sémiologie de l'examen locomoteur et des affections locomotrices ...

VETAGRO SUP CAMPUS VETERINAIRE DE LYON

Année 2012 - Thèse n°18

SÉMIOLOGIE DE L’EXAMEN LOCOMOTEUR ET DES AFFECTIONS LOCOMOTRICES CHEZ LE CHEVAL :

RÉALISATION D’UN CD-ROM D’UNE BASE DE DONNÉES CLINIQUES ET VIDÉOGRAPHIQUES

THESE

Présentée à l’UNIVERSITE CLAUDE-BERNARD - LYON I (Médecine - Pharmacie)

et soutenue publiquement le 11 juillet 2012 pour obtenir le grade de Docteur Vétérinaire

par

Esteban MOURRA Né le 09 avril 1988

à Lure (70)

5

A Madame Le Professeur Elvire SERVIEN,

Professeur de la Faculté de Médecine de Lyon,

Qui nous a fait l’honneur d’accepter la présidence de notre jury de thèse,

Mes hommages respectueux.

A Monsieur le Professeur Olivier LEPAGE,

Professeur de l’Ecole Nationale Vétérinaire de Lyon (Vetagro Sup),

Pour m’avoir fait l’honneur et le plaisir de diriger ce travail,

Toute ma reconnaissance.

A Monsieur le Docteur Serge SAWAYA,

Maitre de conférences de l’Ecole Nationale Vétérinaire de Lyon (Vetagro Sup),

Pour nous avoir fait l’honneur de juger ce travail, en témoignage de mon respect,

Sincères remerciements.

A Madame le Docteur Monica GANGL,

Maitre de conférences de l’Ecole Nationale Vétérinaire de Lyon (Vetagro Sup),

Pour m’avoir encadré et accompagné tout au long de la réalisation de ce travail,

Pour sa disponibilité et sa motivation,

Qu’elle reçoive l’expression de toute ma gratitude.

7

Table des illustrations _________________________________________________ 13

Table des tableaux ___________________________________________________ 19

Première partie : l’examen locomoteur chez le cheval _______________________ 25

I. Démarche diagnostique ______________________________________________ 27

A. Principe général (Cannone, 2009) ___________________________________________ 27

B. Limite de cette démarche _________________________________________________ 27

C. Importance du relationnel _________________________________________________ 28

II. Historique et anamnèse (Ross & Dyson, 2011) ____________________________ 29

A. Signalement du cheval ____________________________________________________ 29

1. Age ________________________________________________________________ 30

2. Sexe ________________________________________________________________ 30

3. Race et utilisation (Courtois, 2007) et (Coussediere, 2010) _____________________ 31

B. Investigation de l’affection actuelle _________________________________________ 32

1. Détermination du problème _____________________________________________ 32

2. Durée et mode d’évolution du problème ___________________________________ 33

C. Changements récents dans la vie du cheval ___________________________________ 33

1. Ferrure _____________________________________________________________ 33

2. Type d’entraînement et surface __________________________________________ 34

3. Nourriture ___________________________________________________________ 34

4. Lieu de vie ___________________________________________________________ 34

5. Traitements actuels ___________________________________________________ 35

6. Historique médical du cheval ____________________________________________ 35

III. Conformation et aplombs ____________________________________________ 37

A. L’équilibre entre les différentes parties du corps _______________________________ 37

1. Evaluation des proportions (Baxter, 2011) __________________________________ 38

2. Exemple de défauts physiques ___________________________________________ 39

B. Evaluation des longueurs, des angles et des hauteurs ___________________________ 39

1. Longueurs notables ____________________________________________________ 40

2. Angles notables _______________________________________________________ 41

C. Evaluation des membres __________________________________________________ 42

1. Prérequis ____________________________________________________________ 42

2. Conformation du membre thoracique _____________________________________ 43

3. Conformation du membre pelvien ________________________________________ 46

4. Conformation du doigt (Pollitt, 1995) ______________________________________ 49

IV. Examen visuel de la symétrie et de la posture ____________________________ 50

8

A. Symétrie de l’avant-main __________________________________________________ 50

1. Atrophie musculaire (Hinchcliff, et al., 2008) ________________________________ 50

2. Tuméfaction _________________________________________________________ 51

3. Déformation angulaire _________________________________________________ 53

4. Taille des pieds _______________________________________________________ 54

5. Descente du boulet ____________________________________________________ 54

B. Symétrie de l’arrière-main _________________________________________________ 55

1. Atrophie musculaire ___________________________________________________ 55

2. Tuméfaction _________________________________________________________ 56

3. Asymétrie osseuse ____________________________________________________ 56

C. Posture du cheval (Ross & Dyson, 2011) (Baxter, 2011) __________________________ 58

1. Posture des membres thoraciques et du cou ________________________________ 58

2. Posture des membres pelviens ___________________________________________ 60

V. Palpation __________________________________________________________ 63

A. L’art de la palpation ______________________________________________________ 63

B. Palpation des membres thoraciques (Ross & Dyson, 2011) _______________________ 64

1. Le pied (Spriet, 2002) __________________________________________________ 64

2. Utilisation de la pince à sonder ___________________________________________ 65

3. Palpation du paturon __________________________________________________ 67

4. Palpation du boulet ____________________________________________________ 67

5. Région métacarpienne _________________________________________________ 68

6. Palpation du carpe ____________________________________________________ 72

7. Avant-bras et coude ___________________________________________________ 72

8. Bras et épaule ________________________________________________________ 73

C. Palpation du rachis et du bassin (Henson, 2009) ________________________________ 74

1. Rachis cervical ________________________________________________________ 74

2. Dos : rachis thoraco-lombaire ____________________________________________ 74

3. Palpation du bassin ____________________________________________________ 74

D. Palpation du membre pelvien (Ross & Dyson, 2011) ____________________________ 76

1. Cuisse ______________________________________________________________ 76

2. Grasset _____________________________________________________________ 76

3. Jarret et jambe (Nowak, 2005) ___________________________________________ 77

4. Partie distale du membre _______________________________________________ 78

VI. Examen dynamique _________________________________________________ 79

A. Rappels sur les allures naturelles (Clayton, 1986) (Pilliner, et al., 2002) ______________ 79

1. Le pas ______________________________________________________________ 79

2. Le trot ______________________________________________________________ 80

3. Le galop _____________________________________________________________ 80

9

B. Déroulement de l’examen dynamique _______________________________________ 81

1. Conduite du cheval ____________________________________________________ 81

2. Types de surfaces _____________________________________________________ 81

3. Observation du cheval _________________________________________________ 82

C. Reconnaissance d’une boiterie (Audigié, et al., 2001) (Buchner, et al., 1996) (Uhlir, et al.,

1997) 83

1. Boiterie thoracique ____________________________________________________ 83

2. Boiterie pelvienne _____________________________________________________ 83

3. Descente du boulet ____________________________________________________ 83

4. Indices sonores _______________________________________________________ 84

D. Gradation de la boiterie ___________________________________________________ 84

E. Précisions sur l’évaluation du cheval en cercle _________________________________ 84

1. Membre thoracique ___________________________________________________ 85

2. Membre pelvien ______________________________________________________ 85

VII. Manipulation ____________________________________________________ 86

A. Tests de mobilisation passive (Baxter, 2011) (Ross & Dyson, 2011) _________________ 86

1. Mobilisation du membre thoracique ______________________________________ 86

2. Mobilisation des membres pelviens _______________________________________ 88

3. Mobilisation du dos ___________________________________________________ 88

B. Les tests de flexion_______________________________________________________ 89

1. Flexion du membre thoracique ___________________________________________ 89

2. Tests de flexion des membres pelviens (Starke, et al., 2012) ____________________ 90

C. Autres manipulations_____________________________________________________ 91

VIII. Anesthésies sémiologiques _________________________________________ 92

A. Stratégie et préparation (Birague, 2006) ______________________________________ 92

1. Principes de base _____________________________________________________ 92

2. Préparation du cheval __________________________________________________ 92

3. Matériel_____________________________________________________________ 93

B. Anesthésies du membre thoracique (Birague, 2006) ____________________________ 94

1. Anesthésies tronculaires ________________________________________________ 94

2. Anesthésies intra- articulaires____________________________________________ 94

3. Anesthésies des bourses et gaines tendineuses ______________________________ 94

C. Bilan des anesthésies du membre thoracique __________________________________ 95

D. Anesthésies du membre pelvien (Baxter, 2011) ________________________________ 98

1. Anesthésies tronculaires ________________________________________________ 98

2. Anesthésies intra-articulaires ____________________________________________ 98

3. Anesthésies des gaines et des bourses _____________________________________ 98

10

Seconde partie : Examens complémentaires ______________________________ 103

I. Radiographie ______________________________________________________ 104

A. Bref rappel physique ____________________________________________________ 104

B. Réalisation des clichés lors d’examen locomoteur (Butler, et al., 2000) _____________ 105

1. Réalisation pratique (Butler, 2003) _______________________________________ 105

2. Réalisation des principaux clichés (Weaver & Barakzai, 2010) __________________ 106

C. Lecture des clichés radiographiques ________________________________________ 108

1. Phase critique _______________________________________________________ 108

2. Phase analytique (Alterescu-Le Floc'h, 2005) (Gatti, 2006) ____________________ 109

3. Phase synthétique ____________________________________________________ 111

D. Sémiologie radiographique de base (Butler, et al., 2000) ________________________ 111

E. Radiologie générale (Butler, et al., 2000) (Farrow, 2006) ________________________ 112

1. Déminéralisation osseuse ______________________________________________ 112

2. Augmentation de production osseuse ____________________________________ 113

3. Fracture ____________________________________________________________ 114

4. Infection osseuse ____________________________________________________ 114

5. Séquestre osseux ____________________________________________________ 115

6. Atteintes superficielles ________________________________________________ 116

7. Lésions articulaires ___________________________________________________ 116

8. Kystes osseux _______________________________________________________ 116

9. Ostéochondrose (Wright & Minshall, 2005) ________________________________ 117

10. Arthropathie dégénérative (Tamba, 2005) _________________________________ 117

F. Limites de la radiographie (Biggi & Dyson, 2010) (Biggi & Dyson, 2012) _____________ 118

II. Echographie ______________________________________________________ 119

A. Bref appel physique (Reef, 1998)___________________________________________ 119

B. Qualité des images échographiques (Thevenot, 2002) __________________________ 119

1. Pénétration et atténuation _____________________________________________ 119

2. Résolution de l’image échographique ____________________________________ 120

C. Interprétation des images obtenues (Farrow, 2006) ____________________________ 121

D. Technique échographique ________________________________________________ 121

1. Matériel____________________________________________________________ 121

2. Préparation du cheval _________________________________________________ 121

E. Echographie des tissus mous des membres (Seignour, et al., 2012) ________________ 122

F. Evaluation échographique des articulations __________________________________ 122

1. Indications (Redding, 2001) ____________________________________________ 123

2. Matériel et préparation _______________________________________________ 123

3. Réalisation pratique (Hoegaerts, et al., 2005) (Cauvin, et al., 1996) _____________ 123

11

G. Echographie de la région cervicale et du dos (Berg, et al., 2003) __________________ 128

H. Echographie transrectale (Kersten & Edinger, 2004) (Nagy, et al., 2010) ____________ 128

I. Echographie des autres structures (Rantanen & McKinnoon, 1998) (Smith & Smith, 2008)

129

III. Examen scintigraphique _____________________________________________ 130

A. Principe physique (Ross, 1995) ____________________________________________ 130

B. Indications de réalisation (Steckel, 1991) (Nelson, 2001) ________________________ 131

C. Réalisation de l’examen (Steckel, 1991) (Pease, et al., 2010) _____________________ 132

1. Pharmacocinétique du radiotraceur ______________________________________ 132

2. Réalisation des acquisitions ____________________________________________ 132

3. Distribution du radiotraceur ____________________________________________ 133

4. Lecture des images (Woaye-Hune, 2006) __________________________________ 133

5. Protection du personnel _______________________________________________ 135

6. Limites de la scintigraphie ______________________________________________ 136

IV. Imagerie par résonance magnétique ___________________________________ 137

A. Concept physique ______________________________________________________ 137

B. Réalisation des images (Mair, et al., 2005) ___________________________________ 138

C. Avantages et inconvénients (Taprest, et al., 2003) (Powell, 2012) _________________ 138

1. Avantages __________________________________________________________ 138

2. Limites _____________________________________________________________ 139

D. Indications (Audigié, et al., 2007) __________________________________________ 139

V. Examen tomodensitométrique _______________________________________ 140

A. Indications cliniques ____________________________________________________ 140

1. Recherche d’atteinte osseuse (Hanson, et al., 1996) _________________________ 140

2. Diagnostic de boiterie _________________________________________________ 141

B. Comparaisons avec l’IRM _________________________________________________ 141

VI. Examen visuel par scopie ____________________________________________ 142

A. Arthroscopie (McIlwraith, et al., 2005) ______________________________________ 142

1. Avantages (Smith & Wright, 2012) _______________________________________ 142

2. Inconvénients _______________________________________________________ 142

3. Indications __________________________________________________________ 142

4. Réalisation __________________________________________________________ 143

B. Ténoscopie et bursoscopie _______________________________________________ 144

VII. Thermographie __________________________________________________ 145

A. Réalisation pratique (Eddy, et al., 2001) _____________________________________ 145

1. Principe exploité _____________________________________________________ 145

12

2. Prérequis ___________________________________________________________ 146

3. Examen d’un cheval __________________________________________________ 146

B. Applications cliniques ___________________________________________________ 146

C. Limites et avantages (Eddy, et al., 2001) _____________________________________ 147

VIII. Comparaison des différents examens complémentaires (Barr, et al., 2006) __ 149

A. Examens de premier choix ________________________________________________ 149

B. Examens complémentaires avancés ________________________________________ 149

1. Complémentaires aux premiers examens__________________________________ 149

2. A visée diagnostique régionale __________________________________________ 150

3. A visée curative ______________________________________________________ 150

Troisième partie : Réalisation d’une base de données vidéographiques et d’un CD-

Rom multimédia pour l’entrainement à la reconnaissance et la caractérisation des

boiteries chez le cheval _____________________________________________________ 151

