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BSV Légumes n°08 – P. 1
BSV n°08 – 20 juin 2018
À RETENIR CETTE SEMAINE
ALSACE ................................................................................................................................................................................. 3
ASPERGES ............................................................................................................................................................................. 3
1 Stade de la culture/description du réseau ................................................................................................................... 3
2 Criocère de l’asperge .................................................................................................................................................... 3
3 Mouche de l’asperge .................................................................................................................................................... 4
4 Mouche mineuse .......................................................................................................................................................... 5
5 Stemphylium ................................................................................................................................................................ 6
6 Autre phénomène : dérive de désherbants maïs ......................................................................................................... 6
OMBELLIFERES ..................................................................................................................................................................... 7
1 Stade de la culture/description du réseau ................................................................................................................... 7
2 Mouche de la carotte ................................................................................................................................................... 7
3 Septoriose .................................................................................................................................................................... 8
CHOUX .................................................................................................................................................................................. 9
1 Stade de la culture/description du réseau ................................................................................................................... 9
2 Altise ............................................................................................................................................................................. 9
3 Mouche du chou ........................................................................................................................................................ 10
4 Chenilles phytophages ............................................................................................................................................... 10
5 Pucerons cendrés ....................................................................................................................................................... 11
POMMES DE TERRE ............................................................................................................................................................ 14
1 Stade de la culture/description du réseau ................................................................................................................. 14
2 Doryphore .................................................................................................................................................................. 15
3 Pucerons ..................................................................................................................................................................... 15
4 Jambe noire ................................................................................................................................................................ 16
5 Mildiou ....................................................................................................................................................................... 16
LORRAINE ........................................................................................................................................................................... 19
BSV n°08 – P.2
1 Stade de la culture/description du réseau ................................................................................................................. 19
2 Pucerons ..................................................................................................................................................................... 19
3 Botrytis ....................................................................................................................................................................... 19
POMME DE TERRE .............................................................................................................................................................. 21
1 Stade de la culture/description du réseau ................................................................................................................. 21
2 Doryphores ................................................................................................................................................................. 21
3 Mildiou ....................................................................................................................................................................... 22
SOLANACEES SOUS ABRI .................................................................................................................................................... 23
4 Stade de la culture/description du réseau ................................................................................................................. 23
5 Pucerons ..................................................................................................................................................................... 24
6 Acariens ...................................................................................................................................................................... 25
CRUCIFERES ........................................................................................................................................................................ 25
1 Stade de la culture/description du réseau ................................................................................................................. 25
2 Altises ......................................................................................................................................................................... 26
3 Chenilles phytophages ............................................................................................................................................... 26
4 Autres bioagresseurs .................................................................................................................................................. 28
BSV Légumes n°08 – P.3
ALSACE
ASPERGES
1 Stade de la culture/description du réseau
Avec les températures chaudes, les pousses sont rapides et vigoureuses. La situation
hydrique est correcte dans toutes les situations.
2 Criocère de l’asperge
a. Observations
Les populations de criocères sont à nouveau en hausse cette
semaine. Des adultes et des larves sont à nouveau repérés dans les
parcelles du réseau. Sur parcelles flottantes, on observe des dégâts
parfois importants.
Le criocère est un ravageur majeur dans la culture de l’asperge,
notamment pour les jeunes plantations. Les criocères adultes sont
généralement présents dans presque toutes les plantations à partir du mois de mai. Les larves sont très
voraces. Elles attaquent toujours la végétation du haut vers le bas. Les pourtours de parcelles sont touchés en
premiers.
Commune 19 juin 12 juin
Hoerdt RAS RAS
Pfulgriesheim RAS Quelques criocères adultes
Dalhunden RAS Quelques larves en pourtour
Schirrhein (bio) Larves + adultes de criocères RAS
Fessenheim le bas Quelques adultes de criocères RAS
Bilwisheim RAS RAS
Eckwersheim RAS Quelques criocères adultes
b. Seuil indicatif de risque
Il existe un seuil à partir duquel il est risqué de laisser les populations se développer sur les stades juvéniles de
l'asperge. Ce seuil est estimé à 3 criocères pour 10 mètres linéaires de rang (source Adar Blayais en Gironde).
Niveau de risque : fort sur parcelle à risque.
ASPERGES
Larves de criocères. P SIGRIST
Dégâts sur végétation. (P SIGRIST)
BSV Légumes n°08 – P.4
c. Analyse de risque
En 2017, la présence des criocères a été plus intense que les années passées, sans doute due à une météo
plus chaude au printemps. Le risque est le même en 2018. Ce sont essentiellement les jeunes plantations de
l’année, ainsi que les plantations de 2017 qui sont concernées.
3 Mouche de l’asperge
a. Observations
Le vol est en forte baisse cette semaine, il semble se terminer. Les mouches sont facilement reconnaissables
avec les ailes zébrées. De plus elles sont peu mobiles le matin, avec les températures fraiches.
b. Seuil indicatif de risque
Le seuil est d’une mouche par semaine et par piège (baguette engluée, à raison de 5 par parcelle).
Risque Nul Faible Moyen Elevé Très élevé
Valeur 0 0 au ½ seuil ½ seuil à seuil 1-2 * seuil Plus de 2* seuil
Suivi parcellaire du nombre de mouches par piège et par semaine
Commune (bio) Stade au 19 juin et % de sortie Le 19/6 Le 12/6 Le 5/6
Hoerdt 1ère pousse / 100 %, 2ème pousse à 30 %, dérive désherbant maïs 0 0,2 1.5
Pfulgriesheim 1ère pousse / 100 %, 2ème pousse 25 %,
quelques tâches de stemphylium au bas des tiges 0,6 1 2.5
Dalhunden 1ère pousse 100 %, 2ème pousse 60 % 0 0 0,2
Schirrhein (bio) 1ère pousse / 100 %, début 2ème pousse 0 0 0
Fessenheim le bas 1ère pousse / 90 % 2,2 5 16
Bilwisheim 1ère pousse / 100 %seconde pousse 60 % 0,2 0,2 2.2
Eckwersheim 1ère pousse / 90 %, 2ème pousse à 30 %, dérive désherbant maïs 0 0,4 1.0
c. Analyse de risque
Les températures élevées maintiennent le risque.
