VETAGRO SUP CAMPUS VETERINAIRE DE LYON

Année 2014 - Thèse n°

EFFETS D’UN TRAITEMENT VINCAMINE-PAPAVERINE, SUR LES PERFORMANCES ZOOTECHNIQUES DES VEAUX

CHAROLAIS LORS DE VELAGES EUTOCIQUES

THESE

Présentée à l’UNIVERSITE CLAUDE-BERNARD - LYON I (Médecine - Pharmacie)

et soutenue publiquement le 26 septembre 2014 pour obtenir le grade de Docteur Vétérinaire

par

WEBER Bertrand

Né le 15 février 1988 à Dijon (21)

 

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REMERCIEMENTS 

A Monsieur le Professeur Pierre COCHAT 

De la faculté de Médecine de Lyon, 

Qui nous a fait l’honneur d’accepter la présidence de notre jury de thèse, 

Qu’il reçoive ici l’expression de ma gratitude et de mes hommages respectueux. 

 

A Monsieur le Docteur Loïc COMMUN 

Du Campus Vétérinaire de VetAgro Sup, 

Unité de Médecine des Populations 

Pour m'avoir encouragé et soutenu tout au long de ce projet, 

Pour la confiance qu’il m’a accordée dans la réalisation de ce travail, 

Profonds remerciements 

 

A Monsieur le Docteur Laurent ALVES de OLIVEIRA 

Du Campus Vétérinaire de VetAgro Sup, 

Pour avoir accepté de juger ce travail et de faire partie de ce jury de thèse. 

Sincères remerciements. 

 

A la clinique Vétérinaire des Trois Sources 

Pour tout le travail réalisé cet hiver pour superviser notre étude terrain. 

Merci à vous. 

 

Au GAEC du Charmoy, à  l’EARL Poillot, à Julien Dufour, à Pierrick Josserand, à Jean Marc 

Girard et à Laurent Doret 

Pour avoir accepté de participer à notre étude et pour  le  travail de grande qualité 

que vous avez fourni cet hiver pour nous permettre d’avoir autant de résultats. 

Sincères remerciements. 

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A ma famille, 

A mes amis, 

A Audrey.   

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TABLEDESMATIERES 

REMERCIEMENTS .................................................................................................................................... 5 

TABLE DES MATIERES .............................................................................................................................. 7 

TABLE DES ILLUSTRATIONS .................................................................................................................... 11 

LISTE DES TABLEAUX ............................................................................................................................. 13 

LISTE DES ANNEXES ............................................................................................................................... 15 

INTRODUCTION ..................................................................................................................................... 19 

Partie 1 : ETUDE BIBLIOGRAPHIQUE ..................................................................................................... 21 

I.  Historique et problématique de la race charolaise ....................................................................... 23 

A.  Origine (Baudot, 2013) .............................................................................................................. 23 

B.  Difficultés de vêlages en race Charolaise .................................................................................. 24 

II.  Physiologie et gestion du veau nouveau‐né ................................................................................. 25 

A.  Adaptation physiologique à la vie en milieu aérien .................................................................. 25 

1.  Rappels d’anatomie et de physiologie .................................................................................. 26 

2.  Modifications circulatoires et respiratoires .......................................................................... 28 

3.  Apparition et résolution de l’anoxie physiologique néonatale ............................................. 28 

B.  Prise en charge du nouveau‐né ................................................................................................. 31 

III.  Association moléculaire vincamine‐papavérine ........................................................................ 33 

A.  Origine et formule (Sage, 1992) ................................................................................................ 33 

1.  Vincamine .............................................................................................................................. 33 

2.  Papavérine ............................................................................................................................. 33 

B.  Pharmacologie ........................................................................................................................... 34 

1.  Vincamine .............................................................................................................................. 34 

2.  Papavérine ............................................................................................................................. 34 

C.  Propriétés et mode d’action ...................................................................................................... 35 

1.  Vincamine .............................................................................................................................. 35 

a)  Propriétés .......................................................................................................................... 35 

b)  Mode d’action ................................................................................................................... 36 

2.  Papavérine ............................................................................................................................. 37 

a)  Propriétés .......................................................................................................................... 37 

b)  Mode d’action ................................................................................................................... 38 

D.  Utilisation médicamenteuse ..................................................................................................... 39 

IV.  Immunité du veau et transfert colostral ................................................................................... 40 

8  

1.  Synthèse des immunoglobulines dans le colostrum ............................................................. 40 

2.  Résorption des Immunoglobulines par le veau nouveau‐né ................................................ 40 

Partie 2 : ETUDE EXPERIMENTALE ......................................................................................................... 43 

I.  Contexte ........................................................................................................................................ 44 

II.  Matériel et méthode ..................................................................................................................... 44 

A.  Sélection des élevages et des animaux ..................................................................................... 44 

B.  Plan expérimental ..................................................................................................................... 46 

1.  Traitements administrés ....................................................................................................... 46 

a)  Préparation des flacons ..................................................................................................... 46 

b)  Protocole d’injection ......................................................................................................... 49 

2.  Paramètres mesurés.............................................................................................................. 49 

a)  Poids des veaux à 0 et 30j ................................................................................................. 50 

b)  Transfert colostral ............................................................................................................. 51 

c)  Comportement du veau .................................................................................................... 56 

C.  Analyses statistiques ................................................................................................................. 58 

a)  Test de Student ................................................................................................................. 59 

b)  Test du Khi2 ........................................................................................................................ 59 

III.  Résultats et discussion .............................................................................................................. 61 

A.  Sélection des veaux et recueil des données .............................................................................. 61 

B.  Gain de poids ............................................................................................................................. 62 

C.  Transfert colostral ..................................................................................................................... 65 

1.  Comparaison de l’immunité des veaux suivant le traitement reçu ...................................... 65 

2.  Comparaison de l’immunité des veaux suivant le traitement reçu, mais aussi en fonction de 

la qualité du colostrum maternel .................................................................................................. 66 

a)  Valeurs seuils en IgG dans le colostrum des mères et dans le sang des veaux ................. 67 

b)  Répartition des effectifs .................................................................................................... 67 

c)  Comparaison des moyennes d’[IgG] ................................................................................. 69 

D.  Comportement et appétit du veau ........................................................................................... 73 

CONCLUSION ......................................................................................................................................... 77 

BIBLIOGRAPHIE ...................................................................................................................................... 79 

ANNEXES ................................................................................................................................................ 83 

 

   

9  

10  

   

11  

TABLEDESILLUSTRATIONS

 

Figure 1 ‐ Répartition de la race Charolaise en France .................................................................................. 24 

Figure 2 ‐ Schéma de la circulation sanguine chez le fœtus bovin (en rouge, le pourcentage d'oxygénation du 

sang) (Luet, 1993) ................................................................................................................................ 27 

Figure 3 ‐ Mécanismes d'apparition et de résolution de l'hypoxie néonatale physiologique par le veau lors 

d'un vêlage eutocique (Uystepruyst, 2008) .......................................................................................... 30 

Figure 4 ‐ formule semi‐developpée de la Vincamine ................................................................................... 33 

Figure 5 ‐ formule semi‐développée de la papavérine .................................................................................. 34 

Figure 6 ‐ Mécanismes de la cascade ischémique (Taylor, et al., 1995) .......................................................... 37 

Figure 7 ‐ Mode d'action de la papavérine au niveau de la paroi vasculaire .................................................. 39 

Figure 8 ‐ Plan expérimental mis en oeuvre pour chacun des veaux nouveau‐nés inclus dans l'étude ........... 46 

Figure 9 ‐ Estimation du poids du veau par la mesure de son tour de poitrine ............................................... 51 

Figure 10 ‐ Tube sec avec séparateur (photo BD.com) ................................................................................... 53 

Figure 11 ‐ Principe de formation des halos de précipitation ........................................................................ 55 

Figure 12 ‐ Photographie numérique d'une boite d'IDR ................................................................................ 56 

Figure 13 ‐ Bilan des différentes données observées .................................................................................... 62 

Figure 14 ‐ Répartition des GMQ de chacun des deux lots ............................................................................ 63 

Figure 15 ‐ Diagramme en boite de la répartition des GMQ de chacun des 2 lots .......................................... 64 

Figure 16 ‐ Répartition des valeurs des [IgG] colostrum> 102g/L ........................................................................ 70 

Figure 17 ‐ Répartition des valeurs des [IgG] colostrum< 102g/L ........................................................................ 70 

Figure 18 ‐ Répartition des valeurs des [IgG] sérum des veaux ayant reçu un colostrum de bonne qualité .... 70 

Figure 19 ‐ Répartition des valeurs des [IgG] sérum des veaux ayant reçu un colostrum de qualité moindre . 71 

   

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

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LISTEDESTABLEAUX

 

Tableau 1 ‐ Processus de remplissage et d'anonymisation des flacons .......................................................... 48 

Tableau 2 ‐ Seuils de calcul maximum pour les concentrations en IgG des colostrums et des sérums ............ 56 

Tableau 3 ‐ Extrait du tableau éleveur pour noter le comportement et l'appétit du veau dans le 1er jour de 

vie ....................................................................................................................................................... 57 

Tableau 4 ‐ Moyenne des GMQ de chacun des 2 lots .................................................................................... 63 

Tableau 5 ‐ Comparaison des concentrations en IgG dans le colostrum et dans le sérum de chacun des 2 lots

 ........................................................................................................................................................... 65 

Tableau 6 ‐ Comparaison des moyennes des concentrations en IgG sériques et colostrales de chacun des 2 

lots ..................................................................................................................................................... 66 

Tableau 7 ‐ Répartition des veaux du lot Candilat® selon leur niveau d’immunité passive et la qualité du 

colostrum reçu .................................................................................................................................... 67 

Tableau 8 ‐ Répartitiondes veaux du lot placebo selon leur immunité passive et la qualité du colostrum reçu

 ........................................................................................................................................................... 68 

Tableau 9 ‐ Comparaison entre la répartition observée et théorique ............................................................ 68 

Tableau 10 ‐ Comparaison des concentrations moyennes en IgG des veaux de chacun des 2 lots en fonction 

de la qualité du colostrum reçu ........................................................................................................... 69 

Tableau 11 ‐ Comparaison des moyennes des [IgG] à l'aide du test de Student ............................................. 71 

Tableau 12 ‐ Comparaison des scores de succion et des notes d'abattement à 0h et 24h pour chacun des 2 

lots (le score de succion va de 0 : absence de reflexe de succion,  à 3 : réflexe de succion important et 

persistant ;  le score d’abattement vaut soit : 1 = abattu ou 0 = en forme). ........................................... 73 

Tableau 13 ‐ Comparaison des notes d'abattements et des scores de succion à l'aide du test de Student (le 

score de succion va de 0 : absence de reflexe de succion,  à 3 : réflexe de succion important et 

persistant ;  le score d’abattement vaut soit : 1= abattu ou 0 = en forme). ........................................... 74 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

   

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15  

LISTEDESANNEXES

 

Annexe 1 ‐ Livret de consignes fourni aux éleveurs ...................................................................................... 84 

Annexe 2 ‐ Tableau de consigne des résultats éleveurs ................................................................................ 87 

Annexe 3 ‐ Diaporama de présentation des résultats aux éleveurs ............................................................... 88 

Annexe 4 ‐ Article à paraitre dans "Le Bulletin des GTV" (novembre‐décembre 2014)................................... 90 

16  

17  

LISTEDESABREVIATIONS

 

AMPc : adénosine monophosphate cyclique 

ATP : adénosine triphosphate 

AUC : aire sous la courbe de distribution 

Cmax : concentration plasmatique maximale atteinte 

G : gauge 

GENN : gastro‐entérite néonatale 

GMQ : gain moyen quotidien 

IDR : immunodiffusion radiale 

IgA: immunoglobuline de classe A 

IgE: immunoglobuline de classe E 

IgG : immunoglobuline de classe G 

IgM: immunoglobuline de classe M 

IM : intramusculaire 

LVD : laboratoire vétérinaire départemental 

OD : oreillette droite 

OG : oreillette gauche 

PaCO2 : pression artérielle en dioxyde de carbone 

PaO2 : pression artérielle en dioxygène 

SatO2 : saturation en dioxygène 

T1/2 : temps de demi‐vie 

Tmax : moment où la concentration maximale est atteinte 

VD : ventricule droit 

VG : ventricule gauche 

 

   

18  

   

19  

INTRODUCTION

 

Les heures qui  suivent  la naissance  sont  critiques pour  le  veau nouveau‐né. En effet, 

celui‐ci présente, quelle que soit la difficulté de vêlage, une anoxie néonatale inévitable liée 

au passage d’un milieu intra utérin à un milieu de vie aérien. 

Cette anoxie néonatale est d’autant plus  importante que  le vêlage est difficile. Dans  le 

cas d’une dystocie, des médicaments vétérinaires existent pour prévenir et  lutter contre  le 

manque  d’oxygène  au  niveau  cérébral.  Parmi  ces  traitements,  l’association  vincamine‐

papavérine est fréquemment utilisée pour provoquer une vasodilation cérébrale et protéger 

les tissus souffrant d’anoxie.  

Dans notre étude, nous nous sommes cette fois intéressés à l’impact d’un tel traitement, 

non  pas  lors  de  vêlages  difficiles, mais  lors  d’un  usage  systématique  aux  veaux  issus  de 

vêlages eutociques. 

Le  but  de  nos  travaux  était  d’étudier  l’influence  de  l’utilisation  de  l’association 

vincamine‐papavérine (Candilat®) sur  les paramètres zootechniques de veaux provenant de 

vêlages eutociques, mais issus de race à risque en terme de complication de mise‐bas. Pour 

cela, une étude terrain a été mise en place, regroupant 120 veaux charolais, dont  la moitié 

ont  reçu  le  traitement  Candilat®  et  d’autres  un  placebo  à  base  de  NaCl  0,9%.  Divers 

paramètres (transfert colostral, gain de poids, réflexe de succion, …) ont été mesurés durant 

le début de vie des veaux afin d’estimer les effets d’un tel traitement. 

 

 

 

 

 

 

 

20  

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

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Partie1:ETUDE

BIBLIOGRAPHIQUE 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

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23  

I. Historiqueetproblématiquedelaracecharolaise

 

A. Origine(Baudot,2013)

 

La  race  charolaise possède deux berceaux  :  le premier dans  le Charolais  (Saône et 

Loire) et le second dans le Nivernais (Nièvre). Le herd‐book (registre généalogique de la race) 

créé  à  Nevers  parlait  de  race  "charolaise"  tandis  que  celui  de  Charolles  indiquait 

"charollaise". La  fusion de ces deux  registres généalogiques  s’est opérée en 1920 pour ne 

conserver  qu'une  seule  race  bovine  charolaise  à  la  « robe  uniformément  blanche  ou 

quelques fois crème, sans tache ». 

L’utilisation  historique  de  la  race Charolaise  comme  race  de  viande‐travail  permet 

d’orienter la sélection vers un type d’animal musclé, de grand format, n’ayant pas tendance 

à déposer trop de gras. Cela lui est particulièrement précieux pour l’orientation qu’il prend, à 

partir de 1920, de devenir exclusivement un animal de boucherie. 

