points.

Réactif à préparer extemporanément. Mélanger volume à volume du réactif R1 avec du réactif R2 en

quantité nécessaire pour la série journalière.

La lecture de chaque tube se faisant sur 2 minutes, préparer les tubes au fur et à mesure selon ce

tableau

7

Mesurer dans des tubes

à essais

standard dosage

Réactif de travail

R1+R2

1 ml 1 ml

Incuber à 37 °C

Standard 100 µl

Sérum 100 µl

Sélectionner la chimie 10 correspondant au dosage de la créatinine et suivre les instructions sur le

cadran pour chaque tube successivement.

Le graphique de la courbe s’imprime ainsi que le résultat

La réaction est linéaire jusqu’à 150 mg/l.

Au-delà, diluer le sérum avec une solution NaCl à 9 g/l et refaire le dosage en tenant compte de la

dilution dans le calcul du résultat.

Intervalles de référence ou normale pour la créatininémie

Dans le sérum

Enfant et adulte: 8-12 mg/l

Dosage des transaminases ASAT et ALAT

L’activité enzymatique est donnée en unité internationale par litre : UI/l

Sous l’action de l’enzyme ASAT, le substrat contenu dans le réactif est transformé en produit. Dans la

deuxième partie de la réaction, la diminution de l’absorbance due à la conversion du NADH en NAD

est proportionnelle à l’activité de l’ASAT et sera lue à une longueur d’onde de 340 nm.

La constante K est donnée par le constructeur

Mode opératoire

Reconstituer le réactif R 1 avec 10 ml d’eau déminéralisée. Agiter doucement jusqu’à complète

dissolution avant l’utilisation du réactif.

Ramener les réactifs et les sérums à température ambiante.

La lecture de chaque tube se faisant sur 2 minutes, préparer les tubes au fur et à mesure selon ce

tableau

Mesurer dans des tubes à essais dosage

réactif 1 ml

Incuber à 37°C

Sérum 100 µl

mélanger

Sélectionner la chimie 04 correspondant au dosage de la transaminase ASAT et suivre les instructions

sur le cadran pour chaque tube successivement.

Le résultat s’imprime. Pour passer à l’échantillon suivant, faire « stop ».

La réaction est linéaire jusqu’à 350 UI/l.

Au-delà, diluer le sérum avec une solution NaCl à 9 g/l et refaire le dosage en tenant compte de la

dilution dans le calcul du résultat.

Intervalles de référence ou normale pour la transaminase ASAT

Dans le sérum

Nouveau-né : 39-117 UI/l

Enfant : 23-94 UI/l

Adulte : 13-31 UI/l

8

Procéder de la même manière pour le dosage de l’ ALAT

Sélectionner la chimie 02

Limite de linéarité

La réaction est linéaire jusqu’à 350 UI/l.

Au-delà, diluer le sérum avec une solution NaCl à 9 g/l et refaire le dosage en tenant compte de la

dilution dans le calcul du résultat.

Intervalles de référence ou normale pour la transaminase ALAT

Nouveau-né et enfant : 13-45 UI/l

Adulte : 10-40 UI/l

Dosage du LDL Cholestérol réactif Spinreact

Les réactifs sont prêts à l’emploi.

Le standard se reconstitue avec 1 ml d’eau distillée.

Mesurer dans des tubes

bien identifiés

Blanc Standard Dosage

Réactif R1 300 µl 300 µl 300 µl

Standard 4 µl

Sérum 4 µl

Incuber 5 mn à 37 ° C

Réactif R2 100 µl 100 µl 100 µl

Incuber 5 mn à 37 ° C

Sélectionner la chimie 48 et suivre les instructions sur le cadran.

La réaction est linéaire jusqu’à 10g/l.

Normale du LDL cholestérol : 1à 1,29 g/l.

Dosage du magnésium

Les réactifs sont prêts à l’emploi.

Mesurer dans des tubes

bien identifiés

Blanc Standard Dosage

Réactif R1 1 ml 1 ml 1 ml

Eau distillée 10 µl

Standard 10 µl

Sérum 10 µl

Mélanger et incuber 3 mn à 37 ° C.

La réaction est stable 45 minutes.

Sélectionner la chimie 15 et suivre les instructions sur le cadran.

La réaction est linéaire jusqu’à 40 mg/l.

Normale du magnésium dans le sérum : 16 à 25 mg/l.

