DIFFICULTES DU SYSTEME Rh
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DIFFICULTES DU SYSTEME Rh
38e Colloque Nationaldes Biologistes des Hôpitaux
MONTPELLIER28 septembre – 2 octobre 2009
A. Mailloux, CNRHP, 1 octobre 2009
Agnès Mailloux
Responsable de l’Unité Fonctionnelle de BiologieCNRHP – Pôle de Biologie –ImagerieHôpital Saint-Antoine – AP-HP – Paris 12
LE COMPLEXE Rh
A. Mailloux, CNRHP, 1 octobre 2009
Protéine RH1 :protéine transmembranaire du Globule Rouge
produite par le gène RHD .
15 à 30 000 sites/GR
mosaïque d’épitopes antigéniques (plusieursdizaines), identifiables par des anticorpsmonoclonaux spécifiques.
RhBox
SMP1RHD RHCERhBox
Gène RHD : 57295 nt Gène RHCE : 57831 nt1249 nt codant
1p34.3-36.1
LE LOCUS RH
A. Mailloux, CNRHP, 1 octobre 2009
nt
polymorphes : 3 4 7 7 2 11 1
I II III IV V VIVII VIII IX X IIIIIIIVVVIVIIVIIIIXX
SMP1
délétion650 nt
intron IV
(35 nt polymorphes)
Le phénotype RH1 est négatif
HaplotypeIX
Gène Ddélété
cdeCdecdE
Rh box hybride5’+3’
HAPLOTYPES VARIANTS
A. Mailloux, CNRHP, 1 octobre 2009
Gène Dy cDye
duplication37 nt
I X IXIVIII VI
T/G807 codon STOP
GèneHybrideD-CE-D
(C)ces/ce
I X IXIII IX
Le phénotype RH1 reste positif (Du)
Gène Du
Type I
I X IXVI
T/G
HAPLOTYPES VARIANTS
A. Mailloux, CNRHP, 1 octobre 2009
T/G809
Gène Du
Type II
G/C1154
I X IXIX
I X IX
Gène Du
Type III
C/G8
HAPLOTYPES VARIANTS
Le phénotype RH1 reste positif (RH1 partiel)
I III IV V X IX
Gène DPartiel IIIa
A. Mailloux, CNRHP, 1 octobre 2009
A/C455
C/G602
T/G667
cDpe
Gène DPartielVI
cDpE
I IV V X IXVI
Partiel III
I- DIFFICULTES POUR CONCLURE SURLE STATUT RH1
38e Colloque National des Biologistesdes Hôpitaux
A. Mailloux, CNRHP, 1 octobre 2009
II- IMMUNOPROPHYLAXIE
III- GENOTYPAGE RHD FOETAL
Réactifs anti-RH1 de groupageGénéralement mélange d’anticorps monoclonaux reconnaissant tousles variants sauf parfois le sérotype DVI considéré dans certains payscomme équivalent de RH1 négatif (statut receveur).
OUTILS DE MISE EN EVIDENCE DEL’ANTIGENE RH1
A. Mailloux, CNRHP, 1 octobre 2009
Techniques (par ordre croissant de sensibilité)
PlaqueTubemicroplaqueGel avec réactif inclusTIA (tube ou gel)
Reconnaissance des RH1 faibles
-+
++
++++
OUTILS DE MISE EN EVIDENCE DEL’ANTIGENE RH1
Techniques directes
+++
A. Mailloux, CNRHP, 1 octobre 2009
Réactifs anti-RH1 pour sérotypage des RH1 partiels : panel d’anticorpsmonoclonaux séparés permettant de typer l’appartenance à une catégorieRH1 partiel.Ne jamais utiliser en première intention pour groupage
TIA (tube ou gel) ++++
I- AFFAIBLISSEMENT REACTIONS
TECHNIQUES GEL : + ou ++
TDA NEGATIF (MEME SI AUTO-TEMOIN NEGATIF)
POSITIVITE AVEC AU MOINS DEUXREACTIFS ANTI-RH1OU POSITIVITE RENFORCEE EN TIA
TECHNIQUES GEL: -TECHNIQUES TIA : + ou ++
HEMATIES DU PATIENT + REACTIF ANTI-RH1
POSITIVITE AVEC AU MOINS DEUXREACTIFS ANTI-RH1
A. Mailloux, CNRHP, 1 octobre 2009
OU POSITIVITE RENFORCEE EN TIA
CONFIRMATION SUR UN SECOND ECHANTILLON SANGUIN
SI REACTIONS TRES FAIBLEMENT POSITIVES(UNIQUEMENT EN TIA)FAIRE CONFIRMER PAR UN LABORATOIRE DEREFERENCE(IMMUNOPHENOTYPAGE + GENOTYPAGE)
SUJET RH1 POSITIF AVEC ANTIGENE RH1 AFFAIBLI
POSITIVITE
TECHNIQUES GELDirecte : ++
POSITIVITE AVEC AU MOINS DEUX REACTIFS ANTI-RH1
TDA NEGATIF
Gel newborn Diamed Gel Patient Diamed Gel Biorad
A. Mailloux, CNRHP, 1 octobre 2009
POSITIVITERENFORCEE
EN TIA
Bioclone Ortho IgG DIAGAST TOTEM DIAGASTIgG+IgM
D screening Diagast + Pannel Diamed : positif avec les IgG, négatif avec les IgM
SUJET RH1 POSITIF AVEC ANTIGENE RH1 AFFAIBLI
Génotypage : exon 7, exon 10, intron 4, exon 4 positif
Faut-il rechercher systématiquement l’antigène RH1 en TIA ?