I. Collecte des cas ____________________________________________________ 152

A. Choix des cas __________________________________________________________ 152

B. Collecte des données vidéos ______________________________________________ 153

1. Obtention __________________________________________________________ 153

2. Traitement et analyse _________________________________________________ 153

C. Collecte des données cliniques et des examens complémentaires _________________ 155

II. Création du CD-Rom ________________________________________________ 156

A. Langage de programmation et logiciel utilisés ________________________________ 156

1. Langage de programmation (Nebra, 2009) (Nebra, 2010) _____________________ 156

2. Logiciel retenu _______________________________________________________ 157

B. Intégration des données collectées _________________________________________ 159

1. Données texte _______________________________________________________ 159

2. Données vidéographiques _____________________________________________ 160

3. Données images _____________________________________________________ 160

III. Utilisation de l’application ___________________________________________ 161

A. Configuration matérielle _________________________________________________ 161

B. Démarrage de l’application _______________________________________________ 161

C. Plan général ___________________________________________________________ 162

D. Consultation d’un cas ___________________________________________________ 162

Bibliographie _______________________________________________________ 169

13

Figure 1 : vues dorsopalmaires du troisième métacarpien d’un hongre pur-sang de 18

ans. Le cliché de gauche a été réalisé immédiatement après observation d’une plaie en

regard de l’os. Le cliché de droite concerne la même zone deux semaines après et met en

évidence une fracture oblique de l’os métacarpien III. .........................................................36

Figure 2 : évaluation schématique des proportions d’un cheval vu de profil. Sur cet

animal de conformation idéale, les trois cercles se chevauchent d’environ un tiers. La

longueur du corps (X) doit être égale ou légèrement supérieure à la hauteur du garrot (Y) et

de la croupe (Z). (Ross & Dyson, 2011). .................................................................................38

Figure 3 : exemple de cheval présentant une ligne de croupe supérieure à sa ligne de

garrot, un dos long et une avant-main faiblement musclée. .................................................39

Figure 4 : mesure de la longueur d’épaule (A), de la longueur de croupe (B), de l’angle

de l’épaule (C) et de l’angle de la croupe(D). L’angle du sabot (E) est censé être égal à l’angle

de l’épaule. ...........................................................................................................................40

Figure 5 : à gauche un cheval à longueur et angle de croupe réduits et de ce fait

prédisposé aux atteintes postérieures. A droite un cheval avec un bon angle et une longueur

de croupe généreuse. ...........................................................................................................41

Figure 6 : vue de face, d profil et plantaire d’un cheval aux aplombs corrects.

Remarquer les différentes lignes fictives ainsi que leur position. ..........................................42

Figure 7 : à gauche cheval présentant un varus du carpe (genoux cambrés). A droite

cheval présentant un valgus du carpe (genoux de bœuf). .....................................................43

Figure 8 : en A cheval ouvert du devant, en B ouvert et panard, en C ouvert et

cagneux. ...............................................................................................................................43

Figure 9 : en A cheval serré du devant, en B serré et cagneux, en C serré et panard. .43

Figure 10 : en A démarche d’un cheval cagneux, on dit que l’animal billarde ; en B

démarche d’un cheval franchement panard avec interférence entre les deux membres. .....44

14

Figure 11 : en A cheval campé du devant, en B cheval sous lui du devant. Attention

aux chevaux campés du devant : il peut s’agir d’une mauvaise position et non d’un défaut de

conformation........................................................................................................................45

Figure 12 : à gauche cheval présentant un genou arqué, au centre aplomb normal, à

droite cheval présentant un genou creux. ............................................................................45

Figure 13 : à gauche yearling pur-sang présentant des genoux creux. Noter l’aspect

concave du bord cranial du membre, plus important du côté gauche. Ce type de

conformation est indésirable car propice aux affections du carpe notamment. ....................46

Figure 14 : en A jarret coudé, en B jarret droit, en C cheval sous lui de derrière et en D

cheval campé de derrière. ....................................................................................................47

Figure 15 : Cheval « sous lui de derrière ». Attention à ce type de posture qui souvent

résulte d’un mauvais positionnement de l’animal.................................................................48

Figure 16 : en A cheval présentant des jarrets clos, en B cheval serré de derrière et

présentant des jarrets clos, en C cheval serré de derrière, en D cheval ouvert de derrière et

en E cheval présentant des jarrets campés. ..........................................................................48

Figure 17 : à gauche pur-sang de trois ans présentant un tuber sacrale gauche (fléché)

légèrement plus bas que le droit. Ce détail peut facilement passer inaperçu ou être confondu

avec une amyotrophie fessière. ............................................................................................55

Figure 18 : mode d’appréciation des hémipelvis. Chez ce cheval sain, les deux

longueurs X et Y sont de même mesure. ...............................................................................57

Figure 19 : à gauche posture classique d’un membre thoracique lors de descente du

coude chez un cheval atteint d’une paralysie du nerf radial. A droite posture de membre

thoracique chez un foal atteint d’ostéomyélite scapulaire et d’arthrite infectieuse ;

remarquer le report caudal du membre. ..............................................................................59

Figure 20 : Pur-sang yeraling souffrant de douleur cervicale et montrant une posture

typique de ce genre d’atteinte. .............................................................................................60

Figure 21 : Posture classique d’un cheval présentant un accrochement rotulien.

Toutes les articulations sont bloquées en extension rigide. ..................................................61

15

Figure 22 : modélisation des différentes zones à sonder. (Budras, et al., 2009)

(Denoix, 2000). .....................................................................................................................66

Figure 23 : structures ligamentaires et tendineuses du boulet. (Budras, et al., 2009).

.............................................................................................................................................70

Figure 24 : méthode de palpation des tissus mous de la région métacarpienne

palmaires (LSB, TFPD et TFSD), membre au soutien et en flexion. .........................................70

Figure 25 : à gauche palpation de la région métacarpienne dorso-proximale. A droite

palpation de la région métacarpienne proximo-palmaire, étape essentielle dans le diagnostic

d’atteintes proximales du LSB. ..............................................................................................71

Figure 26 : position permettant d’évaluer et de comparer les hauteurs et largeurs des

processus osseux du bassin. Attention cependant car cette position reste très dangereuse

pour le praticien et peut être remplacé par le positionnement de deux aides de chaque côté

pointant les reliefs en question. ...........................................................................................75

Figure 27 : mécanique du pas du cheval mettant en évidence une battue du

postérieur droit suivie de celle de l’antérieur droit, puis du postérieur gauche et enfin de

l’antérieur gauche. ...............................................................................................................79

Figure 28 : mécanique du trot du cheval. Chaque avancée de bipède diagonale est

suivie d’une phase de propulsion conférant son caractère « sauté » à l’allure. .....................80

Figure 29 : mécanique du galop à droite. Le cheval engage le postérieur gauche puis

son bipède diagonal gauche et son antérieur droit avant d’avoir une phase de propulsion. .80

Figure 30 : Stratégie analgésique sur le membre thoracique: du pied au carpe. IPD :

interphalangienne distale, IPP : interphalangienne proximale, MCP : métacarpo-

phalangienne, Mc : métacarpienne. Adapté d’après (Ross & Dyson, 2011) et (Birague, 2006).

.............................................................................................................................................95

Figure 31 : Stratégie analgésique sur le membre thoracique : de l’avant-bras à

l’épaule. ...............................................................................................................................96

Figure 32 : Stratégie analgésique sur le membre pelvien : du pied au jarret. IPD :

interphalangienne distale, IPP : interphalangienne proximale, MTP : métatarsophalangienne,

TMT : tarsométatarsienne, FD : fléchisseurs du doigt. ..........................................................99

16

Figure 33 : Stratégie analgésique sur le membre pelvien : de la jambe à l’articulation

coxo-fémorale. FPD : fléchisseur profond du doigt. ............................................................ 100

Figure 34 : dénomination des régions distales du membre antérieur et postérieur.

(Ross & Dyson, 2011) .......................................................................................................... 122

Figure 35 : coupe transversale de la face crâniale du grasset (côté médial à gauche)

........................................................................................................................................... 125


........................................................................................................................................... 125

Figure 37 : coupe transversale de la face crânio-latérale du grasset (côté médial à

gauche) .............................................................................................................................. 125

Figure 38 : coupe transversale de la face latérale du grasset (côté crânial à gauche)

........................................................................................................................................... 126

Figure 39 : coupe longitudinale de la face latérale du grasset (extrémité proximale à

gauche) .............................................................................................................................. 126

Figure 40 : coupe transversale de la face crânio-médiale du grasset (côté crânial à

gauche) .............................................................................................................................. 126

Figure 41 : coupe longitudinale de la face médiale du grasset (extrémité proximale à

gauche) .............................................................................................................................. 127

Figure 42 : coupe transversale de la face crânio-médiale du grasset en flexion (côté

médial à gauche) ................................................................................................................ 127

Figure 43 : coupe transversale de la face crânio-latérale du grasset en flexion (côté

médial à gauche) ................................................................................................................ 127

Figure 44 : coupe longitudinale de la face crâniale du grasset en flexion (extrémité

proximale à gauche) ........................................................................................................... 128

Figure 45 : réalisation d’acquisition sur un antérieur droit au sein de l’université de

Pennsylvanie au New Bolton Center. .................................................................................. 133

Figure 46 : image scintigraphique de la région du garrot montrant des points chauds

au niveau des processus épineux thoracique. Noter l’échelle des teintes sur la droite........ 134

17

Figure 47 : images de scintigraphie osseuse chez un pur-sang de deux ans. Noter les

remaniements physiologiques importants au niveau des physes qui ne doivent pas être pris

pour des atteintes de l’os. .................................................................................................. 134

Figure 48 : image scintigraphique de la région distale du membre du montrant un

points chauds au niveau du boulet gauche. La radiographie ne révèle quant à elle encore

aucune anomalie. Noter la différence avec le boulet controlatéral. .................................... 135

Figure 49 : reconstruction tridimensionnelle de l’articulation métacarpo-

phalangienne montrant une atteinte de l’os sous-chondral et la présence d’ostéophytes péri-

articulaires.......................................................................................................................... 140

Figure 50 : ............................................................................................................... 143

Figure 51 : aspect du cheval en image thermographique. Noter les différences de

température en fonction de leur proximité avec de gros vaisseaux et de leur métabolisme.

........................................................................................................................................... 145

Figure 52 : exemples d’images thermographiques, à gauche image obtenue chez un

cheval atteint d’une arthrite de l’articulation métacarpo-phalangienne, à droite cheval

atteint d’une tendinopathie des fléchisseurs. ..................................................................... 147

Figure 53 : utilisation de vidéopad pour le traitement des vidéos : découpe et

conversion notamment. A gauche se situe l’ensemble des films réalisés pour le cheval en

cours, à droite la visualisation de la séquence sélectionnée et découpée. La conversion se fait

à l’enregistrement. ............................................................................................................. 155

Figure 54 : exemple le plus connu de ligne de programmation en langage C++

permettant d’afficher le texte « Hello World ! » à l’écran. .................................................. 157

Figure 55 : à gauche exemple de programme en console, à droite exemple de

programme en fenêtres. ..................................................................................................... 157

Figure 56 : aperçu de Qt creator, à gauche les différentes parties du programme, à

droite un aperçu du code source d’une de ces parties. ....................................................... 158

Figure 57 : aperçu de l’interface graphique de Qt creator : Qt Designer. Le Designer

permet de placer beaucoup plus rapidement les différents objets conventionnels qui seront

utilisés. ............................................................................................................................... 159

18

Figure 58 : exemple de bouton vidéo, un clic entraîne le chargement et l’ouverture de

la vidéo où l’on voit le cas étudié évoluer au trot en ligne droite. ....................................... 160

Figure 59 : Le tableau principal résumant tous les cas de l’application : nom, race,

sexe, âge, utilisation de l’animal et motif de consultation................................................... 163

Figure 60 : Aperçu d’un cas, à gauche il est possible de naviguer entre les différentes

parties de l’examen, à droite une description de la partie en cours. ................................... 163

Figure 61: Consultation des radiographies réalisées sur le cas. ................................ 164

Figure 62: Consultation d’une vidéographie d’un cheval. ........................................ 164

19

Table

Tableau 1 : prévalence des affections locomotrices en fonction de l’activité du cheval

d’après (Ross & Dyson, 2011) ...............................................................................................31

Tableau 2 : comparaison des principaux anesthésiques locaux utilisables. En pratique

la lidocaïne est la plus utilisée, la mépivacaïne est très répandue chez nos confrères anglo-

saxons. D’après (Birague, 2006). ...........................................................................................93

Tableau 3 : Anesthésies du membre postérieur : type, quantité à injecter et temps

d’attente. A noter que certaines anesthésies seront bien plus précises sous échoguidage.

(Baxter, 2011) .......................................................................................................................97

Tableau 4 : Anesthésies du membre postérieur : type, quantité à injecter et temps

d’attente. A noter que certaines anesthésies seront bien plus précises sous échoguidage.