L’expansion en France est  importante dans  le première moitié du XXème  siècle avec 

une  attention  toute  particulière  portée  sur  la  sélection :  on  cherche  à  améliorer  la 

conformation et  l’épaisseur des masses musculaires, à obtenir une poitrine plus profonde, 

des membres  raccourcis mais  sans  exagération,  pour  conserver  l’aptitude  à  parcourir  de 

grands pâturages. Les concours nationaux permettent de promouvoir ces qualités :  la  race 

s’étend alors dans  les régions voisines de  la Vendée, dans  le nord de  la France et au milieu 

du bassin Aquitain. 

La  sélection  sur  les  qualités  de  viande  et  de  rusticité  ont  fait  de  la  Charolaise  la 

première  race  allaitante  française,  présente  aujourd’hui  dans  plus  de  80  départements 

(Figure 1) et utilisée en race pure comme en croisement  

24  

 

Figure 1 ‐ Répartition de la race Charolaise en France 

 

Cette sélection, visant à obtenir ces conformations si particulières, fait parallèlement 

apparaitre  au  vêlage  des  disproportions  foeto‐pelviennes  entraînant  de  nombreuses 

dystocies, c’est‐à‐dire des vêlages nécessitant une  intervention extérieure. En effet,  la race 

Charolaise est  la race sur  laquelle est pratiqué  le plus grand nombre de césariennes (32,8% 

des  césariennes  pratiquées  chez  les  bovins  en  France  alors  que  la  race  charolaise  ne 

représente  que  22%  de  l’effectif  bovin  total  français),  suivie  de  la  race  Blanc  Bleu  Belge 

(Hanzen, et al., 2010). 

B. DifficultésdevêlagesenraceCharolaise 

 

La  problématique  des  vêlages  est  un  enjeu  majeur  pour  les  éleveurs  de  bovins 

Charolais. En effet, cette  race est  très  fréquemment concernée par  les dystocies. Celles‐ci 

sont  classées en 4  catégories :  traction  légère,  traction  forte,  césarienne ou embryotomie 

(Badinand,  et  al.,  2000).La  cause  principale  de  ces  dystocies  est  la  disproportion  foeto‐

pelvienne ou géantisme fœtal (Hanzen, et al., 1998). Il est donc important pour les éleveurs 

de pratiquer une bonne sélection génétique des géniteurs. 

Pour la mère, les dystocies ont pour conséquences (Noakes, et al., 2001): 

‐ une augmentation du taux de mortalité, 

‐ une réduction de la fertilité, 

25  

‐ une augmentation de la stérilité, 

‐ une augmentation des prédispositions aux maladies puerpérales. 

 

Pour  le  veau,  le  fait  de  naître  suite  à  un  vêlage  difficile  favorise  également  les 

troubles. Le risque de mortalité au cours des premières 24 heures serait 4,6 fois plus élevé 

chez  les veaux nés  suite à une dystocie  (Dutil, 2001). Ces veaux ont aussi 2,4  fois plus de 

risque d’être malades dans les 45 premiers jours de vie. En effet, les veaux issus de dystocies 

ont  en  général  un  niveau  d’immunité  passive  moins  élevé  et  ils  demeurent  également 

couchés plus  longtemps après  le vêlage, ce qui a pour effet de  les exposer davantage aux 

germes pathogènes  (Dutil, 2001).L’impact des dystocies  serait observable même après 30 

jours d’âge par des retards de croissance et des veaux plus fragiles (Dutil, 2001). 

Les  pertes  économiques  directes  ou  indirectes  sont  donc  importantes.  Il  est  alors 

essentiel pour  les éleveurs d’éviter ces dystocies mais aussi de savoir  les gérer  lorsqu’elles 

adviennent. Pour la mère, la gestion des dystocies passera par une extraction forcée ou bien 

par des méthodes  chirurgicales  (embryotomie ou  césarienne). Pour  le  veau,  cette gestion 

vise surtout à lutter contre l’anoxie et l’anorexie induite. 

 

II. Physiologieetgestionduveaunouveau‐né

 

A. Adaptationphysiologiqueàlavieenmilieuaérien 

À  la  naissance,  de  nombreux  paramètres  physiologiques  du  fœtus,  alors  devenu 

nouveau‐né, sont modifiés. De façon générale, il y a des changements de grande amplitude 

au cours des 24 premières heures suivant le part. L'adaptation est un processus dynamique 

qui se déroule principalement au cours des 6 premières heures de vie. Dans  les 18 heures 

suivantes, les modifications des paramètres physiologiques du veau sont plus progressives et 

atteignent un plateau (Uystepruyst, 2008) 

26  

1. Rappelsd’anatomieetdephysiologie 

L’oxygénation du sang chez  le fœtus se fait par hématose au niveau du placenta. Le 

sang oxygéné parvient donc du placenta au  fœtus par  les veines ombilicales. Le sang se dirige 

ensuite vers le foie et le cœur. À partir du ventricule gauche du cœur, le sang est envoyé vers la 

tête  et  la  circulation  coronaire. Une  petite  partie  du  sang  du  ventricule  est  envoyée  dans  la 

circulation pulmonaire et une grande partie emprunte le canal artériel et rejoint l'aorte. Peu de 

sang passe dans la circulation pulmonaire car il y a une forte résistance dans celle‐ci. Le sang de 

l'aorte descendante gagne  les différents organes abdominaux et  le placenta  (Lignereux, 1985) 

(Luet, 1993) 

Pendant la gestation, le fœtus est physiologiquement hypoxémique : la saturation en 

O2  (Sat02)  est  de  l’ordre  de  80%  avec  une  pression  artérielle  en  dioxygène  (PaO2)  basse 

variant de 21 à 28mm Hg et une pression artérielle en dioxyde de carbone  (PaCO2) élevée 

variant de 44 à 48mm Hg  (Ravary‐Plumioën, 2009)  (Figure 2). Pour  information,  les valeurs 

usuelles chez le veau sain 12 heures après la naissance sont : SatO2=95%, Pa02=64 à 80mm Hg 

et PaCO2=52 à 62mm Hg.  

 

 

 

 

 

 

27  

 

Figure 2 ‐ Schéma de la circulation sanguine chez le fœtus bovin (en rouge, le pourcentage d'oxygénation du sang) (Luet, 1993) 

   

 

 

 

28  

2. Modificationscirculatoiresetrespiratoires 

A la naissance, on observe chez le veau : 

‐ la fermeture des artères ombilicales grâce à l’étirement du cordon et aux muscles 

présents dans les parois des vaisseaux, 

‐ la fermeture du shunt hépatique via le ductusvenosus, 

‐ la fermeture du foramen ovale, 

‐ la fermeture du canal artériel. 

De plus, le liquide présent dans les voies respiratoires s’évacue en partie par le nez et 

la bouche. Le poumon se déplie dès les premières inspirations, des changements de pression 

complexes s’opèrent et permettent à la double circulation de se mettre en place. 

Ces changements (notamment la double circulation) sont réversibles en cas d'hypoxie 

sévère. En cas de manque d’oxygène, une vasoconstriction pulmonaire apparait ainsi qu'une 

augmentation  de  la  résistance  vasculaire  pulmonaire.  Cela  aboutit  à  la  réouverture  des 

shunts.  Le  veau  repasse  à  un  schéma  vasculaire  de  type  fœtal  sans  placenta,  l'hypoxie 

s'aggrave et conduit à la mort par anoxie centrale (Uystepruyst, 2008). 

3. Apparitionetrésolutiondel’anoxiephysiologiquenéonatale 

Lors  d’un  vêlage  eutocique,  une  anoxie  néonatale  physiologique  est  toujours 

présente (Ravary‐Plumioën, 2009). Un part eutocique est un vêlage qui ne nécessite aucune 

intervention humaine  (qu’elle  soit naturelle ou assistée d’un moyen mécanique) et qui  se 

termine de façon heureuse pour la mère et son veau (Villeval, 2012).  

 

Il comporte 3 phases (Noakes, et al., 2001) : 

‐ La première phase est constituée par le début du travail (c’est‐à‐dire 

l’apparition des contractions) avec l’engagement du fœtus dans la filière 

pelvienne. 

29  

‐ La deuxième phase commence à la rupture des enveloppes et l’expulsion des 

eaux et se termine par l’expulsion du veau. 

‐  La  troisième  phase  se  termine  par  l’expulsion  des  enveloppes  fœto‐

maternelles (appelées par les éleveurs : « délivrance »). 

  Le schéma suivant  (Figure 3) décrit  les mécanismes d’apparition et de résolution de 

l’hypoxie physiologique néonatale lors d’un vêlage eutocique : 

30  

 

Figure 3 ‐ Mécanismes d'apparition et de résolution de l'hypoxie néonatale physiologique par le veau lors d'un vêlage eutocique (Uystepruyst, 2008) 

 

31  

L’hypoxie  néonatale  est  donc  systématique  et  inévitable.  Son  degré  dépend  en 

grande partie de  l’intégrité du placenta et du degré de difficulté de vêlage  (Harvey, et al., 

1989). Il est toutefois essentiel pour l’éleveur de faire en sorte que cette hypoxie soit la plus 

minime possible. Pour cela,  la prise en charge du veau nouveau‐né doit donc être conduite 

de manière efficace et précoce. 

 

B. Priseenchargedunouveau‐né 

Cette prise en charge vise tout d’abord à lutter contre l’hypoxie néonatale car il s’agit 

de  la  cause  principale  de mortalité  néonatale  (Uystepruyst,  2006).  En  effet,  une  dystocie 

associée à une hypoxémie sévère compromet  les transitions physiologiques nécessaires au 

passage de la vie fœtale à la vie extra‐utérine, augmentant fortement le risque de mortalité 

néonatale (Ravary‐Plumioën, 2009).  

Le degré d’hypoxie du veau nouveau‐né peut être évalué par  la mesure des gaz du 

sang artériel ou bien encore par des moyens plus approximatifs mais plus faciles à mettre en 

œuvre : tonicité musculaire, réflexe de succion ou activité cardiaque (Szenci, 1982). Le temps 

que met  le  veau  à  lever  la  tête  ou  à  se mettre  en  position  sternale  est  aussi  un  bon 

indicateur (Schuijt, et al., 1994). Enfin, la durée entre la naissance et les premiers efforts de 

lever, le premier passage en position debout ou la première tétée peuvent aussi être utilisés 

pour évaluer le degré d’hypoxie (Torres, et al., 1987). 

Pour  limiter  au maximum  les  conséquences  délétères  de  cette  hypoxie  néonatale, 

des moyens de réanimations doivent être mis en place (Ravary‐Plumioën, 2009) : 

‐pendant la naissance : en dégageant les voies respiratoires et en stimulant la 

respiration.  

‐juste après la naissance: en continuant de dégager les voies respiratoires (en 

pendant  le  veau  par  les  postérieurs  ou  en  utilisant  une  pompe  type  « Calf 

Resuscitator® »). 

Après cela, deux possibilités sont envisageables : 

32  

‐soit le veau respire correctement et il alors placé en décubitus sternal ce qui 

favorise les échanges gazeux et donc la correction de l’acidose. 

‐soit  le  veau  ne  respire  toujours  pas et  il  faut  alors  chercher  de  nouveau  à 

déclencher  la respiration : en stimulant  l’intérieur des cavités nasales avec un doigt 

ou un morceau de paille, en versant de l’eau froide dans une oreille et/ou en utilisant 

des  médicaments :  le  doxapram  (Dopram©)  ou  l’association  cropropamide‐

crothetamide (Respirot©). Enfin, une ventilation manuelle peut être mise en place en 

dernier recours, par exemple en  intubant  l’animal avec une sonde endotrachéale et 

en utilisant un Ambu‐bag©. 

 

L’ensemble  de  ces  mesures  de  nursing  sont  primordiales  pour  aider  le  veau  à 

s’adapter  à  son  nouveau  mode  de  vie  aérien  en  luttant  contre  l’anoxie  physiologique 

néonatale. Cependant, elles ne sont pas toujours suffisantes pour assurer une oxygénation 

convenable  et  l’éleveur  ou  le  vétérinaire  peuvent  alors  avoir  recours  à  des  traitements 

médicaux pour favoriser l’oxygénation, notamment cérébrale.  

Le  seul  médicament  vétérinaire  disponible  en  France,  qui  provoque  une 

vasodilatation  cérébrale  spécifique  et  augmente  donc  l’oxygénation  du  cerveau,  est 

l’association moléculaire vincamine‐papavérine (Candilat®). Ses effets seront étudiés lors de 

la partie expérimentale de cette thèse, après avoir rédigé un point bibliographique sur cette 

association moléculaire. 

   

 

III. A

 

A

 

 

  L

appartie

Afrique 

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Associati

A. Orig

1.

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2.

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33 

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le  a  été 

34  

 

 

Figure 5 ‐ formule semi‐développée de la papavérine 

 

 

B. Pharmacologie

 

1. Vincamine 

Chez  le  veau,  la  vincamine  présente  une  biodisponibilité  intramusculaire  rapide  et 

élevée, un volume de distribution important et une élimination très rapide.  

  Les paramètres pharmacocinétiques sont :  

‐ Biodisponibilité de 75% 

‐ Concentration plasmatique maximale atteinte (Cmax) = 496 ug/L 

‐ Temps auquel la concentration plasmatique est maximale (Tmax)= 0,47h 

‐ Aire sous la courbe de distribution (AUC) = 757 ug.h/L 

‐ Temps de demi‐vie (t1/2 )= 2,39h 

 

  Chez  l’homme,  la  vincamine  est  bien  absorbée  par  toutes  les  voies  et  est  très 

rapidement métabolisée. Elle est éliminée par voie urinaire et fécale (via la bile) (Vereczkey, 

1985).  

2. Papavérine 

35  

  L’absorption de  la papavérine est aussi  très  rapide. Le  transport est assuré dans  le 

sang  par  des  protéines  plasmatiques  à  90%.  La  demi‐vie  est  de  90  à  120  minutes.  La 

métabolisation est hépatique (90%) et splénique (10%), l’élimination est rénale (Loth, 1986). 

 

C. Propriétésetmoded’action

 

1. Vincamine

 

a) Propriétés

 

  La vincamine possède de nombreux effets :  

    ‐effet sédatif : ils sont surtout marqués chez les rongeurs, plus faibles chez les 

carnivores et  inconnus chez  le veau. La vincamine possède une action antagoniste vis‐à‐vis 

des  excitants  (amphétamines,  convulsivants)  et  potentialise  les  barbituriques  et  l’alcool 

(Aurosseau, et al., 1972). 

    ‐effet hypotenseur : elle provoque une baisse de la pression artérielle. Elle est 

biphasique et permet d’observer trois stades :  

      *premier stade : hypotension d’origine parasympathique 

      *deuxième stade : hausse de la tension artérielle due à la mobilisation 

de l’adrénaline 

      *troisième  stade :  chute  plus  lente  de  la  tension  artérielle  due  à 

l’épuisement des catécholamines (Aurosseau, et al., 1972). 