Niveau de risque : fort sur parcelle à risque.
d. Méthodes alternatives
La pose de bâches permet la protection de la culture jusqu’à l’émergence.
e. Dégâts sur végétation Depuis quelques jours, les dégâts sont visibles dans les parcelles qui n’ont pas été récoltées, et peut être
protégées tardivement. Les tiges jaunissent complètement. Lorsque l’on coupe les tiges sur la longueur, on
retrouve facilement des galeries, les asticots ou des pupes.
BSV Légumes n°08 – P.5
Dégâts de la mouche de l’asperge (P. SIGRIST)
4 Mouche mineuse
a. Observations
L'adulte est une petite mouche d'un noir luisant de 2,5 à 3,5 mm de longueur.
Les larves sont d’un blanc immaculé et mesurent de 0,5 à 5 mm de long. Elles creusent des galeries sinueuses
dans les tiges, juste en-dessous de l’épiderme, généralement au voisinage de la base du plant.
Les mouches mineuses ont bien été présentes en 2017. Ce ravageur est en développement en Alsace. Aussi
bien dans le Bas-Rhin, que dans le Haut-Rhin. Les premiers dégâts sont visibles vers la mi-juillet, lorsque les
asperges sont en végétation. Ce ravageur était totalement inexistant, ou non recensé il y a quelques années.
Mouche mineuse adulte - Ophiomyia simplex
BSV Légumes n°08 – P.6
Jaunissement lent de la végétation
Pupe de mouche mineuse dans l’épiderme au bas de la tige (Photos P. SIGRIST)
5 Stemphylium
a. Observations
Les premières tâches sont recensées sur les parcelles en seconde
pousse non récoltées.
Le temps chaud et sec prévu cette semaine n’est pas trop favorable au
développement du stemphylium
b. Seuil indicatif de risque
Pas de seuil réel.
c. Analyse de risque
Les températures et l’humidité pour les jours à venir vont augmenter le risque. Niveau de risque : moyen
6 Autre phénomène : dérive de désherbants maïs
Quelques parcelles d’asperges, notamment les jeunes plantations 2018, présentent des décolorations du
feuillage. Ce ne sont pas des carences, il s’agit souvent de dérive de produits désherbants utilisés dans la
culture du maïs. Ces phytos ont pour conséquences de stopper momentanément les jeunes plantations et qui
ont un effet sur la vigueur des plantes, qui influencera le diamètre des turions lors des récoltes. Ces situations
dramatiques sont plus fréquentes que d’habitude en Alsace en 2018.
Phytotoxicité (P. SIGRIST)
Tache de stemphyliose (P. SIGRIST)
BSV Légumes n°08 – P.7
OMBELLIFERES
1 Stade de la culture/description du réseau
Le réseau est constitué de 5 parcelles :
- Niedernai carotte (30% taille finale)
- Sélestat carotte (25% taille finale)
- Mussig céleri (30% taille finale)
- Mussig carotte (25% taille finale)
- Holtzwihr carotte Bio (20% taille finale)
Un piège est constitué de 3 plaques engluées, déposées entre 5 à 10 mètres les unes des autres.
2 Mouche de la carotte
a. Observations
Aucune mouche n’a été capturée. Le premier vol et bien terminé et le deuxième n’a pas encore commencé.
b. Seuil indicatif de risque
Le seuil est atteint quand une mouche est piégée en moyenne sur chacune des plaques engluées. Ramené à
un nombre de mouches par jour, le seuil indicatif de risque est de 0,14.
c. Analyse de risque
Niveau de risque : faible.
d. Méthodes alternatives
Le sol humide favorise les pontes. Le risque est moins important sur les parcelles non irriguées car un grand
nombre d’œufs se dessèchent.
La mise en place de filets anti-insectes et/ou le décalage des semis permettent d’éviter les pontes.
Les bâches de forçage constituent une barrière efficace contre les attaques de mouches dans les parcelles de
céleri précoces.
OMBELLIFERES
BSV Légumes n°08 – P.8
3 Septoriose
a. Observations
Aucune observation visuelle (pourcentage d’infestation nul) à ce jour.
b. Seuil indicatif de risque
Le modèle de calcul du risque Septocel (Septoriose du céleri de la DGAL sur la plateforme INOKI du CTIFL) a
été validé sur céleri en France. Afin d'initier le démarrage du modèle, la date de repiquage a été fixée au 1
mars. Une prévision du risque est calculée sur 5 jours. La quatrième génération est en cours à Marckolsheim
et à Obersaasheim, la troisième à Wuenheim. Des sporulations y ont eu lieu certains jours depuis une
semaine. D’autres seront encore possibles, les 20, 22 et 24 juin à Marckolsheim, le 21 juin à Wuenheim, le 15
et les 21 et 23 juin à Obersaasheim. La première génération en cours à Saint Croix en Plaine, avec une
sporulation effective le 15 juin (possibilité de sous estimation de l’humidité).
Station météo Génération Sporulations Contaminations
Marckolsheim 4 14 au 16 juin 15 au 19 juin
Obersaasheim 4 15, 17-18 juin 16 et 19 juin
Wuenheim 3 14-15 juin Aucune
Sainte Croix en Plaine 1 15 juin Aucune
c. Analyse de risque
Niveau de risque : moyen à élevé. Avec les irrigations et l’humidité résiduelle, le risque pourrait se
concrétiser.
Symptôme de dégâts de septoriose (L. BOULLARD)
BSV Légumes n°08 – P.9
CHOUX
1 Stade de la culture/description du réseau
Les averses et les orages accompagnés de grêle de la semaine passée ont à nouveau été
importants selon les secteurs. La présence de cuvette dans les parcelles qui retient l’eau et
le ressuyage difficile dû aux sols engorgés, provoquent l’asphyxie des racines et le
flétrissement des plants. Les températures élevées restent propices à la prolifération des
ravageurs. L’eau stagnante est quant à elle favorable au développement de bactéries (notamment
Xanthomonas) et de maladies fongiques.
2 Altise
a. Observations
En parcelle flottante, les altises restent toujours présentes en
nombre sur les jeunes plantations. Au sein du réseau, les choux
développés ne comportent plus d’individus ou leur impact est sans
conséquence.
b. Seuil indicatif de risque
Niveau de risque : moyen à élevé, sur jeune plantation.
c. Analyse de risque
Le ravageur apparait généralement 8 à 10 jours après
plantation. Le chou y est extrêmement sensible au moment de
la reprise car il ne possède pas encore de surface foliaire
suffisante. Surveiller régulièrement les parcelles aux heures
chaudes de la journée pour détecter leur présence. Les pluies
ne gênent que ponctuellement les individus, dès que les
cultures sèchent, le ravageur revient très rapidement coloniser
les choux.
d. Méthodes alternatives
Contrôle des adventices avant plantation pour limiter l’alimentation des adultes qui sortent d’hivernation.