(Baxter, 2011) ..................................................................................................................... 101

Tableau 5 : incidences radiographiques du membre antérieur chez le cheval et

indications .......................................................................................................................... 106

Tableau 6 : incidences radiographiques du membre postérieur chez le cheval et

indications .......................................................................................................................... 107

Tableau 7 : fréquence sonore en fonction de la profondeur tissulaire étudiée ........ 121

Tableau 8 : aspect des différents tissus sur les séquences T1 et T2 lors d’un examen

d’imagerie par résonnance magnétique. ............................................................................ 138

20

tions

FD : tendons fléchisseurs du doigt

IA : intra-articulaire

IPD : articulation interphalangienne distale

IPP : articulation interphalangienne proximale

IRM : imagerie par résonnance magnétique

IS : intra-synoviale

LSB : ligament suspenseur du boulet

Mc : métacarpe

MCP : articulation métacarpo-phalangienne

Mt : métatarse

MTP : articulation métatarso-phalangienne

OCD : osétéochondrite dissécante

PN : périnerveuse

TFPD : tendon fléchisseur profond du doigt

TFSD : tendon fléchisseur superficiel du doigt

TMT : articulation tarso-métatarsienne

23

INTRODUCTION

En tant que cavalier de Concours de Sauts d’Obstacles mais aussi comme propriétaire

de chevaux, j’ai été en contact avec la pathologie locomotrice depuis mon plus jeune âge.

Les manifestations cliniques d’une boiterie restent bien connue tant chez l’Homme que chez

le cheval : il s’agit d’une irrégularité présente dans la démarche. Cependant, en donner une

définition exacte constitue un réel défi pour le praticien. En effet une boiterie est

simplement une manifestation clinique résultant de phénomènes tels que la douleur ou une

gêne mécanique mais la reconnaissance, la localisation la caractérisation et la prise en

charge restent parfois très complexes à établir. A l’heure actuelle l’accessibilité à des

techniques d’imagerie de plus en plus pointues constitue un allié de poids dans

l’établissement d’un diagnostic.

Le but de ce travail est donc de tenter de réaliser un document d’aide à la sémiologie

locomotrice et de constituer une base de données représentative d’affections diverses sur

des chevaux. Le choix de créer une banque de données vidéographiques constitue un point

intéressant du fait que la perception de certains troubles reste difficile de par leur

expression pouvant s’avérer frustre et subtile. La réalisation de vidéographies de chevaux

sains permettra également au lecteur de se familiariser avec la locomotion du cheval, les

variations individuelles pouvant constituer parfois de véritables pièges dans l’interprétation

ainsi que le déroulement d’un examen locomoteur complet.

Après avoir rappelé le déroulement de l’examen locomoteur du cheval boiteux en

précisant les motivations d’un tel bilan, nous nous intéresserons aux examens

complémentaires disponibles à l’heure actuelle, leur intérêt et leur bonne pratique de

réalisation. Enfin nous déboucherons sur la réalisation mais aussi et surtout sur l’utilisation

de notre logiciel.

26

La réalisation d’un examen locomoteur complet est indiqué dans le cas d’une

affection évidente de l’appareil locomoteur telle qu’une boiterie ou une altération

physiquement objectivable d’une structure appartenant ou rattachée au système

locomoteur. Il est également indiqué d’effectuer un tel examen dans le cas d’une intolérance

à l’effort du cheval ou d’une modification de ses habitudes dans le travail (citons comme

liste non exhaustive une difficulté à la mise en main, un cheval ne se ployant pas ou encore

une augmentation du nombre de refus). Enfin il est intéressant de réaliser un bilan

locomoteur dans le cadre d’une visite d’achat, auquel cas celui-ci sera légèrement modifié

par rapport à l’exploration d’une boiterie, cette partie ne sera cependant pas développée ici.

L’examen locomoteur consiste en une investigation de la boiterie permettant de

déboucher sur un diagnostic anatomique et lésionnel à la suite de quoi le vétérinaire doit

pouvoir présenter aux propriétaires un pronostic vital mais aussi et surtout sportif (avec

et/ou sans chaque option thérapeutique).

Dans le milieu sportif équin, émettre un diagnostic sportif ne doit cependant pas se

faire à la légère car les conséquences qui en découlent ne sont pas des moindres : cela peut

entrainer d’une part la réforme du cheval voire son euthanasie. D’autre part, émettre un

pronostic favorable par excès peut être responsable de perte de grosses sommes d’argent

en cas de contre-performances, c’est pourquoi l’investigation d’une boiterie doit se réaliser

méthodiquement et avec la plus grande attention afin d’avoir un diagnostic et un pronostic

justes et précis.

27

I. Démarche diagnostique

A.

La première étape consiste à recueillir l’historique du cheval ainsi que l’anamnèse.

Vient ensuite l’examen de la monture comprenant son examen à distance, son examen

clinique et son observation en mouvement. A la suite de cela, le vétérinaire orientera ses

investigations sur les zones qui lui auront parues suspectes : palpations supplémentaires,

pressions directes, manipulations, tests de flexion. Pour terminer, la réalisation

d’anesthésies sémiologiques permettra de peaufiner le diagnostic anatomique. Les examens

complémentaires permettent de déterminer la cause de la boiterie et seront développés

dans la seconde partie de ce projet.

B.

Il est parfois impossible de suivre parfaitement la démarche énoncée précédemment.

Le propriétaire peut en effet être restreint au niveau financier, ce qui conduira le praticien à

limiter les examens complémentaires et à réduire son examen locomoteur à la zone

suspecte avec ouverture possible à d’autres zones en fonction des capacités financières du

propriétaire. L’animal peut également être difficile à manipuler, les flexions et les

anesthésies des membres pelviens voire des membres thoraciques pourront ainsi dans

certains cas ne pas être réalisées.

D’autres cas particuliers peuvent limiter le vétérinaire dans sa démarche. En effet

consulter un cheval en pleine saison sportive peut rendre impossible l’utilisation de certains

produits tels que ceux utilisés lors des anesthésies sémiologiques ; l’animal peut également

présenter une boiterie marquée rendant dangereux son examen en dynamique.

Il arrive également fréquemment que le praticien ne dispose pas de terrains adaptés

pour observer le cheval en mouvement : terrain trop dur, trop profond, absence de l’un des

deux voire plus rarement des deux.

28

A noter un dernier exemple mais pas des moindres : celui d’un cheval présentant une

fracture partielle. Dans ce cas, il est dangereux de l’observer en mouvement, de même

qu’insensibiliser la zone au moyen d’anesthésie sémiologique augmente le risque

d’aggravation de la lésion de manière importante. Dans un tel cas, l’anamnèse et la clinique

doivent nous guider et il serait judicieux de réaliser les radiographies avant l’examen

dynamique.

Dans tous les cas il faut retenir que cette démarche, bien que chronophage, doit être

suivie sans éludassions ni prise de raccourci permettant ainsi au praticien d’éviter les oublis

et de se prémunir ainsi de contestations éventuelles.

C.

Le relationnel tient une place importante lors de l’examen locomoteur d’un cheval.

Les désaccords avec les propriétaires sont fréquents notamment sur la localisation de la

boiterie sémiologiques (le mal de dos est souvent vu comme une affection primaire par les

propriétaires alors qu’en général il s’agit très souvent d’une manifestation secondaire à une

atteinte du membre (Henson, 2009)) ou encore sur l’utilité de réalisation d’anesthésies.

Dans ce cas il peut être utile de rappeler que propriétaires et praticien ont pour même

objectif de déterminer la cause de l’atteinte du cheval ainsi que sa guérison. La discussion

permettra bien souvent au vétérinaire d’arriver à mener son investigation, moyennant quoi

une certaine diplomatie pourra lui éviter certains désagréments de la part des cavaliers et

propriétaires.

La confraternité ne doit également pas être négligée car il est fréquent que de nos

jours plusieurs vétérinaires soient amenés à consulter le même cheval. Le partage

d’informations et la communication entre praticiens permettra bien souvent d’avancer

quant à la résolution du cas. De même il faut garder à l’esprit que des signes perçus par un

vétérinaire puissent être interprétés différemment par un de ses confrères voire non

observés. En effet, un cheval peut répondre faiblement à une anesthésie un jour donné et y

répondre à 100% la semaine suivante (Ross & Dyson, 2011).

29

A noter enfin que la relation avec le maréchal ferrant est très importante : ce dernier

peut en effet remarquer certaines anomalies chez la monture : douleur, défaut d’aplombs

ou de posture, … et s’avérer ainsi être un atout précieux dans le recueil de l’anamnèse. Dans

un second temps, le maréchal ferrant va être un acteur à part entière de la prise en charge

de la boiterie : il pourra donner de nombreux conseils quant au type de ferrure à mettre en

place et sa fréquence de pose notamment.

II. Historique et anamnèse (Ross & Dyson, 2011)

La prise de l’historique et de l’anamnèse est une étape à ne pas négliger car c’est

l’occasion de recueillir de précieuses informations pouvant orienter notre diagnostic. Il est

cependant préférable d’avoir des connaissances minimales dans les différents sports

équestres : vocabulaire spécifique et manière d’utiliser le cheval. Une connaissance

approximative de ces disciplines, en particulier pour des chevaux de haut niveau,

discréditerait le vétérinaire aux yeux des propriétaires et cavalier, compliquant par la même

l’ensemble de l’examen du cheval.

Certaines informations, dites objectives, peuvent être tirées du cheval même :

augmentation du nombre de refus, difficulté à mobiliser ses postérieurs ou à s’incurver.

D’autres, plus subjectives, sont représentées par les propos du cavalier ou du propriétaire

comme « le cheval a perdu en amplitude » ou « le cheval ne s’engage pas sous la selle». Ces

informations subjectives peuvent s’avérer utiles et relater un changement dans le

comportement du cheval au travail, mais elles doivent être interprétées avec modération

par le praticien car l’examen de la monture pourrait s’en trouver compliqué et rallongé en

cas de mauvaise perception par les propriétaires.

A.

L’âge, le sexe, la race et l’utilisation du cheval représentent des indices majeurs dans

le recueil de l’anamnèse. Elles permettent au praticien de se placer dans un cadre

pathologique plus précis, sans pour autant éluder le reste.

30

1. Age

Un nombre important de pathologies sont âges dépendantes comme les

déformations flexurales, les physites, les autres formes d’OCD ou encore les déformations

angulaires. Le poulain sera ainsi plutôt sujet aux arthrites septiques consécutives à une

septicémie, à la luxation latérale de la patella et à la rupture du ligament extenseur commun.

A l’inverse, certaines pathologies touchent plutôt le vieux cheval comme l’ostéoatrhrite

chronique ou la maladie naviculaire.

L’âge joue également un rôle important dans l’émission d’un pronostic : en règle

générale un jeune animal aura une meilleure capacité de régénération et disposera de plus

de temps pour se remettre. Chez le poulain, l’âge est un facteur pronostique majeur dans le

cas des déformations angulaires : un traitement chirurgical entrepris avant les 6-8 mois

présentera de meilleures chances de succès. Remarquons enfin qu’il est difficile d’établir un

pronostic sportif pour un cheval d’âge moyen (de 12 à 18 ans), tout particulièrement s’il

présente diverses atteintes car cela multiplie les issues pouvant être incertaines bien qu’en

général le niveau de performance s’en retrouve diminué.

2. Sexe

Les affections de l’appareil locomoteur touchent indifféremment les femelles, étalons

et hongres avec des prévalences similaires et les exceptions sont rares. Des anomalies de

comportement en relation avec le cycle œstral des femelles sont décrites. Elles peuvent

entraîner des baisses de performances qui, si elles sont mal interprétées, peuvent amener à

conclure à une atteinte de l’appareil locomoteur.

Le sexe, tout comme l’âge, a un facteur pronostic important car il permet une

éventuelle réforme en tant qu’animal reproducteur pour les juments et à moindre échelle

pour les étalons. Il intervient tout particulièrement lorsque plane sur le cheval une

éventuelle décision de réforme voire d’euthanasie et il est important dans ce cas-là

d’envisager une carrière reproductrice quand elle est possible.

A noter également que des cas de boiteries ont été attribués, sans démonstration

apparentes, chez des animaux cryptorchides : la cause possible étant que lors de présence

31

d’un testicule au niveau du canal inguinal il existe des tractions provoquées par les muscles

obliques interne et externe sur le cordon spermatique. Aucune explication n’est donnée

pour un cryptorchide abdominal cependant ce qui range cette hypothèse au rang de

supputation.

3. Race et utilisation (Courtois, 2007) et (Coussediere, 2010)

La majeure partie des affections locomotrices touche toutes les races mais cette

dernière influence l’activité sportive qui elle-même influence énormément l’incidence de ces

affections.

Dressage CSO Polo

Desmite proximale du suspenseur (P>A) Atteinte de la région du pied Tendinite du FSD

Lésions des branches du suspenseur

Atteinte de l'articulation tarso-métatarsienne

Ostéoarthrite métacarpophalangienne

Synovite/ostéoarthrite des articulations

interphalangiennes distales Desmite du suspenseur

Douleur de la région proximo-palmaire du carpe et desmite du suspenseur

Desmite du ligament accessoire du tendon FPD

Atteinte douloureuse de la région thoracolombaire

Blessure du sabot et des phalanges distales

Ostéoarthrite de l'articulation centrodistale et/ou tarsométatarsienne

Atteinte douloureuse de la région du boulet

Douleur de la région palmaire du pied incluant la

maladie naviculaire et la tendinite du FPD

Tableau 1 : prévalence des affections locomotrices en fonction de l’activité du cheval (Ross & Dyson, 2011).

32

B. actuelle

Etape suivant la prise d’information sur le cheval même, l’investigation de l’affection

actuelle regroupe la définition du problème, son historique, sa durée et mode d’évolution,

les circonstances au cours desquelles il s’aggrave ou s’améliore et les effets de l’exercice sur

ce dernier. Vient ensuite la recherche de modifications éventuelles dans le mode de vie du

cheval : ferrure, entrainement, surface de travail, alimentation et soins, lieu de vie. La prise

de connaissance sur les traitements entrepris, leur réponse ainsi que le passé médical de

l’animal fournissent également de précieuses indications au praticien.

