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Manipulation de l’ADN IFT 6100, A2003, Mikl ´ os Cs ˝ ur¨ os Universit ´ e de Montr ´ eal Biotechnologie 1

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Manipulation de l’ADN

IFT 6100, A2003, Miklos CsurosUniversite de Montreal Biotechnologie 1

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Jouer avec les brins

– double → simple : casser les liaisons hydrogenedenaturation (par chaleur ou agents chimiques)

– simple → double1. hybridation appariement de deux brins complementaires2. enzymes (polymerase) pour complementer un brin (dans la presence

de nucleotides a incorporer)

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Brins 2

hybridation : temperature de fusion (melting temperature) — 50% de ADNdenatureTm depend de la sequence [G-C plus fort que A-T], et conditions experimentales(agents chimiques)approximation par formule de Wallace Tm = 2{A, T} + 4{C, G} [enCelsius]

polymerase : construit le brin 5′ → 3′ a partir d’une region deja complementee(primer)

primer aleatoire (tous 6mers) ou selectionne

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Comment couper l’ADN en petitsmorceaux ?

1. au hasard (p.e., sonication — par ondes de haute frequence,cisaillement/shearing)

2. moins hasard (repetable) : enzymes de restriction

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Cisaillement

cisaillement hydrodynamique : les molecules s’accelerent en approchantla region etroite : les forces d’allongation brise les molecules

GeneMachines

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Enzymes de restriction

endonuclease — coupe l’ADN a un site specifique (4–8 pb typiquement)

Nom SiteAluI AG.CTEcoRI G.AATTCHindIII A.AGCTTcentaines d’autres. . .

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ER 2

site d’un ER est un palindrome : le complement inverse a la meme sequence

-v--->

5’ GAATTC

CTTAAG 3’

<---ˆ-

sticky ends⇒ hybridation d’amorces compatibles (d’origines differentes)+ enzyme de ligase pour les liaisons covalentes

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ER 3

Site reconnu et point de clivageNom SiteKasI G.GCGCCNarI GG.CGCCEheI GGC.GCCBbeI GGCGC.CHaeII RGCGC.Y

(R = {A, G}, Y = {C, T})

KasI – BbeI sont isoschisomeres)HaeII et BbeI sont compatibles : v. sticky end GGCGC

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Clonage : id ee

Pour creer des copies de fragments d’ADN (amplification in vivo)

1. fragments d’ADN (apres coupure par ER)2. insertion dans vecteur d’une cellule hote (bacterienne ou virale)3. culture et purification

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Clonage

Lodish et al. Molecular Cell Biology, 4th ed., W. H. Freeman 1999 ; Access Excellence

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Plasmid

Caracteristiques necessaires :

(Ins) site de restriction (avec sticky ends) pour insertion(Pla) criblage pour cellules avec plasmids(Frg) criblage pour plasmids avec fragments inseres

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pBR322

(Ins) : site de BamHI (375), (Pla) : bla, (Frg) : copie + tet

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pUC18

(Ins) : Multiple Cloning Site, (Pla) : bla, (Frg) : lacZ (bleu/blanc)

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Multiple Cloning Site

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Vecteurs

Vecteur H ote Taille d’insert (×1000 pb)M13 E. coli 1–4Plasmid E. coli 1–5Phage λ E. coli 2–25Cosmid E. coli 35–45BAC E. coli 50–300YAC S. cerevisiae 100–2000

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BAC

CHORI BACPAC

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Polymerase Chain Reaction

Lodish et al. Molecular Cell Biology, 4th ed., W. H. Freeman 1999 ; Access Excellence

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Sequencage — m ethode Sanger

Lodish et al. Molecular Cell Biology, 4th ed., W. H. Freeman 1999 ; Delarue et Furelaud, Jussieu

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Sequencage automatique

→ marquers fluorescents, multiplex, capillaires, cycleurs thermiques

tailles jusqu’a 1000 pb (typiquement 600 pb)

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Electrophor ese

mesure la taille d’un fragment ADN+ + + + + + + +

Gel

– – – – – – – –

mov

emen

t of D

NA

laser

camera

electric charge

tagged DNA

time

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Electrophor ese en s equencage

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