Dosage de l’acide urique réactif Cypress

La solution de travail s’obtient en mélangeant volume à volume le réactif R1 et R2.

Cette solution est stable 2 mois à 4 ° C.

Mesurer dans des tubes

bien identifiés

Blanc Standard Dosage

Solution de travail 1 ml 1 ml 1 ml

Standard 25 µl

Sérum 25 µl

9

Mélanger et incuber 5 mn à 37 ° C.

La réaction est stable 30 minutes.

Sélectionner la chimie 46 et suivre les instructions sur le cadran.

La réaction est linéaire jusqu’à 250 mg/l.

Normale de l’acide urique dans le sérum :30 à 70 mg/l.

Dosage du calcium réactif Cypress

Les réactifs sont prêts à l’emploi.

Mesurer dans des tubes

bien identifiés

Blanc Standard Dosage

Réactif R1 1 ml 1 ml 1 ml

Standard 10 µl

Sérum 10 µl

Mélanger et incuber 2 minutes à 37 ° C.

Sélectionner la chimie 45 et suivre les instructions sur le cadran.

La réaction est stable au moins 1 heure.

La réaction est linéaire jusqu’à 400 mg/l.

Normale de la calcémie : 86 à 100 mg/l.

Dosage de la créatinine réactif Cypress

Ce dosage se fait par une méthode cinétique 2 points.

Réactif à préparer en mélangeant volume à volume du réactif R1 avec du réactif R2. Cette solution est

stable 10 jours à 15 ° C.

La lecture de chaque tube se faisant sur 2 minutes, préparer les tubes au fur et à mesure selon ce

tableau.

Mesurer dans des

tubes bien identifiés

Standard Dosage

Réactif de travail

R1+R2

1 ml 1 ml

Incuber à 37 ° C

Standard 100 µl

Sérum 100 µl

Sélectionner la chimie 47 et suivre les instructions sur le cadran pour chaque tube.

La réaction est linéaire jusqu’à 150 mg/l. Au-delà, diluer le sérum avec une solution de Na Cl à 9 g/l et

refaire le dosage en tenant compte de la dilution.

Normale de la créatinine dans le sérum : 8 à 12mg/l.

Périodicité de la calibration

Les dosages de glycémie, calcium, acide urique, magnésium,LDL et créatinine doivent être calibré à

chaque changement de boîte de réactif et lorsque le contrôle de qualité se trouve en dehors des valeurs

indiquées sur la boîte de chaque contrôle.

Les dosages de bilirubine, hémoglobine et transaminases n’ont pas de calibration ; si le contrôle de

qualité est mauvais, prendre des réactifs neufs et refaire le contrôle.

10

Gestion des contrôles de qualité

A chaque série journalière, après chaque calibration, on doit s’assurer que la série de dosages en cours

est réalisée dans de bonnes conditions en passant les contrôles dont les valeurs sont données par le

fournisseur.

QC1 =BIOLABO EXATROL-Normal (taux I) REF 95010.

QC2 =BIOLABO EXATROL-Pathologique (taux II) REF 95011.

Sélectionner le test souhaité dans le menu principal à l’aide des « flèches » et confirmer en appuyant

sur la touche « enter ». Appuyer sur la touche « menu » pour amener le curseur dans la fenêtre de

droite puis sélectionner « QC » et confirmer en appuyant sur la touche « enter ». Sélectionner « éch

QC1 » ou « éch QC2 » selon votre choix. Procéder au dosage du contrôle comme tout autre

échantillon.

Relever la valeur obtenue, elle doit être comprise dans l’intervalle de valeur donnée sur le document

contenu dans la boite de contrôle. Prendre les valeurs correspondant à la technique utilisée et à l’unité

utilisée. Pour les enzymes prendre la valeur à 37°C.

Pour imprimer les résultats QC d’une analyse, entrer dans le menu QC et sélectionner « voir historique

QC1 ou QC2 ». Les résultats stockés sont affichés et imprimés.

Pour le dosage de l’hémoglobine, utiliser le sang d’un patient normal de la journée précédente dont

vous avez déterminé le taux plusieurs fois consécutives. Le sang de ce patient conservé au

réfrigérateur peut servir de contrôle pendant 3 à 4 jours.

