Présentation OMEDIT 2010 V3

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Plateforme HUVEGEN HUVEGEN GENOTYPAGE de la Résistance et de la Sensibilité aux Traitements Des Tumeurs Solides Dr. Etienne Rouleau Praticien spécialiste des CLCC Laboratoire d'Oncogénétique Diagnostic Constitutionnel et Somatique Institut Curie - Hôpital René Huguenin 35, rue Dailly 92210 ST CLOUD

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Plateforme HUVEGENHUVEGEN

GENOTYPAGEde la Résistance et de la Sensibilité

aux TraitementsDes Tumeurs Solides

Dr. Etienne RouleauPraticien spécialiste des CLCCLaboratoire d'Oncogénétique

Diagnostic Constitutionnel et SomatiqueInstitut Curie - Hôpital René Huguenin

35, rue Dailly92210 ST CLOUD

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“Thérapeutique ciblée”

CibleMoléculeNom CommercialNom

REGFREGFVEGFERBB2REGFREGF

REGF + ERBB2PDGFR, KIT, BCR-ABL

PDGFR, KITPDGFR, KITMultiTKRMultiTKR

MultiTKR (+BRAF)

Ptotéasome, NFKBmTOR

Ras (FPT)

AcAcAcAcPMIPMIPMIPMIPMIPMIPMIPMIPMI

PMIPMIPMI

Erbitux®Vectibix®Avastin®

Herceptin®Tarceva®Iressa®Tyverb®Glivec®Sprycel®Tasigna®Sutent®Zactima®Nexavar®

Velcade®--

CetuximabPanitumumabBevacizumab*TrastuzumabErlotinibGefitinibLapatinibImatinibDasatinibNilotinibSunitinib*VandetanibSorafenib*

BortezomibCCI-779Zarnestra

Colon (KRas WT)Colon (KRas WT)Colon, Poumon, Sein

SeinPoumon, Pancréas

Poumon (REGF Muté?) Sein, CerveauLMC, GIST

LMC, GIST, Res GlivecLMC, GIST, Res GlivecGIST Res Glivec, Rein

PoumonRein

Poumon, Prost, MyéloEssais cliniquesEssais cliniques

Indications

Tumeur

Décision thérapeutiqueRéférentiel

AMMMarqueur +

Marqueur -

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Tumeurs solidesBIO-PATHOLOGIE• Hétérogénéité• Complexité des altérations génétiques• Stratégies d’analyse

– Etude de l’amplification / de l’expression– Etude d’une ou plusieurs mutations / pas d’outils pour l’expression

ORGANISATION• Fréquence des maladies

– Absence de réseau spécifique– Multiplicité d’intervenants

• Pluridisciplinarité : anatomopathologie – génétique• Nature des prélèvements

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BIO-PATHOLOGIE

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BIO-PATHOLOGIEHétérogénéité tissulaire

*

Cellulespré-cancéreuses

Cellulescancéreuses

Cellulesnormales

*

*

*

*

Cellulespré-cancéreuses

Cellulescancéreuses

Cellulesnormales

*

*

*

Processus de cancérogénèse I.Bièche

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BIO-PATHOLOGIEHétérogénéité moléculaire

M1 M2 Mx-1 Mx

Altérations génétiques somatiques (acquises)

Tissu Normal

Tissu Cancéreux

GSC(A1)

GSC(A2)

TUMEURS SPORADIQUES (90%)

M1 M2 Mx-1 Mx

Altérations génétiques somatiques (acquises)Altérations génétiques somatiques (acquises)

Tissu Normal

Tissu Cancéreux

GSC(A1)

GSC(A2)

TUMEURS SPORADIQUES (90%)

Tissu "Normal"

M2 My-1 My

Altérations génétiques somatiques (acquises)

Altérations génétiques constitutionnelles

(héritées)

Tissu Cancéreux

GSC (A1) GSC(A2)

TUMEURS HEREDITAIRES (10%)

Tissu "Normal"

M2 My-1 My

Altérations génétiques somatiques (acquises)

Altérations génétiques constitutionnellesconstitutionnelles

(héritées)

Tissu Cancéreux

GSC (A1) GSC(A2)

TUMEURS HEREDITAIRES (10%)

I.Bièche

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BIO-PATHOLOGIEHétérogénéité moléculaire

X•••• Mutation ponctuelle •••• Amplification génique•••• Translocation chromosomique•••• Insertion virale

Cellule normale

Cellule cancéreuse

Oncogènes

I.Bièche

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BIO-PATHOLOGIEHétérogénéité moléculaire

X X X•••• Mutation•••• Délétion large•••• Hyperméthylation

•••• Mutation•••• Microdélétion

Cellule normale

Cellule "normale" Cellule

cancéreuse

Gènes suppresseurs

I.Bièche

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BIO-PATHOLOGIEStratégies d’analyse

Altération quantitative - Ex : amplification génique

ARNm

Protéines

Transcription

Traduction

ERBB2

Cellule normale Cellule tumorale

ADN

I.Bièche

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BIO-PATHOLOGIEStratégies d’analyse

GRB2GRB2

SOS

FC

RASGDPP

PP

P

FCFC

GTP

RASactive

inactive

RAF

MEK1/2

ERK1/2

SubstratsnucléairesCancer

Pancréas

Colon

Mélanome

Sein

Mutations

90%

45%

15%

-

Gènes

KRASKRASNRAS

-

Altération qualitative - Ex : mutation ponctuelle

Gènes KRAS, HRAS et NRAS

ATG TGA

1 2 3 4

•• •12 13 61Gly Gly Gln

I.Bièche

Page 11: Présentation OMEDIT 2010 V3

ATG TGA

1 2 3 4

•• •12 13 61Gly Gly Gln

KRAS

EGFR

BIO-PATHOLOGIEStratégies d’analyse

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BIO-PATHOLOGIEStratégies d’analyse