Binage régulier (perturbe le développement des altises).
CHOUX
Altises (A. CLAUDEL)
Stagnation d’eau et
dépérissement des plants dans les
parcelles suite aux fortes averses
(A. CLAUDEL)
BSV Légumes n°08 – P.10
Biocontrôle : il est possible de protéger
ses plants en pépinière avant
plantation. Liste des produits
disponibles sous
https://info.agriculture.gouv.fr/gedei/s
ite/bo-agri/instruction-2018-205
Irrigation régulière (les altises préfèrent un temps chaud et sec).
Plantes pièges : les choux chinois ainsi que les radis sont des plantes pièges idéales. Placés à quelques mètres
de la culture, elles vont attirer les altises.
Pose de filet anti-insectes. A installer sur cultures exemptes d’altises.
3 Mouche du chou
a. Observations
Sur chou développé, des pontes ont été détectées sur le
feuillage. Le vol de deuxième génération semble avoir débuté.
b. Seuil indicatif de risque Sur jeunes plants, les œufs sont déposés par paquets dans le
sol, à proximité du collet de la plante et mettent 4 à 6 jours
pour éclore. Les larves vont s’enfoncer dans le sol et creuser
des galeries dans les racines provoquant le dépérissement de la plante. Des dégâts (avec présence de larves de
mouches) ont été observés en parcelle flottante (plant non protégé). Des pontes peuvent avoir lieu 2 à 3 fois
pendant la saison, la première génération de larves est la plus destructrice.
c. Analyse de risque
La phase de sensibilité du chou, lors de la reprise du plant, peut durer de 4 à 8 semaines selon la vitesse de
développement de la culture. Niveau de risque : moyen à élevé sur plants non traités.
d. Méthodes alternatives
Les mesures sont uniquement préventives, une fois les larves
et les dégâts observés, il est trop tard pour agir.
4 Chenilles phytophages
a. Observations
Teignes : le nombre d’adultes piégés est en baisse (5 papillons sur le secteur d’Innenheim). On observe la
présence de chrysalides, et de très jeunes larves, la deuxième génération est donc en cours. Les vols dans les
parcelles flottantes restent importants.
Piérides du chou et de la rave : le nombre de papillons volant dans les parcelles s’est nettement intensifié.
Les pontes de piéride de la rave, observées ponctuellement la semaine passée, sont plus nombreuses et sont
identifiées régulièrement dans les parcelles. Quelques jeunes larves sont également présentes de façon plus
ponctuelle.
Papillon de piéride
(A.CLAUDEL) Jeune larve de
piéride de la rave
(A.CLAUDEL)
BSV Légumes n°08 – P.11
Biocontrôle : des produits agissent sur
jeunes chenilles par ingestion. Etant
photosensibles et lessivables, il est
important de l’appliquer lors de journées
couvertes ou en soirée et en dehors des
pluies.
Noctuelles du chou : deux adultes (Mamestra brassicae) ont été piégés au sein du réseau. Les larves (de
différents stades jeunes à âgées) sont identifiées régulièrement en parcelle flottante.
b. Seuil indicatif de risque En complément du piégeage, un cumul de degrés jours est calculé à partir des stations météo en Alsace pour le seuil d’émergence des larves de chenilles phytophages. Les seuils hauts sont atteints dans tous les secteurs depuis le 17 mai.
c. Analyse de risque
Les larves de teignes sont très petites et difficilement détectables, elles peuvent provoquer des dégâts importants
dans un laps de temps très court en particulier lorsqu’elles se trouvent dans le cœur du chou. Les chenilles de
noctuelles et de piérides âgées se nourrissent de morceaux plus importants laissant de gros trous irréguliers. Avec
les températures élevées, l’activité des papillons (teigne, noctuelle et piéride) et des larves s’est accélérée.
Niveau de risque : moyen à élevé.
d. Méthodes alternatives
Contrôle des adventices de la famille des crucifères et des
déchets de cultures de choux précédentes qui favorisent
la présence des teignes adultes. Pose de filet anti-
insectes, à installer sur cultures avant l’arrivée des
premiers adultes.
5 Pucerons cendrés
a. Observations
La prolifération des pucerons cendrés a globalement pu être maitrisée. Le ravageur reste cependant présent et
des ailés sont à nouveau observés. Les températures élevées prévues restent favorables à son développement.
Les auxiliaires sont maintenant présents en nombre dans les parcelles et permettent de limiter la prolifération
des foyers (voir photos ci-dessous).
Larve de noctuelle âgée (A. CLAUDEL)
A gauche : larve d’Aphidoletes aphidimyza – au milieu : larve de syrphe – à droite : pucerons momifiés (lié à la présence d’auxiliaires parasitoïdes qui pondent dans le corps du ravageur) (A.CLAUDEL)
BSV Légumes n°08 – P.12
Biocontrôle : utilisation de
desséchants (dessication de la
cuticule des insectes à corps mous).
Liste des produits disponibles sous
https://info.agriculture.gouv.fr/ged
ei/site/bo-agri/instruction-2018-205
b. Analyse de risque
Les températures chaudes sont propices à leur développement, qui peut être rapide et exponentiel. La
présence des pucerons est facilement décelable grâce aux zones de décolorations blanches à violettes qu’ils
engendrent sur les feuilles (généralement suivies de déformations). Une surveillance régulière est
indispensable. Niveau de risque : moyen à élevé.
c. Méthodes alternatives
Contrôle des adventices de la famille des crucifères et des
déchets de cultures de choux précédentes sur lesquels les
pucerons passent l’hiver.
Pose de filet anti-insectes, à installer sur cultures avant l’arrivée
des premiers adultes.
Favoriser la présence d’auxiliaires (coccinelle, syrphe, chrysope
etc, …) qui peuvent suffire à contrôler les foyers installés.
6 Thrips
Déformation et décoloration
liée à la présence de pucerons
cendrés (A. CLAUDEL)
Dégâts de thrips (A. CLAUDEL)
BSV Légumes n°08 – P.13
Biocontrôle : utilisation de
desséchants (dessication de la
cuticule des insectes à corps mous).