Non recommandé par les EFS en première intention si résultat négatif entechnique gel avec anti-RH1 inclus, même si présence de RH2 ou RH3(recommandation interne à l’EFS, 28 mars 2008)
- Chez le receveur de CGRs : intérêt nul
UTILITE DE LA RECHERCHE EN TIA ?
A. Mailloux, CNRHP, 1 octobre 2009
- Chez la femme enceinte : utile car si RH1 positif faible, pasd’indication de prophylaxie par IgRh et RAI itératives inutiles durantla grossesse mais situation rare, moins de 1 % des sujets RH1négatif en gel
- Chez le nouveau-né : intérêt nul car hématies fœtales RH1faibles ne peuvent immuniser contre l’antigène RH1 les accouchéesRH:-1
Anti-RH1 connu pour ne pas réagir avec les RH1 partiel type DVI
II- REACTIONS DISCORDANTES
Discordance de groupage RH1 avec desréactifs anti-RH1 différents
RH1 PARTIELS SUSPECTES
A. Mailloux, CNRHP, 1 octobre 2009
RECHERCHE D’UN RH1 PARTIEL DANS UN LABORATOIRE DE REFERENCEMaintien du statut RH 1 partiel jusqu'à la conclusion finale avec conseiltransfusionnel de CGR RH-1
LA MAJORITE DES RH1 PARTIELS SONT NONIDENTIFIABLES AVEC REACTIFS USUELS UTILISES EN
ROUTINE
SEROTYPAGEGel Newborn
Gel Patient
A. Mailloux, CNRHP, 1 octobre 2009
GENOTYPAGEExon 10 : +Exon 7 : +Exon 4 : -Intron 4 : -
RH1 PARTIEL TYPE VI PROBABLE
III- ANTICORPS ANTI-RH1CHEZ UN SUJET RH :1
RAI + avec présence d’un anti-RH1 chez un sujet RH1 positif avectémoin autologue négatif
RH1 PARTIELS FORTEMENT SUSPECTES
mais attention à la possibilité d’un anti-RH1 passif (injection d’IgRhchez une patiente RH1 faible ) car dans ce cas le témoin autologuepeut être également négatif
A. Mailloux, CNRHP, 1 octobre 2009
ENVOYER A UN LABORATOIRE DE REFERENCE
peut être également négatif
ou à un auto-anti-RH1 (dans ce cas témoin autologue positif avecinconstamment TDA + et élution positive anti-RH1) .
AUCUNE OBLIGATION DE LES RECONNAÎTRE EN L’ABSENCED’ANOMALIE DE GROUPAGE (DISCORDANCE DE REACTIF OU ANTI-RH1 CHEZ SUJET RH1 POSITIF)
RH1 PARTIELS DIAGNOSTIC ENLABORATOIRE DE REFERENCE
Sérotypage: - panel d’anticorps monoclonaux anti-RH1 séparés permettantde typer l’appartenance à une catégorie RH1 partiel
- anticorps dirigés contre des antigènes de basse fréquenceassociés aux différents sérotypes de RH1 partiel (anti-Goa….)