    ‐effet vasodilatateur cérébral : cet effet est obtenu à des doses plus faibles qui 

ne provoquent pas  l’effet hypotenseur évoqué ci‐dessus. Il y a abaissement des résistances 

vasculaires périphériques. Cette vasodilatation est spécifiquement cérébrale. A cette dose, il 

n’y  a  pas  d’effet  viscéral,  coronaire  ou  musculo‐cutané.  Cette  vasodilatation  n’est  pas 

délétère, ni pour le débit sanguin ni pour la pression veineuse (Aurosseau, et al., 1972). 

36  

    ‐activité  cholinestérasique  du  sérum :  la  vincamine  provoque  des  petites 

contractions des fibres musculaires lisses de certains organes (utérus, iléon…) (Aurosseau, et 

al., 1972). 

    ‐effet  hypoglycémiant :  il  ne  s’oppose  pas  à  l’hyperglycémie  adrénolytique 

(Aurosseau, et al., 1972). 

    ‐effet sur  l’oxygénation cérébrale : suite à une diminution de  la PaCO2et de  la 

concentration  d’hémoglobine,  on  constate,  en  administrant  de  la  vincamine,  une 

augmentation de  l’oxygénation cérébrale, de  la consommation de glucose et une baisse de 

la  concentration  en  acide  lactique  (Witzmann,  et  al.,  1978).  Il  y  a  également  une 

consommation  accrue  en  dioxygène  et  une  baisse  du  taux  d’acide  lactique.  Ces  résultats 

signifient que  la voie anaérobie est abandonnée au profit de  la voie aérobie (Jolivet, 1986). 

Ces effets  sont  intéressants pour combattre  l’anoxie chez  le nouveau‐né.  Ils  sont d’autant 

plus intéressants qu’ils sont obtenus à des doses faibles qui n’ont pas d’effets hypotenseurs 

néfastes (Sage, 1992). 

 

b) Moded’action

 

  Peu  d’informations  sont  disponibles  concernant  le mode  d’action  précis  de  cette 

molécule. Une  étude  de  1996  réalisée  sur  des  synapses  terminales  de  neurones de  rat  a 

montré  que  la  vincamine  bloquait  les  canaux  Na+voltage  dépendants.  Cela  explique 

notamment  son  rôle  anticonvulsivant  (en  empêchant  les  dépolarisations  neuronales 

responsables des convulsions) (Erdo, et al., 1996) 

  Or,  lors d’ischémie,  l’apport de nutriments au cerveau (oxygène et glucose) diminue 

et  la  phosphorylation  oxydative  s’arrête :  les  réserves  d’ATP  chutent  ce  qui  provoque  un 

dysfonctionnement  des  pompes  membranaires  ioniques  ATP  dépendantes  (Na+K+ATPase 

notamment) (Escuret, 1995). S’en suit un déséquilibre  important des charges  ioniques intra 

et extracellulaires avec notamment une entrée délétère de Na+ dans la cellule qui provoque 

la « cascade ischémique » décrite dans le schéma ci‐dessous (Figure 6) : 

 

37  

 

 

 

Figure 6 ‐ Mécanismes de la cascade ischémique (Taylor, et al., 1995) 

 

  La vincamine, en bloquant les canaux sodiques, empêche donc l’entrée excessive de 

sodium dans la cellule, et protège ainsi les cellules nerveuses. 

 

2. Papavérine

 

a) Propriétés

 

La papavérine possède également de nombreux effets : 

38  

    ‐Effet  vasodilatateur  cérébral :  elle  provoque  une  augmentation  du  débit 

sanguin cérébral et de  la pression en dioxygène au niveau des cellules nerveuses. Cet effet 

est court (90 minutes) (Loth, 1986) (Bruder, et al., 2008). 

    ‐Effet sur le cœur et les vaisseaux : il y a une vasodilation brève associée à une 

action inotrope positive (Loth, 1986). 

    ‐Effet  sur  la circulation générale : elle provoque une vasodilatation générale 

(Loth, 1986). 

    ‐Effet  sur  le  rein :  elle  s’oppose  à  certains  effets  de  l’angiotensine  et  à 

l’augmentation de sécrétion de rénine (Aurosseau, et al., 1972). 

 

b) Moded’action

 

  La papavérine augmente la concentration d’AMP‐Cyclique en limitant sa dégradation 

en 5’AMP grâce à l’inhibition de la phospho‐diesterase.  (Loth, 1986). 

  L’AMP  joue  le rôle de second messager responsable de  la relaxation du muscle  lisse 

après stimulation β‐adrénergique. Elle provoque la phosphorylation des protéines cibles via 

les protéines kinases ainsi qu’une modulation de la concentration en calcium intracellulaire. 

Le relâchement des fibres lisses des parois vasculaires (=vasodilatation) est donc favorisée. 

 Il y a alors augmentation du débit sanguin notamment au niveau du  tissu cérébral 

(Figure 7). 

 

39  

 

Figure 7 ‐ Mode d'action de la papavérine au niveau de la paroi vasculaire 

 

D. Utilisationmédicamenteuse 

Ces deux molécules ont quelques applications en médecine humaine. La vincamine 

est  utilisée,  associée  au  rutoside,  pour  traiter  les  déficits  cognitifs  et  neurosensoriels.  La 

papavérine est disponible  seule ou en association.  Seule, elle est utilisée pour  la prise en 

charge  des  spasmes  musculotropes  (en  inhibant  l’entrée  de  calcium  dans  les  cellules 

musculaires).  Associée  au  charbon,  elle  est  utilisée  pour  lutter  contre  les  troubles 

fonctionnels intestinaux. 

L’association vincamine‐pavarine est donc un moyen thérapeutique intéressant pour 

l’éleveur  et  le  vétérinaire  dans  la  gestion  du  péripartum.  Cependant,  d’autres  points 

importants sont à surveiller  et notamment le transfert d’immunité passive de la mère à son 

veau, via le colostrum. 

40  

IV. Immunitéduveauettransfertcolostral 

1. Synthèsedesimmunoglobulinesdanslecolostrum 

Dans le colostrum et le lait des bovins, seules les immunoglobulines de classe G (IgG), 

les  immunoglobulines de  classe M  (IgM)  et  les  imunoglobulines de  classe A  (IgA) ont  été 

quantifiées et décrites. La présence d’immunoglobulines de classe E (IgE) est  inquantifiable 

en pratique courante.  

Chez  les ruminants  l’isotype majeur du colostrum est  l’IgG1 qui représente 90% des 

IgG colostrales. 

Les  IgG  sont  issues  des  plasmocytes  eux‐mêmes  issus  des  lymphocytes  B.  Chaque 

plasmocyte  ne  sécrète  qu’une  classe  d’Immunoglobuline  avec  une  seule  spécificité 

antigénique. 

Les  IgG  colostrales  s’accumulent  dans  la mamelle  avant  le  vêlage  uniquement  par 

filtration du sérum (Newby, et al., 1977). Les autres types d’Ig peuvent aussi être synthétisés 

directement dans la mamelle par les plasmocytes locaux. 

Chez les bovins, le passage transépithélial est spécifique des IgG1 (via des récepteurs 

spécifiques) ; c’est pourquoi on  les retrouve en quantité majoritaire par rapport aux autres 

types d’IgG et d’Ig. 

 

2. RésorptiondesImmunoglobulinesparleveaunouveau‐né 

L’absorption colostrale se fait à travers  les cellules épithéliales de  l’intestin grêle via 

un  récepteur  FcRn  (Récepteur  néonatal  au  fragment  Fc  des  immunoglobulines)  et  une 

pinocytose  en  utilisant  un  transport  vacuolaire.  Les  immunoglobulines  sont  alors 

transportées à travers les cellules épithéliales et relarguées dans les vaisseaux lymphatiques 

par exocytose après quoi elles rentrent dans  la circulation générale via  le canal thoracique 

(Bainter, 2007). La période de  transfert de  l’immunité est relativement courte : dès que  le 

tube digestif est stimulé par  l’ingestion de n’importe quel aliment,  les entérocytes du veau 

41  

nouveau‐né sont remplacés par des cellules épithéliales matures qui empêchent le transfert 

des  Ig  à  travers  la  barrière  intestinale.  La  capacité  d’absorption  commence  à  diminuer  à 

partir  de  6h  après  la  naissance  et  cesse  totalement  à  48h  (Bainter,  2007)  . Un  transfert 

colostral précoce et suffisant permet : 

  ‐une  défense  immunitaire  digestive  locale  augmentée  une  fois  la  barrière 

intestinale  fermée  (Maes,  2010)  et  donc  une  meilleure  protection  contre  les  agents 

pathogènes extérieurs responsables notamment de gastro‐entérites néonatales (GENN). 

  ‐une meilleure croissance au début de la vie de l’animal : en effet, une étude 

de Robinson JD. et al. (1987) a montré que les concentrations sériques en immunoglobulines 

dans  les  24‐48  premières  heures  de  vie  de  l’animal  étaient  une  source  significative  de 

variation du GMQ à 180 jours. 

Il  est  donc  essentiel  que  la  première  tétée  soit  la  plus  rapide  et  la  plus  efficace 

possible. Le veau doit donc être capable de se  lever rapidement (idéalement dans  la demi‐

heure suivant le vêlage) et avoir un appétit suffisant pour ingérer une quantité de colostrum. 

Dans certaines pratiques d’élevage,  l’éleveur peut être amené à traire  la mère et sonder  le 

veau  pour  lui  faire  ingérer  de  force  1  à  2  litres  de  colostrum  dans  l’heure  suivant  la 

naissance. Cette pratique est  à  réserver  aux  veaux  les plus  faibles  car elle n’induit pas  le 

reflexe de déglutition nécessaire par la suite au veau pour se nourrir de façon autonome et 

elle  n’est  pas  dépourvue  de  risques  (blessure  de  l’œsophage,  dépôt  du  lait  dans  les 

préestomacs au lieu de la caillette, fausse déglutition). Une technique intermédiaire consiste 

à traire la mère et donner le colostrum au veau « au biberon ». Cela nécessite un appétit et 

un  réflexe  de  succion  correct mais  permet  au  veau  d’être  alimenté  et  de  bénéficier  de 

l’immunité maternelle, lorsque celui‐ci est trop faible pour se lever. 

 

  C’est dans ce contexte que nous avons choisi de réaliser l’étude expérimentale qui va 

suive. En effet, la gestion des 24 premières heures de vie du veau par l’éleveur est un enjeu 

crutial  pour  la  bonne  santé  future  de  l’animal  (et  corrélativement  sa  bonne  valeur 

économique). La gestion adéquate de cette période péripartum passe par la minimisation de 

l’anoxie  cérébrale  et  la maximisation  de  l’appétit  (favorisant  la  croissance  et  une  bonne 

défense  immunitaire).  Ces  2  points  étant  étroitement  corrélés,  nous  nous  sommes 

42  

intéressés  à  l’effet  d’un  traitement  à  base  de  vincamine  et  de  papavérine  administré  de 

façon systématique aux veaux nouveaux‐nés. En effet, même si  la pharmacologie de ces 2 

molécules sont connues et qu’ils existent plusieurs applications en médecine humaine, il n’y 

a  pas  ou  très  peu  de  données  concernant  l’impact  réel  sur  le  veau  en  terme  de 

comportement,  d’immunité  et  de  performances  zootechniques  globales,  d’où  l’intérêt  de 

conduire une telle étude expérimentale. 

 

 

 

 

   

43  

 

 

 

 

Partie2:ETUDE

EXPERIMENTALE 

 

 

 

   

44  

I. Contexte

 

Pendant  la gestation,  le fœtus est physiologiquement hypoxémique. La mise‐bas est 

donc un moment crucial à partir duquel s’effectue la transition vers des valeurs compatibles 

avec la vie en milieu aérien. 

Au moment de  la naissance,  le veau  subit donc une hypoxie physiologique  (que  le 

vêlage soit eutocique ou dystocique)qui doit être la plus courte possible (Uystepruyst, 2006). 

L’association vincamine‐papavérine  (Candilat®)   est utilisée pour combattre  l’anoxie 

néonatale  lors de vêlages dystociques, mais nous avons voulu étudier  si un  tel  traitement 

pouvait avoir des effets notables en l’administrant de façon systématique à des veaux issus 

de  vêlages  eutociques,  mais  provenant  de  race  à  risque  en  termes  de  complications 

obstétricales. L’étude porte sur des bovins de race charolaise pure qui sont des races à filière 

pelvienne  étroite  mais  avec  une  hypertrophie  musculaire  (Noakes,  et  al.,  2001)  ce  qui 

favorise les vêlages à risque. 

Pour  répondre  à  notre  objectif,  120  veaux  charolais  ont  été  sélectionnés  à  la 

naissance,  la  moitié  d’entre  eux  a  reçu  un  traitement  à  base  de  Candilat®  (7,5mg  de 

Vincamine et 6,77mg de chlorydrate de Papavérine par ml),  l’autre moitié un placebo, puis 

leur comportement et leurs performances ont été suivis de la naissance, jusqu’à 4 semaines 

postpartum. 

 

II. Matérieletméthode

 

A. Sélection des élevages et des animaux 

 

Entre  le 10 novembre 2013 et  le 25  janvier 2014, 120 veaux charolais nouveau‐nés 

ont été recrutés chez 6 éleveurs, soit 20 veaux par élevage. L’ensemble de ces exploitations 

sont situées dans  l’Auxois en Côte d’Or (21), dans  la clientèle de  la clinique Vétérinaire des 

45  

Trois Sources (Pouilly en Auxois). L’adhésion à cette étude a été basée sur le volontariat et le 

sérieux des éleveurs. Ces élevages allaitants, 100% charolais, sont de tailles variables (de 50 

à  150  mères)  et  de  statut  social  divers  (GAEC,  EARL…).  Tous  pratiquent  les  « vêlages 

d’hiver »,  c’est‐à‐dire  que  l’ensemble  des  naissances  se  déroule  sur  une  période 

relativement courte (environ 2 mois) pendant l’hiver et a lieu exclusivement à l’intérieur des 

bâtiments.  Cette  technique  d’élevage  est  à  corréler  à  la  délicatesse  et  aux  risques  des 

vêlages en race charolaise et à l’importance de leur surveillance. 

Pour  être  inclus  dans  l’étude,  le  vêlage  devait  être  eutocique,  c’est‐à‐dire  s’être 

déroulé de façon naturelle (pas ou très peu d’intervention de  l’éleveur, pas d’utilisation de 

moyens mécaniques type cordes, vêleuses etc…) et s’être terminé de façon heureuse (mère 

et veau en apparente bonne santé). Au sein même d’un élevage, c’est l’éleveur qui décidait 

d’inclure ou non dans  l’étude  les veaux qui naissaient dans sa ferme, en respectant bien  la 

nécessité d’un vêlage eutocique (la définition lui ayant été rappelée au démarrage de l’étude 

et sur la feuille de notice (Annexe 1)). 

Chaque veau, dans chaque ferme, était ensuite identifié par un numéro allant de 1 à 20 : 

le premier veau inclus dans l’étude par l’éleveur était le « VEAU 1 », le second, le « VEAU 2 » 

et ainsi de suite jusqu’au 20ème. Cette identification unique a permis d’identifier les animaux 

tout au long de l’étude et lors de l’analyse des données.  