1. Détermination du problème

Il s’agit d’une étape essentielle qui doit permettre au vétérinaire de situer

précisément le problème actuel du cheval. Cette étape peut être compliquée par une

acquisition récente ou encore un changement d’entraineur ou de cavalier. Pour s’aider, le

vétérinaire peut consulter l’historique sportif du cheval ou encore joindre les professionnels

côtoyant la monture : groom, cavaliers, assistant, entraîneur, maréchal, ostéopathe…

Une bonne connaissance du passé du cheval permettra quelquefois de trouver une

cause ancienne au problème actuel : douleur chronique traitée médicalement, présence de

lésions d’OCD, … Il arrive en effet que l’animal ne soit pas gêné jusqu’à dépassement d’une

valeur seuil se manifestant par une boiterie beaucoup plus marquée.

Le vétérinaire se doit d’être vigilant quant au discours du propriétaire :

- ces derniers allouent facilement un traumatisme à l’origine de boiteries : citons

l’exemple du poulain septicémique voyant ainsi l’origine de son atteinte locomotrice

des suites d’un écrasement de sa mère

- il n’est pas rare que le motif de consultation soit un mal de dos selon les

propriétaires, le praticien doit cependant garder à l’esprit que les atteintes primaires

du dos sont rares, elles sont plus souvent une atteinte secondaire découlant d’une

affection d’un membre, le plus fréquemment un postérieur.

33

2. Durée et mode d’évolution du problème

Estimer la durée d’évolution du problème permettra au vétérinaire de discriminer

une boiterie évoluant plutôt sur un mode chronique avec une aggravation de la douleur

d’une boiterie d’apparition soudaine. Il est également important d’estimer si le problème

tend à s’aggraver, stagner ou s’améliorer selon les conditions d’utilisation du cheval et les

solutions éventuellement envisagées par les propriétaires : ferrure, repos, médication, ... Par

exemple le repos n’améliorera pas un cheval arthrosique contrairement au cas d’un animal

souffrant d’une atteinte des tissus mous.

L’aggravation d’une boiterie lors de l’exercice ou au contraire son amélioration est

une notion importante à dégager lors du recueil de l’anamnèse. Les boiteries résultant d’une

fracture incomplète ou de stress ou encore d’atteintes des tissus mous comme les tendinites

s’aggraveront au travail contrairement à celles associée à de l’arthrose par exemple.

C.

Il est fréquent qu’un changement dans le mode de vie du cheval ait des répercussions

sur son appareil musculo-squelettique : ferrure, changement du niveau d’entrainement,

nourriture, problème et/ou traitement médical, etc… Un changement de propriétaire est

également synonyme de changement dans l’intensité et le type de travail.

1. Ferrure

Il est intéressant de se renseigner sur la date de la dernière ferrure ainsi que sur les

changements de types de fers : dates et causes. Rappelons que les enclouures, piqures et

abcès de pieds sont des causes fréquentes de boiterie et que la durée d’apparition des

signes cliniques peut être de plusieurs jours.

A noter que, chez un cheval présentant une atteinte palmaire du pied, un brusque

changement de l’angle du sabot peut exacerber le problème et s’ensuivre d’une boiterie

marquée. Il est également fréquent qu’un cheval se retrouve temporairement boiteux des

34

deux antérieurs les quelques jours suivant la ferrure, tout particulièrement si le maréchal a

récliné beaucoup de corne ou que la surface de travail est anormalement dure.

Le vétérinaire doit également se renseigner sur la réponse du cheval et de sa boiterie

face à d’éventuels changements de ferrure.

2. Type d’entraînement et surface

Une aggravation d’une boiterie à la suite d’une augmentation de l’intensité du travail

peut par exemple être la manifestation d’une atteinte osseuse telle que de l’arthrose.

Les douleurs relatives au tissu osseux auront tendance à être augmentée sur sol dur.

Par ailleurs, ce type de surface constitue également un facteur prédisposant à l’apparition de

certaines affections comme les fractures osseuses. Les surfaces molles auront quant à elle

tendance à exacerber des douleurs conséquentes à une atteinte des tissus mous comme les

tendinites.

3. Nourriture

Un changement du type d’alimentation peut être responsable de l’aggravation

clinique d’une affection déjà existante. Plus que le changement même, il s’agira surtout de la

présence d’excès ou de carence dans l’alimentation du cheval. Les maladies orthopédiques

de développement en sont un exemple frappant.

4. Lieu de vie

Il est fréquent d’observer des apparitions de boiterie à la mise au pré des chevaux. La

cause en est bien souvent un traumatisme à la suite d’un coup de pied ou d’une blessure sur

la clôture ou un obstacle. Les changements brutaux des conditions météorologiques ont

également un impact sur le comportement des équidés, notamment s’ils viennent d’être mis

au pré.

35

La solution à ces problèmes reste de maintenir un état correct des pâtures en

supprimant au maximum les objets à risques. De même, limiter le nombre de chevaux par

aire réduit les possibilités d’interactions néfastes.

5. Traitements actuels

Le vétérinaire doit se renseigner sur les éventuels traitements qui sont ou ont été

administrés au cheval ainsi que sa réponse. Il peut par exemple arriver qu’un animal ne

réponde pas à la phénylbutazone pour cause de sous dosage. Il est fréquent d’être amené à

consulter un cheval qui n’a pas répondu à des infiltrations intra-articulaires ce qui est un

indice intéressant : soit l’articulation visée n’est pas la cause de la douleur, soit il peut

souffrir d’atteintes sous chondrales comme une fracture incomplète.

La notion de repos est également à approfondir : un cheval qui reste strictement au

box avec marche en main présentera une période de convalescence à proprement parler,

contrairement au cheval laissé au paddock avec d’autres animaux. La durée du repos est

importante car le cheval présentera de grandes chances de rechuter si elle n’est pas

suffisante.

6. Historique médical du cheval

Le vétérinaire doit se fournir l’historique médical complet du cheval et plus

particulièrement son passé orthopédique dans la mesure du possible. La récurrence est par

exemple un facteur pronostique péjoratif et se doit d’être traitée par une thérapie beaucoup

plus agressive que la précédente (augmentation du temps de repos, optique chirurgicale, …).

Un antécédent de traumatisme doit être investigué avec attention : une fracture non

déplacée pourra être absente les jours qui suivent tandis qu’elle sera évidente deux à trois

semaines après : cf figure 1.

36

.

Figure 1 : vues dorsopalmaires du troisième métacarpien d’un hongre pur-sang de 18 ans. Le cliché de gauche a été réalisé immédiatement après observation d’une plaie en regard de l’os. Lecliché de droite concerne la même zone deux semaines après et met en évidence une fracture oblique de l’os métacarpien III.

Crédit photo : Dr. Janet Durso, 2001

37

III. Conformation et aplombs

Après avoir recueilli le maximum d’information sur le passé et la gestion du cheval, il

faudra s’intéresser à l’examen de l’animal. Cette étape commence par un examen à distance

avec l’évaluation de la conformation générale.

La conformation des extrémités distales ainsi que du corps du cheval joue un rôle

important dans l’apparition de boiteries. Ce n’est cependant pas le seul facteur à prendre en

compte : des chevaux avec une conformation ingrate peuvent ne jamais en souffrir et

assumer une carrière sportive correcte. A l’inverse une conformation parfaite ne prémunit

pas contre les pathologies locomotrices. Le mental est par exemple, chez le cheval, un autre

facteur jouant une part non négligeable quant à l’apparition de boiteries, leurs

manifestations, l’implication de l’animal dans sa discipline, ...

L’étude de la conformation du cheval passe par l’évaluation de l’équilibre entre

l’avant et l’arrière main ; de certaines mesures d’angles, de hauteur et de longueur ; de la

musculature et pour finir de la conformation des membres. Ces quatre composantes, bien

que liées, doivent être évaluées séparément.

A.

Cet équilibre est directement relié aux mesures et angulations des divers segments

du corps : un cheval bien proportionné est en effet bien équilibré. Par ailleurs, un bon

équilibre est favorable à la pratique du sport à haut niveau : rappelons que chez le cheval

l’arrière main possède un rôle propulseur tandis que l’avant main a un rôle amortisseur et de

soutien. Le tronc et plus particulièrement le dos permet une juste transmission des forces

entre avant et arrière main et joue le rôle de balancier indispensable à la bonne locomotion,

rôle ponctué par l’appareil cervico-céphalique. Remarquons que le dos tient une place

importante dans la discipline de saut d’obstacle : un « bon coup de dos » est apprécié dans

le domaine.

38

1. Evaluation des proportions (Baxter, 2011)

On évalue le cheval en le découpant en trois parties (avant main, tronc et arrière

main) et en incorporant ces trois zones dans des cercles comme précisé figure 2. Ces

derniers doivent se recouvrir de l’ordre du tiers l’un par rapport à l’autre. La ligne prenant la

longueur du corps doit être égale ou légèrement plus longue que la ligne de hauteur du

garrot, cette dernière devant être de même taille que la ligne de hauteur de croupe.

Figure 2 : évaluation schématique des proportions d’un cheval vu de profil. Sur cet animal de conformation idéale, les trois cercles se chevauchent d’environ un tiers. La longueur du corps (X) doit être égale ou légèrement supérieure à la hauteur du garrot (Y) et de la croupe (Z). (Ross & Dyson, 2011).

39

2. Exemple de défauts physiques

Il est fréquent de rencontrer des animaux présentant un dos trop court ou au

contraire trop long. Dans le premier cas, l’animal sera plus sujet aux conflits de processus

épineux tandis que dans le second il présentera des difficultés à correctement engager ses

postérieurs.

Une hauteur de garrot supérieure à la hauteur de croupe prédisposera l’animal aux

boiteries antérieures, tout comme une faible musculature de l’épaule et des avant-bras par

rapport à l'arrière main.

B. 2011)

La longueur du corps joue un rôle déterminant dans l’amplitude de la foulée : un

animal présentant un raccourcissement de cette ligne aura par la même une foulée réduite

et sera sujet aux interférences entre membres thoraciques et pelviens. A l’inverse, un cheval

au corps long aura un dos plus faible.

Figure 3 : exemple de cheval présentant une ligne de croupe supérieure à sa ligne de garrot, un dos long et une avant-main faiblement musclée.

Cliché des haras nationaux.

40

1. Longueurs notables

La longueur de l’épaule (cf figure 4) se mesure du sommet du garrot à la pointe de

l’épaule : l’amplitude de la foulée du cheval a tendance à augmenter avec cette ligne.

Inversement les chevaux avec une épaule courte ont habituellement une foulée réduite.

Cependant, bien qu’une bonne longueur d’épaule soit une qualité recherchée chez les

chevaux de course notamment, il semblerait que ce soit un facteur favorisant d’atteinte de

l’extrémité distale du membre d’après une étude menée sur des pur-sangs et des

quarterhorse (Anderson, et al., 2004) (McIlwraith, et al., 2003).

La longueur de la croupe, mesurée de la pointe de la hanche à la pointe de la fesse,

est également un élément important influençant l’amplitude de la foulée. Les chevaux à

forte longueur de croupe ont un angle de croupe important et une croupe plate tandis que

des chevaux en possédant une de faible longueur ont un angle faible et une croupe abrupte,

ce qui les prédispose aux boiteries postérieures.

Figure 4 : mesure de la longueur d’épaule (A), de la longueur de croupe (B), de l’angle de l’épaule (C) et de l’angle de la croupe(D). L’angle du sabot (E) est censé être égal à l’angle de l’épaule.

(Ross & Dyson, 2011).

41

2. Angles notables

Les angles d’épaule et de croupes sont importants dans la détermination de

l’amplitude de la foulée ainsi que dans l’équilibre du corps du cheval. Des angulations

indésirables s’accompagnent généralement d’autres anomalies physiques et prédisposent

aux boiteries, l’angle idéal de l’épaule si situant aux alentours des 45° tout comme l’angle de

la croupe. Les chevaux avec une angulation d’épaule exagérée (de 50 à 55°) ont

généralement une épaule courte et sont droits-jointés (paturon trop vertical) ce qui les

prédispose aux atteintes de l’extrémité distale des membres. Une réduction de cet angle

entraîne un déplacement cranial du centre de gravité, prédisposant aux boiteries

antérieures. Les chevaux ayant un angle de croupe raccourci présentent souvent une

démarche réduite et houleuse et beaucoup souffrent d’une atteinte des membres pelviens

de par le déplacement caudal de leur centre de gravité.

La race du cheval aura une influence directe sur les longueurs et angles appréciés : les

chevaux normands ont par exemple un dos très long, les races lourdes ont tendance quant à

eux à avoir un fort angle de croupe.

Figure 5 : à gauche un cheval à longueur et angle de croupe réduits et de ce fait prédisposé aux atteintes postérieures. A droite un cheval avec un bon angle et une longueur de croupe généreuse.

Clichés des haras nationaux.

42

C.

1. Prérequis

Il est important d’évaluer les membres du cheval lorsque celui-ci se tient

d’aplomb sur une surface ferme et plate. Il est préférable de faire tenir l’animal par une

personne expérimentée car cette dernière sera plus à même de faire coopérer le cheval et

de le replacer dans une position adéquate. En effet, une mauvaise position pourra

éventuellement conduire à de fausses interprétations : le cheval a souvent tendance à se

tenir campé du devant ou de derrière (voir figure 7).

