Etude de la bio-écologie des Névroptères (Hémérobes et Chrysopes)
dans une démarche de lutte biologique par conservation
Johanna Villenave
Encadrante : Dr Elizabeth Rat-Morris Laboratoire de PBI - INH
Directeur de thèse : Pr Thierry Lodé UMR Paysages et biodiversité
La lutte biologique par conservation
Principe : Favoriser l’attraction ou le maintien des auxiliairesGestion de l’environnement
Quelles sont les conditions favorables aux auxiliaires ?- diagnostic de la diversité biologique et analyse de sa dynamique (écologie du paysage)
- connaissances de la biologie des espèces
Introduction : Problématiques
J. Villenave
• Les Névroptères
- Ailes avec un réseau de nervures important- Ailes repliées en toit au dessus de l’animal
Super Ordre : Neuropteroidea s. l.
Plannipennia ouNeuroptera s. str.
Raphidioptera Megaloptera
Coniopterygidae Chrysopidae Hemerobiidae
• Les Hémérobes
discrets, peu connus, végétation basse, plantes herbacées et maraîchères, dans jardins et cultures
Larves et adultes entomophagesutilisés en Australie et Nouvelle-Zélande
Favoriser le cycle de vie au sein des agroécosystèmes
Chrysoperla spp.naturellement présents dans les agroécosystèmes
parcelles cultivées zones environnantesnon cultivées
Introduction : Modèle animal
SyngentaC. Verdun - INH
La LBC est-elle possible avec Chrysoperla ?- habitats hors des cultures ?- flux de dispersion entre les ≠ compartiments ?- facteurs de cette dispersion ?- facteurs limitants (alimentation) ?
Bases pour caractériser les habitats favorables
Introduction : Objectifs
1. Présentation des sites agricoles étudiés
Critères
• choux porte-graine• au moins un en :- agriculture conventionnelle, - agriculture biologique, - PBI• avec ou sans lâchers
de Chrysoperla• avec ou sans végétation
environnante
Matériels et méthodes
3. Inventaire floristique
• Plantes présentes sur l’exploitation :cultures et végétation environnante
• Tous les 15 jours de mars à octobre (16 visites)
• Identification jusqu’à l’espèce, sauf pour les Gramineae
Matériels et méthodes
4. Inventaire des Névroptères (mars à octobre)
- Aspirateur à essence dans la strate herbacée
Matériels et méthodes
J. Villenave
4. Inventaire des Névroptères (mars à octobre) :
- Aspirateur à essence dans la strate herbacée- Filet à main dans la strate arborescente
Matériels et méthodes
4. Inventaire des Névroptères (mars à octobre)
- Aspirateur à essence dans la strate herbacée- Filet à main dans la strate arborescente- Tente Malaise (piège d’interception) : 1/site
Matériels et méthodes
J. Villenave
4. Inventaire des Névroptères (mars à octobre)
- Aspirateur à essence dans la strate herbacée- Filet à main dans la strate arborescente- Tente Malaise (piège d’interception)- Boîtes d’hivernage : 4/site
installées en septembrerelevées en janvier
Matériels et méthodes
J. Villenave
6. Analyse du contenu du tube digestif
Structures du tube digestif des Chrysopes(Canard et al., 1990)
1 mm
- Chrysoperla affinis- Chrysoperla lucasina
Matériels et méthodes
J. Villenave
Villenave J.Villenave J.
Villenave J.
Jabot plein x 4 Pollen de chou x 40 x 40
INRA Le Magneraud
Grains de pollen
INRA Le Magneraud
Apiaceae
INRA Le Magneraud
Pinaceae
Identification : collection de l’INRA- Le Magneraud
Tournesol
x 400
Matériels et méthodes
Espèces Total %Chrysopidae
Chrysopa formosa (Brauer) 3 0.3Chrysopa pallens (Rambur) 1 0.1Chrysopa perla (L.) 4 0.4Chrysopa phyllochroma (Wesmael) 4 0.4Chrysopa viridana (Schneider) 1 0.1Chrysoperla affinis (Stephens) 408 39.5Chrysoperla carnea (Stephens) 51 5.2Chrysoperla lucasina (Lacroix) 426 41.1Dichochrysa flavifrons (Brauer) 35 3.5Dichochrysa inornata (Navas) 33 3.3Dichochrysa prasina (Burmeister) 12 1.2
HemerobiidaeHemerobius humulinus L. 2 0.4Micromus angulatus (Stephens) 12 1.6Micromus variegatus (Fabricius) 21 2.0Psectra diptera (Burmeister) 7 0.7Sympherobius pygmaeus (Rambur) 3 0.3Wesmaelius nervosus (Fabricius) 1 0.1
TOTAL Nombre d'espèces 17Quantité 1008
1. Structure du peuplement (2003 et 2004)
C. lucasina42%
C. affinis40%
C. carnea 5%
2. Répartition des Névroptères / végétation
Arbres etarbustes
Strateherbacée
Cultures
ChrysopidaeChrysoperla lucasina 113 278 35Chrysoperla affinis 153 226 29Chrysoperla carnea 48 3 0Dichochrysa flavifrons 9 25 1Dichochrysa inornata 12 21 0Dichochrysa prasina 3 8 1Chrysopa perla 3 1 0Chrysopa phyllochroma 0 4 0Chrysopa formosa 0 3 0Chrysopa pallens 1 0 0Chrysopa viridana 0 1 0
HemerobiidaeMicromus variegatus 1 20 0Micromus angulatus 0 12 0Psectra diptera 0 7 0Sympherobius pygmaeus 3 0 0Hemerobius humulinus 2 0 0
mars avril mai juin juillet août sept. oct.
