Date

1- Pouvez-vous nous parler d’un cas de Bronchite infectieuse que vous auriez rencontré ?

2- Quels moyens avez-vous mis en oeuvre ?

3- Quel ont été les résultats ?

4- Quels besoins avez-vous identifiés pour aller plus loin ?

Date

Atelier REPRO

Cas cliniqueContexte :1 parquet de Repros de 30 semaines : - Chute De Ponte 8%, œufs blancs, déclassés et

comportement fiévreux. - Ponte pas récupérée (Rq : différencier 8% vs. 8 points (différence surtout en repros)) - Prélèvements PCR BI MS GTI. => BI 4/91 positif.Prophylaxie réalisée :J1 Ma5 4/915s Ma5 Clone 3011s 4/9118s IBMulti 

Cas cliniqueMoyens mis en œuvre :Présence de virus pas forcément corrélée à chute de ponte, et animaux régulièrement

challengés.Challenge IB 4/91 sur une vaccination 4/91 ratée peut provoquer une BI clinique.

Action : vaccination en ponte : avant le pic et après le pic.

Qualité de vaccination : Il faut plus de 95% de poules bien vaccinées : Si 5% n’ont pas eu une vaccination correcte (inactivé ) : ce sont celles-là qui peuvent chuter.

La qualité de l’échantillonnage est importante : en nombre et en endroit : le faire en diagonale dans le bâtiment en répartissant les prélèvements

Ma5/4-91 : a mieux marché. Ma5/Rhino CV peuvent être faits ensemble. 4/91 à suivre. Dans une zone à forte prévalence, il peut y avoir des challenges avant la revaccination

4/91. 

Vaccination poussinière à côté de bâtiment en ponte : vacciner tous les bâtiments en même temps pour éviter les réactions vaccinales.

Question : Combien de jours acceptables de décalage quand y a plusieurs

bâtiments à vacciner ? Le plus court possible. Le critère : c’est vacciner avant l’excrétion cloacale et circuits de circulation entre les 2.

 En ponte sortie de bâtiment (réforme des pondeuses) : vacciner les

poules qui restent, 2-3 semaines avant pour prévenir les réactions à la sortie.

 Titres en BI à attendre post vaccinal : il faut 4000 après les 4 vivants.  

Cas clinique

Pour aller plus loin : Pb : absence de sérothèque en contexte pression terrain

forte et donc titres anticorps élevésEn sérologie post inactivé : ajouter la valence Newcastle

(valable pour animaux en zone indemne de challenge ND

Inconvénient de la séro : sur animaux vaccinés sur programme satisfaisant en théorie et challengés avant la ponte : difficile à interpréter. => recours à la PCR.

Gestion : séro sur collatéraux, et vaccination en ponte 4/91 et/ou 4/91 Ma5

   

Cas clinique

Date

Atelier CHAIR

Cas de poulets labelsSymptômes vers 70 j : arrêt de croissance, « crêtes

bleues »Non vaccinés BI en élevageSérologies fin de lots: titres ELISA positifs avec CV plutôt

faiblesLes poulets n’étant pas vaccinés, conclusion de passage

BI,Mise en place de la vaccination 4-91 à 14 jours en élevage,

par pulvérisation, les poulets étant rassemblés dans des ronds

Disparition des symptômes sur les lots suivants

Poulets labels: comparaison de 2 protocoles de vaccination

Protocole habituel: H120 au couvoir puis 4-91 dans l’eau de boisson (avec la gumboro) à 21 j

Protocole expérimental: MA5 et 4-91 au couvoir en pulvérisation

Résultats des IHA et PCR X-OVO:• Meilleure prise vaccinale sur lots vaccinés au couvoir (même si on

retrouve des titres IHA et du virus vaccinal en PCR sur les lots vaccinés eau de boisson)

• La vaccination au couvoir MA5 et 4-91 est une solution lorsque la question de la qualité de la vaccination en élevage se pose

Poulets standardsContexte de mauvais résultats technico économiques, avec

colibacillosesRecherche en fin de lot par sérologie BI et gumboroTitres élevés en BI compatibles avec un passage sauvage

(les symptômes en élevage n’y avaient pas forcément fait pensé)

Mise en place d’une vaccination 4-91 à 15j en pulvérisation: amélioration du niveau sanitaire de l’élevage et des résultats économiques

Conclusions de l’atelier chairImportance du diagnostic, nécessité d’outils d’analyse à

disposition des praticiensImportance du matériel, pour une bonne application du

vaccin, adapté aux types d’élevageIntérêt de la vaccination BI aussi dans le contrôle des

surinfections

Date

Atelier PONTE

Ateliers PONTE

1er cas :

Poules plein air de 52 semSymptômes : mortalité, picage, un peu de Coli

œufs blanc, bagués, déformés

Conso aliment : normale, voire trop

Courbe de ponte : correcte, pas de chute

Séro : 25 sem : ND de ¼ à 1/32 (2 à 5 log2) : faible50 sem : ND max à 1/1024, 1/64 et reste entre ¼ et 1/1652 sem : BI 7814 Elisa Bck (24% CV)Attente nouvelle PS pour cinétique

Pas de vaccination en ponte

Ateliers PONTE

2ème cas :

Poules plein air avec problèmes de MSMa5+4-91 au couvoir, puis Ma5 et 4-91 en élevage

Décidé de faire : 4-91 15 j avant sortie sur parcours4-91 à 40-45 semaines, au Sprayfan

Depuis : plus besoin d’OTCmoins d’œufs blancsbaisse de ¾ des problèmes.

