Année académique : 2013-2014

i

A

REPUBLIQUE DE COTE D'IVOIRE UNION - DISCIPLINE - TRA V AIL

MINISTERE DE L'ENSEIGNEMENT SUPERIEUR ET DE LA RECHERCHE SCIENTIFIQUE

u:-;l\'EHSJ I E NANGUIABROGOUA

U FR: SCIENCES DE LA NATURE Année académique : 2013-2014

Master 1 Protection des Végétaux _et Environnement N° CE: 02 07 02 9143

THEME Impact des plantations d'hévéa (Hevea brasiliensis Muell., Euphorbiaceae) d'âges variés sur la diversité des acariens du sol en saison sèche à Grand Labou (Côte d'Ivoire)

Mémoire présenté par POKOU Konan Pacôme

pour l'obtention de l'UE de stage de Master 1

JURY:

Président: ProfBAKAYOKO Adama

Examinateur : Dr DOSSO Kanvaly

Encadreur : Dr N'DRI Kouadio Julien

Master protection des végétaux et de l'environnement Master l

TABLE DES MA TTERES

DEDICACE i

REMERClEMENTS ii

RESUME iii

LISTE DES FIGURES iv

LISTE DES TABLEAUX V

SfGNIFICATION DES SIGLES ET ABREVIATIONS vi

fl\lTRODUCTION 1

CHAPITRE 1 : GENERALITES 3

!-!-Présentation de la zone d'étude (Grand Lahou) · 4

l-J-f-Localisation 4

l-J-ê-Climat 6

1-1-3-Végétation 7

1-1-4-Types de sol 8

1-2-Généralités sur l'hévéaculture 8

1-2-1- Origine et systématique 8

1-2-2-lmportance économique 9

1-2-3-Botanique ·················································:································································ 9

l-2-4-Ecologie 9

1-2-5-Techniques culturales 1 O

1-2-5-1-Préparation du terrain 1 O

1-2-5-2-Pépinière J l

1-2-5-3-Planting 11

1-2-5-4-Entretien l 1

1-2-5-5-Récolte 12

1-2-6-Ravageurs et maladies 13

1-2-6-1-Ravageurs 13

Master protection des végétaux et de l'environnement Master I

1-2-6-2-Maladies 13

1-3-Général ités sur les acariens 14

1-3-1-Définition 14

1-3-2-Classification des acariens 15

1-3-3-Reproduction et développement des acariens 15

1-3-4-Principaux habitats 16

1-3-5-Régiine alimentaire 16

1-3-6-Rôle écologique 16

CHAPITRE Il: MATERLEL ET METHODES 17

2-1- Matériel J 8

2-1-1-Matériel biologique 18

2-1-2-Matériel technique 18

2-2-Méthodes 19

2-2-1-Choix des parcelles d'étude 19

2-2-2-Echantillonnage des acariens du sol. 21

2-2-3-Extraction des acariens du sol 21

2-2-4-Dépouillement, montage et identification des acariens du sol 21

2-2-5-Traitements des données 22

2-2-5-1-Abondance · 22

2-2-5-2-Diversité biologique des acariens du sol 22

2-2-6-Analyses statistiques 23

CHAPITRE Ill: 25

RESULTATS ETDISCUSSlON 25

3-1-Résultats 26

3-1-1-Abondance des acariens du sol 26

3-1-1-1-A bon dance relative 26

3-1-1-2-Abondance globale 29


1

3-1-2-Diversité biologique des acariens du sol 30

3-2-Discussion 34

CONCLUSION ET PERSPECTIVES 37

REFERENCES BIBLIOGRAPHlQUES 38

ANNEXE 42

1 Master protection des végétaux et de l'environnement Master I

DEDICACE

Je dédie ce mémoire au Dieu TOUT PUISSANT par le biais de notre seigneur Jésus Christ ;

A mon père POKOU Yao André

A ma mère KONAN Amoin Christine

A mes grand-frères: BOMO Ya Boniface et NANDOH Lagui François

Grand-frères merci pour votre soutien de tous les jours.

A toute ma grande famille en Christ particulièrement à MA OUM OU Lillar

Merci pour votre appui spirituel sans interruption.

ï


REMERCIEMENTS

La partie manipulation de ce travail a été menée au Laboratoire du Centre de Recherche en

Ecologie (CRE) de 1 'Université Nangu i A brogoua.

En cela je tiens à remercier le Prof TANO Yao, Président de l'Université Nangui Abrogoua.

Je remercie également Dr TOUAO Kah Martine épouse GAUZE, Directrice du Centre de

Recherche en Ecologie pour avoir acceptée notre présence dans son institution.

Je remercie le Prof TIHO Seydou, Doyen de l'UFR des Sciences de la Nature pour avoir

favorisé mon inscription en Master l de Protection des Végétaux et de l'Environnement

Ce travail qui de loin, semble être un travail personnel, a en réalité bénéficié du soutien de

plusieurs personnes à qui je souhaite exprimer ma reconnaissance.

Au Dr N'DRI Kouadio Julien, Enseignant-Chercheur à l'Université Nangui Abrogoua, je

voudrais exprimer ma reconnaissance pour sa disponibilité, ses critiques, son assistance

permanente et l'intérêt particulier qu'il a porté à ce travail, non seulement en y apportant son

concours scientifique mais aussi en nous fournissant le matériel nécessaire.

Merci Docteur pour vos nombreux conseils de tous les jours et surtout pour l'esprit de travail

d'équipe que vous avez développé en nous.

Je voudrais exprimer mon infinie reconnaissance au Dr BREDOUMI Soumaïla, Directeur du

Laboratoire Central du Centre de Recherche en Ecologie (CRE) de l'Université Nangui

Abrogoua où nous avons effectué toutes les manipulations.

A Monsieur DJESSOU Serge Armand, responsable du Laboratoire Central, j'adresse mes

sincères remerciements pour nous avoir facilité l'accès au Laboratoire d'une part et d'autre

part pour nous avoir mis dans des meilleures conditions de travail.

Toute ma gratitude à tout le personnel du Centre de Recherche en Ecologie (CRE).

Un merci très chaleureux à N'DA Guy Arnaud Rodolphe; SEKA Ange Fabrice;

N'GUESSAN Kouadio Kevin, KONE Foundiéré, KODJALE N'da Varel mes compagnons et

voisins quotidiens.

ii


RESUME

Cette étude a été entreprise dans le département de Grand Lahou. El le visait à évaluer

l'impact de lâge des plantations d'hévéa sur l'abondance et la diversité des acariens du sol en

saison sèche. L'approche méthodologique a nécessité le développement de l'hypothèse

suivante: plus âgée sera la plantation d'hévéa, plus abondants et diversifiés seront les acariens

du sol. En pratique, la faune acarologique du sol a été échantillonnée en saison sèche dans des

plantations d'hévéa dâges variés (7, 12, 25 ans) et comparée à une forêt secondaire (parcelle

témoin). Au terme de cette étude, il ressort que la transformation d'une forêt naturelle en

plantation d'hévéa entraine une modification des peuplements d'acariens du sol. En effet, les

différents résultats montrent une augmentation de la densité (utilisée pour évaluer l'abondance

des différents taxons étudiés) et de la richesse spécifique des acariens du sol avec l'âge des

plantations d'hévéa. Le caractère secondaire de la forêt associé aux nombreuses activités

anthropiques qui s'y déroulent seraient à la base de la faible abondance et diversité des

acariens du sol enregistrées au niveau de cette formation forestière.

Mots clés: Abondance, diversité, acariens du sol, saison sèche, hévéaculture

iii


LISTE DES FIGURES

Figure 1. Situation géographique de la zone d'étude dans le département de Grand Lahou ..... 5

Figure 2. Diagramme ombrothermique des dix années précédant l'année d'étude (2003-2012)

···················································································································································· 6

Figure 3. Diagramme ornbrothermique de l'année détude (2013) 7

Figure 4. Terminologie de la division des acariens 14

Figure 5. Parcelles d'étude 20

Figure 6. Dispositif expérimental 21

Figure 7. Proportion(%) des grands groupes dacariens en fonction des sites

d'échantillonnage 28

Figure 8. Densité globale moyenne des acariens en fonction des sites d'échantillonnage 29

Figure 9. Courbe d'accumulation des espèces (Sobs) et estimateur de la richesse spécifique

(Jacknife l) des acariens du sol de la plantation d'hévéa âgée de 7 ans 32

Figure I O. Courbe d'accumulation des espèces (Sobs) et estimateur de la richesse spécifique

(Jacknife 1) des acariens du sol de la plantation d · hévéa âgée de 12 ans 32


(Jacknife l) des acariens du sol de la plantation d'hévéa âgée de 25 ans 33


(Jacknife 1) des acariens du sol de la forêt secondaire 33

1 iv


LISTE DES TABLEAUX

Tableau r : Abondance des espèces d'acariens répertoriés en fonction des sites

d'échantillonnages .' · 26-28

Tableau H : Mesure de la diversité biologique des acariens du sol. 30

!