Chaque membre devra être évalué en vue de face (ou de dos) et de profil, en le

plaçant contre une ligne fictive, comme précisé figure 7. Certains défaut peuvent passer

inaperçus à l’arrêt et être plus perceptibles lors de la marche comme le varus du carpe.

Figure 6 : vue de face, de profil et plantaire d’un cheval aux aplombs corrects. Remarquer les différentes lignes fictives ainsi que leur position. (Ross & Dyson, 2011).

43

2. Conformation du membre thoracique

a. Vue de face

De nombreuses anomalies concernant le membre thoracique peuvent être

remarquées lors de l’évaluation de face du cheval : déviations du membre entier (cf figures 8

et 9) avec ou sans rotation (cheval panard ou cagneux), déviation du carpe valgus ou varus),

etc…

Figure 7 : à gauche cheval présentant un varus du carpe (genoux cambrés). A droite cheval présentant un valgus du carpe (genoux de bœuf).

(Lehn, 2011).

Figure 8 : en A cheval ouvert du devant, en B ouvert et panard, en C ouvert et cagneux.

(Ross & Dyson, 2011) (Lehn, 2011).

Figure 9 : en A cheval serré du devant, en B serré et cagneux, en C serré et panard.


44

La conformation panarde correspond à une rotation externe de l’extrémité distale du

membre. Elle est fréquente et considérée comme normale ou sans conséquence jusque dans

une certaine mesure.

Un animal cagneux présente une rotation interne des extrémités distales de ses

membres. En mouvement, il aura tendance à billarder c'est-à-dire jeter le membre en dehors

et le ramener ensuite : une telle démarche est propice aux atteintes latérales de

l’articulation métacarpo-phalangienne telles que la desmite de la branche latérale du

suspenseur, l’arthrose des articulations interphalangiennes ou encore des exostoses

latérales.

Figure 10 : en A démarche d’un cheval cagneux, on dit que l’animal billarde ; en B démarche d’un cheval franchement panard avec interférence entre les deux membres.

(Ross & Dyson, 2011) (Baxter, 2011).

45

b. Vue de profil

L’observation latérale du cheval permet de constater une déviation dans le plan

sagittal. La déviation peut concerner le membre entier : cheval sous lui ou campé du devant

ou ne toucher que le carpe : genou arqué ou genou creux voir figures 12 et 13.

Un animal présentant un genou creux aura un membre de forme concave comme on

peut le voir sur la figure 14. Une telle concavité fait que l’articulation du carpe est portée en

arrière de la ligne d’aplomb du membre. Ainsi, chez un cheval présentant ce type de

conformation, le carpe est en hyperextension ce qui le prédispose aux blessures notamment

lors d’efforts.

Figure 11 : en A cheval campé du devant, en B cheval sous lui du devant. Attention aux chevaux campés du devant : il peut s’agir d’une mauvaise position et non d’un défaut de conformation. D’après (Ross & Dyson, 2011) et (Baxter, 2011).

Figure 12 : à gauche cheval présentant un genou arqué, au centre aplomb normal, à droite cheval présentant un genou creux.

D’après (Ross & Dyson, 2011) et (Baxter, 2011).

46

3. Conformation du membre pelvien

a. Vue latérale

Les anomalies de conformation de l’arrière train sont généralement moins

nombreuses et moins problématiques que celles touchant l’avant main de par la différence

de répartition du poids : l’avant étant plus porteur que l’arrière (de l’ordre de 60% contre

40%). Ici encore, les lignes de référence sont à connaître pour déceler d’éventuels écarts

chez un cheval (voir figure 7).

Les aplombs incorrects vus de profil sont présentés en figure 15. La position des

membres pelviens en arrière de la ligne d’aplomb (cheval campé de derrière) est

inhabituelle et résulte généralement d’un mauvais positionnement du cheval ; dans le cas

d’une posture pathologique, celui-ci présentera classiquement une foulée raccourcie et de

faibles capacités athlétiques. A l’inverse, la position sous lui de derrière peut néanmoins

être le témoin d’une position antalgique pour soulager les antérieurs en cas de fourbure par

exemple tandis qu’un cheval campé de derrière peut rechercher à soulager son dos ou ses

membres thoraciques (maladie naviculaire par exemple).

Figure 13 : à gauche yearling pur-sang présentant des genoux creux. Noter l’aspect concave du bord cranial du membre, plus important du côté gauche. Ce type de conformation est indésirable car propice aux affections du carpe notamment.

A droite aspect radiographique de ce type de conformation montrant une déviation palmaire de la rangée carpienne proximale. (Ross & Dyson, 2011)

47

Les conformations jarret coudé, jarret droit et jarret clos (voir paragraphe suivant)

représentent les trois défauts de conformation les plus importants touchant l’arrière-main et

peuvent directement conduire à une boiterie. La conformation jarret coudé est

particulièrement sévère et conduit très fréquemment à une boiterie. Les chevaux souffrant

d’une telle conformation ont les angles du grasset et du jarret supérieurs à la normale tandis

que l’angle du boulet est inférieur.

Les chevaux présentant un jarret droit développent souvent par la suite des

accrochements rotuliens, des desmites du suspenseur ou une arthrose de l’articulation

métatarso-phalangienne. A noter également que des chevaux présentant une conformation

normale peuvent évoluer en conformation jarret droit à la suite d’une sévère desmite du

suspenseur. La conformation jarret coudé constitue quant à elle un défaut de conformation

rencontré fréquemment et conduit directement à des atteintes du tarse et des tissus mous

plantaires. Le membre pelvien adopte une forme concave en face dorsale avec fermeture de

l’angle du jarret : dans ce cas la charge est transmise sur la partie distale et plantaire du tarse

et favorise l’apparition d’arthrose.

Figure 14 : en A jarret coudé, en B jarret droit, en C cheval sous lui de derrière et en D cheval campé de derrière.

(Ross & Dyson, 2011) et (Baxter, 2011).

48

b. Vue de derrière

Il est très fréquent d’observer une position panarde membres serrés chez les chevaux

sans que cela n’ait nécessairement de répercussion locomotrice : les jarrets sont en rotation

externe et leur pointe se rapprochent du plan sagittal.

Figure 15 : Cheval « sous lui de derrière ». Attention à ce type de posture qui souvent résulte d’un mauvais positionnement de l’animal.

En cas de position pathologique, il peut s’agir d’une position antalgique pour soulager les membres thoraciques comme en cas de fourbure.


Figure 16 : en A cheval présentant des jarrets clos, en B cheval serré de derrière et présentant des jarrets clos, en C cheval serré de derrière, en D cheval ouvert de derrière et en E cheval présentant des jarrets campés.


49

Les chevaux serrés de derrière ont les membres pelviens qui évoluent de près

notamment lors de la marche mais cela peut également survenir au trot et au galop. Ainsi les

membres peuvent interférer entre eux et créer des blessures de leur partie médiale.

Un valgus du tarse qui persiste chez un cheval adulte, associé à d’autres anomalies

comme un jarret coudé entraîne l’exercice de forces anormales en région distale du tarse,

potentiellement à l’origine de boiteries du tarse distal ou de la région proximale du

métatarse. Des jarrets clos (en valgus) augmentent les forces de compression en face

latérale tandis que des jarrets cambrés (en varus) augmentent les forces de compression en

face médiale.

4. Conformation du doigt (Pollitt, 1995)

L’appréciation de la conformation du doigt passe par l’évaluation de l’alignement des

phalanges du cheval ainsi que la longueur des paturons. En règle générale l’angulation du

paturon est reliée à sa longueur : plus celui-ci est court et plus son angulation augmente et

vice versa.

Un boulet trop haut est propice aux affections de pieds et probablement à celles du

tendon fléchisseur superficiel du doigt. Les chevaux aux paturons longs sont plus à même de

développer une arthrose du boulet et des fractures des phalanges proximales. Une descente

trop importante du boulet provoque de fortes tractions sur les structures le soutenant

pouvant conduire à une desmite sévère du ligament suspenseur du boulet et à une perte de

support de l’articulation métacarpo-phalangienne.

50

IV. Examen visuel de la symétrie et de la posture

Après avoir apprécié la conformation générale du cheval, il faudra s’attarder sur sa

symétrie et sa posture. La comparaison entre le coté atteint et l’autre facilitent

l’identification des problèmes pour peu que l’atteinte soit unilatérale. Il est important que le

cheval soit sur un terrain plat et dans des conditions calmes, notamment sans la présence

d’insectes qui peuvent vite l’exciter s’il est sensible. Le praticien doit évaluer attentivement

les mesures objectivables, les formes et les contours de chaque membre et comparer avec le

controlatéral.

A. -main

1. Atrophie musculaire (Hinchcliff, et al., 2008)

Lors de l’examen locomoteur, il faut attentivement regarder les régions cervicale et

pectorale ainsi que le membre thoracique. Une atrophie musculaire conséquente à une

boiterie chronique est appelée atrophie de non utilisation alors que lors d’une maladie

neurologique on la dénomme atrophie neurologique. Dans ce dernier cas cependant, il y a

généralement présence d’autres signes cliniques ou neurologiques permettant de

différencier ainsi l’amyotrophie.

Un cheval présentant une amyotrophie de non utilisation résultant d’une boiterie

chronique aura généralement une perte musculaire concernant l’ensemble du membre

atteint. Cette perte sera habituellement peu prononcée et concernera plus particulièrement

les muscles extenseurs de l’avant-bras, le triceps et les muscles scapulaires. Concernant les

muscles scapulaires : les muscles infra et supra épineux ne seront que légèrement touchés

ce qui n’entraînera pas de subluxation de l’épaule lors de l’appui du membre.

a. Atrophie de non utilisation

Lors de boiterie chronique, une telle amyotrophie mettra en général des semaines

voire des mois à s’installer sauf si atteinte vraiment sévère voire suppression d’appui : dans

51

ce cas-là elle sera présente en une dizaine de jours. A noter également que dans le cas de

boiterie sévère de l’antérieur il est possible de constater une ankylose en flexion du carpe

s’installant simultanément avec l’amyotrophie. Cette contraction survient fréquemment lors

de fractures de l’olécrâne ou autres boiteries du coude mais elle peut aussi être constatée

chez des chevaux présentant une boiterie sévère ayant pour origine l’épaule voire les parties

distales du membre (Rumbaugh, et al., 2002). Le muscle le plus fréquemment touché par

l’amyotrophie de non utilisation reste le triceps.

b. Atrophie neurologique

Ce type d’amyotrophie peut toucher de façon importante un ou plusieurs muscles de

l’avant-bras, de la région pectorale ou cervicale et est souvent plus prononcée qu’une fonte

musculaire de non utilisation, ce qui conduit à suspecter une atteinte neurologique. Une

atteinte importante et unilatérale du triceps ou des pectoraux accompagnée d’une fonte

plus modérée des muscles de l’avant-bras laisse suggérer une atrophie d’origine

neurologique. Une fonte sévère localisée aux muscles infra et supra épineux sans

subluxation de l’articulation scapulaire résulte souvent d’une atteinte du nerf

suprascapulaire causée par un traumatisme externe ; une subluxation laissant plutôt

présager une lésion du plexus brachial avec dans ce cas-là amyotrophie éventuelle d’autres

muscles.

Une atrophie musculaire localisée traduit généralement une blessure ancienne et la

présence de tissu fibreux au sein du corps musculaire. Ce type d’atteinte bien que

concernant plus fréquemment le membre pelvien peut parfois être constaté sur les

membres thoraciques.

2. Tuméfaction

Il s’agit d’un des signes de l’inflammation et c’est une cause fréquente d’asymétrie

lors de l’examen visuel. La tuméfaction d’une région accompagnée de chaleur laisse

supposer une éventuelle infection et doit conduire à des investigations supplémentaires

telles qu’un suivi de température rectale ou des tests paracliniques. Une effusion synoviale,

52

responsable de tuméfaction de la région en regard de l’articulation, est en général causée

par une réaction de l’articulation face à de nombreuses atteintes traumatiques ou encore

des suites d’un processus dégénératif. Les autres causes possibles de tumeur d’une région

sont les œdèmes, les lymphangites, les hémorragies et les fibroses. Les suros peuvent

également mimer une tuméfaction, tout particulièrement chez les chevaux âgés souffrant

d’arthrose avancée.

a. Œdèmes

Un œdème est souvent le signe d’une inflammation aigüe et se distingue par une

impression de l’empreinte lors de leur pression. Les chevaux développent fréquemment des

œdèmes en regard de la zone inflammée enflée ainsi que distalement par rapport à cette

dernière. Attention cependant aux fausses interprétations car il est fréquent d’observer

l’apparition d’œdèmes aux niveaux des parties distales des membres chez des chevaux ayant

été travaillés la veille et laissés sans bandes de repos alors qu’ils en ont à l’accoutumée ou

encore chez ceux laissés au boxe alors qu’habituellement ils sont travaillés : dans ce cas on

peut observer des distensions synoviales appelées molettes. Les molettes sont non

douloureuses à la pression et ne s’enfoncent pas ou peu à la pression. Elles compliquent

cependant l’examen de boiteries car il est difficile de palper les zones sous-jacentes.

b. Lymphangites

Il s’agit d’une inflammation des vaisseaux lymphatiques du membre. Dans ce cas-là,

la zone enflée est chaude et douloureuse et la boiterie associée est souvent prononcée. Les

chevaux touchés présentent généralement des répercussions systémiques avec une

hyperthermie et une leucocytose. Les lymphangites surviennent souvent à la suite d’une

blessure par piqûre et il est souvent difficile de trouver le point d’entrée dans ce cas. Elles

peuvent également être la conséquence d’une injection sous cutanée, articulaire ou péri

articulaire : il faut donc être vigilant à l’asepsie lors de la réalisation de tels actes surtout que

de telles infections sont difficiles à éradiquer.

