Place des nouveaux outils dans le diagnostic des ... · • 562 flacons avec un seul morphotype au...
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Etienne Carbonnelle
Service de Microbiologie
HEGP
Paris
Vendredi 20 juin 2014
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XIX ème journée de Microbiologie Clinique du COL.BVH
Place des nouveaux outils dans le diagnostic des bactériémies :
Biologie moléculaire, MALDI-TOF-MS
Diagnostic
Meilleure prise en charge
Antibiothérapie ciblée et adaptée
Limiter la transmission (BMR, MST, …), gérer l’isolement
Durée d’hospitalisation
Suspicion clinique de bactériémie
Techniques idéales
Rapide
Faible coût
Sensible
Spécifique
Universelle
Simple
Identification Résistance aux anti-microbiens
Apport de la biologie moléculaire
2006-2007 : Septifast
Les hémocultures vont elles disparaître ?
Rapidite
Indépendant du traitement antibiotique
Sensible
Intérêt pour la détection des champignons
Multiplex PCR Temps réel
Mussap M,et al., J Chemother. 2007 Oct;19 Suppl 2:31-4.
Ce qui se dit :
Hémoculture
aérobie/anaérobie
résine/charbon
Sang
Sérum
Culture : ATBg et Id
PCR Temps réel spécifique (Coxiella, Bartonella,
Brucella, …)
Multiplex PCR Temps réel
PCR/Electrophorèse
PCR/Séquençage
+/- pré-culture
(quelques heures)
Diagnostic moléculaire des bactériémies
PCR Temps réel spécifique
Multiplex PCR Temps réel
FISH
Puce
PCR/Hybridation
PCR/Séquençage
PCR/ESI-MS
Liesenfeld et al., Eur J Microbiol Immunol, 2014
Délai de rendu des résultats en fonction des
techniques de diagnostic des bactériémies
Limites de la biologie moléculaire
Faux négatifs
Extaction
Présence d’inhibiteurs
Faible inoculum
Faible volume
Faux positifs
Persistance d’ADN bactérien
Contaminations
Bactériémie post prandiale
Non adapté aux prélèvements polymicrobiens
Panel de microorganismes identifiables restreint
Peu de détection de la résistance aux antibiotiques
Ne renseigne pas sur le caractère viable des microorganismes
Absence de validation clinique
Evaluation clinique
Utilisable en routine ?
De la galerie happy….
….à la spectrométrie de masse
1970 2010
http://www.microbe-edu.org/ http://www.microbe-edu.org/ Pr. A. Philippon
J1
J2 ou + Identification bactérienne, antibiogramme
Résistance Sérologie Autres BM
Identification
phénotypique
J1 Aspect des colonies
Examen direct
Coloration
Identification bactérienne
Place du MALDI-TOF ?
H24 :
H48 ou + Identification bactérienne, antibiogramme
Résistance Sérologie Autres BM
Identification
Micro-organisme
Antibiogramme
2 minutes
Tests
phénotypiques
Acquisition des spectres Dépôt des échantillons
Identification
Banque de données
A1 : Klebsiella pneumoniae
A2 : Staphylococcus saprophyticus
A3 : etc…..
Analyse des spectres
Transfert des données au
système informatique du laboratoire
Exemple d’identification bactérienne
à partir de colonies entières
matrice
analytes
Irradiation laser
+
+ +
+
+ + +
+
+ +
+ +
+
+ +
+ +
+
+
+
Désorption Ionisation
Analyseur TOF
m/z In
ten
sité
rela
tive
Détecteur linéaire
Grille
d’extraction
x
Zone de vol libre de champ Zone d’accélération
10-30 kV -20 kV
Cib
le m
éta
lliqu
e
Source MALDI TOF Détection
TOF : Time Of Flight
D’après les feuillets de Biologie
VOL N° 295 - JUILLET 2010
Empreintes spectrales obtenues à partir de colonies entières
de cinq espèces bactériennes différentes (Matrice -CHCA).
Utilisation en routine
Laboratoires équipés de MALDI-TOF-MS
Toutes les identifications
- soit sur colonies
- soit directement à partir de Prélèvements
- Hémocultures
- Urines
- ...
Les difficultés
Suspension de protéines issues de bactéries et des protéines “contaminantes”
Limites du MALDI-TOF MS : ne reconnait que les protéines majoritaires
Flacon d’hémoculture, les protéines majoritaires sont:
Protéines du globule rouge : hémoglobine
Protéines du sang, du pus, de l’urine etc…
Présence de résine ou de charbon
Masquent les protéines des bactéries
Nécessité de concentrer les bactéries
Phase pré-analytique
Obligation de séparer les bactéries des autres constituants avant
d’extraire leurs protéines et/ou améliorer l’extraction de leurs protéines
Les premiers résultats
• Bactec 9240, Bactec + aerobic et Lytic 10 anaerobic
• Centrifugation basse vitesse de 1.5ml pendant 5 min.
• Surnageant mélangé avec 1m d’eau distillée stérile
• Centrifugation haute vitesse pendant 5 min. pour culoter les bactéries
• 5µl of d’agent d’extraction pendant 5 min.