   

46  

B. Planexpérimental 

 

Figure 8 ‐ Plan expérimental mis en oeuvre pour chacun des veaux nouveau‐nés inclus dans l'étude 

 

1. Traitementsadministrés 

a) Préparationdesflacons 

Au sein de chaque élevage, parmi les 20 veaux retenus, 10 ont reçu le produit à tester 

(Candilat®) et  les 10 autres  le placebo (sérum physiologique). Pour  limiter au maximum  les 

biais,  l’étude  a  été  réalisée  en  double  aveugle :  l’éleveur  ne  connaissait  pas  la  nature  du 

produit qu’il injectait à chaque veau. 

Pour  que  l’éleveur  ne  puisse  pas  faire  la  différence  entre  les  flacons  des  deux 

solutions à injecter, nous nous sommes procuré des flacons stériles vides mais operculés de 

Candilat® au près du laboratoire TVM que nous avons rempli à l’aide de 20ml de solution de 

NaCl 0,9%. Le remplissage de ceux‐ci s’est fait avec une seringue de 20ml et une aiguille21G : 

l’aiguille était  insérée sous  la capsule métallique,  le biseau vers  le haut, si bien qu’aucune 

marque n’était visible dans le caoutchouc une fois le remplissage réalisé (Tableau 1). 

Pour des  raisons de  législation,  il n’a pas été possible de  retirer  les étiquettes des 

flacons de Candilat® (ceci nous aurait pourtant permis de les rendre parfaitement identiques 

aux  flacons  contenant  le  placebo).  En  effet,  pour  des  raisons  évidente  de  traçabilité, 

47  

l’éleveur  devait  être  en  mesure  de  justifier  et  de  donner  la  nature  des  traitements 

administrés  à  ses  animaux.  Il  a  donc  fallu  rendre  les  flacons  de  Candilat®  identiques  aux 

flacons  de NaCl,  sans  pour  autant  enlever  leur  étiquette.  Pour  rentre  indiscernable  les  2 

sortes de flacons, nous avons enroulé chaque flacon de placebo et de Candilat®de 10 tours 

de bande autoadhésive (Vetrap®) de manière à ce que aucune distinction ne soit possible. 

Chaque  flacon était ensuite  identifié  à  l’aide d’une étiquette  contenant  le nom de 

l’élevage ainsi que le numéro d’étude du veau (de 1 à 20) (Tableau 1). 

Le  Candilat®  étant  une  solution  totalement  incolore,  aucune  distinction  n’était 

possible entre ce produit et la solution de NaCl 0,9% une fois prélevé dans la seringue. 

Les numéros des 20 flacons de chaque élevage, dont 10 contenaient du Candilat® et 

10 du NaCl 0,9% ont été aléatoirement attribués à l’aide d’un programme de randomisation. 

 

 

 

 

   

 

 

Tableau 1 ‐ P

 

 

 

 

 

Processus de re

‐pr

0,9%

‐in

vide

ve

b

‐m

co

 

emplissage et d

rélèvement 

% dans une

njection des

e à l’aide d’

erte) sous la

biseau de l’a

mise en plac

a

‐iden

‐flacons fi

ontenant le 

cont

d'anonymisatio

de 20ml de

e poche à pe

s 20ml de N

une aiguille

a capsule m

aiguille tour

ce de la ban

autour du fl

ntification d

naux (à gau

Candilat®, à

enant le Na

on des flacons 

e solution d

erfusion de 

aCl dans le 

e 21G * 1” (

métallique av

rné vers le h

nde autoadh

acon 

du flacon 

uche un flac

à droite un 

aCl 0,9%) 

48 

e NaCl 

500ml. 

flacon 

aiguille 

vec le 

haut. 

hésive 

con 

flacon 

49  

b) Protocoled’injection 

Le protocole d’injection (2  injections : une à  la naissance et une autre 6h après) est 

volontairement simplifié par rapport à celui prévu dans l’AMM du Candilat® (4 injections) et 

ce,  pour  des  raisons  d’observance  du  protocole.  En  effet,  le  Candilat  utilisé  pour  lutter 

contre  l’anoxie néonatale  suite à une dystocie,  s’administre, d’après  l’AMM, à doses de 5 

mL,  répétées à 0h, 1h, 6h et 12h postpartum. Or,  si nous avions choisi de conduire notre 

expérimentation en ferme avec ce protocole, cela aurait représenté une surcharge de travail 

trop  importante pour  l’éleveur et donc  les  risques de dérive par  rapport au protocole  fixé 

auraient été  trop  importants. Nous avions donc décidé en amont de  l’étude de  retenir un 

protocole basé  sur 2  injections de 5mL à 0 et 6h postpartum,   plus  facile à  suivre. Ce qui 

limiterait  le  nombre  de  veaux  à  exclure  finalement  de  l’analyse  statistique,  par manque 

d’observance du traitement. 

Lorsque  l’éleveur  décidait  d’inclure  un  veau  dans  l’étude,  il  suivait  le  protocole 

suivant : 

A la naissance, juste après avoir réalisé les observations : 

‐prélèvement à  l’aide d’une  seringue  stérile neuve de 5ml et d’une aiguille 18G*1‐

1/2" de 5ml de solution du flacon correspondant au numéro d’étude du veau. 

‐injection du contenu de la seringue en IM dans le cou de l’animal. 

Entre 6h et 7h après la naissance : 

‐prélèvement à  l’aide d’une  seringue  stérile neuve de 5ml et d’une aiguille 18G*1‐

1/2" de 5ml de solution du flacon correspondant au numéro d’étude du veau. 

‐injection du contenu de la seringue en IM dans le cou de l’animal. 

 

2. Paramètresmesurés 

Les paramètres mesurés ont concerné le transfert colostral, le poids des veaux à 0 et 

30j et le comportement du veau et son évolution sur 24h. 

50  

 

a) Poidsdesveauxà0et30j 

Au début de notre étude, un  ruban barymétrique a été  fourni à  l’éleveur. C’est en 

effet le moyen le plus simple pour estimer de façon relativement précise et reproductible le 

poids d’un bovin. 

La  formule  la plus ancienne et  la plus utilisée pour estimer  le poids d’un animal à 

partir de son tour de poitrine est la formule de Crevat (Delage, et al., 1955): 

 

 PV : Poids vif en kg  

TP : Tour de poitrine en mètre  

K  est  un  coefficient  chiffré  en moyenne  à  80 mais  qui  dépend  de  l’âge  et  de  l’état  des 

animaux. Il est égal à : 

‐100 pour les veaux 

‐90 pour les jeunes animaux d’élevage 

‐80 pour les animaux en état 

‐72 pour les animaux gras 

 

  De nombreuses tables et autres formules existent mais aucune n’est universelle. Des 

facteurs de correction doivent être apportés en fonction de  l’âge, du sexe, de  la race et du 

statut physiologique de l’animal. 

  Le  ruban  utilisé  pour  notre  étude  est  gradué,  pour  la  tranche  de  poids  qui  nous 

intéresse (de 30 à 110 kg), selon la courbe suivante : 

 

 

 

51  

 

Figure 9 ‐ Estimation du poids du veau par la mesure de son tour de poitrine 

 

  On constate que la formule utilisée par le fabricant du ruban peut être approchée par 

une droite  (corrélation de 0,97)  (Figure 9) et donc que  la  relation  liant  le poids au  tour de 

poitrine de l’animal est associable à une fonction affine : dans ce cas, même si la valeur lue 

par l’éleveur sur le ruban n’est pas le poids exact de l’animal, le gain moyen quotidien (GMQ) 

de poids calculé sur 30  jours sera précis puisque  l’excès ou  le défaut de masse apporté par 

l’estimation barymétrique s’annule dans la formule de calcul suivante : 

 

à30 – à 30 

 

  Le  poids  des  veaux  inclus  dans  l’étude  a  donc  été  estimé  de  cette manière  à  la 

naissance ainsi qu’à 30  jours. L’éleveur consigne  l’ensemble des résultats dans un  livret qui 

lui est fourni ce qui nous permettra de comparer les GMQ du lot témoin et du lot ayant reçu 

le Candilat® lors de l’analyse des résultats. 

 

b) Transfertcolostral 

52  

(1) Prélèvementsdecolostrumdesmères 

Des pots à prélèvement stériles de 50ml ont été  fournis aux éleveurs participants à 

l’étude.  Ces  pots  ont  été  préalablement  identifiés  par  nos  soins  à  l’aide  d’une  étiquette 

comportant  le nom de  l’élevage ainsi que  le numéro d’étude du  veau  correspondant à  la 

mère. Les éleveurs devaient prélever un échantillon de colostrum de la mère dès l’inclusion 

d’un veau dans l’étude. La mamelle et les mains du manipulateur devaient être propres, les 

2‐3 premiers  jets de  chaque quartier éliminés, puis 4  à 5  jets de  chaque quartier étaient 

prélevés  dans  un  même  pot  aseptique,  la  stérilité  du  contenant  n’étant  toutefois  pas 

nécessaire pour ce type d’analyse. 

 L’échantillon   de colostrum était ensuite gardé au  frais  (<6°C) puis congelé à  ‐18°C 

dans la journée suivante. 

L’ensemble des échantillons a été ensuite  récupéré par nos  soins et  transporté au 

Laboratoire Vétérinaire Départemental  (LVD) 69  sous  couvert de  froid afin de  réaliser des 

dosages  d’IgG  et  donc  d’évaluer  la  qualité  du  colostrum  maternel.  En  effet,  les  IgG 

représentent plus de 90% des immunoglobulines colostrales totales chez la vache donc leur 

concentration  peut  être  utilisée  comme  référence  pour  évaluer  la  qualité  du  colostrum 

(Manguin, 2002) 

Plus tard, chez le veau, l’évaluation du transfert colostral s’effectue en réalisant une 

prise de  sang entre 2 et 7  jours d’âge par  le  vétérinaire. En effet,  il a été montré que  le 

dosage des  Ig  sanguines du  veau  âgé de  2  à  7  jours  reflétait  la quantité d’Ig bue  (Maes, 

2010) :  jusqu’à  2  jours  d’âge,  le  transfert  colostral  de  la mère  au  veau  n’est  pas  encore 

totalement  terminé et au‐delà de 7  jours,  le  veau  commence à produire  ses propres  IgG, 

l’analyse de sang d’un veau de 2 à 7 jours reflète donc de façon précise le transfert colostral. 

L’éleveur était chargé de contacter  le vétérinaire dès  lors que des veaux  inclus dans 

l’étude atteignaient cette tranche d’âge.  

Les prises de sang étaient réalisées à  la veine jugulaire sur tube sec avec séparateur 

de plasma (Figure 10). Les tubes étaient ensuite centrifugés 5 minutes à 5000 tours/min puis 

53  

congelés à – 18°C. Le transport des échantillons  jusqu’au LVD a ensuite été réalisé par nos 

soins sous couvert de froid. 

Avec  ce  type  de  tube,  lors  de  la  centrifugation,  une  couche  de  gélose  protectrice 

s’intercale  entre  le  culot  (contenant  les  globules  rouges  notamment)  et  le  sérum.  Cela 

permet de congeler ensuite le tube entier, sans avoir à en extraire le sérum préalablement. 

En  effet,  lors  de  la  décongélation,  une  lyse  cellulaire  se  produit  dans  le  culot  (lyse  des 

hématies notamment), et donc sans couche de gélose protectrice, le sérum serait contaminé 

par les résidus de la lyse cellulaire ce qui pourrait fausser les analyses d’IgG. 

 

Figure 10 ‐ Tube sec avec séparateur (photo BD.com) 

 

(2) Analyses(Allemand,2008) 

(a) Descriptifdukit 

Le colostrum et les prélèvements sanguins ont été analysés au LVD du Rhône, situé à 

VetAgro  Sup,  Campus  Vétérinaire  de  Lyon.  La  technique  retenue  est  l’immunodiffusion 

radiale  (IDR) qui est  la  technique de  référence. Le colostrum et  le  sérum  sont dosés de  la 

même manière. La seule différence est la dilution de l’échantillon. 

 

Le  kit  utilisé  est  le  kit  ID  Ring  BOV  IgG,  commercialisé  par  la  société  ID  Biotech 

(France). Il est constitué de plaques réactives qui sont en fait de petites boites rectangulaires 

de 8,5cm sur 3cm,  remplies sur une hauteur d’environ 3 mm, d’une gélose contenant des 

54  

anticorps anti IgG bovines. Dans cette gélose, 10 puits de 2 mm de diamètre (deux lignes de 

5)  sont  creusés  à  l’emporte‐pièce.  Le  kit  comprend  également  un  diluant  pour  les 

échantillons de colostrum et de sérum ainsi qu’une gamme étalon constituée de 4 solutions 

d’IgG bovines de différentes concentrations connues : 

‐ 20 μg/mL, 40 μg/mL, 80 μg/mL et 160 μg/mL 

 Les  4  premiers  puits  sont  réservés  à  la  gamme  étalon  qui  doit  être  réalisée 

systématiquement. Six puits sont donc disponibles dans chaque plaque réactive pour tester 

les échantillons. 

 

(b) Remplissagedespuits 

Le volume distribué par puits est de 15 μL, qu’il s’agisse des solutions de  la gamme 

étalon ou des échantillons préalablement dilués. Les dilutions suivantes ont été appliquées 

pour nos dosages :  

‐colostrum : dilution 1000 

‐sérum : dilution 150 

Une pipette MICRMAN type M25 à déplacement positif est utilisée pour déposer les 

échantillons. Il faut veiller à l’exactitude du volume délivré pour ne pas fausser les résultats. 

Les boites sont ensuite stockées à l’étuve à 37°C pour une lecture à 24h ou au réfrigérateur à 

4°C pour une lecture à 48 – 72h. 

(c) Lecturedesrésultats 

(i) Principedel’immunodiffusionradiale 

L’IDR ou Technique de Mancini repose sur la réaction de précipitation. Celle‐ci a lieu 

lors d’une  situation d’équilibre entre antigènes et anticorps.  Il  se  forme alors un précipité 

traduisant  le réseau moléculaire formé entre antigènes et anticorps, appelé « halo » (Figure 

11). 

55  

 

Figure 11 ‐ Principe de formation des halos de précipitation 

(ii) Révélationdeshalos 

Après  incubation à  l’étuve ou au réfrigérateur,  les halos sont révélés en recouvrant 

totalement la gélose avec une solution fraichement préparée d’acide acétique à 2%. Au bout 

d’une minute de contact, la solution d’acide est éliminée par renversement et remplacée par 

de l’eau distillée laissée en contact avec la gélose pendant 10 minutes. 

 

(iii) CalculdesconcentrationsenIgG 

Les boites sont placées sur un boitier permettant un éclairage par en dessous de  la 

gélose.  Cette méthode  permet  de  bien  visualiser  les  halos  de  précipitation.  La  boite  est 

photographiée avec un appareil numérique (Figure 12). 

Un  logiciel  informatique  spécifique des  kits de dosage  (ID Ring Viewer) permet de 

calculer  les  concentrations  en  IgG  des  échantillons,  à  partir :  du  diamètre  des  halos,  des 

concentrations de la gamme étalon et des dilutions appliquées aux divers échantillons.  