V


SIGNIFICATION DES SIGLES ET ABREVIATIONS

UFR: Unité de Formation et de Recherche

ONU : Organisation des Nations Unies

FAO: Organisation des Nations unies pour l'alimentation et l'agriculture

CNRA : Centre National de Recherche Agronomique

IRCA : Institut de Recherche sur le Caoutchouc

CTFT: Centre Technique Forestier Tropical

FIRCA : Fonds Interprofessionnel pour la Recherche et le Conseil Agricoles

H7 : Plantation d'hévéa âgée de 7 ans

H12 Plantation d'hévéa âgée de 12 ans

J-125 : Plantation d'hévéa âgée de 25 ans

FS : Forêt secondaire

1.

vi

1 Master protection des végétaux et de l'environnement Master l

INTRODUCTION

Selon un rapport des Nations Unies sur les perspectives démographiques mondiales (ONU,

2013), la population humaine connait une forte croissance. En effet elle devrait passer de 7.2

milliards à 8.1 milliards en 2025 puis 9.2 milliards en 2050. Plus de la moitié de la croissance

de la population mondiale d'ici 2050 devrait se produire en Afrique (ONU, 2013). En Afrique

subsaharienne, l'économie repose majoritairement sur la pratique d'une agriculture

irrationnelle. La forte pression sur les aires cultivables consécutive à une croissance

démographique contribue à réduire le couvert forestier (Floret & Potanier, 2000).

En Côte d'Ivoire, la déforestation, constitue l'une des principales causes du changement

climatique (FAO, 1993). En effet, sur une période de trois décennies, près des 4/5 de la forêt

primaire ivoirienne a disparu avec un taux de déforestation annuel estimé à 7,6%. Les

principales causes de cette déforestation demeurent les feux de brousse, l'abattage anarchique

des arbres et la pratique d'une agriculture peu soucieuse de l'environnement. Pour palier à

cette situation, des stratégies et solutions alternatives doivent être trouvées.

1

L'une des solutions alternatives demeure la prolifération des agrosystèmes même si Bhagwat

et al (2008) s'interroge sur leur capacité à servir de zone de refuge pour la biodiversité

tropicale. L'hévéaculture serait l'une des principales causes de déforestation (Zhai et al.,

2012). En Côte d'Ivoire. Les superficies des plantations d'hévéa sont passées de 1 16000 ha en

2002 (MINA, 2002) à plus de 318 000 ha en 2014 dont 14 000 ha sont en production (CNRA,

2015). L'idée est de savoir si au-delà de la production de latex (caoutchouc), qui représente

une source économique énorme pour les paysans, l'hévéaculture pourrait servir de solution

alternative à la disparition des écosystèmes forestiers naturels. En effet, les services éco

systémiques rendus par cet agro-écosystème s'apprécie en grande partie dans leur capacité à

stocker le carbone (Gréggio et al., 2008; Podong & Poolsiri, 2012) dans les différents

compartiments (sol, végétaux).

Toutefois ce service éco-systémique semble être affecté par des paramètres que sont l'âge des

plantations, le type de sol et de litière. l'interférence humaine et la dynamique de la faune

(Gilot et al., 1995 ; Chakraborty & Bhattacharya.1992, 1993 ; Schroth et al .. 2003 ; Oke et al.,

2005 ; Rao & Jessy, 2007 ; Kardol et al., 2009 ; Wissuwa et al., 2012 ; Podong & Poolsiri,

2012). Les microarthropodes et les acariens en particulier jouent un rôle important dans le

fonctionnement écologique des sols (Gergocs & Hufnagel, 2009). l ls interviennent dans la

1


fragmentation, la décomposition de la matière organique, le recyclage des éléments minéraux,

la régulation de la microflore et la microfaune du sol (Gulvik, 2007; Gergocs & Hufnagel,

2009).

Cette étude ambitionne d'évaluer l'impact de l'âge des plantations d'hévéa sur l'abondance et

la diversité des acariens du sol en saison sèche. Le choix de la saison sèche comme période

d'étude s'explique par le fait qu'un autre étudiant sur les mêmes parcelles a travaillé en saison

des pluies.

Excepté le Brésil et l'Inde (Chakraborty & Bhattacharya, 1992, 1993 ; Schroth et al. 2003),

très peu d'études font référence à l'impact des paysages d'hévéaculturc sur l'abondance et la

diversité des acariens du sol.

L'originalité de cette investigation réside dans le fait qu'en Côte d'Ivoire les travaux réalisés

dans des plantations d'hévéa d'âges variés ne concernent que les macroinvertébrés du sol

(Gilot et al., 1995).

L'hypothèse de ce travail est le suivant:

Plus âgée sera la plantation d'hévéa, plus abondants et diversifiés seront les acariens du sol.

Pour tester cette hypothèse, la faune acarologique du sol a été échantillonnée en période de

saison sèche dans trois plantations d'hévéa d'âges variés (7, 12, 25 ans) et comparée à une

forêt secondaire (parcelle témoin) au niveau de la région de Grand Lahou.

Le présent mémoire s'articule autour de trois chapitres.

Le premier est relatif aux considérations générales sur la présentation de la ville de Grand

Labou, les techniques culturales de l'hévéa et l'étude des acariens du sol.

1 1

Le deuxième chapitre porte sur le matériel et les méthodes utilisées pour réaliser cette étude.

Quant au troisième chapitre, il rend compte des résultats obtenus et leur discussion.

Enfin une conclusion et des perspectives de recherche mettent fin à la rédaction du mémoire.

2

1- Master protection des végétaux et de l'environnement Master 1

CHAPITRE I : GENERALITES

1

3


1-1-Présentation de la zone d'étude (Grand Lahou)

1-1-1-Localisation

L'étude s'est réalisée dans le département de Grand Lahou (5°25'0" N, 4°55'0"W) situé au

sud de la Côte d'lvoire sur la côtière à 130 km d'Abidjan au bord du golfe de Guinée, à

l'embouchure du fleuve Bandama. Le département de Grand Lahou est limitée au nord par le

département de Tiassalé; à l'ouest par les départements de Divo et de Guitry; à l'est par les

départements de Dabou, de Sikensi et de Jacqueville et au sud par l'océan atlantique et la

lagune tagba (Figure I ).

4

Master protection des végétaux et de l'environnement Masterl

DEPARTEMENT DE GRAND-LAHOU

-··

D

' "

Figure 1. Situation géographique de la zone d'étude dans le département de Grand Labou Côte d'Ivoire (CCT-BNETD, 2015)

5

Master protection des végétaux et de l'environnement Masterl

1-1-2-Climat

Le climat de la région de Grand Lahou est de type équatorial caractérisé par quatre saisons:

Une grande saison sèche de janvier à mars, une grande saison des pluies d'avril à juillet, une

petite saison sèche d'août à septembre et une petite saison des pluies d'octobre à décembre.

La pluviométrie moyenne mensuelle au cours des dix dernières années précédant la période

des travaux a varié de 13,38 en janvier à 265,37 mm en juin avec une moyenne annuelle de

1091,51 mm. Au cours de cette même période, la température moyenne mensuelle mesurée

s'étendait de 25,03 en août à 28,26 °C en mars avec une moyenne annuelle de 26,88 °C

(Figure 2).

En 2013 (année de prélèvement), la pluviométrie allait de O en janvier à 282,21 111111 en juin

avec un total annuel de 1085,35 mm. Les températures mensuelles s'étendaient 24,8 en août à

28,65 °C (février et mars) avec une moyenne annuelle de 26,9 °C (Figure 3).

c=i Précipitations 2003-2012 --Température 2003-2012

300

250 ,--. E ~200 C, V, c:: .2150 .•... c,i .•... o.. ë:3100 '(l.) ,_ o..,

50

0

-

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- - -

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n n n . n . . .

150

125

,.-,. 100 ü

0 '-' p

75 2 c,i 'Q) o..