Génotypage par PCR possible en routine pour certains RH1 partiels (DVI, DIV,DFR…)
A. Mailloux, CNRHP, 1 octobre 2009
DFR…)
Conséquences cliniques :- Edition d’une carte de groupe avec mention « RH1 partiel » et conseiltransfusionnel comme pour receveur RH1 négatif
- En cas de grossesse chez une femme RH1 partiel :- si anti-RH1 partiel associé, suivre comme femme RH1 négativemais risque hémolytique fœtale très atténué- si absence d’anti-RH1 partiel, envisager immunoprophylaxie Rh
Séquençage
1- Immunisation anti-RH1 des femmes RH1 partiel : pas de formes cliniquessévères de maladie foetale ou néonatales
2- Action immunosuppressive des IgRh non documentée chez les femmes RH1partiel
3- Efficacité ? lorsque hématies maternelles avec fort pouvoir d'absorption (et
IMMUNOPROPHYLAXIECHEZ LA FEMME RH1 PARTIEL ?
A. Mailloux, CNRHP, 1 octobre 2009
3- Efficacité ? lorsque hématies maternelles avec fort pouvoir d'absorption (etdonc de neutralisation ) des anti-D contenus dans les Ig Rh ?
- A l'accouchement (si nouveau-né RH : 1 standard)
- Circonstances anténatales avec hémorragie foeto-maternelle documentéechez les femmes RH1 partiel avec expression affaiblie de l'antigène RH1 (typeVI, DFR, DHAR,etc...)
- Patientes RH1 partiel avec antigène RH1 fortement exprimé : abstention outest éprouvant la capacité de neutralisation des IgRh
QUAND TRAITER ?
I- DIFFICULTES POUR CONCLURE SUR LESTATUT RH1
38e Colloque National des Biologistesdes Hôpitaux
A. Mailloux, CNRHP, 1 octobre 2009
II- IMMUNOPROPHYLAXIE- Intérêt du Microtitrage des anti-RH1
III- GENOTYPAGE RHD FOETAL
TEST DE KLEIHAUER OUI APRES NON OUI
ANTENATALECIBLEE
ANTENATALESYSTEMATIQUE
POSTNATALE
RAPPEL SUR LES OUTILS BIOLOGIQUESNECESSAIRES POUR LA PREVENTION
Injection d’IgG anti-RH1 chez la femme enceinte RH1 négatif
A. Mailloux, CNRHP, 1 octobre 2009
RAI AVANT INJECTION
GROUPAGE ENFANT
OUI APRES15 SA
OUI OUI OUI
OUIPAS POSSIBLE PAS POSSIBLE
GENOTYPAGEDans le futur
GENOTYPAGEDans le futur
250
300
350
45 ng/ml
APRES INJECTION DE 300 µg D’IgRH A 28 SA
POSITIVITE DE LA RAI
½ VIE 3 SEMAINES DIMINUTION DE MOITIE TOUTES LES 3 SEMAINES
DETECTION ANTI-RH1 DEPENDDOSE
A. Mailloux, CNRHP, 1 octobre 2009 Terme SA
0
50
100
150
200
250
28 30 32 34 36 38 40 42
22 ng/ml
11 ng/ml
6 ng/ml
3 ng/ml
DOSEDELAISENSIBILITE TECHNIQUE
2 QUESTIONS
1- ANTICORPS TROUVE DANS LE SERUM UNIQUEMENTEXPLICABLE PAR ANTI-RH1 PASSIF (ALLO-IMMUNISATION EN PLUS) ?
A. Mailloux, CNRHP, 1 octobre 2009
2- EST-CE QUE LA QUANTITE D’ANTICORPS ESTSUFFISANTE POUR PROTEGER ?
INTERET DU MICROTITRAGE
• Technique de microtitrage en gels au CNRHP mise en placeen 1999FEUILLETS DE BIOLOGIE , 2002 –Vol.XXXXIIII-N°245, 11-17
TECHNIQUE DE MICROTITRAGE (1)
TECHNIQUE SIMPLE FACILEMENT REALISABLE
A. Mailloux, CNRHP, 1 octobre 2009
• Intérêt : Déterminer si l’Anti-D dosé est uniquement unAnti-D passif (résiduel) consécutif à une injection d’Ig anti-D connaissant la posologie et la date d’injection.
• Domaine d’application : Prélèvements de femmes en âge deprocréer avec titre d’anti-D en technique tube < 1/4
TECHNIQUE DE MICROTITRAGE (2)
FEUILLETS DE BIOLOGIE , 2002 –Vol.XXXXIIII-N°245, 11-17.