Liste des produits disponibles sous
https://info.agriculture.gouv.fr/ged
ei/site/bo-agri/instruction-2018-205
a. Observations Les premiers thrips et dégâts sont observés sur Almanach et chou légume précoce.
b. Analyse de risque
Avec les températures élevées annoncées, leur prolifération va s’accélérer sur les choux qui ont une
pommaison avancée (plantés en avril), en particulier Almanach et Tobia. Niveau de risque : moyen (en hausse
sur chou avec une pommaison avancée). Le tableau suivant donne la date de début des différents vols.
Station météo 1er vol, issu de larve hivernante
2ème vol, issu d'adulte hivernant
3ème vol, issu de larve hivernante
4ème vol issu, d'adulte hivernant
5ème vol, issu de larve hivernante
Altkirch 11/05/2018 (C=132,8)
30/05/2018 (C=235,1)
15/06/2018 (C=366,4)
Seuil non atteint! Seuil non atteint!
Vendenheim 07/05/2018 (C=137,7)
25/05/2018 (C=231,1)
07/06/2018 (C=369,1)
18/06/2018 (C=463,7)
Seuil non atteint!
Marckolsheim 08/05/2018 (C=138,0)
27/05/2018 (C=233,7)
09/06/2018 (C=362,8)
Seuil non atteint! Seuil non atteint!
Obersaasheim 05/05/2018 (C=134,6)
23/05/2018 (C=228,6)
05/06/2018 (C=364,0)
16/06/2018 (C=465,7)
Seuil non atteint!
Rottelsheim 08/05/2018 (C=133,7)
27/05/2018 (C=235,4)
09/06/2018 (C=366,4)
Seuil non atteint! Seuil non atteint!
Sessenheim 07/05/2018 (C=133,7)
26/05/2018 (C=238,6)
07/06/2018 (C=369,4)
17/06/2018 (C=460,3)
Seuil non atteint!
Uhrwiller 16/05/2018 (C=132,8)
30/05/2018 (C=228,9)
14/06/2018 (C=362,0)
Seuil non atteint! Seuil non atteint!
Wissembourg 08/05/2018 (C=136,1)
27/05/2018 (C=236,0)
09/06/2018 (C=367,2)
Seuil non atteint! Seuil non atteint!
Wiwersheim 08/05/2018 (C=139,6)
26/05/2018 (C=231,6)
08/06/2018 (C=362,7)
20/06/2018 (C=457,4)
Seuil non atteint!
Wuenheim 08/05/2018 (C=133,9)
28/05/2018 (C=235,0)
11/06/2018 (C=364,9)
Seuil non atteint! Seuil non atteint!
c. Méthodes alternatives
Les pluies ou les irrigations régulières peuvent permettre de lessiver les individus et de contrôler la pression
présente.
BSV Légumes n°08 – P.14
POMMES DE TERRE
1 Stade de la culture/description du réseau
Le réseau est constitué à ce jour de 11 parcelles dans les différents secteurs de production :
- Furdenheim : Charlotte, pleine floraison, 1 mm de pluie, larves de doryphores<seuil.
- Oberschaeffolsheim : Artémis, pleine floraison, rhizoctone sur tige, 0 mm de pluie.
- Obernai : Ditta (AB), pleine floraison, doryphores+larves<seuil, 30 mm de pluie.
- Obernai : Marabel, 6-7 feuilles, 32 mm de pluie.
- Niedernai : Adora, 60 % de la taille, 20 mm de pluie.
- Niedernai : Marabel, 70 % de floraison, 20 mm de pluie.
- Muttersholtz : Agata, pleine floraison, doryphores+larves<seuil, 30 mm de pluie+irrigation, tache de mildiou.
- Volgelsheim : Charlotte AB, pleine floraison, doryphores+larves<seuil, 10 mm de pluie+irrigation.
- Stetten : Adora, développement des fruits, doryphores+larves<seuil 15 mm de pluie.
- Burnhaupt le Bas : Agria, pleine floraison, 8 mm, doryphores+larves<seuil, buttes ravinées.
- Burnhaupt le Haut : Adora, maturité à sénescence, doryphores+larves>seuil, 0 mm.
Les pommes de terre primeurs (plantations de mi mars à début avril) sont à maturité avec développement des
fruits à début sénescence. Les cultures bâchées sont en cours d’arrachage ou de défanages/broyages.
Les pommes de terre de conservation sont en pleine floraison avec des calibres de 35 à 45 mm pour les variétés ½
précoces comme Agata, Ditta mais également pour des variétés plus tardives comme Charlotte ou Marabel. La
floraison est très importante et précoce. Les sols sont ressuyées à secs, suite à l’absence ou la faiblesse de pluies
et les fortes consommations. Les sols sont autour de 19-25°C, ce qui reste favorable au développement.
POMME DE TERRE
Conséquences d’inondation de parcelle avec attaque de rhizoctone et pourritures (D. JUNG)
BSV Légumes n°08 – P.15
Biocontrôle : des produits existent,
appliquées régulièrement, ils
forment un film continu qui préserve
des piqures.
Biocontrôle : des produits agissent
sur larves par ingestion. Etant
photosensibles et lessivables, il est
important de l’appliquer lors de
journées couvertes ou en soirée et
en dehors des pluies.
2 Doryphore
a. Observations
Des adultes (de nouvelle génération) ainsi que des larves L1-L4 sont observés très fréquemment dans la plaine,
mais les situations restent très variables. L’évolution reste rapide.
b. Seuil indicatif de risque
En conventionnel : 2 foyers sur 1 000 m². En bio : 30 % des plantes avec les larves. Surveiller les bordures et les
plantes plus faibles.
c. Analyse de risque
Les pontes éclosent rapidement mais se font de façon échelonnée. Les jeunes larves nécessitent une observation
fine pour être détectées surtout par temps couvert et frais. Ils colonisent rapidement la plante puis les voisines.
Niveau de risque : moyen à fort. Les températures favorisent leur
activité. Les dégâts augmentent avec la taille et le nombre de
larves.
d. Méthodes alternatives
Rotations culturales longues. Eliminer les adultes et les repousses
qui assurent la multiplication.
3 Pucerons
a. Observations Peu d’ailés ou de larves sont observés dans les parcelles du réseau. Des
auxiliaires (coccinelles ou syrphes adultes, araignées) sont présents. Leur
présence ou celles de fourmis (favorables aux pucerons) peuvent donner
une indication de présence de pucerons, à observer (avec une loupe)
sous les feuilles, dans les étages foliaires inférieures.
b. Seuil indicatif de risque
Méthode simplifiée : 20 folioles sur 40 sont porteuses de pucerons.
c. Analyse de risque
Les ailés permettent une dissémination rapide et une installation dès la levée sous les feuilles (du bas de
préférence). Les larves vont prélever de la sève, ce qui affaiblit la plante et permet la transmission de viroses.