50 ~ ~

25

0

Mois

Figure 2. Diagramme ombrothermique des dix années précédant l'année d'étude (2003-2012) (Source de données : www.tutiempo.net)

6


c=J Précipitations 2013 --Température 2013

300

250 ,......_, E 5 200 V) s:: 0 .•..... 150 (<;j .•..... o. ()

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25

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Mois

Figure 3. Diagramme ombrothermique de l'année d'étude (2013) (Source de données : www.tutiempo.net)

1-1-3-Végétation

La région de Grand Lahou est une région de forêt dense humide sempervirente caractérisée

par une zone rurale forestière composée d'une mosaïque de zones incultes, de recrus forestiers

et de jachères (Ettian et al., 2009). Ces forêts denses ombrophiles sernpervirentes ont des

aspects très variés. Les jachères servent généralement au développement des activités

agricoles et à. l'élevage d'animaux. A Grand Lahou, on trouve également au bord des lagunes

une végétation parti eu I ière dite mangrove (Abe, 2005).

Les formations forestières protégées (i) la forêt classée de Gôbodiénou (59 800 ha) (ii) le parc

national cl· Azagny ( 1 9 400 ha) font office de ce département.

7


1-1-4-Types de sol

Dans le Département de Grand Lahou, les sols sont argilo-sableux et parfois ferralitiques. La

région du sud-ouest est caractérisée par un ensemble de sols ferralitiques faiblement et/ou

fortement désaturés dont la différenciation dépend de la position topographique (Perraud,

1971). L'épaisseur du sable au dessus de la roche mère est très variable. Les sols présentent

un horizon riche en éléments grossiers plus ou moins profond composés de cailloux, graviers

de quartz, concrétions, gravillons et débris de cuirasse. Ces sols ferralitiques représentent la

phase terminale de l'évolution des sols de la région équatoriale humide qui caractérisent la forêt dense sernpervirente.

1-2-Généralités sur l'hévéaculture

1-2-1- Origine et systématique

L'hévéa est un arbre originaire d'Amazonie (Amérique du sud), il a été introduit pour la

première fois à Ceylan en 1876 ensuite planté avec succès en Extrême-Orient puis en Afrique

selon le Centre Technique Forestier Tropical et l'Institut de Recherche sur le Caoutchouc

(CTFT & IRCA, 1988). Cette plante a été introduite en Afrique d'abord au Ghana en 1898.

La culture d'hévéa en Côte d'Ivoire a débuté en 1950.

La systématique de l'hévéa se présente comme suit:

Règne: Végétal

Sous règne : Tracheobionta

Embranchement: Magnoliophyta

Sous embranchement: Angiospermes

Classe : Dicotylédones

Sous classe : Rosidae

Ordre : Euphorbiales

Famille: Euphorbiaceae

Genre: Hevea

Le genre Hevea a plusieurs espèces dont Hevea brasiliensis Muell., Hevea benthemiana Arg. et Hevea guinnensis Aubl.

Pour la production de caoutchouc naturel, l'espèce Hevea brasiliensis est la plus cultivée dans le monde (CTFT & 1 RCA, 1988).

8

1 Master protection des végétaux et de l'environnement Masterl

1-2-2-lmportance économique

L'hévéa est une plante cultivée pour son latex qui est utilisé pour la fabrication du caoutchouc

naturel. A la fin de la période d'exploitation, l'arbre peut également être utilisé comme boi d'œuvre et bois de chauffe (CTFT & IRCA, 1988).

Depuis son introduction en Côte d'Ivoire, la culture d'hévéa est en constante progression avec

une production annuelle de 136 000 tonnes de caoutchouc sec en 2004 ce qui permet à la Côte

d'ivoire d'occuper le premier rang des pays producteurs au niveau africain et le septième au

niveau mondial et fait du caoutchouc naturel le quatrième produit d'exportation après le cacao, le café et le coton (Obouayeba et al., 2006)

1-2-3-Botanique

L'hévéa est une plante dont le tronc, légèrement renflé à la base, porte des feuilles à 3 folioles

portées par un long pétiole. Les fleurs de cet arbre sont unisexuées et produisent des fruits

appelés capsules. Ces capsules ont 3 loges dont chacune contient une graine. L'écorce, lisse

avec son épaisseur d'environ I cm renferme les vaisseaux laticifères (cellules spécialisées

dans lesquelles le latex est synthétisé) (CTFT & 1 RCA, 1988).

Le latex est composé principalement de particules de caoutchouc (C5H8)11 mais également de

résines, de protéines et d'enzymes et parfois même d'amidon (CTFT & IRCA, 1988).

Le système souterrain est constitué d'un pivot et de racines latérales.

,. L'espèce Hevea brasiliensis peut atteindre en forêt 40 m de haut et 5 111 de circonférence alors

que les troncs des arbres en plantation dépassent rarement 5 à 6 111 de long et 40 cm de

diamètre (CTFT & fRCA, 1988). La multiplication végétative de l'hévéa se fait par greffage.

1-2-4-Ecologie

Pour une bonne croissance et production de l'hévéa, il faut une température moyenne annuelle

comprise entre 25 et 37°C, une durée d'ensoleillement annuelle minimum de 1650 heures,

une pluviométrie annuelle de l 500 à 2500 111111 cl· eau (Obouayeba et al., 2006).

Tl faut également un sol meuble à pH compris entre 4,5 et 6, de texture sablo-argileuse à

argileuse, profond et non gorgé d'eau sur au moins un mètre de profondeur, un terrain plat ou

à pente faible (inférieure à 8 %) pour éviter l'érosion, mais dans le cas d'un terrain à pente

9


forte (supérieure à 8%), on peut faire des terrasses en courbe de niveau (Obouayeba et al., 2006).

1-2-5-Techniques culturales

1-2-5-1-Préparation du terrain

La préparation du terrain dépend du type de la végétation initiale (forêt, jachère, savane)

colonisant la parcelle (FJRCA, 2012).

Dans le cas d'une forêt. le défrichement du terrain se fait d'octobre à décembre et consiste à

abattre le sous-bois puis les arbres moyens et enfin les gros arbres. Après le défrichement, il

faut brûler les débris végétaux et les rassembler en bandes entre les lignes en janvier.

Dans le cas d'une jachère arbustive, le défrichement se fait pendant la période de décembre à

janvier et le piquetage en février-mars selon le dispositif choisi.

Dans le cas d'une savane (jachère herbacée), le défrichement se fait pendant la période de

février à mars. Dans ce dernier cas, si Imperata cylindrica est dominante, l'usage d'herbicide

(Round Up, Arsenal) est nécessaire. Cependant si le Chromolaena odorata est dominant, il

faut le faucher en janvier ou en février pour le brûler en mars et faire le traitement en mars

avec l'un des herbicides (Obouayeba et al., 2006).

En culture pure, la semence de plante de couverture notamment Pueraria phaseolides ( 10 kg

de semences pour I hectare) pour éviter l'érosion du sol et l'enherbement est nécessaire

(Obouayeba et al., 2006).

Dispositif et densité de plantation

En culture pure d'hévéa comme en culture associée, le dispositif en lignes est recommandé.

Les densités préconisées sont les suivantes

510 arbres par ha : 7 111 entre lignes et 2,80 m entre plants;

555 arbres par ha : 6 111 entre lignes et 3 m entre plants;

666 arbres par ha : 5 m entre lignes et 3 m entre plants (Obouayeba et al., 2006).

Après les premières pluies, on creuse des trous destinés à recevoir les plants à l'emplacement

des piquets selon les dimensions 40 cm x 40 cm x 60 cm ou 40 cm x 40 cm x 40 cm (FIRCA,

2012).

10


1-2-5-2-Pépinière

Pour la production de plants greffés, il faut des pépinières produisant des porte-greffes.

La création d'une pépinière d'hévéa peut se faire de deux manières (FlRCA, 2012): -La pépinière en plein champ

Dans ce cas, les graines sont semées directement sur le sol et produisent des plants communément appelés« stump »

-La pépinière en sac ou en spot réalisée à partir des graines semées dans les sachets en

polyéthylène ou des spots remplis de substrat (FIRCA, 2012).

1-2-5-3-Planting

fi consiste à mettre en terre les plants greffés dans des conditions optimales de

développement. Le planting se fait à la main et a lieu en début des saisons de pluie. Pour les

plants en sacs il faut couper le fond du sachet et le fendre ensuite longitudinalement avant de

placer le plant dans le trou de la plantation. Pour les sturnps on enfonce le pivot dans la terre

au fond du trou avant de tasser la terre autour de celui-ci. Les plants sont maintenus

verticalement, le collet au niveau du sol. On bouche le trou en commençant par la terre noire

et en tassant la terre au fur et à mesure. Tous les greffons sont situés entre 2 et 5 cm du sol (2 doigts) (FJRCA, 2012).

1-2-5-4-En tretien

-Fertilisation des jeunes plantations

Durant l'année de plantation, il faut apporter l'engrais phosphaté dans le trou de plantation,

appliquer les engrais azotés et potassiques à l'aplomb de la couronne (novembre-décembre).