Dilution du standard Anti RH1
Standard ANTI-RH1 6 U CHP/ml ( 24 ng/ml) fait et congelé auCNRHP dilué en NaCl à 0,9 % au ¼ (6 ng/ml) ,1/8 (3 ng/ml),1/16 (1.5 ng/ml) et au 1/32 (0.75 ng/ml).
A. Mailloux, CNRHP, 1 octobre 2009
Dilution du patient
Echantillon testé du pur au 1/32ème
Distribution
Distribution des hématies test (Hématies R0r papainées à 0.8%en diluant 2 (Diamed) dans les gels (Gels DIAMED Liss/Coombs), 50 l par puits.
Distribution des dilutions de standard et des patients, 25 l parpuits .
1- Méthode princeps : distribution par alternance
Incubation gel à 37°C pendant 15 minutes
Centrifugation 10 minutes
Réaction interprétable uniquement quand puits échantillon négatif
TECHNIQUE DE MICROTITRAGE (3)
Standard1/4
Patientpur
Standard1/8
Patient1/2
Standard1/16
Patient1/4
Standard1/32
Patient1/8
A. Mailloux, CNRHP, 1 octobre 2009
Réaction interprétable uniquement quand puits échantillon négatif
2- Méthode simplifiée : Série de 10 patients encadrée par une gamme
Standard1/4
Standard1/8
Standard1/16
Standard1/32
Patientpur
Patient1/2
Patient1/4
Patient1/8
Patient1/16
Patient1/32
INTERPRETATION RESULTATS (Fonction de l’intensité des réactions)
TECHNIQUE DE MICROTITRAGE (4)
Inverse de la dernièredilution réactive de
l’échantillon
Concentration de ladilution du
standard avec lamême intensité de
réaction
XConcentration en anti-D =
A. Mailloux, CNRHP, 1 octobre 2009
6 ng/ml 3 1.5 0.75
STANDARD PATIENT
Pur 1/2 1/4 1/8 1/16 1/32
Concentration approchée = 8 x 1.5= 12 ng/ml
réaction
Concentration attendue en anti-RH1passif après injection
n = nombre de doses injectées de 100 mg
15 = concentration extrapolée au temps 0
après injection intraveineuse de 100 mg d’IgGANTI D (après équilibre intra et extra-C ng/ml = n x 15/e 0.03t
A. Mailloux, CNRHP, 1 octobre 2009
ANTI D (après équilibre intra et extra-vasculaire)
0.03 = fraction quotidienne IgG catabolisée
t = délai en jours depuis l’injection
Concentration maximale :tenant compte
- d’un poids- d’un catabolisme à 3 %- sans consommation par hématies foetales
C ng/ml = n x 15/e 0.03t
ANTI-RH1 APRES INJECTION D’IgRH :RESULTATS DU MICROTITRAGE
STANDARD +++ ++ +6 3 1,5 ng/ml
+++ ++ +Patient 1 6 ng/mlpur 1/2 1/4
- - -1/8 1/16 1/32
date prélèvement 13/09/2009date injection : 03/07/2009 Délai 10 semaines
A. Mailloux, CNRHP, 1 octobre 2009
Patient 2 ++ + - - - - 3 ng/ml
date prélèvement 12/09/2009date injection : 30/06/2009 Délai 11 semaines
+
date prélèvement 12/09/2009date injection : 15/07/2009
Patient 4 ++++ +++ - -++ 12 ng/ml
Délai 8 semaines 1/2
ANTI-RH1 APRES INJECTION D’IgRH :RESULTATS DU MICROTITRAGE
Patiente allo-immunisée
75
100
125
co
nc
en
tra
tio
nm
es
uré
e
Patiente présentant une allo-immunisation
INTERET DU MICROTITRAGE
A. Mailloux, CNRHP, 1 octobre 2009
0 5 10 15 20 25 30 350
25
50
Concentration attendue (ng/ml)
co
nc
en
tra
tio
nm
es
uré
e
Résultats de 50 patientes
100
120
140
SUIVI ANTI-RH1 APRES INJECTION D’IgRH
INTERET DU MICROTITRAGE
GROSSESSE MME X
RAI AVANT L’INJECTIONDE 28 SA> 96 ng/ml
Pondéral 130 ng/ml
A. Mailloux, CNRHP, 1 octobre 2009
0
20
40
60
80