 

56  

 

Figure 12 ‐ Photographie numérique d'une boite d'IDR 

 

Les résultats nous ont ensuite été retournés par le laboratoire sous forme de tableau 

avec des valeurs de concentration en IgG en g/L. Les seuils de détections minimum et 

maximums permis par ce test sont récapitulés dans le tableau suivant (Tableau 2) :  

 

(En g/L)  Sérum veau   Colostrum mère 

Valeur minimale de lecture  3,75  30 

Valeur maximale de lecture  30  200 

 

Tableau 2 ‐ Seuils de calcul maximum pour les concentrations en IgG des colostrums et des sérums 

 

En  deçà  et  au‐delà  de  ces  valeurs,  le  laboratoire  nous  retourne  des  résultats 

«inférieur  à… »  ou  « supérieur  à… »  (<3,75 ;  >  30  pour  le  sérum /  <30 ;  >200  pour  le 

colostrum).  Nous  avons  transformés  arbitrairement  ces  résultats  en  valeur  fixe  afin  de 

permettre  l’analyse de  ces données.  (par exemple :  [IgG]serum<3,75 pour  le  laboratoire est 

devenu [IgG]serum=3,75 dans notre tableau de données, etc…). 

 

c) Comportementduveau 

  L’éleveur était également chargé de noté le comportement et l’appétit du veau à la 

naissance, à 6h, 12h et à 24h post‐partum. Pour lui simplifier la tâche, un tableau était fourni 

avec des cases à cocher (Tableau 3) : 

57  

 

Tableau 3 ‐ Extrait du tableau éleveur pour noter le comportement et l'appétit du veau dans le 1er jour de vie 

 

L’ensemble des termes était défini comme suit : 

‐« abattu » : le veau a l’air triste, les oreilles basses, il peut être en décubitus latéral, 

ne pas porter sa tête ou encore être essoufflé… 

‐« en forme » : au contraire, le veau est bien vigoureux et alerte, il peut être couché 

en décubitus sternal, mais porte correctement sa tête etc… 

‐« debout » : cette case est à cocher si  l’éleveur voit  le veau debout au moment de 

relever l’ensemble de ces observations.   

‐« a tété entre …‐… » : cette case est à cocher si  l’éleveur a aperçu  le veau téter sa 

mère  entre  l’observation  n‐1  et  l’observation  n  qu’il  est  en  train  de  réaliser.  Les  signes 

indirects (bouche du veau mouillée, mamelle moins ferme, etc…) ne doivent pas être pris en 

compte car le veau peut avoir tété une autre vache que sa mère ou à l’inverse, la mère a pu 

se faire téter par un autre veau que le sien. 

58  

‐« succion » :  ce  score  de  succion  était  évalué  par  l’éleveur  en  introduisant  deux 

doigts  dans  la  gueule de  l’animal  et  en  évaluant  l’intensité  de  tétée  du  veau : de  0  pour 

l’absence de reflexe de succion à « +++ » pour un réflexe important et persistant. 

   

  La  notice  fournie  visait  à  rendre  ces  observations  les  moins « opérateur‐

dépendantes »  possibles.  Toutefois,  il  était  demandé,  dans  les  élevages  ou  plusieurs 

personnes travaillent, que ce soit  le même  individu qui réalise  l’ensemble des observations 

de l’étude afin de minimiser les biais. 

 

C. Analysesstatistiques 

Pour  chacun des paramètres mesurés, nous  avons obtenus des  valeurs pour  le  lot 

ayant reçu le Candilat® et des valeurs pour le lot placebo. Ces valeurs ont été analysées sous 

forme de moyennes ou de tableau de valeurs. 

Les observations de comportements ont aussi été transformées en valeurs chiffrées 

pour permettre leur analyse statistique : 

‐ les notes de succion (visant à estimer l’appétit du veau) étaient notées de 0 à +++. 

Pour réaliser les analyses, les « + » ont été converties en chiffres : 1 pour +, 2 pour 

++ et 3 pour +++. Ainsi  les notes de succion ont été analysées avec des valeurs 

allant de 0  (absence de reflexe de succion) à 3  (réflexe de succion  important et 

persistant), 

‐ l’abattement  était  estimé  par  l’éleveur  en  cochant  soit  la  case  «  abattu  »  (air 

triste,  les  oreilles  basses,  décubitus  latéral,  et/ou  mauvais  port  de  tête, 

essoufflement),  ou  la  case  «  en  forme  »  (vigoureux  et  alerte,  couché mais  en 

décubitus  sternal,  port  correct  de  la  tête).  Pour  les  analyses  statistiques,  nous 

avons noté 1 pour un veau abattu, 0 pour un veau qui ne l’était pas.  

Les  paramètres  « debout »  et  « a  tété  entre… »  n’ont  finalement  pas  étés  pris  en 

compte  dans  l’analyse  des  données :  en  effet,  les  éleveurs  ont  unanimement  trouvé  ces 

59  

observations trop difficiles à réaliser (nécessité d’être présent presque en permanence dans 

le bâtiment d’élevage). 

 

Les tests utilisés pour les analyses statistiques sont les suivants : 

‐test de Student pour comparer les moyennes, 

‐test du Khi2 pour comparer la répartition dans 2 tableaux de valeurs. 

 

a) TestdeStudent 

Ce test permet de comparer une moyenne observée m sur le lot de taille n et d’écart 

type ayant reçu les injections de Candilat® à une moyenne de référence µ0 obtenue sur le 

lot « placebo ». 

L’échantillon  doit  être  de  taille  suffisamment  grande  (n>30)  ou  alors  avoir  une 

distribution assimilable à une distribution normale (vérification par réalisation et analyse de 

diagrammes en boite) pour être analysé par le test de Student. 

La variable de décision t est alors calculée selon l’équation suivante : 

tm‐μ0

σ/√n 

 

L’ordre de grandeur de p est alors estimé à partir de la valeur t obtenue et de la table 

bilatérale de la loi de Student pour un degré de liberté égal à n – 1. 

Si  P<0,01  nous  pourrons  conclure  à  une  différence  significative  entre  les  deux 

moyennes. 

 

b) TestduKhi2  

60  

Le  test  du  ²  d’ajustement  permet  de  comparer  une  distribution  observée  à  une 

distribution théorique. 

Le critère de différence du ²estdéfini de la façon suivante : 

 

²Oi– Ci ²Ci

 

 

où  k  représente  le  nombre  de  classes  de  la  variable  qualitative  étudiée,  Oi  les  effectifs 

observés et Ci les effectifs calculés. 

L’ordre de grandeur de p est alors estimé à  l’aide des tables du ² : si p<0,05,  la différence 

entre  la  distribution  observée  et  la  distribution  de  référence  peut  être  considérée  comme 

significative. 

 

 

   

61  

III. Résultatsetdiscussion 

A. Sélectiondesveauxetrecueildesdonnées 

Puisque la sélection des veaux, pour les inclure ou non dans l’étude, a été confiée au 

libre arbitre des éleveurs, avec toutefois la stricte consigne de n’inclure que des veaux issus 

de  vêlages  eutociques,  on  a  pu  observer  dans  les  résultats  des  orientations  de  choix 

particulières. 

Par  exemple,  les  éleveurs  ont  souvent  préféré  se  tourner  vers  des  vaches  dont  le 

caractère était déjà bien connu, afin de limiter le risque d’accident au moment de la traite de 

la vache et des différentes interventions sur le veau, ainsi, les génisses ont généralement été 

évitées :  sur  les 120 vaches  retenues par  les éleveurs pour  l’étude, moins de 20% d’entre 

elles étaient des primipares. Par ailleurs, l’heure du vêlage a aussi conditionné l’inclusion ou 

non du veau dans l’étude. En effet, les injections du protocole d’étude devant être réalisées 

à  0h  et  6h  postpartum,  les  vêlages  ayant  lieu  le matin ou  en début d’après‐midi ont  été 

préférentiellement sélectionnés pour éviter à  l’éleveur de revenir faire  la seconde  injection 

dans la nuit. 

Néanmoins,  ces  constats  n’ont  pas  lieu  d’interférer  sur  les  conclusions  que  l’on 

pourrait tirer concernant  la comparaison des performances entre  les veaux qui ont reçu  le 

Candilat® et ceux qui ont reçu le placebo.  

Le bilan des différentes données observées est résumé dans le diagramme ci‐dessous 

(Figure 13) : 

62  

 

Figure 13 ‐ Bilan des différentes données observées 

 

B. Gaindepoids 

Au total, les GMQ de 77 veaux de l’étude ont pu être calculés (Figure 14), grâce à des 

poids mesurés au ruban barymétrique à 0 et 30 jours (39  résultats pour le lot Candilat© et 

38 pour  le  lot placebo). Les autres veaux de  l’étude donc  le GMQ n’a pas pu être calculé, 

étaient morts ou alors leur poids n’avait pas été relevé à la naissance et/ou à 30 jours. 

63  

 

Figure 14 ‐ Répartition des GMQ de chacun des deux lots 

 

Lorsque nous calculons les moyennes des GMQ de chacun des 2 lots, nous obtenons 

les résultats suivants (Tableau 4) :  

  Nombre d’individus Moyenne des GMQ 

(en kg/j) Ecart type 

Lot Candilat©  39  1,23  0,28 

Lot Placebo  38  1,11  0,30 

 

Tableau 4 ‐ Moyenne des GMQ de chacun des 2 lots 

 

Nous pouvons également observer  ces  résultats  sous  la  forme d’un diagramme en 

boite (Figure 15) : 

64  

 

Figure 15 ‐ Diagramme en boite de la répartition des GMQ de chacun des 2 lots 

 

Lorsque nous  comparons  les moyennes de GMQ obtenues pour  chacun des 2  lots 

Candilat© et placebo  (à  l’aide du  test de  Student, n>30), nous obtenons une  variable de 

décision  tobs  =  2,67  et une p‐value de  0,01. Nous pouvons donc  conclure qu’il  existe une 

différence significative entre les moyennes de GMQ de chacun des 2 lots. 

Le  GMQ  du  lot  ayant  reçu  les  2  injections  de  Candilat©  est  significativement 

supérieur à celui du lot placebo 

 

L’injection de Candilat© améliore  le GMQ sur 30  jours par rapport au 

lot placebo (+120g/J) 

 

Dans notre étude, le poids des veaux n’a été mesuré qu’à J0 et à J30. La différence de 

croissance  observée  peut  donc  être  due  à  une  prise  de  poids  améliorée  dans  les  tout 

premiers  instants de vie  (prise colostrale) ou bien à une meilleure croissance  tout au  long 

des  30  premiers  jours  de  vie  à  cause  d’un meilleur  démarrage. Un  relevé  de  poids  plus 

régulier  aurait  donc  été  intéressant  pour  distinguer  ces  2  facteurs mais  beaucoup  trop 

contraignant pour les éleveurs. 

De  même,  il  n’est  pas  possible  de  connaitre  l’impact  d’un  tel  traitement  sur  la 

croissance à plus  long  terme de  l’animal  (plusieurs mois). Cela aurait été particulièrement 

65  

intéressant  puisqu’une  source  principale  de  revenus  pour  les  éleveurs  de  charolais  est  la 

vente de « broutards » (=veaux mâles âgés de 6 à 10 mois et pesant de 400 à 600kg) entre 

2€ et 3€  le kilo de poids vif. Une pesée de tous  les veaux de  l’étude à  l’âge de 6 mois nous 

aurait permis de répondre à cette question mais une fois de plus, une telle manipulation est 

difficilement  réalisable  pour  les  éleveurs  de  l’étude  (animaux  « au  pré »  difficilement 

approchables individuellement). Cependant des études  précédentes (Robinson, et al., 1987) 

montrent l’influence de la prise colostrale juste après la naissance sur le poids de l’animal à 

180 jours (6 mois). 

C. Transfertcolostral 

De nombreux couples mère‐veau ont dû être exclus de l’étude du transfert colostral 

du fait du délai non respecté entre la naissance du veau et la prise de sang réalisée sur celui‐

ci par  le vétérinaire. En effet,  le protocole  imposait un délai de 2 à 7  jours et de nombreux 

prélèvements ont été réalisés en dehors de cette période (généralement au‐delà de 7 jours). 

Finalement, 78 analyses ont été correctement réalisées (38 Candilat® et 40 placebo) 

 

1. Comparaisondel’immunitédesveauxsuivantletraitementreçu 

Notre première approche a consisté à comparer  la moyenne de  la concentration en 

IgG des colostrums des mères et des sérums des veaux de chacun des 2 lots (Tableau 5) 

 

(en g/L)  [IgG]colostrum [IgG]serum 

Lot Candilat© (n=38)  101,32  15,55 

Lot placebo (n=40)  102,23  14,63 

 

Tableau 5 ‐ Comparaison des concentrations en IgG dans le colostrum et dans le sérum de chacun des 2 lots 

 

66  

  Malgré un  colostrum maternel moyen moins  riche d’environ 1g/L,  les  veaux  ayant 

reçu  les  deux  injections  de  Candilat©  ont  une  concentration  sérique  en  IgG  plus  élevée 

d’environ 1g que les veaux ayant reçu le placebo. 

  Cependant,  la  réalisation  du  test  de  Student  nous montre  l’absence  de  différence 

significative (Tableau 6). 

 

 Moyennes 

comparées tobs 

p value 

estimée Conclusion 

[IgG]colostrum 101,32g/L et 

102,23g/L ‐0,07  >0,1 

Différence non 

significative 

[IgG]serum 15,55g/L et 

14,63g/L 0,95  >0,1 

Différence non 

signidicative 

 

Tableau 6 ‐ Comparaison des moyennes des concentrations en IgG sériques et colostrales de chacun des 2 lots 

 

Malgré  une  tendance  intéressante,  indépendamment  de  la  qualité  du  colostrum 

maternel  reçu,  l’injection  de  Candilat©  à  la  naissance  ne  permet  pas  d’améliorer 

significativement le taux d’IgG chez le veau. 

L’étude  de  l’effet  potentiel  d’un  tel  traitement  doit  aussi  prendre  en  compte  la 

qualité du colostrum maternel. 

 

2. Comparaisondel’immunitédesveauxsuivantletraitementreçu,maisaussienfonctiondelaqualitéducolostrummaternel

 

Pour  vérifier  si  le  traitement  administré  peut  avoir  un  effet  ou  non  en  termes  de 

transfert colostral,  il  faut distinguer deux sous‐groupes d’animaux dans chacun des 2  lots : 

d’un côté, les veaux ayant reçu colostrum de bonne qualité et de l’autre ceux ayant reçu un 

colostrum de qualité moindre. 

 

67  

a) ValeursseuilsenIgGdanslecolostrumdesmèresetdanslesangdesveaux

 

‐ Qualité du colostrum 

  Se pose donc la question de la limite entre bon et mauvais colostrum chez les bovins 

charolais. De nombreuses études ont été  réalisées  chez  les  vaches  laitières Prim Holstein 

mais très peu d’informations sont disponibles concernant les races allaitantes. 

  Des études nord‐américaines  font état de concentrations en  IgG dans  le colostrum 

variant de 75g/l à 109g/L (Allemand, 2008). Une étude réalisée en 2004 en France sur 110 

colostrums  de  vaches  Charolaises  d’une  ferme  expérimentale  a  révélé  une moyenne  de 

119g/L d’IgG (Gartioux, 2003). 