Ateliers PONTE

3ème cas :

110 000 poules en cages91% de ponte à 60 semainesAugmentation mortalité : 15-20/j passé à 50-60/jUrolithiaseBaisse de ponte à 84-85%, RAS sur les œufs

Hypothèse : problème alimentaire?Histologie : suspicion BI rénale

Sérologie 1 : normaleSérologie 2 en attente

Reprise ponte à 89%Il y a eu des rappels Mass en ponte (dernier à 40 semaines)

Ateliers PONTE

4ème cas :

50 000 poules à 50 semaines, achetées à 18 semaines

91% ponte, puis baisse à 60%

Mortalité RASŒufs RAS

Retour à la normale en 2 semaines, après des antistress

Pas de rappel en ponte

75 semaines aujourd’hui : 76% ponte

Ateliers PONTE

5ème cas :

Lot avec problème de Mycoplasmes, utilisation autovaccin

Décidé d’encadrer le pic de ponte avec des vaccins vivants BI

Transfert : +4j : Rhino CV + Ma5+11j : 4-91+8 sem : Ma5+8 sem : Rhino CV + Ma5+8 sem : 4-91+8 sem : Ma5+8 sem : 4-91

Avec Cage spray (2 passages)

Depuis : très bonnes pontes

Conclusion de l’atelier PONTE

Ne pas hésiter à vacciner en ponte :

Vaccin vivant : en même temps qu’inactivé+ 1 à 2 semaines avant le pic+ 1 à 2 semaines après le pic

Puis si contexte épidémiologique l’exige : (pression, multi-âges)

Mass et variants alternés toutes les 8 semainesvoire toutes les 4 semaines si besoin

Les questions les plus fréquemment posées

1/Le choix des échantillons dépend-il du contexte? (Contrôle après vaccination ou maladie).

Vaccination +2 sem;

Possibilité Virus vaccinal

Vaccination + 1sem.

Éc. trachéaux

Éc. cloacaux

vaccination

2/Quand les oiseaux vaccinés ont présenté des signes cliniques, vous trouverez au niveau cloacal le virus sauvage, même si la charge virale du vaccin est élevée? • Le séquençage classique (séquençage Sanger ) identifie la

population dominante de virus• Lorsque des virus sauvages colonisent des oiseaux, ils

deviennent la principale population de virus• Donc, en cas d’épisode clinique, la méthode permet de ne

détecter que le virus sauvage. • Théoriquement, la possibilité existe que vous puissiez prendre un

échantillon assez tôt dans le cycle infectieux sur lequel on pourrait encore identifier le virus vaccinal parce que l'échantillon aurait été prélevé avant l’installation complète du virus de terrain.

• Par conséquent, si un vétérinaire reste absolument convaincu de la présence d'un virus sauvage de la bronchite infectieuse, un ré-échantillonnage devrait être réalisé afin d'éliminer la possibilité d’un échantillonnage trop précoce dans le cycle infectieux.

3. Est-ce que la méthode de PCR quantitative permet de conclure que la vaccination a été bien faite (quel CT devrait-on obtenir?).

• Le test PCR quantitatif réel fournit une mesure très fiable et reproductible de la quantité d'ARN présente sur l'écouvillon ou la carte FTA. La variation est, cependant, inhérente au protocole d'échantillonnage.

• Ainsi, il est nécessaire d'établir les limites normales de fonctionnement pour les valeurs CT obtenues pour le type d'échantillon soumis -écouvillons contre carte FTA, cloaque contre trachée, etc

prélèvement Valeur CTTrachée 2-6 sem après vaccination 4-91

25- 30

Cloaque 2-6 sem après vaccination 4-91

20-25

Cas clinique 15-petite vingtaine

Flacon de vaccin 8-12

3. Est-ce que la méthode de PCR quantitative permet de conclure que la vaccination a été bien faite (quel CT devrait-on obtenir?).

valeurs réduites ( plus d’ARN présent) lorsque: • Carte FTA vs écouvillons• échantillons post-mortem prélevés au laboratoire

vs en élevage• vaccination par pulvérisation vs eau de boisson

Prélèvement Valeur CTTrachée 2-6 sem après vaccination 4-91

25- 30

Cloaque 2-6 sem après vaccination 4-91

20-25

Cas clinique 15-petite vingtaine

Flacon de vaccin 8-12

4. Le CT est-il corrélé avec l'intensité des symptômes, ou la pathogénicité du virus?

L’étude n’a pas été effectuée en laboratoire. la pathogénicité globale d'un virus peut probablement

être définie par l'interaction entre • la quantité présente

(en effet, l’activité de la réplicase - gène contrôlant le taux de réplication - a été expérimentalement associée à la virulence pour la souche M41)

• et la structure en 3 dimensions de la protéine S1.