Niveau de risque : faible. Les températures plus élevées et le temps sec favorisent leur activité, qui reste sous
contrôle avec la présence d’auxiliaires. A surveiller, notamment sur les variétés sensibles au virus Y.
d. Méthodes alternatives
Aucune méthode alternative à part des filets anti insectes,
difficilement utilisables à ce stade. Pour la production de plants,
des huiles sont utilisables (également certaines en AB).
Larves et adulte de pucerons (D. JUNG)
BSV Légumes n°08 – P.16
Biocontrôle : des produits peuvent
être appliqués lors de périodes
humides évite la dissémination au
reste de la parcelle.
4 Jambe noire
a. Observations
Les sols humides favorisent l’apparition des
lenticelles ouvertes, qui sont des portes
d’entrée des bactéries (comme des blessures
provoqués par le rhizoctone ou des morsures
de limaces – observées sur tubercule sur
plusieurs parcelles autour de Strasbourg -, des
chocs par le buttage). Les températures sont
favorables à l’apparition des symptômes.
Plusieurs cas sont observés sur tige en parcelle
flottante à Duttlenheim, Muttersholtz,
Baldenheim, Reitwiller, Obernai, Volgelsheim,
Burnhaupt le Bas (suite à des blessures en
général, causées par de la grêle ou des
animaux).
b. Seuil indicatif de risque
Pas de seuil. Les dégâts sont proportionnels au nombre de plantes atteintes et à la précocité de l’attaque. Les
tubercules formés peuvent également être atteints et pourrir.
c. Analyse de risque
Un temps humide de plus de 24 h permet la dissémination de la bactérie. Niveau de risque : moyen. A surveiller.
d. Méthodes alternatives
Limiter les chocs lors des manipulations. La suppression des plants
pourris limite la dissémination.
5 Mildiou
a. Observations Une tache de mildiou observée lundi à Muttersholtz. Attention à la confusion avec les brûlures dues au
frottement par le vent, des apports d’engrais, des désherbages
(voisinage de culture ou rattrapage avec de l’huile par temps chaud).
b. Seuil indicatif de risque Pas de seuil de nuisibilité, la protection est préventive. Les dégâts sont
proportionnels au nombre de plantes atteintes et à la précocité de
l’attaque, qui peut être fulgurante. Les tubercules formés peuvent
également être atteints et pourrir.
Le modèle Mileos® d’Arvalis Institut du Végétal permet la
modélisation du risque de la maladie selon la sensibilité variétale du
feuillage en fonction des contaminations et des sporulations (voir
Tache de mildiou (D. JUNG)
BSV Légumes n°08 – P.17
tableau suivant). Il faut que la parcelle ait atteint les 30 % de plants levés pour prendre en compte le risque
mildiou.
c. Analyse de risque
Les contaminations et l’évolution de la maladie dépendent des températures et de l’humidité. Ainsi, les conditions
climatiques idéales pour le développement du mildiou sont d’abord une succession de périodes humides et assez
chaudes (un optimal de 18-22°C) pour la formation des spores. La germination des spores est ensuite possible dès
que la durée d’humectation du feuillage est égale à 4 heures et plus, assortie de températures comprises entre 3-
30°C (optimal 8-14°C). Par la suite, les pluies, les hygrométries supérieures à 90% associées à des températures
comprises entre 10-25°C favorisent l'évolution de la maladie. En revanche, des températures négatives (-2°C) ou
bien à l’inverse celles supérieures à 30°C limitent ou bloquent le développement du champignon.
Niveau de risque : faible à très élevé (voir tableau). L’humidité nocturne et la rosée favorisent les contaminations
et les sporulations. Les températures élevées vont réduire la survie des spores. Le risque est plus élevé comme la
culture couvre le sol, dans les zones abritées, humides (rivières, étangs) ou irriguées. Les cycles de développement
sont rapides.
Le tableau suivant donne la situation du modèle Mileos pour 13 stations météo, valable dans un rayon de 7 à 10
km selon la topographie, sur les 7 derniers jours pour l’atteinte du seuil variétal, sur les 48 heures pour la réserve
de spores et le niveau de risque (= poids de contamination) pour le jour en cours et le lendemain.
Le seuil pour les variétés résistantes a encore été atteint sur les 3/4 des stations. Le poids de contamination
(nouveau seuil de nuisibilité) sera nul avec les conditions plus sèches à partir de demain. La réserve de spores
reste importante pour les 3/4 des stations et pourrait entrainer des contaminations en cas d‘orages, d’irrigations
nocturnes, favorisant l’humidité nocturne.
d. Méthodes alternatives
Élimination des tas de déchets de triage et des repousses de pommes de terre.
Utilisation de plants sains.
Planter des variétés moins sensibles.
Éviter les longues périodes d'humidité (irrigation en cours de journée, drainage, aération).
Stations météo Réserve de
spores Risque dans
les 48 heures Seuil variété
sensible Seuil variété
intermédiaire Seuil variété
résistante Pluies
Geispitzen Moyen Nul 0 Vendenheim Très élevée Très élevée 1,5
Ste Croix en Plaine Faible Nul 0 Uhrwiller Très élevée Très élevée 16 et 20 juin 16 et 20 juin 16 et 20 juin 0
Obersaasheim Très élevée Très élevée 16, 19 et 20 juin 19 et 20 juin 19 et 20 juin 0 Sessenheim Très élevée Très élevée 16, 19 et 20 juin 16, 19 et 20 juin 16, 19 et 20 juin 0 Wiwersheim Très élevée Très élevée 15, 16 19, 20 juin 15, 16 19, 20 juin 15, 16 19, 20 juin 0
Marckolsheim Très élevée Très élevée 15 au 20 juin 15 au 20 juin 15 au 20 juin 0 Rottelsheim Très élevée Très élevée 14, 16, 19, 20 juin 14, 16, 19, 20 juin 14, 16, 19, 20 juin 1
Wissembourg Très élevée Nul 16 et 19 juin 19 juin 19 juin 0 Altkirch Très élevée Nul 15, 17 au 19 juin 15, 17 au 19 juin 15, 17 au 19 juin 0
Wuenheim Moyen Nul 0 Duttlenheim Très élevée Nul 16 juin 16 juin 16 juin 0
BSV Légumes n°08 – P.18
Biocontrôle : des produits peuvent
être appliqués avant des périodes
humides protège de façon
préventive des contaminations.
