Spectrométrie de masse –Introductionmerlier/BT06P14/TP BT06 2014.pdf · SPE – C18 : -...

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Spectrométrie de masse – Introduction Intérêts de la Spectrométrie de masse : Sensibilité, limite de détection faible ( fento mole dans certaines conditions ) Variétés des applications : analyses chimiques quantitative et qualitative réaction ions molécule, cinétique des réactions. Progrès technologique rapide 1

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  • Spectrométrie de masse – IntroductionIntérêts de la Spectrométrie de masse :

    • Sensibilité, limite de détection faible ( fento mole dans certaines conditions )

    • Variétés des applications : analyses chimiques quantitative et qualitative réaction ions molécule, cinétique des réactions.

    • Progrès technologique rapide

    1

  • Spectrométrie de masse –

    Introduction - Principes

    - Un spectromètre comprend :

    - Système d’introduction ( GC, LC , sas d’intro direct, … )

    - Source d’ionisation

    - Analyseur ( un ou plusieurs )

    - Détecteur pour compter les ions

    2

    - Détecteur pour compter les ions

    - Système de traitement de donnée

    Introduction ,GC, LC

    Ionisation ,EI, CI

    ESI, APCIFAB, …

    AnalyseurSQ D,TQD,

    EB, TOFDétecteur Logiciel

  • Spectrométrie de masse –

    Introduction - Principes

    Principes de la MS :

    • 1er étape : Produire des ions

    • La quantité de fragments produit dépend de la « force » de l’ionisation

    3

    Les ions sont ensuite séparés d’après leur masse et leur charge dans le système dispersif

    Ils sont ensuite détectés.

    Introduction ,GC, LC

    Ionisation ,EI, CI

    ESI, APCIFAB, …

    AnalyseurSQ D,TQD,

    EB, TOFDétecteur Logiciel

  • Spectrométrie de masse –

    Analyse de Biomolécules- Electrospray (ESI)

    4

  • Spectrométrie de masse - QQQ

    - MS : mode « Full scan »

    Balayage d ’Ions moléculaires

    Introduction ,GC, LC

    Ionisation ,EI, CI

    ESI, APCIFAB, …

    AnalyseurSQ D,TQD,

    EB, TOFDétecteur Logiciel

    5

    Balayage d ’Ions moléculaires

    Balayage d ’ions fragments

    - MS : mode « Product ION »

  • Ion moléculaire ou pseudoIon moléculaire ou pseudo --moléculairemoléculaire

    Ion Ion pseudopseudo--moléculairemoléculaire : :

    �� En mode En mode positifpositif : : ajoutajout d’und’un proton sur M : (M+H)proton sur M : (M+H) + + (masse : M+1, charge+1)(masse : M+1, charge+1)

    �� En mode En mode négatifnégatif : : perteperte d’und’un proton : (Mproton : (M--H)H) -- (masse : M(masse : M--1, charge 1, charge --1)1)

    ElectrosprayElectrospray

  • 1. Massifs isotopiques

    • Isotopes : atomes d’un même élément qui contiennent un nombre identique de protons mais un nombre différent de neutrons

    • Abondance isotopique = pourcentage des isotopes d’ un élément dans la nature

    • Masse moyenne pondérée (MM) = Masse atomique appara issant sur le tableau périodique et qui tient compte des isotopes et de leur abondance

    Exemple : nbre de nbre deprotons : nucléons :

    nbre nbre de nbre masse abondance abondanceatomique masse neutrons isotopique en % (1) relative (2)

    nbre nbre de nbre masse abondance abondanceatomique masse neutrons isotopique en % (1) relative (2)

    Chlore-35 17 35 35-17 = 18 34,97 75,8% 100Chlore-37 17 37 37-17 = 20 36,97 24,2% 32,5

    Masse moyenne pondérée du chlore = ( 0,758 * 34,97 uma) + (0,242 * 36,97 uma) = 35,454 uma

    7

    (1) = nombre moyen d’isotope cité pour 100 atomes de l’élément(2) = nombre moyen d’isotope cité pour 100 isotopes majoritaires

  • Principaux isotopes en chimie organique

    Elément isotope % Masse isotopique

    isotope % Masse isotopique

    isotope % Masse isotopique

    Masse moyenne

    C 12C 100 12.0000 13C 1.1 13.0033 12.011

    H 1H 100 1.0078 2H 0.015 2.0140 1.0079

    N 14N 100 14.0031 15N 0.37 15.0001 14.0067

    O 16O 100 15.9949 17O 0.04 16.9991 18O 0.20 17.9992 15.9994

    S 32S 100 31.9721 33S 0.789 32.9715 34S 4.44 33.9679 32.066

    F

    Cl

    19F

    35Cl

    100

    100

    18.9984

    34.968837Cl 31.98 36.9659 35.453

    Br 79Br 100 78.9183 81Br 97.28 80.9163 79.904

  • Calcul de masses exactes

    282

    nbre masse masse A isotopique moyenne

    Hydrogène-1 1 1.0078 1.0079Hydrogène-2 2 2.0140

    Carbone-12 12 12.0000 12.011Carbone-13 13 13.0034

    Soit la molécule d’eicosane C 20H42 :