Pendant la première et la deuxième année, il faut appliquer les engrais en rond à l'aplomb de

la couronne. Par la suite, apporter les engrais à la volée dans les interlignes (Obouayeba et al.,

2006). L'apport d'engrais se pratique de préférence en période de préfoliation (mars-avril).

Dans les zones où les pluies sont abondantes, il est conseillé d'apporter l'engrais en 2 temps Quillet-août et octobre-novembre).

11

1 Master protection des végétaux et de l'environnement Master l

-Fertilisation des plantations en production

La fertilisation des hévéas en production se fait sur avertissement, après diagnostic foliaire et

analyse du sol pour déterminer les besoins. Cependant, sur les parcelles à haut rendement

(plus de 2000 kg/ha de caoutchouc sec), il faut compenser les exportations de latex par des

apports systématiques. (Obouayeba et al., 2006)

-Désherbage

Le désherbage consiste à sarcler ou faucher régulièrement les adventices des lignes de

plantation en vue d'éviter la concurrence avec les plants d'hévéa d'une part et d'autre part à

enlever les lianes de pueraria qui se nouent autour des plants d'hévéa afin d'éviter la casse ou

la déformation de ceux ci.

En cas de prolifération de Imperata cylindrica et Chromolaena odorata, il faut utiliser les

mêmes produits que lors de la préparation du sol.

Cultures intercalaires

Les interlignes des jeunes plantations d'hévéas peuvent être utilisées pour faire des cultures

vivrières (riz, maïs, banane, igname) durant les 3 à 4 premières années. Dans ce cas, il n'est

pas nécessaire de semer la plante de couverture. Des cultures industrielles (café, cacao,

ananas) peuvent également être associées à l'hévéa.

1-2-5-5-Récolte

La récolte du latex se fait par une incision de l'écorce (saignée). Le latex qui s'écoule de

lentaille est recueilli dans une tasse. A chaque saignée, on enlève un morceau d'écorce dont

l'épaisseur varie de J ,2 à 2 111111 selon la fréquence de saigner et dont la profondeur atteint 1

mm du cambium. Le produit est récolté sous formede latex quatre heures après la saignée ou

sous forme de coagulum 2 jours après (fond de tasse). En milieu villageois, le produit est

récolté sous forme de coagulum. La récolte commence quand l'arbre a 6 ans d'âge à I m du

sol. La pratique de la saignée se fait aux heures fraiches de la journée (entre 5 et 10 heures).

Le panneau de saignée (partie du tronc de l'hévéa qui doit être saignée) est subdivisé en

plusieurs sous-aires qui dépendent du système d'exploitation adopté.

Dans le cas d'une saignée descendante, on débute la saignée à l,2 m et on poursuit pendant

deux ans sur ce panneau. L'année suivante, on débute la saignée à 1,3 111 de haut sur le côté

opposé à la première saignée (2eme panneau). Le changement de panneau de saignée d'une

année à l'autre·se fait en reprenant la saignée à l'endroit où elle avait été laissée, mais au bout

12

.1 Master protection des végétaux et de l'environnement Master I

de 10 ans, il faut entamer une saignée remontante. Dans ce cas, il faut couper l'écorce en

remontant inversement au cas précédent en enlevant 2 mm d'écorce à chaque saignée. Il faut

réaliser la saignée remontante pendant 4 ans et la saignée descendante pendant les 2 année

qui suivent. La saignée se fait tous les 3 ou 4 jours avec une longueur d'encoche en demi

spirale (sur la moitié de la circonférence de l'arbre) dans le cas d'une saignée descendante et

en demi-spirale ou en quart de spirale dans le cas d'une saignée remontante. Pour augmenter

et maintenir un bon niveau (jusqu'à 3 tonnes de caoutchouc sec par hectare et par an) de

production de latex, on peut stimuler les plantes et le produit utilisé est l'éthéphon (Ethrel,

ELS 50, panover) qui est un composé générateur d'ethylène.

1-2-6-Ravageurs et maladies

1-2-6-1-Ravageurs

L'hévéa est attaqué par les termites et les longicornes (CTFT & fRCA, 1988). Les termites

dégradent la plupart du temps le pivot.

1-2-6-2-Maladies

Les agents pathogènes attaquent aussi bien les feuilles, le tronc que les racines. - Feuilles:

Le champignon Heminthosporium hevea le plus fréquemment rencontré sur les jeunes plants

de pépinières, cause des taches jaunes arrondies sur les feuilles.

Le champignon Phytophthora palmivora cause des brûlures sur les pétioles ce gui entraine la tombée précoce des feuilles.

Le champignon Colletotrichum gloesporioides provoque des attaques très sévères sur l'hévéa

qui se traduisent par la chute des jeunes feuilles atteintes (Ndong, 2007).

Le champignon Rhizoctonia solani provoque l'apparition des taches de taille et de forme

variée dont l'aspect dépend essentiellement du stade évolutif qu'elles ont atteint et différents

types de lésions présents simultanément sur un même limbe (Boisson, 1966). -Tronc:

Le champignon Phytophthora palmivora cause la maladie de la race noire sur l'écorce. -Racines :

Deux champignons parasitent les racines de l'hévéa (Hévéa brasiliensisy et provoquent lors de

leur attaque parasitaire dans les tissus de l'hôte, des modifications considérables de plusieurs

activités enzymatiques en particulier celles de l'hydrolase et des laccases (Jean-Paul, 1987).

13

1


Comme exemple on a le champignon Fomes lignosus encore appelé Rigidoporus lignosus qui

cause les pourritures blanches et le champignon Fomes noxus qui cause les pourritures noires.

1-3-Généralités sur les acariens

1-3-1-Définition

Les acariens sont des arthropodes chélicérates faisant partir de la sous classe des arachnides

(André & N'Dri, 2012). Leur taille dépasse rarement 1mm de long, à l'exception des tiques

qui peuvent atteindre I à 2 cm (Athias-Binche, 1994). Le corps est constitué de deux grands

tagmes (opisthosome non segmenté et gnathosome), séparé par un sillon das (disjugal,abjugal

et sejugal) (Figure 4). Ils diffèrent des araignées par l'absence de mobilité entre ces deux

parties (Bachelier, 1978).

- .,.. ,,,. /

hvsrérosoma . i I I

---

I

' ! t

\ \

opisthosouia

------ - .,. mêrapcdosoma propodosouia ,,

po do soma

A= rêgiou au ale

1. G = région génitale disj = sillon disjugal séj = sillon sêjugal

abj = sillon abjugal

p = palpes maxillaire 1, 2, 3, 4 = insertion des pattes

Figure 4. Terminologie· de la division des acariens (Bachelier, 1978)

14


1-3-2-Classification des acariens

La classification des acariens s'appuie sur le nombre et la disposition des orifices respiratoires ou stigmates.

Les Mésostigmates (Garnasides) sont caractérisés par une paire de stigmates au niveau de la

3e paire de pattes, tandis que les Prostigrnates (Actinédides) ne possèdent qu'une paire de

stigmates au niveau des chélicères. Quant aux Cryptostigmates (Oribates) on note la présence

de quatre paires de stigmates cachés sous la base de chaque patte. Enfin les Astigmate

(Acaridides) ne possèdent pas de stigmates.

Les acariens se divisent en deux grands groupes :

D'une part, les acariformes ou actinotrichides et d'autre part les parasitiformes ou

anatinotrichides (André & N' Dri, 2012).

Les acariens actinotrichides sont généralement caractérisés par l'absence de coxae et de

sternum, la présence d'épimères et d'un sillon séjugal, la division fémoral des pattes, la perte

du palpe, la présence dun canal poclocephalique, la présence d'actinopiline clans l'axe des

poils ordinaires et la présence des trichobothridies (Bertrand, 1988). Les représentants de ce

groupe sont les Cryptostigmates (Oribates), les astigmates (Acaridides) et les prostigmates

(actinedides). Contrairement aux acariforrnes, les parasitiforrnes sont caractérisés par des

poils dépourvus d'actinopiline, la présence de coxae sur les pattes, d'une plaque sternale et

d'un tritosternurn. Les principales composantes des parasitiforrnes sont les mésostigmates

(Gamasides), les tiques, les opilioacarides et les holothyrides.

1-3-3-Reproduction et développement des acariens

1 Les acariens pratiquent généralement !a reproduction bisexuée même si des cas de

parthénogenèse sont observés. La copulation peut se faire par l'intermédiaire d'un

spermatophore pédicellé, déposé sur le sol par le mâle (N'Dri, 2010). La plupart des acariens

sont ovipares. Les larves sont hexapodes tandis que les nymphes et les adultes sont octopodes.