Pratiquer une rotation supérieure à 3 ans.
Alternaria à Muttersholtz (D. JUNG) Botrytis à Muttersholtz (D. JUNG)
Rhizoctone sur Artémis à Oberschaffolsheim (D. JUNG) Dégâts de limaces (trous) et gale commune sur Artémis à Oberschaffolsheim (D. JUNG)
BSV Légumes n°08 – P.19
LORRAINE
1 Stade de la culture/description du réseau
Les observations de
cette semaine ont
été faites sur sept
exploitations sur les
secteurs de Toul, Ménil-la-Tour et
Metz. Les conditions météorologiques
sont à nouveau plus clémentes. Les
plantations ont dû être décalées sur
de nombreux secteurs car les parcelles
n’étaient pas praticables. Les séries
plantées dernièrement profitent de
meilleures conditions que celles
plantées courant mai. Les sols peuvent
localement être tassés par les orages,
voire croutés. Un binage permet de
réoxygéner le sol et d’améliorer la
pousse.
2 Pucerons
a. Observations
Quelques rares pucerons ont été observés sur un seul site cette semaine, en parcelle traitée ou non. La forte
présence d’auxiliaires et les conditions plus sèches ont très fortement diminué la pression.
b. Seuil indicatif de risque
Le seuil indicatif de risque est de 10 % des plantes avec au moins un puceron de mi mai à fin juillet.
c. Analyse de risque
Le niveau de risque dépend des secteurs et des modes de commercialisation (en général les seuils de
tolérance sont plus élevés en vente directe). Le risque est faible.
d. Méthodes alternatives
Une forte fertilisation azotée augmente la sensibilité aux pucerons. Les auxiliaires naturellement présents sur
les exploitations commencent à se développer, en particulier les syrphes.
3 Botrytis
a. Observations
La présence de botrytis est encore généralisée sur tous les sites cette semaine. On en retrouve plutôt sur les
feuilles au contact du sol mais la maladie peut remonter en particulier sur les batavias. Les salades les plus
développées sont plus sensibles car l’humidité reste au cœur de la plante. Il ne faut pas confondre avec des
LAITUE D’ABRI
Jeune plantation de salade sur sol battu par les orages. Un
binage pour casser la croûte améliorera la pousse de la
culture (H. BEYER)
BSV Légumes n°08 – P.20
Rhizoctone sur feuille de chêne. La maladie suit les côtes et les nervures dans un
premier temps (H. BEYER)
symptômes de rhizoctone (pourriture de cœur). Le rhizoctone a besoin de plus de température pour se
développer.
b. Analyse de risque
La météo actuelle est moins favorable à la maladie mais elle est encore fortement présente sur les cultures en
place depuis un mois. Le risque est élevé sur les salades qui couvrent le sol, faible sur les jeunes plantations.
c. Méthodes alternatives
Les infections par le botrytis sont favorisées par une forte fertilisation azotée ainsi que des blessures (y
compris des pucerons) qui sont des points d’entrée de la maladie. L’espacement des têtes (10/m² au lieu de
12 ou 14) permet d’améliorer la ventilation de la culture et de diminuer la pression. La plantation sur
plastique isole les feuilles du sol ce qui limite aussi l’infection.
Botrytis sur batavia. La sporulation grise est bien visible (H. BEYER)
BSV Légumes n°08 – P.21
Biocontrôle : des préparations à
base de Bacillus thuringiensis sont
efficaces sur des jeunes stades
larvaires L1 et L2. Au-delà l’efficacité
chute rapidement.
De gauche à droite : larve L1, L2 et L3 de doryphore. Source : www.insectes-net.fr
POMME DE TERRE
1 Stade de la culture/description du réseau
Les observations de cette semaine ont été faites sur cinq exploitations sur les sites de Metz, Toul et Ménil-la-Tour.
Les plantations ont eu lieu autour du 15/04. Selon la précocité des plantations les variétés de type de Charlotte
sont en floraison, voire en fin de floraison. Dans certains cas, les buttes ont souffert des orages et ont été
emmenées par les pluies. Sur les variétés les plus précoces et les sols filtrants, un début de sénescence est
observé.
2 Doryphores
a. Observations
Sur tous les sites observés cette semaine (parcelle traitées), des pontes ou des foyers de jeunes stades L1 sont
observés.
b. Seuil indicatif de risque
En conventionnel : 2 foyers sur 1 000 m² (un foyer = 1 à 2 plantes avec env. 20 larves de la taille d’un grain de blé).
En bio : 30 % des plantes avec les larves. Surveiller les bordures pour détecter de façon précoce.
c. Analyse de risque
Le risque lié à la présence des larves défoliatrices augmente avec leur taille. Il est élevé sur les pommes de terre
de garde. Sur les plantations précoces arrachées sous quinzaine, il est faible : les larves n’auront plus d’impact
significatif et disparaîtront avec l’arrachage de la culture.
d. Méthodes alternatives
Rotations culturales longues. Eliminer les adultes et les repousses qui
assurent la multiplication. Attention aux dernières générations qui
forment l’inoculum de l’année suivante.
POMME DE TERRE
Larves L2 de doryphore sur pomme de terre (H. BEYER)
BSV Légumes n°08 – P.22
Taches de mildiou sur feuillage. Le duvet blanchâtre en face inférieure indique une sporulation (H. BEYER)
3 Mildiou
a. Observations
Aucun symptôme déclaré n’a été observé cette semaine. Attention à ne pas confondre les taches de mildiou avec
d’autres symptômes physiologiques ou maladies.
b. Seuil indicatif de risque
Pas de seuil de nuisibilité, la protection est préventive. Les dégâts sont proportionnels au nombre de plantes
atteintes et à la précocité de l’attaque, qui peut être fulgurante. Les tubercules formés peuvent également être
atteints et pourrir.
Le modèle Mileos® d’Arvalis Institut du Végétal permet la modélisation du risque de la maladie selon la sensibilité
variétale du feuillage en fonction des contaminations et des sporulations (voir tableau suivant). Il faut que la
parcelle ait atteint les 30 % de plants levés pour prendre en compte le risque mildiou.
c. Analyse de risque
Les contaminations et l’évolution de la maladie dépendent des températures et de l’humidité. Ainsi, les conditions
climatiques idéales pour le développement du mildiou sont d’abord une succession de périodes humides et assez
chaudes (un optimal de 18-22°C) pour la formation des spores. La germination des spores est ensuite possible dès
que la durée d’humectation du feuillage est égale à 4 heures et plus, assortie de températures comprises entre 3-
30°C (optimal 8-14°C). Par la suite, les pluies, les hygrométries supérieures à 90% associées à des températures
comprises entre 10-25°C favorisent l'évolution de la maladie. En revanche, des températures négatives (-2°C) ou
bien à l’inverse celles supérieures à 30°C limitent ou bloquent le développement du champignon.