17-nov 7-déc 27-déc 16-janv 5-févr 25-févr 17-
mars
6-avr 26-avr
INJECTION DE RHOPHYLAC A 6 SAPAS DE RESULTAT DE RAI AVANT INJECTION
J+340 ng/ml
J + 306 ng/ml
J + 603 ng/ml
J+90< 1,5 ng/ml
250
300
350
45 ng/ml
CAPACITE IMMUNOSUPRESSIVE
INTERET DU MICROTITRAGE
EFFICACITE IMMUNO-SUPPRESSIVE 100% si à 20 µg/ml GR
15 ml d’Hématies foetales RHD+
A. Mailloux, CNRHP, 1 octobre 2009
0
50
100
150
200
250
28 30 32 34 36 38 40 42
Terme SA
22 ng/ml
11 ng/ml
6 ng/ml
3 ng/ml
7,5 ml d’Hématies foetales RHD+
3,8 ml d’HF RHD+
2 ml d’HF RHD+
1 ml d’HF RHD+
I- DIFFICULTES POUR CONCLURE SUR LESTATUT RH1
38e Colloque National des Biologistesdes Hôpitaux
A. Mailloux, CNRHP, 1 octobre 2009
II- IMMUNOPROPHYLAXIE
III- GENOTYPAGE RHD FOETAL
LE GENOTYPAGE RHD FŒTALADN fœtal dans le plasma maternel
Suite à la découverte de la présence d’ADN fœtal dans le plasma desfemmes enceintes (1 à 6 % d’ADN d’origine fœtale sous forme acellulaire)
LO Y.M. et al. Am J Hum Genet, 1998, 62 : 768-775.
Génotype RHD fœtal à partir du sang des femmes enceintes RhD –
- Diagnostic non invasif
A. Mailloux, CNRHP, 1 octobre 2009
ADN fœtaldans le plasma
Quantité deGénomes
(copies par ml de plasmamaternel)
25 (3 à 70) à 15 S.A.290 (77 à 769) à terme
Isolement
Rapide,simple
Persistancein vivo
Demi-vie< 1 heure
- Diagnostic non invasif
LE GENOTYPAGE RHD FŒTALEN PRATIQUE
Sang maternel collecté sur EDTA ( 5 à 7 ml)
72h max entre prélèvement et réception aulaboratoire
1Extraction de l’ADN plasmatique
A. Mailloux, CNRHP, 1 octobre 2009
Amplification par PCRdes séquencesspécifiques du gèneRHD
3
Centrifugation puis décantation plasma
2
LE GENOTYPAGE RHD FŒTALQUELLE STRATEGIE ?
1er NIVEAU : GENOTYPAGE EXON 7 / EXON 10Cadre de la prévention par IgRHD : dépistage
Quelle cible ? Combien d’Exons?
E1 E2 E3 E4 E5 E6 E7 E8 E9 E10Allèle RHD
A. Mailloux, CNRHP, 1 octobre 2009SFTS 24 juin 2009
- Applicable dans la population caucasienne : gène RHD délété dans 99 % des cas- Sensibilité maximum (tolérance 0 pour les faux négatif)- Limiter la lourdeur technique (diminution du coût)- Moins bonne spécificité tolérable (traitement par défaut)
Kit Jacques Boy 1ère génération
MAIS
- exclusion population non caucasienne- Pas de possibilité d’identification de variants
LE GENOTYPAGE RHD FŒTALKit de 1ère génération
Coopération RECHERCHE –INDUSTRIE
(INSERM – INTS- CNRHP - J.BOY)
Trousse développée en 2006-2007
Kit de 1ère génération pour PCR en Temps Réel avec reporterfluorescent. Marquage CE obtenu en JUIN 2007
A. Mailloux, CNRHP, 1 octobre 2009
fluorescent. Marquage CE obtenu en JUIN 2007
Cibles: exons X et VII (amorces CNRHP)Sonde Taqman
ADN marqueur : maïs
Free DNA Fetal Kit® RhDKit de génotypage foetal RHD à partir d’ADN foetal libre du sang maternel
(Technique PCR Temps réel)
Réf. : 502080133
gène Dpsi : gène RHD non exprimé
Fréquence : 1 % dans la population caucasienne
60 % dans la population Africaine RH1 négatif
C654(Ile6218)G667(Val223)T674(Phe225)
37pbA609(Asp216) G807(Stop269)
E1 E2 E3 E4 E5 E6 E7 E8 E9 E10Allèle RHD
LE GENOTYPAGE RHD FŒTALQUELLE STRATEGIE ?
Quelle cible ? Combien d’Exons?