53

c. Hématome

Un traumatisme important ou une fracture peuvent provoquer des saignements au

sein des plans tissulaires. De gros vaisseaux circulent à proximité de la scapula et de

l’humérus ce qui fait qu’une fracture d’un de ces os peut s’accompagner d’une forte

hémorragie entrainant un gonflement important de la zone et biologiquement une

hypoprotéinémie et une anémie. Le gonflement peut apparaitre en regard de la zone

atteinte ou plus distalement du fait d’une congestion veineuse ou lymphatique.

d. Fibrose

Les zones de fibrose ou de tissu cicatriciel des suites d’une ancienne lésion peuvent

provoquer une asymétrie observable sans toutefois être la cause primaire de la boiterie. Ces

zones ne doivent pas être surinterprétées à moins qu’il n'y ait présence de signes

d’inflammation recrudescente. Il est fréquent d’observer des zones cicatricielles, parfois

soulignées par la blancheur du poil sus-jacent consécutives à l’application de feux ou encore

d’un geste chirurgical.

e. Suros

Les suros sont une cause fréquente d’asymétrie des membres, ils se forment à la

suite d’une réaction périostée ou péri-articulaire et peuvent impliquer de nombreux

problèmes notamment en partie distale du membre. Les remaniements osseux peuvent

cependant être dans une phase active et causer le problème actuel ou au contraire inactifs

et anciens avec peu voire pas de signe clinique associé.

3. Déformation angulaire

Les déviations angulaires sont fréquentes chez les jeunes chevaux et peuvent parfois

être associées à une boiterie ou une autre maladie orthopédique du développement. De

telles anomalies de conformation doivent être notées par le vétérinaire mais peuvent n’avoir

aucune incidence sur le problème en cours. Les jeunes chevaux présentant une boiterie

54

thoracique sévère évoluant depuis plusieurs mois peuvent présenter un varus du carpe ou

du coude sur le membre controlatéral.

Les chevaux boitant sévèrement des suites d’un traumatisme peuvent présenter une

subluxation articulaire à la suite d’une lésion ligamentaire ou osseuse se traduisant par une

déviation angulaire d’apparition aigue. De telles anomalies angulaires sont rares chez les

chevaux âgés et dénotent bien souvent une blessure sévère (luxation et ou fracture). Dans

ce cas-là l’examen visuel doit se compléter par une palpation minutieuse avec mise en varus

et valgus de stress des articulations. L’imagerie en contrainte (radiographie et échographie)

constitue une aide précieuse pour évaluer l’intégrité des différentes structures.

4. Taille des pieds

Idéalement les deux pieds doivent être identiques en taille et forme et toute

asymétrie les concernant doit être notée. Les chevaux souffrant de boiterie chronique

présentent habituellement un pied de taille réduite ipsilatéralement à la lésion. Une

réduction de l’appui (lors de douleur chronique notamment) du membre entraîne une

disparité de la taille des pieds, mais ce n’est pas un fait observable dans tous les cas.

Il faut cependant être vigilant lors de l’observation d’asymétrie des pieds : elle peut

être la conséquence d’une ancienne déformation flexurale ou d’une affection résolue. Dans

ces cas-là ce serait une erreur de considérer le pied comme siège du problème actuel sans

confirmer à l’aide d’anesthésies sémiologiques.

5. Descente du boulet

La descente du boulet doit être évaluée sur cheval statique et lors du mouvement.

Un cheval debout répartissant également sa charge sur les membres thoraciques aura ses

deux boulets situés à la même hauteur. Lors de douleur, il « pointera » le membre atteint

plus en avant que le controlatéral, ceci afin de soulager la charge pesant sur son côté

douloureux : le boulet sera de ce fait surélevé.

55

Le boulet est un élément important à suivre lors du mouvement : un cheval souffrant

d’un côté voudra se soulager en activant sa foulée de ce même côté. Ainsi le boulet du

membre atteint descendra moins que son homologue controlatéral (voir chapitre VI).

B. -main

1. Atrophie musculaire

Comme précédemment, le cheval doit se trouver au calme sur une surface plane et

régulière. Si le clinicien observe une asymétrie, il doit en déterminer l’origine : musculaire,

osseuse ou combinée. L’atrophie musculaire reste la plus fréquemment observée et peut

être facilement confondue avec une fracture pelvienne ou une asymétrie du tuber sacrale

lorsqu’elle est unilatérale.

Les chevaux souffrant de boiterie pelvienne chronique développent une atrophie de

non utilisation des muscles glutéaux apparaissant latéralement au tuber sacrale. Le clinicien

doit cependant différencier une telle atrophie d’une différence de hauteur entre le tuber

sacrale droit et gauche.

Figure 17 : à gauche pur-sang de trois ans présentant un tuber sacrale gauche (fléché) légèrement plus bas que le droit. Ce détail peut facilement passer inaperçu ou être confondu avec une amyotrophie fessière.

A droite cheval de 4 ans présentant une amyotrophie glutéale marquée.


56

La reconnaissance d’une amyotrophie musculaire permet de déterminer quel est le

membre atteint et de donner des détails sur la durée d’évolution du problème. Une fonte

musculaire importante est plus en faveur d’une boiterie importante ou d’une atteinte

neurologique. Dans le cas d’une atteinte neurologique, le cheval pourra également

présenter d’autres signes tels qu’une faiblesse ou un déficit proprioceptif.

2. Tuméfaction

Comme précédemment, la tuméfaction est un élément à prendre en compte dans

l’examen du cheval. Elle permet parfois au praticien de distinguer des cas dramatiques

(fracture d’os long) de cas plus communs (lymphangite, …). A noter que lors de boiterie

pelvienne marquée avec absence de tuméfaction il faut songer à palper le cheval par voie

transrectale à la recherche d’anomalie interne.

3. Asymétrie osseuse

a. Tuberosités coxales

Une asymétrie dans la hauteur des tubera coxae est un signe accompagnant de

nombreuses fractures pelviennes. Il s’ensuit souvent un déplacement ventral et médial du

fragment fracturé du fait des attaches musculaires siégeant sur ce relief osseux. Le clinicien

doit également palper la forme de chaque tubérosité coxale qui peut se trouver modifiée par

exemple lors de fracture partielle.

b. Tubérosités sacrales

Une différence de hauteur entre ces deux tubérosités peut survenir chez des chevaux

souffrant d’atteinte aigue ou chronique de l’articulation sacro-iliaque. En complément à

l’observation de ces reliefs osseux, il est intéressant de réaliser une échographie par voie

transrectale pour vérifier l’état de l’articulation. La scintigraphie est également un bon

indicateur quant à l’atteinte de cette zone.

57

c. Longueur médio-latérale du pelvis

Une différence de longueur d’un hémipelvis par rapport à l’autre est un signe subtil

mais indicateur d’une atteinte pelvienne. Le chevauchement et le déplacement des

fragments de fracture induisent une compression du côté atteint.

d. Calcanéus

Les pointes des jarrets doivent se trouver à même hauteur lors de l’observation de

face ou de côté du cheval. Lors de rupture du tendon calcanéen commun on observe une

descente importante de cette pointe du jarret. Cette dernière peut également se trouver

surélevée chez des chevaux présentant des fractures pelviennes, des luxations

coxofémorales ou des fractures fémorales.

e. Hauteur du boulet

De même que pour le membre thoracique, la position des boulets doit être évaluée

sur cheval statique mais également en dynamique. Une descente trop importante du boulet

s’accompagne souvent de desmite du suspenseur mais peut survenir également lors de

rupture partielle du gastrocnémien ou lors d’autres blessures ligamentaires et tendineuses.

Figure 18 : mode d’appréciation des hémipelvis. Chez ce cheval sain, les deux longueurs X et Y sont de même mesure.

TC : tubérosité coxale

TI : tubérosité ischiatique (Ross & Dyson, 2011).

TI TI

TC TC

58

C.

Le praticien doit observer la façon dont l’animal se tient : cela lui permet récolter des

informations quant à l’origine de la boiterie. Il est fréquent que le cheval mette un de ses

membres pelviens au repos et qu’il alterne par la suite avec l’autre. Il peut arriver, mais de

manière plus rare, qu’il repose un de ses membres thoraciques. Malgré cela, des anomalies

de posture résultant d’un dysfonctionnement mécanique ou neurologique ressortent

souvent de manière évidente.

1. Posture des membres thoraciques et du cou

a. Cheval « qui pointe »

Un cheval boitant sévèrement d’un membre thoracique le pointera souvent en avant

c'est-à-dire qu’il le maintiendra en avant du membre opposé. Dans le cas de boiterie

bilatérale, il sera éventuellement possible d’observer un cheval « pointer » : le membre le

plus en avant étant le plus atteint. Cependant l’animal aura également tendance à se tenir

campé pour soulager ses deux membres thoraciques simultanément lors d’atteinte

bilatérale.

b. Cheval qui piétine

Le fait d’observer un changement constant d’appui entre les membres thoraciques

laisse à supposer la présence d’une atteinte bilatérale. Il est fréquent d’observer ce

phénomène chez des chevaux souffrant de fourbure.

c. Descente du coude

Un port anormalement bas du coude résulte d’une atteinte de l’appareil tricipital

l’empêchant d’être maintenu en extension. Il s’agit souvent d’une fracture de l’olécrane bien

que l’on puisse observer ce phénomène lors de lésion du nerf radial ou du plexus brachial ou

lors de myopathie (post anesthésique très souvent) du muscle triceps.

59

A noter que lors d’atteinte sévère de la région scapulaire le cheval porte son membre

de la même manière si ce n’est qu’il est le tient en arrière alors que lors de descente du

coude ce dernier est en position normale voire légèrement cranial.

d. Douleur cervicale

Les chevaux présentant une douleur du cou ont tendance à avoir un port de tête plus

bas que la normale à savoir à même hauteur voire légèrement plus bas que le garrot. Une

posture inhabituelle mais caractéristique de ce genre d’atteinte consiste en une extension

du membre thoracique ipsilatéral à la lésion.

Figure 19 : à gauche posture classique d’un membre thoracique lors de descente du coude chez un cheval atteint d’une paralysie du nerf radial. A droite posture de membre thoracique chez un foal atteint d’ostéomyélite scapulaire et d’arthrite infectieuse ; remarquer le report caudal du membre.


60

2. Posture des membres pelviens

a. Repos des membres pelviens

Il est normal d’observer un cheval soulageant l’un ou l’autre de ses membres

pelviens. Cela devient suspect lorsque le soulagement du membre survient immédiatement

après le travail ou si des fasciculations de la région du grasset ou du flanc sont associées.

b. Position anormale de la queue

Une position anormale de la queue du cheval lors de son déplacement constitue un

signe d’alerte d’une possible boiterie pelvienne en revanche le côté vers lequel la queue est

reportée ne donne pas d’indication quant à la localisation de l’atteinte.

c. Rotation externe du membre

Les jarrets clos constituent une conformation souvent retrouvée chez les chevaux

mais une rotation unilatérale d’un jarret peut refléter une blessure pelvienne. Il est

important dans ce cas de réévaluer cette posture en déplaçant le cheval pour distinguer un

défaut réel d’un mauvais positionnement.

Figure 20 : Pur-sang yeraling souffrant de douleur cervicale et montrant une posture typique de ce genre d’atteinte.


61

d. Piétinement

Il s’agit d’un signe observé peu fréquemment qui traduit généralement une atteinte

bilatérale prononcée telle que de la fourbure ou une arthrose sévère.

e. Cheval campé de derrière

Cette position est observée chez des chevaux souffrant de fourbure bilatérale des

membres pelviens et est donc rare. Un animal souffrant de douleur thoraco-lombaire peut

également adopter ce genre de position.

f. Atteintes des tissus mous

Un accrochement de rotule entraîne un blocage en extension de toutes les

articulations du membre pelvien de par le maintien en extension du genou, le reste du

membre étant porté en extension grâce à l’appareil réciproque. Ce type de posture peut

perdurer pendant le mouvement, être intermittent ou absent. A noter qu’un cheval

présentant une suppression d’appui pourra montrer une posture identique hormis que dans

cas là le membre n’est pas bloqué en extension.

Une rupture du muscle troisième péronier permet au jarret d’être anormalement en

extension lors de la flexion du grasset. Le diagnostic est confirmé par manipulation : il

devient possible de pratiquer une extension du jarret alors que le grasset est fléchi.

Figure 21 : Posture classique d’un cheval présentant un accrochement rotulien. Toutes les articulations sont bloquées en extension rigide.


62

g. Atteinte des nerfs périphériques

Une atteinte nerveuse périphérique pourra entraîner un défaut de posture du

membre à l’arrêt et en mouvement. Il est par exemple possible de rencontrer des chevaux

souffrant d’une parésie du nerf fémoral des suites d’une anesthésie générale ou lors de

maladie du motoneurone central. Le membre aura un aspect posé normal mais ne peut

soutenir le poids du corps, le genou est également porté plus bas. Les chevaux atteints d’une

atteinte bilatérale seront dans l’incapacité de tenir debout.

63

V. Palpation

La palpation des différentes régions du corps suit naturellement l’observation du

cheval lors de l’examen de boiterie. Il est important d’évaluer méticuleusement toutes les

parties de l’appareil musculo-squelettique à savoir le cou, les membres thoraciques, le dos,

la région pelvienne et les deux membres pelviens. Chaque membre sera évalué lors de

l’appui au sol mais également en soutien. La palpation doit être effectuée avant d’observer

le cheval en dynamique car cela permet de détecter certaines zones anormalement chaudes

ou enflées qui pourraient passer inaperçues par la suite.

A.