  Nous avons pris comme moyenne de référence la moyenne obtenue sur notre propre 

échantillon  d’animaux,  à  savoir  102g/L,  ce  qui  est  cohérent  avec  la moyenne  des  études 

citées ci‐dessus. 

 

‐ [IgG] sérique 

 

Chez le veau, l’immunité passive est considérée comme adéquate dès lors qu’il y a au 

moins 16g/L d’IgG dans son sérum (Manguin, 2002). 

 

b) Répartitiondeseffectifs 

Lot Candilat©  [IgG]sérum ≤ 16g/L  [IgG]sérum>16g/L 

[IgG]colostrum ≤ 102g/L  11 (50%)  11 (50%) 

[IgG]colostrum> 102g/L  10 (63%)  6 (37%) 

 

Tableau 7 ‐ Répartition des veaux du lot Candilat® selon leur niveau d’immunité passive et la qualité du colostrum reçu  

 

 

68  

Lot placebo  [IgG]sérum ≤ 16g/L  [IgG]sérum>16g/L 

[IgG]colostrum ≤ 102g/L  15 (71%)  6 (29%) 

[IgG]colostrum> 102g/L  11 (58%)  8 (42%) 

 

Tableau 8 ‐ Répartitiondes veaux du lot placebo selon leur immunité passive et la qualité du colostrum reçu 

 

 

Concernant les veaux des 2 lots ayant reçu un colostrum de bonne qualité (>102 g/L 

d’IgG),  on  constate  peu  de  différence  en  termes  de  niveau  d’immunisation  de  ces  veaux 

(c’est‐à‐dire en  termes de pourcentage de veaux avec un  taux d’IgG sérique> 16g/L) : 37% 

des  veaux  ayant  reçu  un  colostrum  de  bonne  qualité  sont  bien  immunisés  pour  le  lot 

Candilat® (Tableau 7), contre 42% des veaux ayant reçu un colostrum de bonne qualité dans 

le lot placebo (Tableau 8).  

Par contre, des écarts plus  importants sont présents entre  les 2  lots pour  les veaux 

ayant reçu un colostrum de qualité moindre (≤102g/L) (Tableau 7 et Tableau 8). 

Toutes les classes possèdent plus de 5 individus, nous pouvons donc réaliser un test 

du ² d’ajustement afin de savoir si cette différence de répartition est significative ou non. 

Considérons le lot placebo comme référence et appliquons cette répartition, dite de 

référence, aux effectifs du lot Candilat© (Tableau 9) : 

 

Lot Candilat©  [IgG] sérum ≤ 16g/L  [IgG] sérum>16g/L 

Répartition 

observée 

Répartition 

théorique 

Répartition 

observée 

Répartition 

théorique 

[IgG] colostrum 

 ≤ 102g/L 11 (50%)  15,62 (71%)  11 (50%)  6,38 (29%) 

 

Tableau 9 ‐ Comparaison entre la répartition observée et théorique 

 

69  

  Après  calcul,  nous  trouvons  ²=4,71.  La  table  nous  renvoie  une  p‐value  comprise 

entre 0,05 et 0,1. C’est donc supérieur au seuil de risque de 5% habituellement utilisé mais 

cela reste acceptable compte tenu de la faible taille de nos effectifs. 

  Nous pouvons donc conclure (avec un risque inférieur à 10%) que la différence entre 

les répartitions des 2 lots est significative. 

Lorsqu’un  lot  de  veau  reçoit  un  colostrum  de  moindre  qualité, 

l’injection  systématique  de  Candilat©  à  la  naissance  permet 

d’augmenter de 21% le nombre de veaux bien protégés. 

 

c) Comparaisondesmoyennesd’[IgG] 

  Candilat©  Placebo 

Veaux ayant reçu un colostrum « pauvre » en IgG (<102g/L) 

[IgG]colostrum mères (g/L) 

73,14(1) 73,95(2) 

[IgG]sang veaux (g/L) 

16,18(1) 13,05(2) 

Veaux ayant reçu un colostrum « riche » en IgG (>102g/L) 

[IgG]colostrum mères (g/L) 

119,96(3) 122,65(4) 

[IgG]sang veaux (g/L) 

17,24(3) 16,44(4) 

 

(1)n=22 

(2)n=21 

(3)n=16 

(4)n=19 

Tableau 10 ‐ Comparaison des concentrations moyennes en IgG des veaux de chacun des 2 lots en fonction de la qualité du colostrum reçu 

 

  Les effectifs étant inférieurs à 30 (Tableau 10), nous devons juger de la normalité de 

leur répartition en les représentant sous la forme de diagramme en boite (Figure 16, Figure 

17, Figure 18 et Figure 19). 

70  

 

Figure 16 ‐ Répartition des valeurs des [IgG] colostrum> 102g/L 

 

 

 

Figure 17 ‐ Répartition des valeurs des [IgG] colostrum< 102g/L 

 

 

Figure 18 ‐ Répartition des valeurs des [IgG] sérum des veaux ayant reçu un colostrum de bonne qualité 

 

71  

 

Figure 19 ‐ Répartition des valeurs des [IgG] sérum des veaux ayant reçu un colostrum de qualité moindre 

 

L’ensemble des diagrammes en boites ont une allure compatible avec une répartition 

normale.  Nous  pouvons  donc  utiliser  le  test  de  Student  pour  comparer  les  différentes 

moyennes. 

 

    Moyennes comparées 

tobs p value estimée 

Conclusion 

Veaux ayant reçu 

un colostrum « pauvre » 

[IgG]colostrum Candilat® : 73,14g/L 

Placebo : 73,95g/L ‐0,19  >>0,1 

Non 

Significatif 

[IgG]sérum Candilat® : 16,18g/L 

Placebo : 13,05g/L 1,77  =0,09 

Significatif 

(risque <10%)

Veaux ayant reçu 

un colostrum « riche » 

[IgG]colostrum Candilat® : 119,96g/L

Placebo : 122,65g/L ‐0,26  >>0,1 

Non 

Significatif 

[IgG]sérum Candilat® : 17,24g/L 

Placebo : 16,44g/L 0,35  >>0,1 

Non 

Significatif 

 

Tableau 11 ‐ Comparaison des moyennes des [IgG] à l'aide du test de Student 

 

 

Au sein de chaque sous‐groupe créé (colostrum de bonne qualité versus colostrum 

de qualité moindre), les colostrums reçus par les veaux du lot Candilat® et ceux reçus par 

lot placébo ont une concentration moyenne en IgG similaire. 

72  

  Si maintenant l’on considère les concentrations sériques en IgG des veaux de chacun 

des deux lots, on constate qu’il n’y a pas de différence entre les veaux traités au Candilat® et 

les autres lorsque ceux‐ci ont reçu un colostrum de bonne qualité. 

L’injection de Candilat© au veau à la naissance n’améliore pas de façon significative 

le transfert colostral de la mère au veau lorsque celui‐ci reçoit un colostrum de bonne 

qualité. 

 

En  revanche,  pour  les  veaux  ayant  reçu  un  colostrum  de  moindre  qualité,  le 

traitement au Candilat® augmente significativement la concentration en IgG dans leur sang, 

et donc leur niveau de défense immunitaire. 

 

L’injection de  Candilat©  au  veau  à  la  naissance  améliore  le  transfert 

colostral  lorsque  la  mère  produit  un  colostrum  de  moindre  qualité 

(amélioration de 24% du taux d’IgG sérique par rapport aux veaux non 

traités). 

 

 

Ce  dernier  résultat  trouve  tout  son  intérêt  dans  le  cas  par  exemple  d’un  élevage 

subissant une épizootie de gastro‐entérites néonatales (GENN) dans  laquelle une mauvaise 

qualité  des  colostrums maternels  aurait  été mise  en  cause.  Dans  ce  genre  de  situation, 

seules  des  mesures  d’hygiènes  classiques  sont  généralement  proposées,  car  peu  de 

solutions  s’offrent  au  vétérinaire  et  à  l’éleveur  pour  améliorer  rapidement  cette  qualité 

colostrale.  En  effet,  il  faudrait  agir  au moins  un mois  avant  vêlage  sur  l’alimentation  des 

mères pour espérer influer sur la qualité du colostrum, délai incompatible avec la nécessité 

de gérer urgemment une telle situation. En de pareilles circonstances, 2 injections de 5mL de 

Candilat®, à 0 et 6h de vie, à tous  les veaux naissants, permet d’augmenter  leurs défenses 

immunitaires malgré un colostrum maternel de qualité moindre. Les veaux sont alors mieux 

protégés et cela peut contribuer à diminuer le nombre de cas d’animaux malades. 

73  

Cela conforte également nos résultats du paragraphe précédent sur  le GMQ, en accord 

avec l’étude de Robinson et Al. (1987) : l’importance des concentrations en IgG sériques chez 

le veau entre 24h et 48h de vie  impacte de façon positive  le GMQ à 180  jours. Dans notre 

cas, on peut dire que l’importance de la concentration en IgG sérique chez le veau entre 2 et 

7  jours  de  vie  impacte  de  façon  positive  le GMQ moyen  sur  30  jours  :  les  veaux mieux 

protégés par les IgG maternelles ont une croissance plus rapide. 

 

D. Comportementetappétitduveau 

 

Pour rappel, concernant l’attribution des notes de comportement : 

‐ les  notes  de  succion  (visant  à  estimer  l’appétit  du  veau)    étaient  notées  0 

(absence de  réflexe de  succion), +, ++ ou +++  (réflexe de  succion  important et 

persistant). Ces résultats ont été convertis en valeurs numériques pour analyser 

les résultats : 0 (0), 1 (+), 2 (++) et 3(+++) 

‐ nous avons noté 1 pour un veau abattu, 0 pour un veau qui ne l’était pas. 

La moyenne des scores de succion et d’abattement sont calculées pour chacun des 2 

lots (Candilat®vs. placebo)à 0h et à 24h de vie (Tableau 12). 

 

    Lot Candilat©(n=40) Lot Placebo(n=40) 

Score de 

succion 

0h  1,62  1,95 

24h  2,62  2,69 

Score 

d’abattement 

0h  0,23  0,10 

24h  0,05  0,05 

 

Tableau 12 ‐ Comparaison des scores de succion et des notes d'abattement à 0h et 24h pour chacun des 2 lots (le score de succion va de 0 : absence de reflexe de succion,  à 3 : réflexe de succion important et persistant ;  

le score d’abattement vaut soit : 1 = abattu ou 0 = en forme). 

 

 

74  

 

 

Le nombre de veau pour chaque lot étant supérieur à 30, nous pouvons utiliser le test 

de Student pour comparer ces moyennes (Tableau 13). 

 

    Moyennes comparées 

tobs p value estimée 

Conclusion 

Score de succion 

0h  1,62 et 1,95  ‐1,83  p=0,07 Significatif 

(risque <10%) 

24h  2,62 et 2,69  ‐0,57  >>0,1 Non 

Significatif 

Score d’abattement 

0h  0,23 et 0,10  1,96  p=0,06 Significatif 

(risque <10%) 

24h  0,05 et 0,05  0  >>0,1 Non 

Significatif 

 

Tableau 13 ‐ Comparaison des notes d'abattements et des scores de succion à l'aide du test de Student (le score de succion va de 0 : absence de reflexe de succion,  à 3 : réflexe de succion important et persistant ;  

le score d’abattement vaut soit : 1= abattu ou 0 = en forme). 

 

  Le constat est  le même pour  le score de succion ou celui d’abattement : malgré un 

score  à  la  naissance  significativement  moins  bon  pour  le  lot  Candilat®,  les  scores  sont 

similaires à 24h de vie (différence non significative).  

 

  Lorsqu’un  veau  est  plus  abattu  et/ou  présente  un  faible  appétit  à  la 

naissance, la double injection de Candilat® à 0h et 6h après le vêlage, semble 

aider à retrouver, à 24h de vie, un état de forme identique à celui des veaux 

n’ayant pas présenté de difficulté à la naissance 

  Cela étant, il est important de relativiser cette conclusion : en effet, on 

ne peut pas savoir si les veaux du lot Candilat® n’auraient pas retrouvé un tel 

état  de  forme  sans  aucune  injection.  Il manque  donc  un  lot  témoin  pour 

étayer nos propos. 

 

75  

 

  Ce  dernier  résultat  conforte  les  2  constats  précédents:  la  double  injection  de 

Candilat®  permet  d’augmenter  la  vigueur  et  l’appétit  du  veau.  Cela  se  traduit  par  une 

meilleure  prise  colostrale  et  donc  une  meilleure  immunité  (augmentation  de  la 

concentration en IgG sérique) ainsi qu’une prise de poids améliorée. 

76  

   

77  

CONCLUSION 

Les heures qui suivent la naissance sont critiques pour le veau nouveau‐né. En effet, 

celui‐ci présente, quelle que soit la difficulté de vêlage, une anoxie néonatale inévitable liée 

au passage d’un milieu intra‐utérin à un milieu de vie aérien. 

Cette anoxie néonatale est d’autant plus  importante que  le vêlage est difficile. Dans 

le cas d’une dystocie, des médicaments vétérinaires existent pour prévenir et lutter contre le 

manque  d’oxygène  au  niveau  cérébral.  Parmi  ces  traitements,  l’association  vincamine‐

papavérine est fréquemment utilisée pour provoquer une vasodilation cérébrale et protéger 

les tissus souffrant d’anoxie.  

Dans notre étude, nous avons voulu nous  intéresser à  l’impact d’un  tel  traitement, 

mais administré de façon systématique aux veaux issus de vêlages eutociques.  

Pour cela, 120 veaux  issus de vêlages eutociques dans 6 élevages charolais ont été 

recrutés. Pour la moitié d’entre eux, un traitement à base de vincamine‐papavérine a été mis 

en place dès  la naissance (2  injections à 0 et 6h),  les autres ont reçu un placebo. L’étude a 

été réalisée en aveugle. 

Concernant  nos  résultats,  nous  avons  enregistré,  chez  les  veaux  ayant  reçu  le 

médicament : un meilleur GMQ sur 30 jours (+120g/jour), témoin d’une meilleure tétée, un 

transfert  colostral  amélioré  (+3,13g/L  de  sang  d’IgG)  lorsqu’un  colostrum  maternel  de 

mauvaise  qualité  est  reçu,  ainsi  qu’un  appétit  et  une  vigueur  améliorée  dans  les  24 

premières heures de vie. 

Ces observations offrent des perspectives intéressantes pour les éleveurs notamment 

en termes de vitesse de croissance des veaux et dans la gestion d’épizooties pour lesquelles 

la qualité du colostrum est mise en cause.  

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

78  

   

79  

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1246. 

   

82  

 

83  

 

 

 

ANNEXES

 

84  

Ministère de l’Agriculture, de l’Alimentation, de la Pêche, de la Ruralité et de l’Aménagement du Territoire

Institut  d’enseignement supérieur et de rechercheen alimentation, santé animale, sciences agronomiques et de l’environnement

‐ Groupe de médecine des populations  ‐medpop@vetagro‐sup.fr ‐

Campus Vétérinairede Lyon

Annexe 1 ‐ Livret de consignes fourni aux éleveurs 

 

 

 

NOTICE 

 

Merci tout d’abord d’avoir accepté de participer à cette étude.  