Le développement de lœuf à l'adulte passe par 6 stades chez les Actinotriches : la prélarve, la

larve, la protonymphe, la deutonymphe, la tritonymphe et l'adulte. On compte 4 stades chez

les Anactinotriches : la larve, la protonyrnphe, la deutonymphe et l'adulte (Athias-Binche, 1989).

15


1-3-4-Principaux habitats

Les acariens ont colonisé tous les compartiments de la biosphère et ce à partir des différents

mécanismes de la dispersion passive (Travé et al., 1996). En effet ils sont présents dans les

eaux marines, sur terre et en altitude (André & N'DRI, 2012). En fonction des habitats on

distingue des acariens arboricoles, des savanicoles. des déserticoles, des cavernicoles, des

monticoles ou montagnards (jusqu'à 5000 m d'altitude), associés aux cultures et aux denrées

stockées.

1-3-5-Régime alimentaire

Les acariens sont caractérisés par une plasticité trophique en termes de régime alimentaire.

Les aliments ingérés varient en fonction des ordres, des cohortes, des familles et des stades de

développement. Les gamasina sont principalement carnivores se nourrissant d'insectes,

d'autres acariens, nématodes. Les uropodina sont majoritairement des microphytophages. Les

trombidiforrnes sont des prédateurs de petites proies (œufs, insectes, collemboles) (Bachelier,

1978). Les acarid idés sont à 1 'origine des fongivores (A th ias-B inche, 1994), tandis que les

Oribates des détritivores (Travé et al., 1996).

1-3-6-Rôle écologique

D'une manière générale, les acariens du sol sont reconnus pour leur activité de

fragmentation, de décomposition (Bardgett, 2005, Yang & Chen, 2009) et de minéralisation

de la matière organique. Ces organismes favorisent le recyclage et l'immobilisation de des

éléments minéraux du sol (Whitford & Parker, 1989). lis vivent dans la litière et assurent

également la régulation de la microfaune et de la microflore du sol (Whitford & Parker, 1989)

16

Master protection des végétaux et de l'environnement Master [.

CHAPITRE II :

MATERIEL ET METHODES

17


2-1- Matériel

2-1-1-Matériel biologique

Les acariens du sol peuplant aussi bien la forêt secondaire que les plantations d'hévéa d'âges variés constituent le matériel biologique.

2-1-2-Matériel technique

Le matériel technique utilisé se compose:

-D'une tarière de 5cm de diamètre pour le prélèvement des carottes de sol ;

-des ampoules de 25 W pour le chauffage des carottes de sol au Berlèse;

-des entonnoirs à forte pente pour assurer le passage des acariens des carottes de sol aux

bouteilles contenant de l'alcool dilué à 70%;

-des bouteilles contenant de l'alcool dilué à 70% pour le recueillement et la conservation des

acariens avant le dépouillement;

-d'une masse (marteau) pour l'enfoncement de la tarière dans Je sol ;

-des boîtes pour la collecte et la conservation des carottes de sol ;

-d'un marqueur pour l'étiquetage des boîtes de collecte;

-du scotch papier pour l'étiquetage des boîtes de collecte;

-d'un carton pour la conservation et le transport des boîtes contenant les carottes de sol ;

-d'un rallonge pour la définition des transects

-d'une Berlèse-Tullgren pour l'extraction des acariens du sol·

-des tamis à maille de I mm pour éviter que les carottes de sol ne salissent les bouteilles de

collecte des acariens

-d'une loupe binoculaire pour Je dépouillement et le montage des acariens du sol ;

-des piluliers pour la conservation des acariens après dépouillement;

-d'une salière pour le dépouillement et Je montage des acariens du sol;

-des micropipettes pour le dépouillement;

-d'une seringue pour le dépouillement

-d'un bic indélébile pour l'étiquetage des piluliers;

-des boîtes de pétri pour le dépouillement ;

-du papier calque pour l'étiquetage des piluliers;

-des fades pour la conservation des acariens montés entre lames et lamelles;

-d'un microscope optique muni d'une caméra pour l'identification des acariens;

-de l'acide lactique pour la fixation des acariens;

18


-des lames creuses et des lamelles pour le montage des acariens ;

-des pinceaux pour le dépouillement et le montage des acariens entre lames et lamelles.

2-2-Méthodes

2-2-1-Choix des parcelles d'étude

A la périphérie des villages de Tiévissou, Bétésso et Ahounianssou, 9 plantations d'hévéa

regroupées en 3 âges (7, 12, 25 ans) ont été choisies pour les besoins d'échantillonnage. Afin

de mieux tester notre hypothèse de départ, 3 ilots de forêts ont été sélectionnés dans la forêt

classée de Gobédiénou (Figure 5). Le sous bois des plantations d'hévéa est très dégagé,

néanmoins on y rencontre quelques plantes. Les espèces observées sont Elaeis guineensis

(Arecaceae) pouvant atteindre l m, Pueraria phaseoloides (Papilionaceae), Thaumatococcus

daniellii (Marantaceae), Uapaca guineensis (Euphorbiaceae), Turraeanthus africanus (Meliaceae) (Adahé, 2014)

Quelques essences ligneuses répertoriées par Manhan (2015) caractérisent la forêt secondaire (Appendice 1).

1 1 1 1

19

1 Master protection des végétaux et de ,,environnement Master I

Plantation d'hévéa âgée de7 ans Plantation d'hévéa âgée del2 ans

Plantation d'hévéa âgée de25 ans Forêt secondaire

Figure S. Parcelles d'étude

20


2-2-2-Echantillonnage des acariens du sol

Les prélèvements des échantillons du sol pour l'extraction des acariens se sont effectués au

cours de la grande saison sèche (décembre à mars 2013). Ces échantillons ont été prélevés à

10 cm de profondeur du sol à l'aide d'une tarière de 5 cm de diamètre (N'Dri et al., 2011) et suivant un transect de 40 m. 5 points du transect ont été échantillonnés avec une équidistance

de 10 m les uns des autres (Figure 6). A chaque point d'échantillonnage 2 carottes de sol sont

prélevées de manière adjacente soit un total de 10 carottes par transect. A l'échelle de

l'ensemble des agrosystèmes, 120 carottes de sol ont été prélevées au total.

Ces échantillons sont minutieusement conservés dans des boîtes fermées et étiquetés.

L'ensemble des échantillons est porté au laboratoire afin de réaliser leur extraction.

Points d'échantillonnages

I 10m l 10m l 10m l 10m ) Un transect de 40 m

Figure 6. Dispositif expérimental

2-2-3-Extraction des acariens du sol

La méthode d'extraction utilisée est celle de Berlese-Tullgren (Ducarme et al., 2004; N'Dri

et al., 2011). Des ampoules de 25 Watts situées à 25 cm au-dessus des entonnoirs (1 ampoules

pour 4 entonnoirs) permettent de dessécher progressivement les échantillons de sol pendant

10 jours. L'allumage des ampoules s'est fait systématiquement après la mise des échantillons

au Berlese. Les acariens fuyant la chaleur, finissent par tomber dans les tubes de collectes

(bouteilles) contenant de l'alcool dilué à 70°C.

2-2-4-Dépouillement, montage et identification des acariens du sol

Le tri et le comptage des microarthropodes, particulièrement des acariens après récolte ont été

réalisés en boîtes de pétri ou dans une salière sous une loupe binoculaire. Les montages

temporaires des acariens ont été réalisés sur des larmes à concavités dans de l'acide lactique.

Les acariens, fixés dans de l'acide lactique (85%) ont été identifiés sous un microscope

21


optique muni d'une caméra. L'identification a concerné seulement les stades adultes parce

que les immatures ne présentaient pas pour la plupart du temps les organes complets

permettant leur identification. Toutefois, le taux d'immature relativement très faible n'affecte

pas les résultats obtenus. Les acariens ont été identifiés jusqu'aux niveaux familles et espèces

sur la base de la morphologie. Les clés de Balogh & Balogb (l 992), Walter et al (2013) ont

permis l'identification des différents genres des Oribates. Quant aux familles, les clés de

Krantz (1978); Krantz & Walter (2009); André & N'Dri (2012) et la collection de référence

de N'Dri (2010) ont été consultés.

2-2-5-Traitements des données

2-2-5-1-Abondance

L'abondance des différents taxons étudiés a été évaluée par l'intermédiaire de la densité

(nombre d'individus par mètre carré) sur l'ensemble des sites.