Le vétérinaire devra palper et manipuler toutes les structures anatomiques possibles

à la recherche des différents signes d’inflammation : chaleur, rougeur, tumeur, douleur et

perte de fonction. Chaque structure sera comparée à son homologue controlatéral afin de

mieux percevoir une anomalie, pour peu que cette dernière soit unilatérale. La chaleur reste

l’un des signes apparaissant le plus précocement et le plus perceptible.

La palpation sera plus précise si elle est effectuée avec les doigts et la paume de la

main alors que pour la détection d’un changement de température ce sera le dos de cette

dernière qui sera le plus sensible. Attention cependant à ne pas surinterpréter certains

changements de température : il est par exemple fréquent qu’un cheval ait un ou plusieurs

pieds chauds en fonction de son orientation dans le box par exemple. Cette chaleur pourra

éventuellement être réévaluée dans la journée afin de confirmer la suspicion.

Le vétérinaire devra apprécier l’intensité du pouls digité des 4 membres : sur un

cheval normal celui-ci sera très peu perceptible en particulier par temps froid ou chez les

chevaux avec une peau épaisse. Les affections inflammatoires du pied et du paturon telles

que les abcès, la fourbure, les avulsions de sabot provoqueront en générale une

augmentation de l’intensité du pouls… Une absence de ce pouls doit être interprétée avec la

plus grande attention, tout particulièrement au niveau des membres pelviens, car il est

64

parfois difficile à évaluer. Une absence ou diminution pathologique signe une atteinte

vasculaire comme une thrombo-embolie.

La perte de fonction tissulaire peut être objectivée durant la palpation par le biais de

mobilisations en flexion et extension des différentes articulations et tissus. Les flexions et

extensions statiques permettent d’évaluer l’amplitude du mouvement et la réaction du

cheval. Par exemple l’arthrose chronique du carpe ou du boulet entraîne souvent une

diminution de l’amplitude des flexions. Il est également possible d’évaluer la réponse du

cheval aux mouvements de rotation.

B. Palpation

1. Le pied (Spriet, 2002)

La fourchette, la sole et la muraille devront préalablement être nettoyées ; il n’est

cependant pas indiqué d’enlever le fer à moins de suspecter une atteinte solaire. Si jamais

un déferrage est décidé, il est conseillé de protéger la corne avec du ruban à pied car les

chevaux ferrés ont une corne fragile.

Il faudra évaluer chaque structure du pied : conformation et longueur du sabot et des

talons ; type de ferrure et positionnement ; angles du pied et du paturon ; conformation et

angle de la bande coronaire ; articulation interphalangienne distale ; conformation et aspect

des talons et de la fourchette.

Le clinicien devra palper la bande coronaire à l’appui mais également au soutien du

membre à la recherche de douleur éventuelle. Il est également possible de détecter une

chaleur ainsi qu’une douleur anormales au niveau du côté atteint de même qu’une

augmentation du pouls digité. La palpation de la région interphalangienne distale pourra

révéler une éventuelle effusion synoviale ou encore des signes d’inflammation des ligaments

collatéraux de l’articulation. Le clinicien pourra également percevoir une ossification des

cartilages ungulaires : ceux-ci sont flexibles en temps normal. Cette anomalie est cependant

rarement responsable de boiterie chez le cheval mais peut provoquer une douleur lors du

sondage du pied (Fiorentino, 2003). Il arrive également qu’il y ait une fracture de la zone

65

d’attachement du cartilage à la phalange distale, cette affection étant une cause

occasionnelle de boiterie.

2. Utilisation de la pince à sonder

a. Utilité

Compte tenu de la dureté des structures externes du pied, la pince à sonder se révèle

être un outil de base à tout examen du pied du cheval. Il en existe de nombreux types,

certaines étant plus facile à utiliser que d’autres car plus légères, ajustables ou utilisables

d’une seule main. Il est possible de sonder un pied ferré bien que l’investigation sera plus

complète une fois le fer enlevé. Les pressions à exercer dépendent de la région à investiguer

et du cheval. Le test à la pince n’est pas un test très précis : il est fréquent d’obtenir de faux

négatifs et de faux positifs (placer le mors de la pince trop près de la bande coronaire

entraîne une réaction douloureuse de la part de l’animal, pression insuffisante, …).

b. Zones à investiguer

Les zones à investiguer sont la sole, la fourchette et les talons. La sole est évaluée en

plusieurs points de la pince aux talons, médialement et latéralement. Le cheval pourra

manifester une douleur par exemple en cas d’hématome, d’abcès ou de fourbure. Cette

manifestation douloureuse sera d’autant plus prononcée que la corne du cheval sera souple

et déformable : un animal présentant une corne très dur pourra ainsi ne présenter aucune

réaction.

c. Déroulement

Dix points de pression seront évalués au niveau du pied du cheval, les 8 premiers

évaluent la sensibilité épicritique du podophylle et du tissu velouté, le neuvième évalue la

souplesse générale du pied et le dixième teste la sensibilité protopathique profonde des

fléchisseurs et de l’os naviculaire (Waguespack & Hanson, 2010) :

- Point 1 (et 5) : palpation en pince partie latérale (et médiale) ;

- Point 2 (et 6) : palpation en mamelle latérale (et médiale) ;

66

- Point 3 (et 7) : palpation en quartier latéral (et médial) ;

- Point 4 (et 8) : palpation en talons latéral (et médial), bien passer sous les éponges du

fer. Trois pressions seront effectuées sur les talons : dans la lacune, au niveau

l’extrémité de la barre et au niveau de l’angle de la sole ;

- Point 9 : palpation transversale des deux talons ;

- Point 10 : palpation de la fourchette, la palpation sera forte et longue (5 secondes).

Il est indiqué de reprendre le pouls digité après sondage car celui-ci peut devenir

apparent si cette épreuve a été douloureuse pour le cheval. Remarquons que les chevaux

ayant été ferrés ou ceux ayant couru récemment, en particulier sur des surfaces dures,

peuvent avoir un pouls augmenté malgré une sensibilité normale à la palpation.

Figure 22 : modélisation des différentes zones à sonder. (Budras, et al., 2009) (Denoix, 2000).

67

d. Précautions

Le test à la pince est effectué en routine sur les membres thoraciques, ce qui peut

amener le praticien à passer à côté d’atteintes des pieds pelviens comme un abcès. Ainsi,

bien que non effectué en routine, le test à la pince sera réalisé sur les membres pelviens lors

de suspicion d’atteintes comme la présence d’un pouls digité, un inconfort du cheval ou

encore une chaleur du pied.

3. Palpation du paturon

Le clinicien devra rechercher une effusion éventuelle de l’articulation

interphalangienne proximale, cette dernière sera fléchie indépendamment du boulet et

contrainte dans le sens médio-latéral afin de mettre en évidence une éventuelle douleur et

de tester l’intégrité des ligaments collatéraux. La palpation du bord proximo-dorsal de la

phalange proximale pourra révéler une douleur chez des chevaux présentant des fractures

de cet os ou une ostéophytohose de son processus extensorius. Des formations type

enthésophytes du tendon de l’extenseur commun du doigt se manifesteront par une

proéminence de type osseuse ainsi qu’une tuméfaction des tissus mous et une douleur à la

palpation.

Le vétérinaire palpera la gaine du fléchisseur du doigt, du tendon du fléchisseur

digital profond et des ligaments sésamoïdiens distaux sera également réalisée. Les

sésamoïdiens distaux seront également investigués sur membre en soutien et en flexion.

Chaque anomalie perçue mérite des investigations supplémentaires en échographie

notamment, surtout si les anesthésies sémiologiques nous orientent dans le sens de la

présence d’une anomalie.

4. Palpation du boulet

L’articulation du boulet sera palpée sur membre à l’appui en gardant à l’esprit que le

cheval peut manifester une douleur avec absence de signes cliniques localisés. La palpation

des os sésamoïdes proximaux pourra révéler une chaleur et tuméfaction éventuelles,

68

manifestation clinique d’une inflammation des sésamoïdiens ou d’une avulsion de la

branche du suspenseur. Le pouls digité pourra être évalué en plaçant les doigts médialement

et latéralement, abaxialement à chaque sésamoïdien.

La gaine des fléchisseurs s’étend de la région métacarpienne distale à la région

palmaire distale du paturon. Une effusion au sein de cette gaine, manifestation d’une

ténosynovite, cause une tuméfaction de la région palmaire du boulet et elle doit être

différenciée d’une effusion de l’articulation métacarpo-phalangienne. Une ténosynovite

entraîne une tuméfaction en regard des branches du ligament suspenseur, médialement et

latéralement, le fluide pouvant être comprimé dans le sens médio-latéral. Une effusion

sévère pourra entraîner une distension de la région proximale au ligament annulaire. Les

ténosynovites peuvent causer des boiteries mais d’autres techniques d’investigation telles

que l’échographie devront être utilisées afin de confirmer le diagnostic.

Notons également qu’il est possible d’observer des « molettes » au niveau de la

région du boulet : il s’agit d’effusions accidentelles de la gaine des fléchisseurs. Elles sont

habituellement rencontrées sur des chevaux ayant eu une carrière de travail et ne

provoquent pas de gêne.

Le vétérinaire devra élever le membre et évaluer l’angle de motilité de l’articulation

et la réponse du cheval à la flexion. Un boulet normal peut être fléchi à 90° voire légèrement

plus (angle formé par le métacarpien III et la phalange). Une réduction de motilité est

indicative d’une fibrose chronique mais ne peut avoir aucune conséquence clinique. Les

chevaux présentant une ténosynovite ont une réponse spécialement douloureuse à la

flexion.

5. Région métacarpienne

a. Face dorsale

Il faudra rechercher une tuméfaction et une chaleur éventuelle au niveau de la région

dorsale du métacarpien car c’est une zone commune de blessure d’origine traumatique et

de réaction osseuse suite à des sollicitations de stress : beaucoup de chevaux ayant couru

ont une tuméfaction chronique non douloureuse de cette région causée par les remodelages

69

du cortex osseux dorsal. Il est également fréquent que les chevaux actuellement en course

aient une douleur au niveau de cette région lors de palpation pression, la tuméfaction étant

présente ou non. Attention car il est fréquent lors de palpation pression de la région dorsale

d’appliquer une pression importante au niveau des fléchisseurs : la réponse douloureuse du

cheval pouvant ainsi être due à une atteinte de ces tendons.

b. Faces latérale et médiale

La palpation devra être poursuivie au niveau des métacarpiens II et IV sur membre en

appui à la recherche d’éventuels exostose, cals ou fractures bien qu’une tuméfaction des

branches ou du corps du suspenseur puisse rendre l’examen des métacarpiens accessoires

difficile. La palpation sera répétée sur membre soutenu car la partie axiale de ces os ne peut

pas être évaluée lorsque le cheval s’appuie. Il est fréquent de relever des exostoses au

niveau des métacarpiens accessoires, notamment chez les jeunes. Les exostoses détectées

axialement aux rudimentaires empiétant potentiellement sur le ligament suspenseur ou

adhérentes à ce dernier devront être scrupuleusement notées. Le clinicien réalisera par la

suite une palpation rigoureuse du ligament suspenseur car c’est une structure fréquemment

atteinte. La différenciation du corps des branches du suspenseur est importante car une

atteinte du corps est plus grave et de moins bon pronostic.

Les veines, artères et nerfs palmaires digitaux médiaux et latéraux sont situés entre le

ligament suspenseur et le fléchisseur profond du doigt dans l’orientation dorso-palmaire et

pourront être évalués. Le ligament accessoire du fléchisseur profond est habituellement

difficile à palper et ce même lorsqu’il présente une tuméfaction car il n’est pas facilement

discernable du fléchisseur profond du doigt bien que des blessures de ce ligament accessoire

soient plus fréquentes. Tous les tissus mous palmaires devront être palpés minutieusement

par compression digitale sur membre à l’appui, mais surtout sur membre soutenu à la

recherche de tuméfaction ou de douleur, signe de tendinite ou de desmite. Remarquons que

chez des chevaux présentant une atteinte sévère de ces structures, la zone en regard de la

lésion apparaitra molle voire comme en bouillie. Cette découverte, tout particulièrement

lors de descente exagérée du boulet, traduit une rupture imminente de la structure

tendineuse.

70

c. Face palmaire (Fischer, 2002) (Merlin, 2007)

Chez les chevaux de sport, il est fréquent d’obtenir une réponse douloureuse à la

palpation pression des fléchisseurs et des suspenseurs qui sera considérée comme normale

hormis chez les chevaux de courses chez qui cette douleur peut être la manifestation d’une

desmite ou une tendinite débutante. Les chevaux présentant une atteinte du pied

présentent souvent secondairement une desmite légère du suspenseur et par conséquent

une réponse douloureuse à la palpation du corps et des branches de ce dernier.

Figure 23 : structures ligamentaires et tendineuses du boulet. (Budras, et al., 2009).

Figure 24 : méthode de palpation des tissus mous de la région métacarpienne palmaires (LSB, TFPD et TFSD), membre au soutien et en flexion.

Une manifestation douloureuse chez des chevaux montés est souvent normale mais est un signe précoce de tendinite chez les chevaux de course.


71

La région métacarpienne palmaire proximale est un site commun de boiterie et doit

être examinée avec attention. La palpation s’effectuera sur membre soutenu en flexion mais

devra être interprétée avec attention car il est fréquent d’avoir des faux positifs et des faux

négatifs. Les chevaux présentant des atteintes aigües telles que des desmites proximales du

suspenseur ou encore des avulsions ou des fractures des métacarpiens rudimentaires

présenteront une tuméfaction et une douleur de cette région. La palpation pression du TFSD

peut entraîner des réactions faussement positives par la compression des nerfs

métacarpiens palmaires. La partie la plus proximale de ce même tendon est difficile à

évaluer sur membre en flexion et il n’est pas rare de manquer une tuméfaction modérée de

cette partie anatomique du tendon.