 

Inventaire du matériel fourni  

o La notice ci‐dessous 

o 4 tableaux de résultats (5 veaux par tableau) : 1 colonne = 1 veau, veaux numérotés 

de 1 à 20  

o 20 flacons de produit numérotés de 1 à 20 

o 40 seringues et 40 aiguilles, pour faire  les  injections (2  injections de 5 mL par veau : 

une à la naissance + une 6 h après) 

o 20 pots à prélèvement numérotés de 1 à 20 pour récolter le colostrum des mères 

o Un ruban peseur pour estimer le poids des veaux à la naissance et à 30 jours d’âge 

 

L’objectif est d‘inclure 20 veaux de votre élevage dans cette étude. Ces veaux porteront les 

numéros de 1 à 20 dans nos tableaux de résultats. 

Pour  inclure un veau dans  l’étude et  remplir  le  tableau correspondant, veuillez  respecter 

les consignes suivantes : 

1. Le vêlage doit s’être passé sans aucune difficulté, c’est‐à‐dire : sans extraction forcée 

avec vêleuse et/ou sans l’aide du vétérinaire. 

2. Le vêlage doit avoir eu lieu sous vos yeux ou dans les 15 dernières minutes. En effet, 

les  premiers  paramètres  doivent  être  observés  immédiatement  après  le  vêlage 

(maximum 15min). 

3. Le veau doit  ingérer  le colostrum de  façon naturelle. Si vous devez sondez  l’animal 

pour lui faire prendre le colostrum, ne l’incluez pas dans l’étude. 

Si le veau respecte les 3 conditions ci‐dessus, il peut être inclus dans l’étude. Dans ce cas : 

1. Prélevez  le colostrum de  la mère  immédiatement après  la naissance dans un pot à 

prélèvements  en  tirant  des  jets  dans  chaque  quartier  (attention  le  N°  du  pot  à 

85  

prélèvement doit correspondre au numéro du veau dans le tableau). Garder ensuite 

le prélèvement au réfrigérateur. 

2. Commencez  à  remplir  la  colonne  correspondant  à  ce  veau  dans  le  tableau  de 

résultats : date et heure du vêlage, numéro de travail (à 4 chiffres) de la mère, etc…  

3. Les observations se font 4 fois durant les 24 premières heures de vie du veau : 

ii. Immédiatement après le vêlage au moment de la première injection 

iii. A 6h après le vêlage au moment de la seconde injection 

iv. 12h après le vêlage 

v. 24h après le vêlage 

Définition des termes utilisés dans le tableau 

Cochez « abattus » si le veau a l’air triste, la tête en bas, les oreilles basses… 

Cochez « en forme » si le veau vous semble vif, vigoureux, alerte… 

  C’est le même opérateur qui doit dans la mesure du possible réaliser les observations 

sur l’ensemble des 20 veaux de l’étude. 

  Pour cocher la case « a déjà tété entre ** et ** heures», vous devez avoir observé le 

veau  téter dans  la plage horaire  indiquée et non pas des  signes  indirects  (mamelle moins 

dure, bouche du veau mouillée etc…) 

  Le  reflexe de succion s’évalue en  introduisant 2 doigts  (après s’être  lavé  les mains) 

dans la bouche du veau. 

 

Mesure du poids 

  Mesurer  le  périmètre  thoracique  en 

position  le ruban peseur comme  indiqué sur 

la  photo  ci‐jointe.  Reportez  le  poids 

correspondant  dans  le  tableau.  Réaliser 

l’opération à la naissance et à 30 jours d’âge. 

 

Protocole d’injection 

  Un flacon de produit a été attribué à chaque veau (N° de flacon = N° du veau dans le 

tableau  = N°  du  pot  de  colostrum). Utilisez  ces  flacons  de  produit  les  uns  à  la  suite  des 

autres,  au  fur  et  à  mesure  des  naissances  rentrant  dans  l’étude.  NE  CHERCHEZ  PAS  A 

RETIRER  LA BANDE OPAQUE RECOUVRANT  LES  FLACONS,  l’objectif est  justement de  faire 

une étude dite « en aveugle ». 

86  

1. Dans  les 15minutes suivant  la naissance, prélevez (avec une aiguille et une seringue 

neuve) dans le flacon correspondant à l’animal 5ml de solution et injectez les au veau 

en intramusculaire dans le cou à gauche. Jetez l’aiguille et la seringue. Cochez la case 

« 1ère injection » dans le tableau. 

2. 6 heures après le vêlage répétez l’opération (même flacon, même quantité, avec une 

seringue et une aiguille neuves)  et injecter le produit en intramusculaire dans le cou 

à droite. Cochez la case « 2ème injection » dans le tableau. 

3. Conservez  la fin du flacon mais NE  l’utilisez PAS.  Il sera récupéré en fin d’étude par 

nos soins.  

 

Passage du vétérinaire 

  Un vétérinaire de  la Clinique des Trois Sources passera prélever deux tubes de sang 

sur  chacun des  veaux. Ce prélèvement doit avoir  lieu entre  le 3ème et 6ème  jour de  vie de 

l’animal. Le vétérinaire réalisera, en plus, un examen clinique sur le veau. 

C’est à vous d’appeler le vétérinaire au bon moment,afin de le prévenir des naissances et de 

convenir d’un RDV avec lui pour réaliser ces prises de sang. 

Observations 

  Si vous remarquez des choses particulières ou anormales sur un veau et/ou sa mère 

participant à  l’étude, merci de  le préciser ces observations en  toutes  lettres ci‐dessous en 

indiquant bien  le numéro de  travail de  la mère et  le numéro d’étude du veau,  la date de 

l’incident. 

 

N° d’étude du veau 

N° de travail de la mère 

Observations 

     

     

 

 

87  

Annexe 2 ‐ Tableau de consigne des résultats éleveurs 

  

88  

Annexe 3 ‐ Diaporama de présentation des résultats aux éleveurs 

 

 

 

   

 

   

   

   

89  

 

 

   

   

   

 

90  

Annexe 4 ‐ Article à paraitre dans "Le Bulletin des GTV" (novembre‐décembre 2014) 

 

Auteurs 

Bertrand Weber (bertrand.weber@vetagro‐sup.fr), Loïc Commun (loic.commun@vetagro‐

sup.fr)  

Campus vétérinaire de Lyon, Equipe de Médecine des populations 

69280 Marcy l’Etoile 

Sincères remerciements aux GTV Bourgogne  

Résumé 

Dans  cette  étude,  nous  évaluons  l’effet  d’un  traitement  à  base  de  vincamine  et  de 

papavérine  administré  de  façon  systématique  aux  veaux  charolais  nouveau‐nés  issus  de 

vêlages eutociques (2 injections de 5ml à 0h et 6h après la naissance). 

En  comparaison  à  un  lot  témoin  (ayant  reçu  un  placebo),  nous  observons  que  le 

traitement  administré  entraine  une  augmentation  significative  du  GMQ  (+120g/j  sur  le 

premier  mois  de  vie)  ainsi  qu’une  amélioration  du  transfert  d’immunité  (+3,13g  d’IgG) 

lorsque  le  colostrum maternel  reçu  par  le  veau  est  de mauvaise  qualité.  L’appétit  et  la 

vigueur du veau sont également améliorés lors les animaux reçoivent un tel traitement. 

 

Introduction 

Les heures qui  suivent  la naissance  sont  critiques pour  le  veau nouveau‐né. En effet, 

celui‐ci présente, quelle que soit la difficulté de vêlage, une anoxie néonatale inévitable liée 

au passage d’un milieu intra utérin à un milieu de vie aérien[1]. 

Cette anoxie néonatale est d’autant plus  importante que  le vêlage est difficile. Dans  le 

cas d’une dystocie, des médicaments vétérinaires existent pour prévenir et  lutter contre  le 

manque  d’oxygène  au  niveau  cérébral.  Parmi  ces  traitements,  l’association  vincamine‐

papavérine est fréquemment utilisée pour provoquer une vasodilation cérébrale et protéger 

les tissus souffrant d’anoxie.  

Dans notre étude, nous nous sommes intéressés à l’impact d’un tel traitement, non pas 

lors  de  vêlage  difficiles,  mais  lors  d’un  usage  systématique  aux  veaux  issus  de  vêlages 

eutociques.    

Essaiterrain

InjectiondeCandilat®(TVM)aunouveau‐nélorsdevêlageseutociques:influencesurlesparamètreszootechniquesduveau

91  

Encadré : vincamine, papavérine et pharmacocinétique 

La vincamine et la papavérine sont des molécules bien absorbées  par voie intra musculaire. 

Leur disponibilité est rapide et importante (75% environ). Dans le torrent circulatoire, la 

papavérine est liée aux protéines plasmatiques à 90%. Le temps de demi‐vie est de l’ordre 

de 2h pour chacune de ces molécules (élimination par voie urinaire et fécale de la 

papavérine et rénale de la vincamine) [2]. 

En situation d’anoxie, les pompes ioniques membranaires ATP‐dépendantes fonctionnent 

mal. La vincamine a une action neuroprotective en bloquant les canaux sodium de la 

membrane plasmique,  limitant ainsi les déséquilibres ioniques liés à l’anoxie. En limitant ces 

mouvements d’ions, notamment au niveau du tissus cérébral, la vincamine retarde alors la 

lyse cellulaire[3, 4]. 

La papavérine est un vasodilatateur : elle augmente la concentration d’AMP‐cyclique dans la 

cellule en limitant la dégradation en 5’AMP grâce à l’inhibition de la phospho‐diestérase. Les 

protéines musculaires deviennent moins contractiles et la concentration en calcium 

intracellulaire diminue : le relâchement musculaire et la vasodilation sont alors favorisés[5]. 

Dans la présente étude, il est néanmoins impossible de dissocier le rôle précis de chacune 

des molécules injectées puisque le traitement est composé systématiquement d’une 

association de vincamine (7,5 mg/mL)  et de papavérine (6,77 mg/mL). 

 

 

Objectifs de l’étude 

Le but de ces travaux était d’étudier l’influence de l’utilisation de l’association vincamine‐

papavérine  (Candilat®,  TVM)  sur  les  paramètres  zootechniques  de  veaux  provenant  de 

vêlages eutociques, mais issus de race à risque en termes de complication de mise‐bas. Pour 

cela, une étude terrain a été mise en place, regroupant 120 veaux charolais, dont  la moitié 

ont reçu  le traitement Candilat® et d’autres un placebo à base de NaCl 0,9% (la répartition 

aléatoire  des  animaux  dans  chacun  des  2  lots  a  été  réalisée  grâce  à  un  programme 

informatique  de  randomisation).  Divers  paramètres  (transfert  colostral,  gain  de  poids, 

réflexe de succion, …) ont été mesurés durant  le début de vie des veaux afin d’estimer  les 

effets d’un tel traitement. 

 

Matériel et méthodes 

Animaux 

Pour réaliser cet essai (hiver 2013‐2014), 120 veaux ont été recrutés chez 6 éleveurs (20 

veaux  par  éleveur)  appartenant  à  la  clientèle  de  la  Clinique  Vétérinaire  des3  Sources  à 

Pouilly en Auxois (21). La sélection des éleveurs s’est faite sur plusieurs critères : 

92  

‐ Qualité et sérieux de l’élevage 

‐ Proximité avec la clinique vétérinaire 

‐ Période de vêlage courte et en début d’hiver 

‐ Intérêt des éleveurs pour les essais terrains 

Pour être inclus dans l’étude, le vêlage devait être eutocique, c’est‐à‐dire s’être déroulé 

de façon naturelle (pas ou très peu d’intervention de  l’éleveur, pas d’utilisation de moyens 

mécaniques types cordes, vêleuses etc…) et se terminer de façon heureuse (mère et veau en 

apparente bonne santé aux yeux de l’éleveur). 

 

Préparation des flacons et modalités de traitement 

Au démarrage de  l’étude, chaque éleveur disposait de 20 flacons opaques, d’apparence 

strictement identique, numérotés de 1 à 20. Dix de ces flacons contenaient du Candilat® et 

les 10 autres du NaCl 0,9%. L’étude a été réalisée en aveugle, l’éleveur ne connaissant pas la 

nature du produit  injecté à  tel ou  tel  veau. En effet, avant distribution à  l’éleveur,  les 20 

flacons,  numérotés  de  1  à  20,  ont  été  préparés  dans  notre  laboratoire,  en  répartissant 

aléatoirement  le  traitement  et  le  placebo  dans  les  flacons  à  l’aide  d’un  programme  de 

randomisation sous Excel©.  

Après  la distribution des flacons et des consignes aux éleveurs (fourniture d’une notice 

explicative  détaillée  à  chacun),  le  premier  veau  né  dans  l’élevage  et  inclus  dans  l’étude 

(vêlage eutocique) a reçu  le contenu du flacon numéro 1,  le deuxième veau,  le contenu du 

flacon numéro 2 et ainsi de suite jusqu’au vingtième et dernier veau de l’élevage. Lorsque le 

veau était inclus dans l’étude, il recevait deux injections de 5 mL du produit contenu dans le 

flacon correspondant : la première dès la naissance, juste après avoir effectué les premières 

observations et  la  seconde 6h après vêlage. Ce protocole d’injection est différent de celui 

préconisé dans  l’AMM  (4  injections à 0, 1, 6 et 12h après  la naissance) mais a été  retenu 

pour des raisons de simplicité (2 injections seulement à réaliser par l’éleveur). 

 

 

 

 

 

 

 

   

93  

Paramètres mesurés 

 

Figure 1. Plan expérimental de l'étude 

 

Les paramètres mesurés concernaient le transfert colostral, le poids des veaux à 0 et à 30 

j, le comportement du veau et son évolution sur 24h (Figure 1) 

Pour évaluer le transfert colostral, un échantillon de colostrum était recueilli sur chaque 

mère juste après la naissance du veau et congelé immédiatement par les éleveurs. Une prise 

de sang sur le veau était ensuite réalisée par le vétérinaire traitant entre 2 et 7 jours de vie, 

sur  tube  sec  avec  gélose  séparatrice  [6].  De  retour  à  la  clinique,  les  tubes  étaient 

immédiatement  centrifugés,  puis  congelés.  En  fin  de  saison,  l’ensemble  des  échantillons 

(colostrum + sang) ont été transférés au LVD 69, sous couvert de froid négatif, pour analyse 

des concentrations en IgG par Immunodiffusion Radiale (IDR). 

94  

Concernant  toutes  les observations  réalisées en  ferme, celles‐ci étaient consignées  sur 

un formulaire fourni aux éleveurs, en sachant qu’il y avait un formulaire par veau, portant un 

numéro de 1 à 20, comme les flacons de produit. 

Pour mesurer  le poids des  veaux, un  ruban barymétrique  avait  été  fourni  à  l’éleveur. 

Celui‐ci mesurait  le  tour  de  poitrine  juste  en  arrière  du  coude  immédiatement  après  la 

naissance ainsi qu’à 30 jours d’âge. Les valeurs lues étaient consignées dans les formulaires 

consacrés. 