Interprétation des résultats des patients

test Valeur basse Valeur haute

Glycémie Hypoglycémie due à un jeun

prolongé, à des médicaments, une

crise de palu ou une tumeur

endocrinienne

chez un diabétique sous insuline,

traitement mal adapté

Hyperglycémie : diabète

chez un diabétique sous insuline,

traitement mal adapté

Calcémie Hypocalcémie- déficit en vitamine

D

hypercalcémie

Hémoglobine anémie Déshydratation,

maladie hématologique

Bilirubinémie totale Atteinte hépatique ou forte hémolyse

Bilirubine directe ou

conjuguée

Bilirubine libre ou indirecte

cholestase-atteinte hépatique

anémies hémolytiques-incompatibilité

foeto-maternelle = hémolyse

Créatinine dénutrition Insuffisance rénale

ASAT Atteinte hépatique, problème cardiaque

ALAT Atteinte hépatique : hépatite, cirrhose

11

Entretien du Kensa Max

Nettoyer en fin de journée les tubulures de l’appareil en aspirant 20 ml d’eau distillée pour rincer le

circuit.

Une fois par semaine, nettoyer le capot, le bloc d’incubation et le bloc de lecture avec de l’eau de javel

fraichement diluée au 1/10. Attention à ne pas faire couler de liquide dans l’appareil et sur l’écran.

Décontaminer le circuit des tubulures en aspirant 20 ml d’eau de javel à 1/10 à l’aide de la touche

« Wash ».Aspirer ensuite de la même manière 20 ml d’eau distillée, puis aspirer de l’air pendant une

vingtaine de secondes pour vider complètement le circuit.

NUMEROTATION DES CHIMIES BIOLABO

02- ALAT TGP page 7

04- ASAT TGO page 7

05- BILIRUBINE Acide sulfanilique page 6

10- CREATININE page 6

13- GLUCOSE page 4

15- MAGNESIUM page 8

23- CALCIUM arsenazo page 5

41- HEMOGLOBINE page 5

NUMEROTATION DES CHIMIES AUTRES FOURNISSEURS

45- CALCIUM Cypress page 9

46- ACIDE URIQUE Cypress page 8

47- CREATININE Cypress page 9

48- LDL Cholestérol Spinreact page 8

Aide à long terme à la biologie médicale des pays en développement

Biologie Sans Frontières (Siège)

BSF - Association reconnue d'utilité publique par décret du 18 février 2010 (JO du 20) – NAF 8899B

Siège :

BSF s/c SIBL

31 rue Mazenod 69426 LYON Cedex 03 courrier@bsf.asso.fr http://www.bsf.asso.fr

CERTIFICAT DE CESSION à TITRE GRATUIT

CE160620CONGO BRAZZA DOLISIE

BIOLOGIE SANS FRONTIERES déclare avoir cédé à titre gratuit, le 12 décembre 2016,

à l’organisme ci-dessous désigné : Centre de santé

Laboratoire

Dolisie

Congo Brazzaville

les équipements suivants : -1 microscope Leitz Dialux N° de série 908582, immatriculée BSF

MMI95,

-1 spectrophotomètre Kenza Max neuf N° de série :39225FR,

- 1 centrifugeuse Hettich EBA20, immatriculée BSF MCT117,

- 1000 lamelles 20X20 mm,

- 400 lames porte-objets.

Le bénéficiaire accepte ces équipements en l’ état pour ce qui concerne les vices apparents ou

cachés.

La responsabilité de BSF ne pourra en aucun cas être recherchée par le bénéficiaire et en

particulier dans les hypothèses suivantes :

-en cas de survenance d’ un dommage du fait de l’ utilisation de l’ équipement quelle qu’ en soit la

nature et quelle que soit la personne qui le subit

-en raison des vices que les équipements pourront présenter, même si ces derniers les rendent

impropres à leur utilisation.

DON HUMANITAIRE

SANS VALEUR MARCHANDE

A Lyon, le 12 décembre 2016

Les missionnaires : Marie-Hélène CASTALDI Le Président Michèle BONGARCON P.Flori

Le Responsable du matériel,

A. Bayle

Aide à long terme à la biologie médicale des pays en développement

Biologie Sans Frontières (Siège)

BSF - Association reconnue d'utilité publique par décret du 18 février 2010 (JO du 20) – NAF 8899B

Siège :