Protocole 1: TFA
Protocole 2: acide formique
• Centrifugation haute vitesse 2 min pour retirer le matériel non lysé
• Identification OK si > 2/4 spots avec score >1.9
D’après B. La-Scola
• 584 flacons d’hémoculture testés (resultats comparés à l’identification MALDI-MS sur
colonies et/ou phenotypique)
• 562 flacons avec un seul morphotype au Gram sur le flacon
• Protocol 1 TFA:
• Gram -: 117/124 (94%) identified
• Gram +: 72/197 (37%) identified
• Protocol 2 acide formique:
• Gram - : 87/100 (87%) identified
• Gram +: 94/140 (67%) identified
• Problèmes:
• Une seul mauvaise identification (S. marcescens identifié comme A. hydrophila)
• Peu efficace pour les Streptococcus sp. (4/17, 23%)
• Lent!!!….
Les premiers résultats
D’après B. La-Scola
Détection des micro-organismes à partir des prélèvements :
les hémocultures
D’après M. Drancourt, CMI 2010
L’optimisation
• Comparaison aux protocoles existants
Gram positive
(n = 31)
Gram negative
(n = 91)
Overall
(n = 122)
Protocol 6 26 (83.8%) 89 (97.8%) 115 (94.3%)
LaScola et al. (14) 16 (51.6%) 80 (87.9%) 96 (78.7%)
Ferroni et al. (9) 20 (64.5%) 44 (48.3%) 64 (52.5%)
Greub et al. (19) 18 (58.1%) 12 (13.2%) 30 (24.6%)
Ferreira et al. (8) 19 (61.3%) 17 (18.7%) 36 (29.5%)
Stevenson et al. (22) 19 (61.3%) 9 (9.9%) 28 (23%)
D’après B. La-Scola
Mycose, April 2014
A partir des hémocultures : PNA-FISH YTL/Sepsityper/Culture
50 hémocultures positives à levures au Gram
MALDI
ITS rRNA seq
PNA-FISH YTL : 48 (96%) (littérature : entre 96 et 99%)
MALDI Sepsityper : 28 (56%) score >1.8 (littérature : 42 à 50%)
38 (76%) score >1.5
Amélioration à faire sur le MALDI Sepsityper
Hémocultures et MALDI-TOF
Efficace dans l’ensemble
Différents protocoles validés (commerciaux et maison)
En routine dans certains laboratoires
MAIS
Prend du temps technique
Opérateur dépendant
Peu efficace sur les mélanges
Mêmes difficultés que pour les identifications sur colonies
Plus mauvais résultats sur les flacons avec charbon
Identification après une courte incubation sur milieux solides
Incubation pendant 3 à 6h
sous CO2
Flacons détéctés positifs
1 goutte
CMI, 15 may 2014
SepsiTyper kit
Id espèce : 52,6%
Id genre : 71,1%
Toutes espèces confondues
165 Hc, 28 espèces différentes, 10 cultures polymicrobiennes, 13 faux positifs
Résultats :
300 flacons ont été inclus, dont 17 faux positifs et 5 polymicrobiens
Les identifications sont présentées par rapport à l’identification finale
Pour 168 : score > 2
-73/126 Staphylococcus sp.
-72/78 Entérobactéries
-1/8 Levures
-9/15 Streptococcus sp.
-2/5 Pseudomonas sp.
-1/1 Acinetobacter sp.
-2/3 Bacillus sp.
-8/9 Enterococcus sp.
Pour 42 : score > 1,7
-29/126 Staphylococcus sp.
-3/78 Enterobactéries
-2/10 Anaérobies
-4/15 Streptococcus sp.
-2/5 Pseudomonas sp.
-1/3 Bacillus sp.
-1/9 Enterococcus sp.
Pour 68 : score < 1,7
-44/126 Staphylococcus sp.
-3/78 Entérobactéries
-8/10 Anaérobies
-7/8 Levures
-2/2 Corynebactéries
-2/15 Streptococcus sp.
-1/5 Pseudomonas sp.
-Autres : 1
59% 14% 24%
D’après J-B. Zabbe, L. Zanaro, F. Mégraud, E. Bessède
Laboratoire de Bactériologie, CHU de Bordeaux
Résultats présentés aux JNI, juin 2014
Espèce Genre Absence d’identification
A : Méropénème
B : Témoin –
C : E. coli NDM-1
D : A. baumanii NDM-1
JCM 2012, 50(7)2441-2443
A
B
C
D
-26 +18
358,5 384,4 406,4 424,5
Tests rapides résistance antibiotiques
En cours d’étude
Détection mecA pour les S. aureus
(Cepheid, Alere)
Détection BLSE pour les entérobactéries
Identification
Conclusions
Nouvelles approches techniques
Biologie Moléculaire : sur l’échantillon primaire
dans certaines conditions ciblées
Multiplex PCR temps réel
MALDI : sur hémocultures
incubation courte sur milieux ou directement sur flacon
couplé aux tests simples pour la résistance
Progrès à faire
Juste prescription
Réalisation des hémocultures (volume de remplissage)