Niveau de risque : faible à élevé (voir tableau). Les averses (ou les irrigations de fin de journée) favorisent les
contaminations et les sporulations. Les températures élevées les prochains jours seront propices à l’incubation de
la maladie qui pourra sporuler et contaminer aux prochaines pluies. Le risque est plus élevé en primeur, ainsi que
dans les zones abrités (présence de brumes matinales observées encore cette semaine) ou humides (rivières,
étangs). Les cycles de développement sont rapides.
Il ne faut pas confondre le mildiou avec d’autres maladies notamment le botrytis (D. JUNG)
BSV Légumes n°08 – P.23
Biocontrôle : des produits peuvent
être appliqués avant des périodes
humides protège de façon
préventive des contaminations.
Evaluation du risque mildiou au 20/06/2018 d’après MILEOS®
Le tableau suivant vous donne la situation du modèle pour 5 stations météo. Les valeurs sont valables dans un
rayon de 7 à 10 km autour des stations. Le seuil de nuisibilité (colonne 3 encadrée) dépend à la fois du stock de
spores dans l’environnement (colonne 1) et de leur capacité à germer (colonne 2). Il est indiqué pour le jour J ainsi
que pour la semaine écoulée (partie droite du tableau).
Interprétation :
Au 20 juin, la pression a fortement diminué sur tous les secteurs : l’arrêt des pluies régulières a bien freiné la
production de spores et fortement diminué la capacité des spores déjà présentes à germer. Suite à la forte
pression de la semaine dernière, les quelques millimètres enregistrés sur toutes les stations ont néanmoins pu
générer des contaminations, sauf sur Malzéville et Crantenoy. Les réserves de spores viables restent assez élevées
et seraient susceptibles de générer des contaminations au retour de conditions plus humides.
d. Méthodes alternatives
Élimination des tas de déchets de triage et des repousses de pommes de terre.
Utilisation de plants sains.
Planter des variétés moins sensibles.
Éviter les longues périodes d'humidité (irrigation en cours de
journée, drainage, aération).
Pratiquer une rotation supérieure à 3 ans.
SOLANACEES SOUS ABRI
4 Stade de la culture/description du réseau
Les observations de cette semaine ont été faites sur six exploitations sur les secteurs de Metz, Tous et Ménil-
la-Tour. Selon les dates de plantation les récoltes en tomate ont commencé. Les récoltes en aubergine ont
commencé depuis au moins une semaine sur tous les sites observés, et depuis environ un mois sur
concombre. La chaleur et la lumière actuelle sont propices aux cultures. Les tomates en particulier vont
rentrer dans une période très propice à la formation de cul noir sur les bouquets en cours d’apparition, mais
les symptômes ne seront visibles que dans un mois et demi.
Stations météo
Situation au 20/06 Situation de J-7 à J-1 (du 13/06 05 au 19/06)
Réserve de spores au 12/06
Capacité des spores à germer
Seuil de nuisibilité atteint
Seuil atteint en
variété sensible
Seuil atteint en variété
intermédiaire
Seuil atteint en variété résistante
Pluies cumulées
Doncourt-lès-Conflans
Non calculé
Non calculé
Non calculé
13-14-15-16-17-18-
19/06 1.5
Lucey Très
élevée Faible Oui pour les variétés
résistantes
13-15-16-19/06 2
Malzéville Moyen Faible Non 2
Crantenoy Moyen Faible Non 0.5
Ancy sur Moselle
Très élevée Faible
Non 13-14-15/06
1.5
SOLANACEES SOUS ABRI
BSV Légumes n°08 – P.24
5 Pucerons
a. Observations
Sur tous les secteurs ave des cultures de poivrons et d’aubergine, les pucerons sont très présents. Il s’agit de
pucerons Myzus persicae. On observe aussi des pucerons sur concombre et cornichon, le plus souvent du puceron
du melon Aphis gossypii. Les populations sont souvent bien réparties dans la culture et parfois très importantes :
apparition de fumagine sur les bâches, recroquevillement des feuilles voire nanisme des plants. Les auxiliaires
sont également bien présents dans les abris tempérés (ils fuient les chaleurs excessives) et bien ventilés.
b. Analyse de risque
Le risque dépend beaucoup des secteurs, des types d’abri et des dates de plantation. Les multi chapelles sont en
général plus favorables à leur développement. A noter que des écrans insect-proof peuvent nuire à l’arrivée des
auxiliaires naturellement présents sur les exploitations. Les coccinelles sont de moins en moins présentes dans les
tunnels (présence de nymphes) mais les syrphes et les chrysopes se développent.
Niveau de risque : moyen à élevé.
Colonie en développement de pucerons verts sur aubergine (H. BEYER) Colonie de pucerons verts sur poivron. Les asticots
oranges sont des larves d’Aphidoletes, un auxiliaire prédateur de pucerons (H. BEYER)
Nymphe de coccinelle sur poivron
parfaitement immobile, à ne pas
confondre avec une larve de
doryphore qui gigotera si vous la
perturbez (H. BEYER)
Œuf de chrysope dans une colonie de
puceron. Perché au bout d’un fil il est
caractéristique de cet auxiliaire (H.
BEYER)
BSV Légumes n°08 – P.25
Biocontrôle : des auxiliaires
« nettoyeurs » en cas de foyer
déclaré sont utilisables (chrysopes
ou coccinelles).
Biocontrôle : divers types
d’auxiliaires sont utilisables contre
l’acarien selon le stade de
l’infestation. Leur utilisation
nécessite une certaine maîtrise du
climat de l’abri.
c. Méthodes alternatives Evitez la sur fertilisation qui favorise les pucerons. Restez
vigilants sur les aubergines et poivrons qui sont les cultures les
plus sensibles. Certaines préparations ont la capacité de
dessécher la peau molle des pucerons sans nuire aux auxiliaires.
L’installation de bandes fleuries ou de plantes riches en nectar favorise la présence des auxiliaires au voisinage
des abris.