BSF s/c SIBL

31 rue Mazenod 69426 LYON Cedex 03 courrier@bsf.asso.fr http://www.bsf.asso.fr

CERTIFICAT DE CESSION à TITRE GRATUIT

CE170111CONGO BRAZZA DOLISIE

BIOLOGIE SANS FRONTIERES déclare avoir cédé à titre gratuit, le 11 janvier 2017,

à l’organisme ci-dessous désigné : Centre de santé

Laboratoire

Dolisie

Congo Brazzaville

les équipements suivants : - 1 propipette verte,

- 1 pipette automatique 50 µl, immatriculée BSF MPA 31,

- 1 pipette automatique 1000 µl, immatriculée BSF MPA 33,

- 1pipette automatique réglable 10-100 µl, immatriculée BSF

MPA 21,

- 1 éprouvette de 500 ml,

- 3 éprouvettes de 25 ml,

- 1 flacon de 1 l,

- 10 pipettes de 5 ml,

- 1 Parafilm (1/3 de rouleau),

- 1 portoir métallique,

- 500 embouts bleus pour pipettes automatiques,

- 1000 embouts jaunes pour pipettes automatiques,

- 100 tubes coniques,

- 100 tubes à hémolyse gradués,

- 200 bouchons plastiques noirs,

- 5 tubes coniques, bouchon rouge,

- 10 flacons bouchés,

- 1 cyto-compteur mécanique, 5 touches,

- 500 tubes à hémolyse,

- 50 embouts plastiques de 3 ml,

- 3 plateaux métalliques pour prélèvements,

- 10 tubes en verre,

- 4 agitateurs en verre,

- 200 tubes pour micro-hématocrite,

- 1 plaque de pâte à modeler,

- 1 minuteur.

BSF - Association Loi 1901 (JO du 1/4/1992) – NAF 8899B – www.bsf.asso.fr - mail courrier@bsf.asso.fr

Le bénéficiaire accepte ces équipements en l’ état pour ce qui concerne les vices apparents ou

cachés.

La responsabilité de BSF ne pourra en aucun cas être recherchée par le bénéficiaire et en

particulier dans les hypothèses suivantes :

-en cas de survenance d’ un dommage du fait de l’ utilisation de l’ équipement quelle qu’ en soit la

nature et quelle que soit la personne qui le subit

-en raison des vices que les équipements pourront présenter, même si ces derniers les rendent

impropres à leur utilisation.

DON HUMANITAIRE

SANS VALEUR MARCHANDE

A Lyon, le 11 janvier 2017

Les missionnaires :

Marie-Hélène CASTALDI Le Président ,

Michèle BONGARçON P.Flori

Le Responsable du matériel,

A. Bayle

1

CENTRE DE SANTE CARITAS DOLISIE CONGO

2ème MISSION BSF du 30 janvier au 9 février 2017

RECOMMANDATIONS

En complément des recommandations du 1er séjour en sept 2015

De nombreuses remarques faites lors de notre premier séjour ont été prises en compte, malgré

les difficultés dues à un espace d’examen trop exigu, et le manque d’eau courante, ce qui

complique le travail des 2 techniciens, Edith et Aymar et d’une stagiaire , Sylvie.

REMARQUES GENERALES

- L’ORGANISATION DU TRAVAIL reste à améliorer :

-Par roulement : proposition d’un changement de poste chaque semaine ? : Un technicien

pourrait être à la réception des patients (avec enregistrement et attribution du N°

chronologique) et l’autre au prélèvement, afin de ne pas perdre de temps, et aussi dans le

but de ne pas porter des gants du matin jusqu’à la fin de journée. Le technicien se croit

protégé mais le patient ne l’est pas du tout. Car les même gants sont portés pour tout :

prélèvement, secrétariat, analyses, examens au microscope…

Lorsque le manque d’eau au robinet sera solutionné, il faudra privilégier le lavage des

mains le plus souvent possible, et réserver l’emploi des gants aux seuls prélèvements.

-Rappel : Respecter les heures de prélèvements, (jusqu’à 10h30/11h en semaine et 10H le

samedi). Les reporter au lendemain sauf urgence. Car manque de temps à consacrer aux

analyses.

-Améliorer les temps d’attente des techniques (colorations, centrifugations…) pour faire

autre chose

-Toujours TOUT noter sur son cahier de paillasse, noter le résultat au moment de

l’examen (si erreur ou oubli, il faut refaire l’examen d’où une perte de temps)

-Attention au report des résultats sur registre, cahier du patient et fiche de résultat (3

report !) fait en début d’après midi ou le lendemain matin : plus il y a de reports, plus les

erreurs sont possibles.