A. Mailloux, CNRHP, 1 octobre 2009SFTS 24 juin 2009
2ème NIVEAU : AJOUT D’UN TROISIEME EXONEXON 7 / EXON 10 / EXON 5
Cadre de la prévention par IgRHD : dépistage avancé
- Permet d’amorcer un diagnostic chez des femmes porteuses d’ungène Dpsi (exon 5 non Dpsi)- Identification de variants du gène D phénotypiquement exprimés
60 % dans la population Africaine RH1 négatif
Kit Jacques Boy 2ème génération
3ème niveau : AFFIRMATION DU RHESUS D FOETAL
E1 E2 E3 E4 E5 E6 E7 E8 E9 E10Allèle RHD
37pbA609(Asp216)
C654(Ile6218)G667(Val223)T674(Phe225)
G807(Stop269)
Allèle RHD
Quelle cible ? Combien d’Exons?
LE GENOTYPAGE RHD FŒTALQUELLE STRATEGIE ?
A. Mailloux, CNRHP, 1 octobre 2009SFTS 24 juin 2009
Cadre des femmes immuniséesLaboratoires de Référence
1- Identification du gène des cellules maternelles dès qu’amplification deséquences maternelles suspectéeImportance +++ chez femmes Dpsi allo-immunisées
2- Application de PCR RHD ne reconnaissant pas le gène maternel Dpsi- EXON 5 non Dpsi en systématique (en même temps que le 7 et le 10)- EXON 6 non Dpsi uniquement si patiente confirmée Dpsi
I- Présence de variants silencieux du gène RHD chez le fœtusEXON 5 DpsiEXON 6 Dpsi
II- Présence de variants silencieux du gène RHD chez la mère de faiblefréquence : aucun outil disponible
Identification des fœtus DpsiEn cours de validation
LE GENOTYPAGE RHD FŒTALFAUX POSITIFS
A. Mailloux, CNRHP, 1 octobre 2009SFTS 24 juin 2009
fréquence : aucun outil disponible
III- Interférence des contaminations par augmentation de lasensibilité de la technique : contamination par aérosol lors du prélèvement,lors de la décantation du plasma, de l’éluat …
Au CNRHP D silencieux maternels (4% en 2007, 2.3% en 2008)
a) Autres D silencieux (24%)b) D silencieux D (76%)
1) Problème d’extraction ou d’inhibition de la PCR :
Inclusion d’un ADN traceur déposé dans le plasma (témoind’extraction de l’ADN et de non-inhibition de la PCR).
2) Absence d’ADN fœtal :Recherches d’ADN fœtal « témoin ».
2 PROBLEMES
LE GENOTYPAGE RHD FŒTALFAUX NEGATIFS
A. Mailloux, CNRHP, 1 octobre 2009SFTS 24 juin 2009
DONC POUR ECARTER LE RISQUE DE FAUX NEGATIF
REPETER LE TEST SUR UN SECOND PRELEVEMENT (>> à 12SA)
1) Concentration plus élevée d’ADN fœtal
2) Rattraper une erreur d’étiquetage
3) Rattraper un croisement pré ou per-analytique des échantillons
LE GENOTYPAGE RHD FŒTALREGLEMENTATION
Depuis le décret 1661 du 22 décembre 2006 le génotypagefœtal RHD peut être effectué uniquement :
1- Dans un laboratoire autorisé par l’Agence Régionaled’Hospitalisation, après avis de l’Agence de Biomédecine.
A. Mailloux, CNRHP, 1 octobre 2009
d’Hospitalisation, après avis de l’Agence de Biomédecine.
2- Par des praticiens agrées par l’Agence de Biomédecine.
OBLIGATION D’UN CONSENTEMENT DE LA PATIENTE(préalable à une analyse de biologie moléculaire en vue d’établirun diagnostic prénatal in utero)
LE GENOTYPAGE RHD FŒTALCONCLUSION
FEMME IMMUNISEE
FEMME ENCEINTE RHESUS D NEGATIF
FEMME NON IMMUNISEE
A. Mailloux, CNRHP, 1 octobre 2009
FEMME IMMUNISEE FEMME NON IMMUNISEE
AMNIOCENTESE SANS AMNIOCENTESE
PERMET DE LEGITIMER OUNON UNE SURVEILLANCE
ANTENATALE
DEVRAIT PERMETTRE D’EVITERINJECTION D’IgRHD SI LEGENOTYPE RHD FOETAL ESTNEGATIF (40%)
PERMET D’EVITER INJECTIOND’IgRHD SI LE GENOTYPE RHDFOETAL EST NEGATIF