6 Acariens
a. Observations Des colonies sont observées sur tous les sites
cette semaine en particulier sur concombre et
aubergine. Sur les secteurs implantés très
précocement les attaques sont déjà importantes
et des fils de soie sont observés à l’aisselle des
feuilles.
b. Analyse de risque
Le risque est lié à la taille des populations. Il est donc moyen pour le moment sous abri froid et en forte hausse. Il
va augmenter rapidement à la faveur des fortes chaleurs des mois d’été.
c. Méthodes alternatives
Les acariens apprécient la chaleur et la sécheresse. Le bassinage
des plantes (brève aspersion de quelques secondes) répété
plusieurs fois par jour permet par temps chaud et sec de
rafraichir l’ambiance et d’augmenter l’humidité. Le choix des
abris est important pour limiter la chaleur en été.
CRUCIFERES
1 Stade de la culture/description du réseau
Les observations de cette semaine ont été faites sur cinq exploitations sur les secteurs de Metz, Toul et Ménil-
la-Tour. Les choux observés vont du stade 6 feuilles (plantés depuis une semaine) au début de pommaison.
CRUCIFERES
Symptômes d’un petit foyer d’acarien sur concombre. Au-dessous quelques individus sont visibles (H.BEYER)
BSV Légumes n°08 – P.26
Hormis les sols tassés par les orages les conditions sont bonnes : sol frais, chaleur et lumière. En condition
battante, un binage est souvent nécessaire pour réoxygéner le sol.
2 Altises
a. Observations
Des altises sont observées sur tous les secteurs. Leur présence est en forte hausse du fait du retour d’un
temps chaud et sec.
b. Analyse de risque
Le risque est surtout lié au nombre d’altises et à la taille de la culture : il est faible pour des choux développés,
moyen pour des jeunes choux (moins de 10 feuilles) et élevé pour des jeunes semis de navet et radis ou de
jeunes plantations de choux. Le risque va augmenter au cours du mois de juin avec l’apparition de la
génération de l’année et les conditions chaudes et sèches de l’été
c. Méthodes alternatives
Le recours à des filets anti insectes adéquats offre une très bonne protection : http://www.planete-
legumes.fr/wp-content/uploads/2016/12/Guide-technique-filets-anti-insectes.pdf
3 Chenilles phytophages
a. Observations
Des papillons sont observés au-dessus des cultures en plus ou moins grand nombre sur toutes les parcelles
cette semaine. Les premières pontes de piérides sont observées sur Metz. Sur un site, la présence de
noctuelle a aussi été relevée. Pour repérer les noctuelles, recherchez la présence de trous arrondis dans les
limbes des feuilles (presque semblables à ceux des limaces).
Ci-dessus : dégâts de noctuelle sur
chou-fleur (H. BEYER)
Ci-dessus : deux noctuelles sur chou-
fleur, la présence de déjection est
aussi un bon indice de leur présence
(H. BEYER)
BSV Légumes n°08 – P.27
Biocontrôle : Les préparations à base
de Bacillus thuringiensis sont
efficaces sur de jeunes stades :
observez vos cultures pour détecter
le stade des chenilles ou la présence
de pontes.
b. Analyse de risque
Le risque lié à la présence de larve est encore faible.
c. Méthodes alternatives
Le recours à des filets anti insectes adéquats offre une
très bonne protection : http://www.planete-
legumes.fr/wp-content/uploads/2016/12/Guide-
technique-filets-anti-insectes.pdf
A gauche : jeune larve de piéride du chou, tête noire bien visible, arrondie des deux côtés. A droite : jeune larve de teigne des crucifères, pas de tête noire, plus en pointe à une extrémité, réagit vigoureusement quand on la touche. Les deux jeunes chenilles font ici environ 1 cm (H.BEYER)
Œufs de piérides sur chou. Les œufs font environ 1 mm et ressemblent à
de petits obus (H. BEYER)
BSV Légumes n°08 – P.28
Radis en formation déformés par le rhizoctone. Des formations sombres et liégeuses
sont visibles le long de la rave (H. BEYER)
4 Autres bioagresseurs
a. Observations
De très nombreux cas de jambe noire sur radis sont observés. Cette maladie est vraisemblablement causée
par le champignon Rhizoctone en plein champ (analyse en cours). Les dégâts sont majeurs et concernent de
nombreux producteurs du Grand Est. Les conditions chaudes et très humides du mois dernier ont fortement
contribué à développer la maladie
b. Analyse de risque
Le risque lié aux conditions chaudes et humides est encore élevé, même s’il devrait vraisemblablement
diminuer avec l’arrêt du long épisode orageux que nous venons de traverser.
c. Méthodes alternatives
Aucune méthode alternative particulière ne peut être mise en place : la maladie est très dépendante des
conditions météorologiques au semis. Même des parcelles drainantes et n’ayant pas eu de crucifères depuis
plusieurs années ont été fortement touchées.
BSV Légumes n°08 – P.29
Édité sous la responsabilité de la Chambre Régionale d’Agriculture GRAND EST, sur la base des
observations réalisées par les partenaires du réseau Légumes :
Arvalis Institut du Végétal, Chambre d’Agriculture d’Alsace, Comptoir Agricole de Hochfelden, Gustave
Muller, Lycée agricole du Pflixbourg, PLANETE Légumes.
Rédaction : PLANETE Légumes.
Relecture assurée par la DRAAF (SRAL).
Crédits photos : VisualHunt, PLANETE Légumes.
Coordination et renseignements : Karim BENREDJEM, Chambre Régionale d’Agriculture Grand Est.
Tél. : 03 26 65 18 52. Courriel : [email protected] Claire COLLOT, Chambre Régionale d’Agriculture Grand Est.
Tél. : 03 83 96 85 02. Courriel : [email protected]
Pour recevoir le Bulletin de Santé du Végétal par courrier électronique, vous pouvez en faire la demande sur le site internet de la Chambre d'Agriculture du Grand Est http://www.grandest.chambre-agriculture.fr/productions-agricoles/ecophyto/bulletins-de-sante-du-
vegetal/abonnez-vous-gratuitement-a-nos-bsv/
Action pilotée par le ministère chargé de l'Agriculture, avec l’appui financier de l’Agence Française de Biodiversité, par les crédits issus de la redevance pour pollutions diffuses attribués au financement du Plan ÉCOPHYTO II.
Retrouvez gratuitement le BSV toutes les semaines sur les sites Internet de la Chambre Régionale
d’Agriculture Grand Est et de la DRAAF :
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http://draaf.grand-est.agriculture.gouv.fr/Surveillance-des-organismes
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