-Revoir les priorités (examen direct Selles, Frottis vaginal, recherche µfilaires, palu)

- L’ENTRETIEN

Attention aux différentes dilutions de javel et à la conservation des dilutions.

Bien nettoyer les paillasses chaque jour, et à tout moment après une possible contamination.

Pour la récupération du petit matériel, bien séparer les lamelles dans un petit récipient à part,

si vous voulez les récupérer, afin d’éviter de vous blesser.

Nous vous recommandons d’utiliser des lamelles, car l’examen au microscope est bien plus

net et vous ne risquez pas de souiller l’objectif x40, nécessaire pour l’examen précis des

éléments.

2

- LE SUIVI DES COMMANDES

Mise en place du cahier, avec le stock, et les commandes à prévoir, afin de passer commande

par Tél., rapidement dès qu’un trajet AR sur Pointe Noire est programmé.

- MATERIEL A PREVOIR (à apporter si nouvelle intervention de BSF ou à commander)

- verres à pied, agitateurs en verre

- entonnoirs

- papier filtre

- pissettes pour lavage des lames après coloration

- flacons + compte-goutte (pour dilution du Giemsa)

- flacons propres pour recueil des urines (ces flacons lavés serviront ensuite pour les

prélèvement de selles car apport de matières fécales insuffisant en boite d’allumettes).

- Colorant Bleu de méthylène (non trouvé à Médica Service à Pointe Noire)

- A commander : violet de Gentiane et Lugol

- Prévoir de récupérer de l’eau « distillée » avec l’eau de condensation du climatiseur du

bureau médical, vérifier la propreté du tuyau extérieur.

- GANTS

- SPECULUMS (voir avec le médecin pour réduire les coûts : faire le prélèvement en

même temps que l’examen clinique ?)

RECOMMANDATIONS PARTICULIERES POUR CHAQUE ANALYSE :

1) Numération formule sanguine : il faut faire la formule leucocytaire, à l’aide du

compteur fourni par BSF. La commande du May Grunwald a été faite. Nous n’avons

pas eu de belles colorations. Il faudra refaire des essais avec diminution du temps de

pose du May Grunwald ? (en principe 3 min) et + eau neutre 1 min, sinon fixer à

l’alcool ? Puis Giemsa : le diluer extemporainement.

2) Le test d’Emmel : avec le méta-bilsulfite (lecture après 1/2h) mais comme il ne se

conserve pas, on vous conseille de toujours continuer de faire une lame pour une

lecture 24H après.

3) Résultats de Numération ; avoir l’esprit critique : voir si cela correspond aux valeurs

de l’HCT et au taux d’Hb, et pour les G.Blancs, voir si cela correspond à ce que vous

observez globalement à la lecture de la formule et aussi à la VS. Si doute, refaire la

dilution en respectant les consignes avec les pipettes automatiques. Bien faire le

comptage avant les 2H / prélèvement

4) Recherche de micro filaires : bien noté l’heure de prélèvement dans le résultat.

Si possible, faire une coloration sur un frottis ou une G.E pour donner l’espèce de

micro filaires.

5) Examen parasitologique des Selles : le recueil doit se faire dans un flacon assez large,

ou dans un récipient qui conserve l’humidité des matières.

L’examen est extemporané, en eau physiologique, afin de trouver des stades de

parasite vivant, mobile puis coloration d’une partie de l’examen au Lugol pour les

Kystes d’amibes.

La quantité doit être suffisante pour pouvoir prélever à différentes parties des selles, à

l’intérieur et à l’extérieur, et pouvoir effectuer des enrichissements (Kato et Willis)

3

6) Examen cytobactériologique des Urines ;

Noter l’aspect puis centrifuger, noter l’importance du culot ; faire un Examen Direct

puis une coloration de Gram

A noter : si on recherche une bilharziose urinaire, noter si présence de GR, et

recueillir la fin de la miction après effort.

7) Frottis vaginal avec spéculum fortement recommandé.

Au niveau du col et du cul de sac pour Neisseria gonorrhoeae, au niveau de la paroi

vaginale pour Trichomonas et candidose.

Le recueil avec coton tige donne des mauvais résultats car on n’a plus de parasites

mobiles (Trichomonas).

Bien distinguer la flore normale et la flore pathologique.

Remarques : pour la coloration de Gram, si les colorants ont des précipités, il faudra

les filtrer et surtout bien rincer la lame ; le Lugol doit être bien coloré en brun ; le

poser en 3 fois 20 secondes.