Enfin,  deux  évaluations  comportementales  de  chaque  veau  étaient  réalisées  par 

l’éleveur,  à  0  et  24h  de  vie.  Pour  chaque  évaluation  comportementale,  une  note 

d’abattement et un score de succion étaient attribués au veau. Pour  l’abattement,  la note 

était de 1 si l’animal semblait abattu ou de 0 si celui‐ci était en forme et vigoureux. Le score 

de  succion  était  évalué  en  introduisant  2  doigts  dans  la  bouche  du  veau  et  en  notant  le 

réflexe de tétée de 0  (aucun réflexe) à 3  (reflexe normal). L’ensemble de ces observations, 

répétées à 0h et à 24h de vie, permettait par la suite de juger de leur évolution en fonction 

du traitement reçu par le veau. 

 

Matériel fourni aux éleveurs 

L’ensemble du matériel nécessaire à  l’étude a été  fourni aux 6 éleveurs au début de  la 

période de vêlage : 20 formulaires pour recueillir les informations, 20 pots à prélèvement de 

20ml  stériles  pour  les  échantillons  de  colostrum,    un  ruban  barymétrique,  le  matériel 

nécessaire  aux  injections  (40  seringues  de  5mL  et  40  aiguilles  18G  1’’½)  ainsi  que  les  20 

flacons contenant aléatoirement les solutions de Candilat® et de NaCl. 

 

Analyses IgG 

Les tubes de sang des veaux ainsi que les échantillons de colostrum des mères recueillis 

ont été apportés au LVD 69 pour dosage des concentrations en Immunoglobulines de classe 

G  (IgG).  La  technique  qui  a  été  utilisée  est  la  méthode  de  référence,  à  savoir : 

l’ImmunoDiffusion Radiale (IDR) sur gélose (contenant des Ig anti‐IgG bovines). 

 

Analyses statistiques 

Pour  juger de  la  significativité des  résultats obtenus,  la  technique du  test bilatéral de 

conformité de Student a été utilisée pour la comparaison des moyennes (après avoir vérifié 

la normalité de l’échantillon lorsque celui‐ci contient moins de 30 individus). 

   

95  

Résultats et discussion 

 

Inclusion des individus et données manquantes 

Aux termes de la phase terrain, des données complètes ont finalement été 

obtenues sur : 

‐ 77 veaux/120 pour les relevés de poids (3 veaux sont morts et 2 éleveurs sur 6 

n’ont malheureusement pas enregistrés les poids à 30 jours, soit 40 poids 

manquants) ; 

‐ 78 veaux/120 pour le transfert colostral (17 PS n’ont pas été réalisées et  25 

PS ont été faites en dehors de la fenêtre 2‐7 jours post‐vêlage) ; 

‐ 80 veaux/120 concernant les évaluations comportementales (2 éleveurs sur 6 

n’ont pas enregistrés ces informations). 

 

Gain Moyen Quotidien (GMQ) 

Le GMQ a été calculé de la façon suivante : (poids à 30j‐poids à la naissance)/30. 

Pour  le  lot Candilat®,  le GMQ a été de 1,23kg/j  (n=39) contre 1,11kg/j  (n=38) pour  les 

veaux du  lot témoin (figure 2). Le test bilatéral de conformité de Student (n>30) réalisé sur 

ces  résultats  retourne  un  p<0,01  ce  qui  signifie  que  les  deux moyennes  obtenues  sont 

significativement différentes. 

 

96  

 

Figure 2. Comparaison des GMQ de chaque lot 

 

La  double  injection  de  Candilat®  à  la  naissance  permet  donc  d’augmenter  le  gain  de 

poids, vraisemblablement par un accroissement de l’appétit du veau. Cependant dans cette 

étude, le poids des veaux n’a été mesuré qu’à J0 et à J30, ainsi cette différence de croissance 

peut être dûe à une prise de poids améliorée dans  les tout premiers  instants de vie  (prise 

colostrale)  ou  à  une meilleure  croissance  tout  au  long  des  30  jours  grâce  à  un meilleur 

démarrage.  

Transfert colostral 

Les IgG représentent plus de 85% des Ig totales transférées par le colostrum maternel et 

peuvent donc être utilisées comme témoin de la qualité du transfert colostral[7].La limite de 

concentration en IgG entre un colostrum de bonne ou de mauvaise qualité se situe, pour la 

race Charolaise, entre 90 et 110g/L selon les auteurs[8]. Dans notre cas, la moyenne en IgG 

de l’ensemble des colostrums recueillis (n=78) était de 102g/L. 

Pour effectuer les analyses statistiques, les colostrums des mères de notre étude, ont été 

classés en deux catégories :  

‐ les colostrums« riches » en IgG : c’est‐à‐dire les colostrums de mères ayant un 

taux d’IgG supérieur à 102g/L (n=35).  

0

0,2

0,4

0,6

0,8

1

1,2

1,4

1,6

Veaux ayant reçu le Candilat®

Veaux ayant reçu leplacebo

GMQ sur la période  0 ‐30j  (kg/j)

Un traitement au Candilat à la naissance,augmente le GMQ de 120g en moyenne 

(p<0.01)

97  

‐ les colostrums « pauvres » en IgG : c’est‐à‐dire les colostrums de mères ayant 

un taux d’IgG inférieur à 102g/L (n=43).  

Le  niveau  d’immunité  des  veaux  (lot  traité  /  lot  placebo)  a  ensuite  été  apprécié  en 

fonction de la qualité du colostrum reçu (tableau 1). 

 

   Lot Candilat®  

(n=38) Lot NaCl 

(n=40) 

p‐value 

Mères avec colostrum 

« pauvre » en IgG 

(<102g/L) 

(n=43) 

[IgG]colostrum mères (g/L)  73,14(1)  73,95(2) p>>0,1 

diff. non significative 

[IgG]sang veaux (g/L)  16,18(1)  13,05(2) p=0,09 

diff. significative 

Mèresavec un colostrum 

« riche »   en IgG (>102g/L) 

(n=35) 

[IgG]colostrum mères (g/L)  119,96(3)  122,65(4) p>>0,1 

diff. non significative 

[IgG]sang veaux (g/L)  17,24(3)  16,44(4) p>0,1 

diff. non significative  

Tableau 1. Comparaison des transferts colostraux 

Les résultats sont particulièrement intéressants pour les veaux ayant reçu un colostrum 

de moins bonne qualité que  la moyenne. En effet, malgré un  colostrum de  concentration 

moyenne en IgG très proche entre le lot traité et le lot ayant reçu le placebo (différence non 

significative, test de Student, p>0,1),  les veaux ayant reçu deux  injections de Candilat® sont 

mieux protégés que ceux ayant reçu le placebo (+3,13g/L d’IgG, différence significative, test 

de Student, p<0,1)  

Il n’y a par contre pas de différence  significative entre  les veaux  traités et ceux ayant 

reçu le placebo, lorsque le colostrum des mères était de bonne qualité. 

En conclusion  lorsque  les veaux reçoivent un colostrum maternel de mauvaise qualité, 

dû par exemple à une mauvaise conduite alimentaire des vaches avant vêlage, on parvient à 

augmenter  significativement  le  taux d’IgG  chez  les  veaux  (+24%), en  leur  administrant du 

Candilat®. 

Ce résultat trouve tout son  intérêt dans  le cas par exemple d’un élevage subissant une 

épizootie  d’entérites  néonatales  (GENN)  dans  laquelle  on  aurait mis  en  évidence  le  rôle 

d’une mauvaise qualité des  colostrums maternels. Dans  ce  genre de  situation,  seules des 

mesures d’hygiènes classiques sont généralement proposées, car peu de solutions s’offrent 

au vétérinaire et à l’éleveur pour améliorer rapidement cette qualité de colostrum. En effet, 

il  faudrait  agir  au moins  un mois  avant  vêlage  pour  influer  sur  la  qualité  colostrale  via 

l’alimentation, délai incompatible avec la nécessité de gérer urgemment une telle situation. 

98  

En de pareilles circonstances, 2  injections de 5mL de Candilat®, à 0 et 6h de vie, à tous  les 

veaux  naissants,  permet  d’augmenter  leurs  défenses  immunitaires malgré  un  colostrum 

maternel de qualité moindre. Les veaux sont alors mieux protégés et cela peut contribuer à 

diminuer le nombre de cas d’animaux malades. 

Pour faire  le  lien entre  les constations précédentes sur  le GMQ et  les conclusions sur  le 

transfert  colostral,  Robinson  et  al.[9]ont  montré  que  les  concentrations  sériques  en 

immunoglobulines dans  les 24‐48 premières heures de vie de  l’animal étaient une  source 

significative de variation du GMQ à 180 jours. Cela explique sans doute les effets sur le GMQ 

évoqués  précédemment :  les  veaux mieux  protégés  par  les  IgG maternelles  ont  aussi  un 

GMQ plus important. 

 

Comportement du veau 

Après  analyse  des  livrets  d’observations  remplis  par  les  éleveurs,  les moyennes  des 

scores de  succion et des notes d’abattement ont été calculées pour chacun des deux  lots 

(Candilat® et NaCl) (tableau 2). 

 

   Candilat® 

(n=40) NaCl

(n=40) 

p‐value 

Score de 

succion (/3) 

0h  1,62  1,95  p=0,07 diff. significative 

24h  2,62  2,69  p>>0,1 diff. non significative 

Note 

d’abattement 

0h  0,23  0,10  p=0,06 diff. significative 

24h  0,05  0,05  p>>0,1 diff. non significative 

 

Tableau 2. Observations éleveurs 

Les constats sont  les mêmes pour  le score de succion ou  la note d’abattement : malgré 

un  score  à  la  naissance  significativement  moins  bon  pour  le  lot  Candilat®  (différence 

significative, test de Student, p<0,1), les scores deviennent similaires pour les 2 lots à 24h de 

vie  (différence non significative, Test de Student, p>0,1) :  les veaux traités au Candilat® ont 

donc en quelques sortes « rattrapé » leur retard. 

Lorsqu’un  veau  nouveau‐né  (juste  après  la  naissance)  semble  abattu  ou  présente  un 

réflexe  de  succion  diminué  ou  absent,  et  ce malgré  un  vêlage  s’étant  déroulé  de  façon 

eutocique, l’utilisation de Candilat® selon le protocole décrit précédemment (2 injections de 

5mL à 0 et 6h), semble donc pertinente pour augmenter  la vigueur et  l’appétit du veau et 

ainsi permettre un meilleur « démarrage » de celui‐ci. 

99  

Conclusion 

Le veau nouveau‐né subit de façon physiologique et systématique une anoxie néonatale 

durant quelques heures juste après la naissance, et ce même lorsque le vêlage se déroule de 

façon eutocique. 

L’injection  de  Candilat®  de  façon  systématique  à  0  et  6h  post‐vêlage,  semble  lutter 

contre cette anoxie physiologique. Certes, aucune mesure de gaz sanguin n’a pu être incluse 

dans  le protocole pour  l’évaluer de façon précise, car cela est  incompatible avec une étude 

terrain  (le  délai  entre  le  prélèvement  et  l’analyse  devant  être  de  quelques  secondes 

seulement pour être fiable). En revanche, des effets ont été constatés sur les performances 

zootechniques. Pour  information,  le cout du  traitement  testé  (2  injections contre 4 prévus 

dans l’AMM) revient à environ 6€ HT/veau. Un tel protocole améliore la vigueur et l’appétit 

du veau. Cela se traduit aussi par une augmentation du gain de poids moyen quotidien dans 

le premier mois de vie, et par une meilleure protection immunitaire de l’animal dans le cas 

de colostrum maternel de mauvaise qualité. 

Ces  observations  offrent  donc  des  perspectives  intéressantes  pour  les  éleveurs 

notamment  en  termes  de  croissance  des  veaux  et  dans  la  gestion  d’épizooties  pour 

lesquelles la qualité du colostrum est mise en cause. 

 

Bibliographie 

1‐  RAVARY‐PLUMIOËN B. Resuscitation procedures and life support of the newborn calf. Revue de Médecine Vétérinaire. 2009. 160 (8‐9): 410‐419. 

2‐  AUROUSSEAU M. Aspect toxicologique de la recherche médicamenteuse : application à la vincamine. 1972, Ann. Uni. Aeres. 67‐72. 

3‐  ERDO SL, MOLNAR P, LAKICS V, BENCE JZ,TOMOSKOZI Z. Vincamine and vincanol are potent blockers of voltage‐gated Na+ channels. European Journal of Pharmacology. 1996. 314: 69‐73. 

4‐  ESCURET E. La cascade ischémique cérébrale. Annales Françaises d'Anesthésie Réanimation. 1995. 14: 103‐113. 

5‐  LOTH T. Toxicité hépatique de la papavérine. Vol. Thèse de médecine. 1986. Amiens. 6‐  MCGUIRK SM,COLLINS M. Managing the production, storage and delivery of 

colostrum. Vet Clinics Food Animal Practice. 2004: 593‐603. 7‐  MANGUIN S. Transfert de l'immunité colostrale chez le veau. 2002. Faculté de 

médecine de Créteil. 92. 8‐  ALLEMAND H. Evaluation par la technique d'immunodiffusion radiale de la qualité du 

colostrum et du transfert colostral chez les bovins. 2008. Université Claude Bernard Lyon I. 149. 

9‐  ROBINSON J. Effects of passive immunity on growth and survival in the dairy heifer. Journal of Dairy Science. 1987. 71 (5): 1283‐1287. 

   

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WEBER Bertrand

Effets d’un traitement vincamine-papavérine, sur les performances zootechniques des veaux charolais lors de vêlages eutociques

Thèse d’Etat de Doctorat Vétérinaire : Lyon, le 26 septembre 2014

RESUME :

Le but de nos travaux était d’étudier l’influence de l’utilisation de l’association vincamine-papavérine

(Candilat®) sur les paramètres zootechniques de veaux provenant de vêlages eutociques, mais issus de race à

risque en termes de complication de mise-bas. Pour cela, une étude terrain a été mise en place, regroupant 120

veaux charolais, dont la moitié ont reçu le traitement Candilat® et d’autres un placebo à base de NaCl 0,9%.

Divers paramètres (transfert colostral, gain de poids, réflexe de succion, …) ont été mesurés durant le début de

vie des veaux afin d’estimer les effets d’un tel traitement.

Concernant nos résultats, nous avons enregistré, chez les veaux ayant reçu le médicament : un

meilleur GMQ sur 30 jours (+120g/jour), témoin d’une meilleure tétée, un transfert colostral amélioré lorsqu’un

colostrum maternel de mauvaise qualité est reçu (+3,13g/L de sang d’IgG), ainsi qu’un appétit et une vigueur

améliorés dans les 24 premières heures de vie.

Ces observations offrent des perspectives intéressantes pour les éleveurs notamment en termes de

vitesse de croissance des veaux et dans la gestion d’épizooties pour lesquelles la qualité du colostrum est mise en

cause.

MOTS CLES : - Vincamine - Papavérine - Bovins - Néonatalogie

JURY : Président : Monsieur le Professeur Pierre COCHAT 1er Assesseur : Monsieur le Docteur Loïc COMMUN 2ème Assesseur : Monsieur le Docteur Laurent ALVES DE OLIVEIRA

DATE DE SOUTENANCE : 26 septembre 2014

 

ADRESSE DE L’AUTEUR

        5, impasse des Gavroches CIDEX 55 21550 LADOIX SERRIGNY