Pour ramener les carottes de sol au mètre carré, les calculs suivants ont été faits:

-Dans un premier temps nous avons déterminé la surface (S) de sol prélevé avec la tarière de 5

cm de diamètre (d)

S = tu? avec r = d/2.

s = 3, l 4*(5/2)2 S = 19,625 cm2 soit S = 0,0019625 1112

-Dans un second temps, nous avons déterminé un facteur multiplicateur (K)

K = 11112/ 0,0019625 1112

K =510

Si donc 1 individu est échantillonné par la tarière, cela correspondrait à 510 individus

échantillonnés par mètre carré.

1 2-2-5-2-Diversité biologique des acariens du sol

L'étude comparative de la diversité des acariens du sol a été réalisée en estimant la richesse

spécifique (S), l'indice de Shannon (H), l'équitabilité (E) et l'indice de Berger Parker (0).

*Indice de diversité de Shannon et équitabilité

L'indice de Shannon permet de mesurer la composition spécifique d'un peuplement à partir

du nombre d'espèces et de leur abondance relative (Legendre & Legendre, 1984).

22


Il

H = - L Pi.ln Pi. i=I

Pi= ni/N est la fréquence relative de l'espèce i dans le peuplement et N = leffectif total.

L'indice de diversité de Shannon a été calculé au niveau de chaque site d'échantillonnage.

L'équirabilité (E), parallèlement à l'indice de Shannon a été déterminée afin d'apprécier la

répartition des effectifs entre les diverses espèces.

E = H/lnS, où H est l'indice de Shannon et S est le nombre d'espèces.

L'équitabilité varie de O à 1. Elle tend vers O quand la quasi-totalité des effectifs est

concentrée sur une espèce et elle est égale à

abondance. lorsque toutes les espèces ont la même

"Courbes d'accumulation

· Les estimateurs non. paramétriques de la richesse spécifique permettent de construire les

courbes d'accumulation. Ces courbes sont des représentations graphiques de l'évolution du

nombre d'espèces (richesse spécifique) en fonction de l'effort de récolte.

i un échantillonnage produit une courbe d'accumulation des espèces qui atteint une

asymptote, on peut estimer théoriquement que toutes les espèces du milieu ont été

répertoriées, la méthode utilisée pour l'échantillonnage est ainsi qualifiée d'efficace.

Les estimateurs non paramétriques de la richesse spécifique sont utiles pour faire l'inventaire

et le suivi des organismes dont il est pratiquement impossible d'échantillonner de manière

exhaustive la richesse spécifique des peuplement ovotomy & Basset, 2000).

Les courbes daccumulation des acariens du sol ont été élaborées à laide du logiciel

Estimates, version 7.00

2-2-6-Analyses statistiques

A près vérification cl u test d'homogénéité et cl' éga I i té de la variance, 1 "irn pact des sites

d'échantillonnage sur l'abondance et la diversité des acariens du sol a été évalué par le test

non paramétrique de Kruskal-Wallis au seuil de 5%.

L'analyse de la variance à un facteur (A NOVA 1) a permis de comparer les différentes

courbes d'accumulations. Une comparaison post doc suivi d'un test LSD (Least Significant

Difference) a favorisé une comparaison cieux à deux.

23


Les estimateurs non paramétriques de la richesse spécifique ont été calculés à partir de 500

simulations. Par111i ces estimateurs, la richesse spécifique observée (Sobs) et Jacknife I ont été

111 is en exergue .

Toutes ces analyses ont été réalisées à l'aide du logiciel Statistica version 7.1

. , --

24


CHAPITRE III :

RESULTATS ET DISCUSSION

25


3-1-Résultats

3-1-1-Abondance des acariens du sol

3-1-1-1-Abondance relative

1 Le peuplement acariens du sol récolté sur le site d'étude durant la période d'échantillonnage

(saison sèche) est composé de 70 espèces appartenant à 4 grands groupes taxonomiques : Les

actinedides ; les Garnasides ; les Oribates et les Acaridides (tableau 1).

Tableau 1. Abondance des espèces d'acariens répertoriés en fonction des sites

d'échantillonnage

TAXON H7 l-112 H25 FS

Actinédides Actinedide sp.l Microtrombidium sp. l Microtrombidium sp.2 Trombellidae sp. l

1.

Gamasides Afrotrachytes sp. 1

Afrotrachytes sp.3 Ascididae sp. 1 Dinychidae sp. l Dinychidae sp.2 Dinychidae sp.3 Eviphididàe sp. l Eviphididae sp.3 Heatherellidae sp. 1

Laelaptonyssidae sp.2 Rhodacaridae sp. 1 Parholaspididae sp. 1 Polyaspididae sp.l Thinozerconidae sp. l trachyuropodidae sp. 1 trachyuropodidae sp.2 Uropodidae sp. 1 Uropodidae sp.2

0 2 0 0

0 0 2

0 0 0

1

0 0

0 0 4 0 1 0 5 3 0 0 0 1 0 2 0 0 4 0 0 0 0 1 0 2 2 l 1 1 0 0 0 0 1 0 0 0 0 1 0 0 1 1 1 1 0 0 0 3 0 1 0 0 0 1 0 0 1 2 0 0 1 2 0 0 l 0 0 0 0

Oribates

26


Acaronychus sp.2 2 0 0 0 Belbidae sp. l 0 0 0 1 Carabodes sp.3 0 1 0 0 Ceratozetidae sp. l l 0 0 0 Ceratozetidae sp.2 0 l 0 0 Ceratozetidae sp.3 0 0 0 2 Damaeidae sp.1 0 3 7 0 Damaeidae sp.2 8 2 1 0 Damaeolidae sp. l 0 0 0 2 Dolicheremaeus sp. l l 2 2 6 Eulohmania sp. l l 0 2 0 Galumna sp. l 10 5 2 2 Galumna sp.2 1 8 4 3 Galumnella sp.1 1 0 0 0 Haplozetidae sp.1 2 16 45 0 Oribate (inconnu 3) 14 9 13 Javacarus sp. 1 5 5 1 1 Lamellobates sp. 1 0 0 2 0 Meristacarus sp. 1 0 0 0 1 Meristacarus sp.2 0 0 1 0 Mycobatidae sp. 1 7 7 15 5 Mycobatidae sp.2 3 5 4 1 Mycobatidae sp.3 1 1 0 I Mycobatidae sp.4 0 0 1 0

1 Neoliodes sp. l 0 0 0 1 Nothrus sp.2 0 1 0 0 Nothrus sp.4 0 0 0

1 Nothrus sp.5 0 0 0 1 Oppia sp. l 6 3 6 0 Oppia sp.2 0 0 0 ,..,

.)

Oppia sp.6 0 5 1 0 Oppia sp.7 0 0 0 1 Oppia sp.l O 0 2 0 0 Oppia sp.11 0 0 0 4 Oppiidae sp.2 0 0 1 0 Oppiidae sp.4 0 1 0 0 Oppiidae sp.5 0 3 0 0 Oribate sp. l 0 0 0 1 Oxyoppia sp. l 0 1 0 0 Parakalummidae sp. l 0 0 l 0 Scheloribatidae sp. l 3 0 2 0 Scheloribatidae sp.2 1 0 1 0 Scheloribatidae sp.3 ·2 0 0 0 Phthiracarus sp. l 0 2 0 0

27


Phthiracarus sp.2 Torpacarus sp.l

0 0

1 1

2 2

0 0

Acaridide Acaridae sp. l Acaridae sp.2

0 0

0 0

1 3

0 0

H7: Plantation d'hévéa ilgée de 7 ans; Hll: Plantation d'hévéa iigée de 12 ans H25: Plantation d'hévéa ilgée de 25 ans; FS: Forêt secondaire

Sur l'ensemble des parcelles d'étude, les Oribates sont les mieux représentés (72%; 76%;

60%; 68%), ensuite suivent les Gamasides (24%; 17%; 32%; 25%), les Actinédides (4%;

7%; 3%; 7%) et les Acaridides (0%; 0%; 5%; 0%) respectivement dans les plantations

d'hévéa âgées de 7, 12, 25 ans et la forêt secondaire (Figure 7).

- 100% ~ 90% V,

<I.> ::s 80% .sr E 70'1/o 0 C 0 ~ 60% ~ V,

50% g_ ::s 2 40% bl) V, <I.> 30% -0 C 0 20% t:: 8. 10% 2 o... 0%

117

•Aca.-idide OOribates DGamasides •Actincdidc.