Prolifération

PIP3

PTEN

PIP2

PI3K

AKT

mTOR

VHL HIFIA

KRASNRAS HRAS

Survie cellulaire

Substrats cytoplasmiques

BRAFARAF

MEK1 MEK2

ERK2ERK1

CRAF

Voies Ras dépendantes

Motilité

RAC

RHO

CDC42

cytosqueletteExpression de gènes

Expression de gènes VEGFA

Angiogenèse

TSC2

LKB1

PIP3Grb2

SOS1

SHP2

REGF

FC

I.Bièche

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ORGANISATION

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ORGANISATIONPlateformes régionales

Plateforme HUVEGEN(Dr Bièche)

HOPITAL RENE HUGENIN – ST CLOUD Laboratoire d’oncogénétiqueService d’anatomopathologie

HOPITAL MIGNOT - VERSAILLESLaboratoire de cytogénétique

Laboratoire de biologie moléculaire

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ORGANISATIONActivité en forte croissance

Nombre de demandes KRAS par mois

0

10

20

30

40

50

60

70

80

90

100

2008

-3

2008

-4

2008

-5

2008

-6

2008

-7

2008

-8

2008

-9

2008

-10

2008

-11

2008

-12

2009

-1

2009

-2

2009

-3

2009

-4

2009

-5

2009

-6

2009

-7

2009

-8

2009

-9

2009

-10

2009

-11

2009

-12

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ORGANISATIONPlateforme HUVEN

• Croissance de l’activité depuis mars 2008 • KRAS : 760 – BRAF: 22Fin 2009 : 510 mutations KRAS-BRAF• 73 MSI• 21 EGFR (1/12/09) – 46 (15/01/10)

• Délai de rendu << génétique germinale• Analyse BRCA1/BRCA2 : 6 mois• Analyse KRAS : 15 jours• Analyse EGFR < 15 jours

• Niveau de qualité = génétique germinale • National, STIC, Pr PL Puig• Européen, EQA, Pr E Dequeker et Pr H van Krieken• HUVEGEN/HEGP : Organisation du contrôle qualité européen

• Hétérogénéité des pratiques– Non contributifs : 10-20%

• Activité de développement pour préparer les nouveaux tests

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ORGANISATIONPlateforme HUVEN

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EN PRATIQUECriblage moléculaire

KRASEGFR

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Parcours des prélèvements

Bloc

3-6 lames 6µ

HES

Analyse histologique

Analyse moléculaire

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1) Réception des lames

A B

Grattage et aliquotage

Digestion enzymatique56°C

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2) Extraction d’ADN

Extraction sur colonne Qiagen®50 à 200µL d’éluat

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3) Dosage et stockage

Dosage de l’ADN et stockage en 4 aliquots 4 aliquots congeléscongelés àà --20°C20°C .

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Base techniquePCR

Cycles PCRCp

Qua

ntité

d’A

DN

ampl

ifié

TRAITEMENT TRAITEMENT UracilUracil --DNADNAGlycosylaseGlycosylase

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Non contributifs (NC)

Cycles PCRCp

Qua

ntité

d’A

DN

ampl

ifié

10% de NC

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Importance de la qualité

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Méthodes d’analyse

• HRM• SNAP Shot• Pyroséquençage• Taqman• Séquençage direct

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Base techniqueHRM – Courbe de fusion

Température

GCGGGCCAA

GCTGGCCAA

GATGGC

GGTGGC

100%Double brin

0%Double brin

Cin

étiq

uede

fluo

resc

ence

Dénaturation

(Fusion)

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4) Criblage en HRM

RésultatRésultat en 1h30en 1h30

Plaque de 384 puitsSuivi de l’amplification

Courbe de dissociation

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4) Criblage en HRM

A

B

eau

Témoins + / -

pur 1/8

Exon 19

Exon 21

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5) Confirmation en séquençage

6 PCR = 6 PCR = mêmemême profilprofil

Séquençage d’une PCRpar aliquot

Cp < 35Cp < 35

ADN

Réaction de séquence

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Normal

GGT GGC

34 35 38

10%

Normal

KRAS - Exon 1

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EGFR - Exon 19

Contrôle normal

Délétion 18-pb

délétion de 18-bp

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EGFR - Exon 21

c.2573T>G, p.Lys858Arg

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DEVELOPPEMENTSAmélioration technologique

Nouveaux tests

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DEVELOPPEMENTSAutres méthodes : pyroséquençage

Page 36: Présentation OMEDIT 2010 V3

DEVELOPPEMENTSAutres approches : microdissection

Leica, May 2009

Page 37: Présentation OMEDIT 2010 V3

DEVELOPPEMENTSAutres approches : microdissection

Page 38: Présentation OMEDIT 2010 V3

CONCLUSION

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Conclusion

• Enjeux du diagnostic somatique– Événements récurrents– Hétérogénéité des tumeurs– Hétérogénéité des pratiques (anapath/BM)– Délais de rendu <<< génétique constitutionnelle– Niveau de qualité identique

• Conséquences– Impact organisationnel– Nécessité d’un développement continu

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Remerciements

GASTROENTEROLOGIE

Benoît RousseauBarbara Dieumegard

Frédérique Cvitkovic

Centre René HugueninONCOGENETIQUE

Nicolas Delanoy et Lionel MathysIvan BiècheRosette LidereauFrédérique SpyratosCédrick LefolChristophe GuyMarie PiccotFlorence CopignyFrédérique Maraone

ANATOMOPATHOLOGIEDidier MeseureJean-Marc GuinebretièreMartine Trassard