5. Arrive-t-il que l’on isole plusieurs virus sur une même ferme?

Ceci peut être démontré en échantillonnant plusieurs organes en même temps sur le même poulet. Vous pouvez par exemple trouver Ma5 dans la trachée et 4/91 dans le cloaque quand les deux vaccins sont administrés en même temps.

6. À l'autopsie, ce seront les meilleurs échantillons? Écouvillons du cloaque ou d'organes?

Tant que les oiseaux sont assez frais, nous ne croyons pas qu'il y ait une différence significative.

7. Pourquoi les virus sont facilement isolés à partir de prélèvements du cloaque?

• C’est probablement dû à la présence d’une plus grande quantité de virus (la plupart des virus sauvages et vaccinaux semblent donner des valeurs de CT plus faibles - de plus grandes quantités d'ARN – à partir du cloaque que de la trachée)

• et à l’excrétion cloacale prolongée (donc il y a tout simplement plus de chance que le virus soit présent lorsque vous écouvillonnez l'oiseau)

8. Lorsque nous soupçonnons une bronchite rénale, quels échantillons devrions-nous choisir?

Les reins. Si le virus provoque une pathologie rénale nous devrions vraiment trouver le virus dans les reins.

9. Dans quels cas peut-on avoir de faux résultats négatifs?

• pas assez de matériel sur l’écouvillon ou la carte FTA..

• pools de plusieurs sites de prélèvements – par exemple cloaques et trachées: il est alors possible de diluer un nombre plus faible de cloaques positifs avec plus de trachées négatives, générant ainsi un ensemble négatif ou non typable, à cause d’une quantité résultante d'ARN trop faible.

• si les échantillons ne sont pas réfrigérés rapidement ou envoyés rapidement pour l'analyse

10. Pratiquement, lorsque les prélèvements sont prélevés à la ferme, combien de temps est-il possible de les conserver à la température ambiante?

• Pas plus de 1 jour si possible. • Cependant, cela dépend vraiment des conditions

environnementales parce que la question clé est la prévention de la contamination fongique.

• Les gaines charbon ne conviennent pas pour des recherches virales

Pour bien réaliser les prélèvements

La réalisation des prélèvements en Bronchite Infectieuse et Pneumoviroses

Prélèvements viraux pour PCR par écouvillons :o En Bronchite Infectieuse :o prélever les sujets malades ou les sujets sains en cas de symptômes

terminés ou pour une étude de prévalenceo En Pneumovirose :o Prélever par Ecouvillon Trachéal (uniquement) les sujets non malades en

cas de recherche lors de symptômes car le pneumovirus persiste peu de temps (3-5 J) dans l’appareil respiratoire supérieur ; il faut alors prélever les sujets en phase d’incubation. En cas de symptômes terminés les écouvillons trachéaux réalisés seront négatifs. Il faudra alors privilégier la sérologie.

Réalisation de sérologie :- Dans tous les cas une cinétique est obligatoire (au minimum 3 semaines

entre les deux prélèvements)- En poulet, une seule sérologie fin de bande, surtout si pas de rappel, est

interprétable

Prélèvements viraux pour PCR : X OvO

Écouvillon sec

Matériel à utiliser :Uniquement des écouvillons secs,À tige métallique de préférence ou en plastique (raison : éviter au minimum les interférences avec le matériel génétique prélevé, pour une meilleure sensibilité de la technique PCR)Ne pas utiliser d’écouvillons au charbon

Prélèvements viraux pour PCR :X OvO

Prélèvements pour étude et/ou Prospection :• Réaliser des Ecouvillons Cloacaux (bien

frotter l’écouvillon sur l’épithélium intérieur du cul de sac cloacal)

Lors de Cas clinique avec suspicion de BI :• Ecouvillons Trachéaux jusque 2 semaines

après le début des symptômes• Ecouvillons Cloacaux : si plus de deux

semaines après les symptômes

Méthode de prélèvement :• Réaliser 10 écouvillons = 1 PCR• Garder les écouvillons au froid (le plus

rapidement possible) avant envoi à MSD ; les congeler de préférence.

• Envoi par transporteur en évitant la veille du Week-End !

EC = Ecouvillon Cloacal

ET = Ecouvillon Trachéal

Prélèvements en élevage de volailles :Représentativité des prélèvements (écouvillons et prises de

sang) :20 prises de sang (PS) est le nombre minimal pour une représentativité

statistique (à respecter en cas d’étude de prévalence, peut-être diminué si prélèvement en phase d’infection car prévalence de la maladie est alors élevée)

- En élevage au sol : en diagonale du troupeau en répartissant le nombre de PS à réaliser

- En élevage en cage : idem en répartissant entre les étages des batteries