1112 1125 F

Sites d'échantillonnage

r Figure 7. Proportion(%) des grands groupes d'acariens en fonction des sites

d'échantillonnage

H7: Plantation d'hévéa iigée de 7 ans; H12: Plantation d'hévéa iigée de 12 ans H25 : Plantation d'hévéa ilgée de 25 ans; FS: Forli secondaire

28


3-1-1-2-Abondance globale

La densité moyenne globale des acariens augmente avec l'âge des plantations d'hévéa. Cette

densité passe de 2281 .. 87 ± 309,43 ind.111·2 sous la plantation dhévéa âgée de 7 ans à 4059,6 ±

913,06 ind.111·2 sous la plantation d'hévéa âgée de 25 ans. La plus faible densité est enregistrée

dans la forêt secondaire L 122 ± 199,25 ind.m" (Figure 8). La densité globale moyenne des

acariens varie significativement en fonction des sites d'échantillonnage (Test de Kruskal

Wallis, p = 0.001)

6000 Q) ....

5000 2 Q) >-. 0 E 4000 Q)

c,;; ..D

JUOO C b/J •Q) ......, Cil . 2000 C Q)

0 1000

0

T T 1 1

. ' T .l ,· .,

H7 Hl2 l:-J25 F.

Sites d'échantillon.nage

Figure 8. Densité globale moyenne des acariens en fonction des sites d'échantillonnage

1-17: Plantation d'hévéa âgée de 7 ans; H 12: Plantation d'hévéa âgée de 12 ans

1-125: Plantation d'hévéa âgée de 25 ans; FS: Forêt secondaire

1

29


3-1-2-Diversité biologique des acariens du sol

Tableau Il. Mesure de la diversité biologique des acariens du sol

Richesse Indice de Equitabilité Indice de Berger spécifique Shannon Parker

H7 2,2 ± 0,27 a 6,64 ± 0, 10 a 0,61 ± 0,09 b O 20 ± O 02 a , ,

H12 2,53 ± 0,35 a 0,75 ± 0, 11 a 0,71 ± 0,08 b 0,22 ± 0,02 a

H25 2,7 ± 0,43 a 0,71 ± 0,10 a 0,65 ± 0,08 b 0,32 ± 0,08 a

FS 1,47 ± 0,33 a 0,42 ± 0, 11 a 0,36 ± 0,09 a a 0,19 ± 0,04

Pour chaque indice, les valeurs ayant les mêmes lettres ne diffèrent pas significativement au niveau p = 0,05 d'après le test LSD (Least Significant Difference)

H7: Plantation d'hévéa âgée de 7 ans; HJ2: Plantation d'hévéa âgée de 12 ans

H25: Plantation d'hévéa âgée de 25 ans; FS: Forêt secondaire

Lenombre moyen d'espèces augmente avec l'âge des plantations dhévéa. en effet cc nombre

moyen passe. de 2,2 ± 0,27 sous la plantation d" hévéa âgée de 7 ans à 2, 7 ± 0,43 sous la

plantation d'hévéa âgée de 25 ans. Le nombre moyen d'espèces le plus faible est répertorié

'dans la forêt secondaire (l,47 ± 0,33). A l'échelle des 4 sites d'échantillonnage, le nombre

moyen d'espèces ne diffère pas significativement (ANOVA 1, p = 0,067) (Tableau 11). Lïnclice de diversité de Shannon ne varie pas significativement (A NOVA 1, p = 0, 129) sur l'ensemble des sites d'échantillonnage. L'indice de Shannon est plus grand dans la plantation

d'hévéa âgée de 12 ans (0,75 ± 0,11) et plus petit dans la forêt secondaire (0,42 ± 0,11)

(Tableau fl).

Contrairement à l'indice de Shannon, les valeurs de l'équitabilité diffèrent significativement

(A NOVA 1, p = 0.022) d'un site d'échantillonnage à un autre. La plus grande équitabilité est

observée dans la plantation dhévéa âgée de 12 ans (0,71 ± 0,08), tandis que la plus petite est

enregistrée dans la forêt secondaire (0,36 ± 0,09). Les valeurs des équitabilités sur l'ensemble

des sites d'échantillonnage font apparaître deux groupes homogènes. Le premier groupe

renferme l'ensemble des plantations d'hévéa (valeurs de l'équitabilité supérieures à 0,5)

tandis que le second groupe ne concerne que la forêt secondaire (valeur de l'équilabilité

inférieure à 0,5) (Tableau II). Du point de vue écologique, cela signifie que sous les

plantations d'hévéa, les acariens sont relativement diversifiés en espèces avec une meilleure

répartition des individus d'une espèce par rapport à la forêt secondaire.

30


L'indice de dominance de Berger Parker ne varie pas significativement (ANOVA 1, p = 0,287) sur l'ensemble des plantations d'hévéa et de la forêt secondaire. Le plus grand indice

de Berger Parker est observé dans la plantation d'hévéa âgée de 25 ans (0,32 ± 0,08) tandis

que le plus petit indice est observé au niveau de la forêt secondaire (0, 19 ± 0,04) (Tableau IJ).

Les espèces dominantes représentent 5,7%; 4,3%; 4,3% et 8,6% respectivement dans les

plantations d'hévéa âgée de 7; 12; 25 ans et la forêt primaire. Cependant à l'échelle du

paysage les espèces dominantes (Mycobatidae sp.1, Galumna sp.1, Javacarus sp.1, Oribate

(inconnu3), Haplozetidae sp.1, Galumna sp.2, Dolicheremaeus sp. l, Oppia sp.2, Oppia sp.1 1,

Afrotrachytes sp.3) représentent 14,3% de la richesse spécifique observée.

La richesse spécifique cumulée varie significativement (ANOVA 1, p = 0, 025) d'un site

d'échantillonnage à un autre et se présente comme suit: 25 espèces dans la plantation d'hévéa

âgée de 7 ans, 30 espèces dans la plantation d'hévéa âgée de 12 ans, 37 espèces sous la

plantation d'hévéa âgée de 25 ans et enfin 28 espèces dans la forêt secondaire. Les courbes

d'accumulations des espèces confirment les richesses spécifiques observées. Cependant, les

valeurs obtenues à partir de l'estimateur Jacknife I indiquent que le nombre total d'espèces

observées pourrait atteindre 36,6; 42,57; 57,3 et 47,33 respectivement pour les plantations

d'hévéa âgée de 7, 12, 25 ans et la forêt secondaire. Ces résultats montrent que les richesses

observées représentent 68,31 % ; 70,47%; 64,57% et 59,16% des richesses spécifiques

attendues respectivement pour les plantations d'hévéa âgée de 7, 12, 25 ans et la forêt

secondaire.

Sur l'ensemble des courbes cumulatives. le plateau de saturation n'est pas atteint (Figure 9 à

12).

31


40

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0 5 7 9 Il 13 15 17 19 21 23 25 27 29

Echantillons de sol

Figure 9. Courbe d'accumulation des espèces (Sobs) et estimateur de la richesse spécifique (Jacknife 1) des acariens du sol de la plantation d'hévéa âgée de 7 ans.

45 en 40 Q.) •(lj

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Echantillons de sol

Figure 10. Courbe d'accumulation des espèces (Sobs) et estimateur de la richesse spécifique (Jacknife l) des acariens du sol de la plantation d'hévéa âgée de 12 ans

32


70

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Echantillons de sol

Figure 11. Courbe cr accumulation des espèces (Sobs) et estimateur de la richesse spécifique (Jacknife 1) des acariens du sol de la plantation d'hévéa âgée de 25 ans.

50 45

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[chanti lions de so 1

Figure 12. Courbe d'accumulation des espèces (Sobs) et estimateur de la richesse spécifique (Jacknife 1) des acariens du sol de la forêt secondaire.

1

33


3-2-Discussion

*Evolution de l'abondance des acariens du sol

D'une manière générale, l'abondance des acariens du sol est fortement dépendante du type de

végétation, des facteurs mésologiques et des perturbations anthropiques (Badejo and Ola

Adams, 2000; Noti et al., 2003). Les résultats enregistrés révèlent une augmentation

significative de la densité des acariens avec l'âge des plantations d'hévéa. En effet malgré son

caractère monospécifique, la forte émergence des acariens dans la plantation d'hévéa de 25

ans pourrait s'expliquer par la forte disponibilité des ressources trophiques, consécutive à une

forte présence de la litière. Ce qui favoriserait la stabilité du microclimat édaphique en

maintenant la température et l'humidité du sol à des niveaux tolérables pour un meilleur

développement des acariens du sol.

Une élévation de la température du sol engendre une perte en eau. Or selon les travaux de

Noti ( 1991 ), 'Ducarrne et al. (2004), N' Dri et al. (201 1) la teneur en eau du sol serait un

facteur contrôlant l'abondance des acariens du sol. La densité relativement faible observée

dans la plantation d'hévéa âgée de 7 ans serait due à la faiblesse du couvert végétale,

favorisant une pénétration de la lumière incidente sans interception avec le houppier des

arbres. A cela s'ajoutent les nombreux sarclages et défriches opérés durant les 5 premières

années de la plantation. Cette pratique culturale permettrait l'élimination des acariens du sol,

notamment ceux ayant un cycle de vie inférieur à un an (Behan-Pelletier 1999).