0
20
40
60
80
100
120
12 14 16 18 20 22 24 26 28 30 32 34 36 38 40 42 44
Chrysoperla affinis
0
20
40
60
80
100
120
12 14 16 18 20 22 24 26 28 30 32 34 36 38 40 42 44
Nb
d’in
d. c
o lle
c tés
Nb
d’in
d. c
o lle
c tés Chrysoperla lucasina
herbaceous stratumtreecrops
mars avril mai juin juillet août sept. oct.
Résultats3. Dynamique et phénologie
Printemps26 indiv.
pollen61%miellat
8%
jabot vide31%
Total = 235 individus analysés
Eté
pollen62%
miellat3%
jabot vide35%
Types d’aliments et périodes de consommation
Résultats2. Analyse de l’alimentation
167 indiv.
Le pollen- périodes- strates végétales
Family Species 12 14 16 18 20 22 24 26 28 30 32 34Apiaceae Daucus carota
Apium, AethusaArantaceae Aranthus spAristolochiaceae Aristolochia clematidisAstéraceae Cirsium arvense
Senecio spHelianthus annuus
Betulaceae Corylus avelanaothers
Brassicaceae Capsella bursa-pastorisBrassica oleraceaBrassica rape
Caprifoliaceae Sambucus spCaryophyllaceae Cerastium sp
Stellaria spChenopodiaceae Chenopodium spPinaceae Pinus spEricaceae Vaccinum spFabaceae Cornilla sp
Medicago sativaothers
GramineaeLamiaceae Lamium purpureaLiliaceae Allium porumRenonculaceae Ranunculus bulbosus
othersRosaceae Amelanchier sp
Malus domesticaPrunus aviumPyrus pyrasterSpiraea spothers
Solanaceae Lycopersicum esculentumTaxacéeae Taxus baccataTiliaceae Tilia spUrticaceae Urtica dioica
July AugustMarch April May June
plantes herbacées
plantes cultivées
strate arborescente
Le Miellat
Résultats2. Analyse de l’alimentation
J. Villenave
Automne 42 indiv.jabot vide
0%pollen
2%
miellat98%
Le pollen
• Hiver 2003-2004 (23 obs.)Pollen : 65 % des jabots
• Hiver 2004-2005 (30 obs.)Pollen : 20 % des jabots
Mercuriale
Asteraceae
Lierre
Résultats2. Analyse de l’alimentation
J. Villenave
J. Villenave
J. Villenave
Déplacements des Chrysoperla spp dans les agroécosystèmes
Cultures Strate herbacée Haie
Sites d’hivernage
miellatPollen
Pollen
mars
octobre
juin
août
Discussion / Vol de migration
7,6 % des adultes ont consommé des grains de pollennon répertoriés sur les sites étudiés
Peu de pollens de plantes communes dans la régionet non présentes sur les sites étudiés(ex. chêne, vigne, maïs, tournesol…)
Pollens de plantes peu communes, ex. Aristoloches
Les adultes semblent se nourrirprès de leurs sites de repos
Discussion / Dispersion
Conclusion générale
• Végétation environnante : essentielle au maintien desdes Névroptères (Chrysopes et Hémérobes)
Maintien des espèces possible grâce à la conservation par l’installation d’une végétation appropriéedans les sites agricoles
• Habitats : - refuges- sites d’alimentation
• Lutte Biologique par Conservation possible avecC. affinis et C. lucasina
• En association avec des lâchers inondatifs ponctuelsde Chrysopes et d’Hémérobes
Conclusion générale
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