La décoloration avec l’alcool doit être suffisante, en principe 30 secondes avec l’alcool

et la recoloration avec fuchsine diluée, pas plus de 20 secondes.

Le contraste entre le rouge/rosé de la Fuchsine et le violet n’est pas toujours facile à

distinguer. (Si vous n’avez pas de trotteuse sur vos montres, compter mentalement les

secondes, c’est important).

8) Examens sérologiques / tests rapides (palu, VIH, Aslo, RPR, SDW, CRP…)

Bien respecter les protocoles

9) BIOCHIMIE

Se référer au document : « formation biochimie » pour les conditions de dosage de

chaque chimie.

A chaque calibration, vérifier que le facteur K est cohérent avec celui de la dernière

calibration.

Lorsqu’un résultat est très élevé, ou hors norme, diluer l’échantillon au ½ et refaire le

dosage pour vérifier la linéarité de la réaction.

Mettre en place de dosage du cholestérol total, et faire le dosage du LDL uniquement

lorsque le résultat du cholestérol est élevé. Coordonnées pour les commandes de réactifs Biolabo à Médica Services à Pointe

Noire : Narcisse NDZOKO-NKOLI

Tél: 06 625 16 29

<medica.services@yahoo.com>

Références des produits Biolabo pour une prochaine commande

1x REF 80107 – Créatinine (méthode Cinétique)

- 1x REF 80027 – ALT TGP (IFCC modifiée)

- 1x REF 80025 – AST TGO (IFCC modifiée)

- 1x REF 80403 – Bilirubine Totale et Directe (Méthode Acide Sulfanilique)

- 1x REF 90004 – Calcium (Méthode Arsenazo III)

4

- 1x REF 80009 – Glucose (GOD-PAP)

- 1x REF 3502200 – Hémoglobine (Cyanméthémoglobine)

- 1x REF 95010 – Exatrol N (Contrôle niveau 1)

- 1x REF 95011 – Exatrol P (Contrôle niveau 2)

Consulter le catalogue en ligne pour d’autres références sur le site de Biolabo

Etudier les différents tarifs des réactifs entre Biolabo et Cypress

10) RECOMMANDATIONS pour le poste de santé catholique de Tahiti (centre Ste

Famille)

Il est convenu que les analyses ne pouvant être faites sur place au dispensaire annexe

seront envoyées au centre Caritas (NFS).

Roger a suivi la formation avec Edith et Aymar mais manque d’expériences.

Les 3 demi-journées que j’ai passées sur place n’ont pas été suffisantes, surtout en raison

du peu d’examens.

Principales recommandations :

L’utilisation du microscope fourni par BSF :

La luminosité reste faible, même après réglage et changement d’ampoule.

Pour les grossissements au *10 et *40, c’est suffisant, mais reste difficile au *100.

Faire très attention pour le passage à l’immersion au *100 : l’objectif est plus long, donc il

ne passe pas après observation au 10 ou au 40. De plus, il ne se rétracte pas.

Donc approcher l’objectif au plus près, en regardant sur le coté, puis faire la mise au

point très doucement en éloignant l’objectif de l’objet (de la lame)

Pour les colorations : Se fournir en eau « distillée » au centre Caritas, et la neutraliser si

possible avec un peu de bicarbonate de soude. (Vérifier le pH 7 avec les bandelettes

réactives pour urines)

Pour le Giemsa : bien préparer la dilution au moment de l’emploi, et s’il y a des précipités

de colorants, le filtrer.

Idem pour les colorants pour le Gram.

Pour les tests rapides, bien respecter le protocole. Commander assez tôt les tests afin de

ne jamais être en rupture de stock

Pour le taux d’hémoglobine, la lecture avec le papier Tallquist donne une bonne

indication, mais il faudrait compléter par une NF + Hb au centre Caritas

Pour l’hygiène, l’eau courante est un plus. Donc lavage des mains avec savon le plus

souvent possible et ne porter les gants que pour les prélèvements à risques.

Ce sont les mêmes recommandations que celles du centre Caritas pour l’élimination des

déchets.

EN CONCLUSION, tout ceci ne sont que des recommandations, et nous restons

joignables par mail pour tout nouveau problème à résoudre. Ne pas hésiter à nous joindre

par l’intermédiaire du Dr Jean-Baptiste ou de Sr Agnès. Bonne continuation.