Malgré son caractère hétérogène, 1 a faible densité des acariens issue de la forêt secondaire

s'expliquerait par la forte présence d'activités agricoles et de défriches au sein de cette

formation végétale (Lindo & Visser 2004).

*Evolution de la dynamique des principaux taxons

Les connaissances relatives à la composition des acariens du sol en relation avec le type de

formation végétale, le type de sol et de perturbation anthropique sont très fondamentales pour

une meilleure compréhension du fonctionnement des écosystèmes terrestres d'une part et

d'autres part pour pouvoir proposer des stratégies de gestion (N 'Dri et al., 20 l 1 ). Les résultats

obtenus après dépouillement et identification des spécimens révèlent que le nombre moyen

d'espèces augmente avec l'âge des plantations d'hévéa.

34

1 Master protection des végétaux et de l'environnement Master 1

En effet les travaux préparatoires (défriches, sarclages, apport constant d'intrants et de

pesticides) 1 iés à la 111 ise en place des parcelles pourraient expliquer le faible nombre moyen

d'espèce d'acariens observés dans la plantation d'hévéa âgée de 7 ans. Il est admis que les

travaux de sarclages contribuent à cornpacter le sol (Dexter, 2004). En cela, les acariens de

petite taille trouvent refuge dans les interstices du sol ou ne peuvent être collectés (Franklin et

al., 2004).

La variation de la richesse spécifique (25, 30, 37, 28 espèces) issue respectivement de la

plantation d'hévéa âgée de 7, 12, 25 ans et la forêt secondaire serait due à l'âge des

plantations associés à la saison d'échantillonnage (saison sèche). Les récents travaux de N'Dri

etal (2011) ont révélés la présence d'un effet saison sur les horizons de surface, manifesté par

la baisse de l'abondance et la diversité des acariens du sol en période de saison sèche. Ce qui

est contraire en fin de saison pluvieuse (Séka, 2015). Cette tendance similaire est enregistrée

par Badejo and Tian ( 1999) au sud du Nigeria et s'expliquerait par la faible teneur en eau du

sol associée à une forte élévation de la température du sol (Badejo el al., 1998; Badejo and

Tian, 1999).

Durant la saison pluvieuse, la litière accumulée pendant la saison sèche commence à

disparaître graduellement suivant les processus de décomposition. li s'en suit une restitution

des éléments minéraux au sol, et une plus grande disponibilité des ressources trophiques pour

la faune sous-jacente. L'effet de l'âge des agrosystèmes sur la diversité des acariens du sol

est soutenu par les travaux de Kardol et al (2009), Wissuwa et al (2012).

r Néanmoins les résultats obtenus et en rapport avec la richesse spécifique sont supérieures à

ceux obtenus par Oké el al (2005) en plantation d'hévéa qui enregistre 23 espèces. Cependant

le nombre d'espèces moyen observé par Franklin et al (2004) en forêt secondaire et dans des

polycultures à base d'hévéa demeurent supérieures aux nôtres. D'autant plus que l'auteur

dénombre dans des conditions expérimentales en plein champ 4,8; 5,7 et 6,7 espèces

respectivement en forêt secondaire, en polyculture 1 & 2.

Sur l'ensemble des parcelles d'études, les courbes d'accumulations révèlent que le plateau de

saturation n'est pas atteint. Deux raisons fondamentales permettent d'élucider ce constat (i)

les travaux de Bhattacharya and Chakraborty ( 1993) relatent que les acariens sous plantation

35


d'hévéa ont tendance à s'agréger (ii) à cela s'ajoute la faible mobilité des acariens du sol

(Berthet, 1964). Ce qui limiterait la probabilité d'échantillonner un grand nombre d'espèces.

Pour y remédier, il serait bon de randomiser le nombre d'échantillons. Toutefois ces

tendances sont similaires à celles observées par Minor & Cianciolo (2007), N'Dri et al

(2011).

1 l

36


CONCLUSION ET PERSPECTIVES

Ce présent travail réalisé dans le département de Grand Lahou avait pour principal objectif

l'évaluation de l'impact de l'âge des plantations d'hévéa sur l'abondance et la diversité des

acariens du sol en période de saison sèche.

L'hypothèse développée lors de cette étude est la suivante: Plus âgée sera la plantation

d'hévéa, plus abondants et diversifiés seront les acariens du sol.

Au terme de cette étude, il ressort que la transformation d'une forêt naturelle en plantation

d'hévéa entraine une modification des peuplements d'acariens du sol. En effet les différents

résultats montrent une augmentation de la densité et de la richesse spécifique des acariens du

sol avec l'âge des plantations d'hévéa.

Le caractère secondaire de la forêt associé aux nombreuses activités anthropiques qui s'y

déroulent seraient à la base de la faible abondance et diversité des acariens du sol enregistrées

au niveau de cette formation forestière.

En perspective, il serait intéressant de réaliser des études complémentaires telles que les

mesures physico-chimiques du sol pour une meilleure compréhension de la variation de

l'abondance et de la diversité de cette faune cryptique que constituent les acariens du sol.

37


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41


ANNEXE

Appendice 1. Liste des espèces observées dans la forêt de Gobédiénou (Manhan 2015)

Forêt 1 ~ (28 espèces; 18 familles)

Espèces Familles Espèces Familles

Aframomum sp Zingi beraceae Musango cecropioides Cecropiaceae

Alchornea cortifolia Euphorbiaceae Guava leonensis Apocynaceae

Argocoffeopsis ebracteolata Rubiaceae Funtumia africana Apocynaceae

Cola chlamydantha Malvaceae Strychnos sp Loganiaceae

Cola nitida Malvaceae Tarretia utilis Malvaceae

Cola sp Malvaceae Tetrorchidium didymostemon Euphorbiaceae

Xylopia aethiopica Annonaceae Mapania sp Cyperaceae

Diospyros tabanilata Ebenaceae Diospyros sp Ebenaceae

Dracena surculosa Asparagaceae Xylopia quintasi Annonaceae

Drypetes sp Euphorbiaceae Zanthoxylum gilleti Rutaceae

Elaeis guineensis Palamaceae Pueraria phaseoloides Papi I ionaceae

Erythrina sp Fabaceae Thaumatococcus daniellii Marantaceae

Fagara macrophylla Rutaceae Turraeanthus africanus Meliaceae

Garcinia sp Culsiaceae Uapaca guineensis Euphorbiaceae

42

-1 Master protection des végétaux et de l'environnement Master 1

Forêt 2 - (22 espèces ; 18 familles)

Espèces familles Espèces Familles

Agelaea trifolia Connaraceae Mapania sp Cyperaceae

Amaranthus bouchonii Amaranthaceae Microdesmis keanyana Pandaceae

Antiaris toxicaria Moraceae Psychotria gabonica Rubiaceae

Dichapelatum angolense Dichapotalaceae Pueraria phaseoloides Papilionaceae

Diospyros canaliculata Ebenaceae Erythrina sp Fabaceae

Diospyros cooperi Ebenaceae Strychnos sp Loganiaceae

Diospyros mobuttensis Ebenaceae Tarretia utilis Malvaceae

Dracaena surculosa Asparagaceae Thaumaiococcus daniellii Marantaceae

Elaeis guineensis Palamaceae Turraeanthus africanus Meliaceae

Guarea leonan Meliaceae Uapaca guineensis Euphorbiaceae

Katia sp Rubiaceae Xylopia villosa Annonaceae

43


Forêt 3 - (24 espèces ; 18 familles)

Espèces familles Espèces Familles Cola lateritia Malvaceae Mapania sp Cyperaceae Combretum sp Corn bretaceae Massularia accuminata Rubiaceae Desplatsia chrysochlamys Malvaceae Parinari excelsa Chrysobalanaceae Diospyros canaliculata Ebenaceae Pueraria phaseoloides Papilionaceae Diospyros manii Ebenaceae Strychnos sp Loganiaceae Diospyros sp Ebenaceae Tarretia utilis Malvaceae Dracaena phynioides Asparagaceae Xylopia acutiflora Annonaceae Culcasia sp Araceae Thaumatococcus daniellii Marantaceae Elaeis guineensis Palamaceae Turraeanthus africanus Meliaceae Entandrophragma sp Meliaceae Uapaca guineensis Euphorbiaceae Guarea cedrata Meliaceae Xylopia villosa Annonaceae Laccosperma laeve Arecaceae Dracaena suculosa Asparagaceae

44

Année académique : 2013-2014

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