    Masse exacte M :(12C20 1H42)

    (20 * 12.000)Masse exacte M+1

    Masse exacte M+1

    Masse moyenne : (20 * 12.011)

    + (42 * 1.0079) = 282,55

    (20 * 12.000)+ (42 * 1.0078) = 282,33

    avec un 13C : (19 * 12.000)

    + (1 * 13.0034)+ (42 * 1.0078) = 283,33

    Masse exacte M+1avec un 2H :

    (20 * 12.000)+ (41 * 1.0078)+ (1 * 2.0140) = 283,33

    La différence entre masse exacte M et masse moyenne MM augmente avec la taille de la molécule : ∆∆∆∆ entre MM et M = ±±±± 1 Da / 1500 Da

  • Calcul de l’abondance relative des satellites isotopiques M+1, M+2 pour

    des petites molécules

    Typed’élément Caractéristiques Exemple Abondance relative du 2ème isotope*

    1! Isotope ou F -Q plusieurs isotopes I -

    dont un est majoritaire P -(A > 99,9%) H 0,015

    Q+1 Isotope M+1 C 1,08 non négligeable N 0,37

    * Abondancede l’isotope majoritaire = 100

    analyse de spectres de masse 10

    O 0,2Q+2 Isotope M+2 S 4,43 non

    négligeable Cl 31,98Br 97,28

    M+1 ≈≈≈≈ (1,08 . Nombre de C) + ( 0,37 . Nombre de N )M

    M+2 ≈≈≈≈ (31,98 . Nombre de Cl) + ( 4,43 . Nombre de S ) + ……M

    Satellite M+1 :

    Satellite M+2 :

    100

    100

  • Massifs isotopiques complexes

    Exemple : Allure du massif isotopique de molécules contenan t 2 Cl, 3 Cl, 4 Cl

  • En Conclusion :

    Chaque formule brute est associée à un massif isoto pique qui lui est propre

    Pour des molécules de masse < 500 Da :

    � L’abondance des pics « M+1 » renseigne sur le nombre d’éléments Q+1 :

    M+1/M ≈≈≈≈ (1,08 . Nombre de C) + ( 0,37 . Nombre de N ) /100

    � L’abondance des pics « M+2 » et suivants renseigne su r la présence d’éléments Q+2 (S, Si, Se, Cl, Br) ainsi que le nombre de ces atomes :

    analyse de spectres de masse 12

    Si, Se, Cl, Br) ainsi que le nombre de ces atomes :

  • Spectrométrie de masse –

    Analyse de BiomoléculesQ1 Q2 Q3

    SourceESI ESI

    Détecteur

  • Spectrométrie de masse - QQQ

    - Possibilité de la spectrométrie de masse pour l’an alyse de biomolécules.

    - MS², quantification.

    Balayage d ’Ions moléculaires

    14

    Balayage d ’Ions moléculaires

    Balayage d ’ions fragments

  • Spectrométrie de masse –

    Quantification

    La La sensibilité = recherche de la limite de détectio n(LOD) et Quantification (LOQ).

    En analyse Qualitative , la LOD est la quantité minimal d’échantillon nécessaire àl’obtention d’un spectre de masse de qualité.

    En analyse Quantitative la LOD est la quantité minimal détectable d’une molécule parrapport au bruit de fond.

    15

    LOD = 3 S/N

    LOQ = 10 S/N

    Plusieurs paramètres conditionnent la LOQ :

    - Paramètre de source du spectromètre de masse

    - La technique d’ionisation

    - les solvants et tampon en ESI

  • Spectrométrie de masse –

    Analyse de Biomolécules

    MRM, des limitations …

    1. La molécule doit s’ioniser, surtout en ESI2. La molécule doit fragmenter, mais pas trop3. Linéarité de 4 ordres de grandeurs ( TOF) jusqu’à 6 (TQD )3. Linéarité de 4 ordres de grandeurs ( TOF) jusqu’à 6 (TQD )4. Précision des mesures : 10%5. LOD , LOQ variable en fonction des molécules, des appareil et des modes

    d’acquisition.6. Répétabilité des aires : mauvais d’un jour à l’autre

    1. lié à l’encrassement2. Effet matrice en ESI ( pas en EI ).

    On préfère toujours la solution de l’étalon interne à la courbe de calibration externe

    Idéalement, l’étalon interne est la molécule marqué iso topiquement ( Testostérone D3, Carnitine D3.

  • Spectrométrie de masse –

    Quantification

    La spectrométrie de masse apporte :La spectrométrie de masse apporte :

    - Spécificité

    - La sensibilité

    17

    La La spécificité est obtenu par :est obtenu par :

    - La préparation de l’échantillon pour séparer la molécule cyble des interférences.

    - Le spectromètre de masse en lui même

    La La sensibilité est obtenu par :est obtenu par :

    - La technologie employée

    - Les modes du spectromètre de masse

  • Spectrométrie de masse –

    Quantification La La spécificité est obtenu par :est obtenu par :

    - La purification de l’échantillon

    - Extraction ( liquide liquide )

    - SPE / MIP

    - La dérivatisation : augmentation du poids de la molécule d’intêret et ciblage d’ion caractéristique de masse supérieur.

    - Le spectromètre de masse.

    18

    - Le spectromètre de masse.

    - Augmenter la résolution

    - R= 2000 TQD

    - R= 20 000 Q-TOF

    - - mode SRM ( Single Reaction Monitoring ) .

  • Spectre “Produit” de l’Atrazine à Ce =5, 19,33,47 eV

  • Spectre “Produit” de l’Atrazine-D5 à Ce =5, 19,33,47 eV

  • Transition M.R.M pour l’ATRAZINE et son étalon interne

    MRMCompound Name ISTD? Precursor Ion MS1 Res Product Ion MS2 Res Dwell Fragmentor Collision Energy Cell Accelerator Voltage PolarityATRAZINE-D5 True 221.1 Unit 179.1 Unit 200 120 17

    7 PositiveATRAZINE-D5 True 221.1 Unit 69.1 Unit 200 120 41

    7 PositiveATRAZINE False 216.1 Unit 174.1 Unit 200 110 13

    7 PositiveATRAZINE False 216.1 Unit 104 Unit 200 110 29

    7 Positive

  • HPLC : colonne type C18 2.1 x 50 mm, 1.8µm

    Debit 500µl/min Temps B%

    Solvant A H2O 0.1% FA 0 10

    Solvant B Méthanol 3 904 90

    4.01 105 10

    QQQ.Vcap 3500 VGAS Temp 350 °CDrying gaz 12 L/minNebuliseur 45 psiFragmenteur 120 VESI Positif

  • Qualitatif

    1. Définir les Transitions MRM -> Spectre « Produit »1. Isolation de la molécule sur MS12. Fragmentation sur MS2 ( chambre de collision à l’Azote)3. Définition des fragments ( intérêt et intensité) pour la quanti et la qualification.

    2. Définir les paramètres optimaux de sources.

    3. Réaliser la Courbe de calibration1. Toujours la même quantité d’étalon interne dans les 200µl2. Faire varier la quantité2. Faire varier la quantité

    4. Comparer le rapport de l’aire de l’atrazine / Aire de l’atrazine D5.

  • Quantitatif

    IS-1 ( 1,9mg/L) : Diluer 100µl IS-0 (19mg/L) dans 900µl MEOH

    Courbe étalon :

    -Préparer les LEVEL : 20,10,5,2,0.5,0.1ng dans 200µl de MeOH- Recalculer la concentration réel après ajout IS.

    Mélanger : -180µl solution STD-Lx- 20µ solution IS-1

    Echantillon :

    - Prélever 250 ml Eau de ville- Ajouter 20 µl IS-1

    SPE – C18 :

    - Equilibrer : 2x5 ml Acétone , 2x5ml H2O MilliQ- Percolation : 250 ml D’eau +IS- 20µ solution IS-1

    -Injecter 20µl en LC-MSMS

    - Percolation : 250 ml D’eau +IS- Lavage : 6 ml H2O MilliQ- Séchage 10 min- Elution : 3x3 ml Acétone dans ballon

    Evaporation: - Evaporation sous vide

    Reprise: - Reprendre par 200 µl de MeOH

    LC-MS/MS: - Injecter 20µl en LC-MSMS

  • Quantitatif

    1. Etablir une courbe de calibration avec toujours la même quantité d ’étalon interne.2. Concentré l’échantillon avec la même quantité d’étalon interne que pour la calibration3. Comparer le rapport A Atrazine / A IS pour obtenir la quantité d’étalon interne.

  • Cpd # Formula RT Mass [M+H]+

    DEDIA C3H4N5Cl 145.0155 146.0227

    DIA C5H8N5Cl 173.0468 174.0540

    DEA C6H10N5Cl 187.0625 188.0697

    Quantitatif

    DEA C6H10N5Cl 187.0625 188.0697

    ATRAZINE C8H14N5Cl 5.01 215.0938 216.1010

    ATRAZINE-D5 C8H9D5N5Cl 5.02 220.1252 221.1324