Figure 25 : à gauche palpation de la région métacarpienne dorso-proximale. A droite palpation de la région métacarpienne proximo-palmaire, étape essentielle dans le diagnostic d’atteintes proximales du LSB.


72

La palpation de la région métacarpienne proximo-dorsale doit se faire sur membre en

flexion : des chevaux présentant une fracture dorso-médiale du McIII ont une tuméfaction

subtile et douloureuse de la région.

6. Palpation du carpe

Au niveau de cette région, il faut évaluer l’articulation carpienne dans son ensemble :

radio-carpienne, inter-carpienne et carpo-métacarpienne. Le vétérinaire recherchera la

présence de chaleur, d’effusions et de tuméfactions. Chaque côté devra être comparé à

l’autre bien qu’une atteinte bilatérale soit possible.

Il peut arriver qu’un cheval présente une boiterie du carpe sans signe décelable à la

palpation. Dans les cas contraires, des signes de synovites comme des effusions sont

présents lors de ballotement. Pour réaliser cette technique il faut placer un doigt au niveau

de la région dorso-latérale entre le tendon de l’extenseur radial du carpe et le tendon de

l’extenseur commun du doigt et un second doigt juste médialement au tendon de

l’extenseur radial du carpe.

Normalement le carpe peut aisément être fléchi complètement de telle sorte que le

métacarpien puisse toucher l’avant-bras. Une réduction de l’amplitude peut être causée par

une douleur significative d’une atteinte du carpe sans pour autant en pointer la cause. Au

cours de la flexion, la gaine carpienne est comprimée tandis que les tendons extenseurs sont

étirés : ces structures peuvent induire une douleur lorsqu’elles sont atteintes, de même que

l’os pisiforme. Lorsque le membre est en flexion partielle, chaque os sera examiné au niveau

de sa partie dorsale. Beaucoup de pathologies du carpe peuvent être décelées sur le carpe

en demi-flexion telles que les fragmentations ostéochondrales, de l’arthrose, etc…

7. Avant-bras et coude

L’avant-bras est habituellement palpé sur membre en appui. Le praticien recherchera

premièrement une atrophie musculaire, des blessures ou encore une tuméfaction légère du

radius. Certaines atrophies très subtiles peuvent être manquées c’est pourquoi il est

73

important de comparer chaque membre avec son controlatéral. Attention à bien apprécier la

partie médiale de l’avant-bras, trop souvent négligée au profit de la partie latérale.

De nombreuses atteintes du coude entraînent une tuméfaction importante

accompagnée de boiterie franche. Le clinicien doit palper l’olécrâne et les ligaments

collatéraux latéral et médial sur membre en appui. Il est difficile de détecter d’effusion au

niveau du coude bien qu’un excès de fluide puisse être localisé par ballotement en plaçant

les doigts cranialement et caudalement au ligament collatéral latéral. A noter que lors de

flexion/extension du coude, l’épaule opère le mouvement opposé et une réaction

douloureuse du cheval peut être la manifestation d’une atteinte du coude mais aussi de

l’épaule ou de la bourse bicipitale.

8. Bras et épaule

L’épaule et la bourse bicipitale sont des structures responsables de boiteries

lorsqu’elles sont atteintes. Des chevaux normaux peuvent réagir à la palpation de ces

régions. Une douleur des muscles voisins de l’articulation scapulo-humérale peut survenir

secondairement à une atteinte primaire de la partie distale du membre comme lors de

douleur de la bourse bicipitale lors d’atteinte du carpe.

La palpation du bras n’est pas évidente car de nombreuses masses musculaires

recouvrent l’humérus. De même, une bourse intertuberculaire normale est non palpable.

Les flexions statiques et les extensions permettent d’apprécier l’amplitude de

mouvement des articulations scapulo-humérale et brachiale. La plupart des chevaux

présentant une atteinte de l’articulation de l’épaule ou une bursite bicipitale montrent une

réponse douloureuse lorsque le membre est porté en arrière alors que ceux souffrant d’une

atteinte du coude pourront montrer une douleur lors de l’étirement du membre en avant.

L’investigation de la région scapulaire pourra mettre en évidence une atrophie des

muscles infra et supra-épineux indiquant ainsi une atteinte éventuelle du plexus brachial, un

autre type d’atteinte neurologique ou une atrophie de non utilisation. La région pectorale

doit être palpée avec attention à la recherche de tuméfactions ou blessures responsables de

boiterie.

74

C. Palpation

1. Rachis cervical

La palpation du cou est limitée, il est possible d’évaluer le muscle brachiocéphalique

situé cranialement à l’articulation scapulaire. Chaque côté du cou doit être palpé à la

recherche de tuméfaction ou d’atrophie musculaire, cette dernière pouvant être signe de

douleur cervicale ou d’atteinte du membre ipsilatéral. La palpation de la région de la nuque

est importante car une douleur des ailes de l’atlas peut être responsable de baisses de

performances. La mobilité de la tête pourra être évaluée en tenant la queue d’une main

tandis que l’autre propose de la nourriture au cheval, l’animal devant être capable d’amener

sa tête en regard de la pointe de la hanche. La mobilité verticale de la tête pourra également

être estimée, de même que les articulations temporo-mandibulaires.

2. Dos : rachis thoraco-lombaire

La palpation du dos s’effectue en plaçant une main de chaque côté de la colonne

vertébrale et en appliquant de légères pressions digitales afin d’apprécier une éventuelle

réaction douloureuse, les hauteurs des vertèbres ainsi que la présence d’amyotrophie. A

noter cependant que les chevaux réagissent généralement en fléchissant le dos lors de la

palpation : une manifestation douloureuse correspondra ainsi à une flexion exagérée du dos

voire à des fasciculations musculaire post palpation.

Les douleurs du dos sont souvent complexes et peuvent être la conséquence de

nombreuses atteintes primaires ou secondaires. Les manifestations douloureuses du dos du

cheval sont très souvent secondaires à une boiterie et rares sont les affections primaires.

3. Palpation du bassin

a. Abord externe

Le pelvis doit être évalué sur un cheval le plus au carré possible, par palpation de

chaque relief osseux : tuber coxae, tuber sacrale, et tubérosités ischiatiques. Le clinicien se

75

tiendra debout derrière le cheval pour comparer la largeur et la hauteur de chacun de ces

reliefs. Cette position, bien que pratique pour apprécier l’aspect du bassin, reste très

dangereuse et demande un cheval coopératif ainsi que des mesures sécuritaires. Toute

amyotrophie ou douleur musculaire devra être recherchée : muscles glutéaux, muscles

cruraux caudaux et muscle tenseur du fascia lata.

La queue doit être élevée et relâchée : la plupart des chevaux résistent lors de

l’élévation et une manifestation douloureuse témoigne souvent d’une fracture de la base de

la queue. Une absence de tonicité de la queue signe peut indiquer une atteinte

neurologique.

b. Abord transrectal

Cet examen ne fait en règle générale pas partie de l’examen standard et est plutôt

réservé à une investigation spécifique du bassin. Il est possible d’examiner et de comparer

les faces médiales et dorsales des acétabulums, le bord cranial du pelvis, la face médiale des

iliums, l’aspect ventral du sacrum et de son articulation avec les iliums. La qualité du pouls

aortique et des artères iliaques externes peut être révélateur de thrombo-embolie. Notons

cependant que cet examen par voie transrectale peut être réalisé sous échographie et être

ainsi beaucoup plus objectif. (Engeli, et al., 2006)

Figure 26 : position permettant d’évaluer et de comparer les hauteurs et largeurs des processus osseux du bassin. Attention cependant car cette position reste très dangereuse pour le praticien et peut être remplacé par le positionnement de deux aides de chaque côté pointant les reliefs en question.


76

D. pelvien

Cette étape nécessite de prendre des précautions et d’être vigilant car l’abord des

membres pelviens n’est jamais sans danger. Le clinicien pourra prendre la queue de l’animal

en la tirant légèrement à lui afin de reporter le poids du cheval sur le membre examiné,

diminuant ainsi le risque de coup de pied. Il est également possible de demander à un aide

de soulever le membre controlatéral bien que cette procédure s’avère impossible voir

dangereuse sur des chevaux trop douloureux ou peu coopératifs.

1. Cuisse

Comme sur chaque segment osseux, le clinicien devra rechercher la présence

d’amyotrophie, de tuméfaction ou de cicatrices. A noter qu’au niveau de cette région le

troisième trochanter peut être difficile à palper et il est fréquent de ne pas détecter des

anomalies impliquant ce relief.

2. Grasset

La palpation du grasset se limitera à ses parties craniale, médiale et latérale. Il est

fréquent que les chevaux n’apprécient guère de se faire toucher à cet endroit, leur réaction

de défense ne devant pas être confondue avec une réaction douloureuse.

Le vétérinaire palpera le grasset lorsque le membre sera en appui avec pied posé sur

sol plat, le membre légèrement porté en avant afin d’évaluer les ligaments rotuliens. Ces

derniers sont au nombre de trois : ligament patellaire médial, latéral et moyen. La capsule de

l’articulation fémoro-patellaire peut être ressentie entre le ligament médial et le moyen et

entre le ligament moyen et latéral. L’articulation fémoro-tibiale latérale est accessible entre

le ligament patellaire latéral et les ligaments collatéraux mais difficile à évaluer, même

lorsqu’elle est distendue.

Pour mettre en évidence une atteinte du grasset, celui-ci sera porté en flexion

partielle, une main sera utilisée comme levier au niveau du grasset tandis que l’autre, placée

au niveau de l’extrémité distale du membre, portera ce dernier en abduction afin d’induire

77

un valgus de stress du grasset. L’examen de la rotule se fait sur membre en appui : la main

du clinicien placée sur sa face dorsale et la poussant vers le haut. Durant cette étape, les

ligaments patellaires sont sollicités et la rotule vient s’appuyer sur la trochlée fémorale lors

de son relâchement.

3. Jarret et jambe (Nowak, 2005)

Depuis le grasset, la palpation intéressera chaque muscle à la recherche de

sensibilité, de chaleur ou d’amyotrophie. La palpation pression des faces médiale et latérale

du tibia s’effectue sur membre en soutien.

Le jarret peut être sujet à de nombreuses distensions, dures ou molles, le tout étant

de différencier son origine :

- Distension généralisée des articulations du jarret :

Associée à une diminution de la flexion passive du jarret atteinte sévère de la

capsule et des ligaments.

- Articulation tarso-crurale :

Distension ferme dorso-médiale, non dépressible inflammation de la capsule

(souvent chronique).

Distension fluctuante dorso-médiale, parfois aussi latéro-palmaire. A la pression

on peut faire gonfler l’une en appuyant sur l’autre synovite tarso-crurale

(éparvin mou) associée à de l’ostéochondrose (trochlée du tibia, cochlée du talus)

ou à une fracture intra-articulaire.

- Articulations intertarsiennes et tarso-métatarsiennes :

Epaississement ferme médio-distal, non douloureux suspicion d’éparvin osseux

(ostéoarthrose des articulations intertarsiennes distales). Effectuer un test de

flexion passive du jarret et confirmer par radiographie.

78

Les distensions peuvent avoir également d’autres localisations :

- Gaine synoviale du tendon fléchisseur profond du doigt :

Elle se palpe légèrement en avant de l’extrémité proximale du calcaneum, si on a

une distension bilatérale molette tendineuse.

- Face plantaire du jarret :

Distension molle inflammation du ligament plantaire long = jarde, pronostic

réservé.

- Pointe du jarret :

Déformation dure, parfois volumineuse bursite sous-cutanée = capelet, formée

par des traumatismes répétés de la pointe du jarret (cheval qui frappe les parois

du box avec ses postérieurs), en général permanente, souvent sans boiterie

associée.

La flexion du jarret s’effectue en tenant le membre au niveau du boulet sans fléchir le

pied. Ce mouvement fléchit également le grasset de par l’intervention du muscle troisième

péronier donc la réponse n’est pas spécifique des articulations du tarse. On évalue la

douleur et le degré de flexion maximale : normalement la distance entre la tubérosité tibiale

et la face dorsale du boulet est inférieure à 12-15 cm.

4. Partie distale du membre

La palpation de la partie distale du membre pelvien depuis le jarret s’effectue de la

même manière que sur les membres thoraciques (voir pages 60 à 68).

79

VI. Examen dynamique

L’examen dynamique constitue une étape essentielle de l’examen locomoteur car

elle permet de distinguer quelle région est atteinte. Les chevaux atteints d’une pathologie

musculo-squelettique présentent très souvent des troubles lors de leur locomotion.

A. naturelles

Les allures naturelles du cheval correspondent à celles que ce dernier utilise lorsqu’il

est en liberté au pré. Ces allures sont le pas, le trot et le galop ; bien que le reculer est une

allure pouvant être utilisée spontanément par l’animal il est considéré comme un exercice

de dressage plus qu’un moyen de locomotion naturel.

1. Le pas

Le pas est une allure à quatre temps égaux et symétrique laissant entendre quatre

battues distinctes sur le sol. C’est l’allure idéale pour évaluer les défauts de conformation

dans l’angle frontal : varus et valgus. En effet, au cours du pas, le cheval placera ses

membres en fonction de sa conformation contrairement lors de posture arrêtée.

Figure 27 : mécanique du pas du cheval mettant en évidence une battue du postérieur droit suivie de celle de l’antérieur droit, puis du postérieur gauche et enfin de l’antérieur gauche.

80

2. Le trot

Le trot est une allure sautée, diagonale, à deux foulées au cours de laquelle le cheval

mobilise ses bipèdes diagonaux : bipède diagonal droit (antérieur droit + postérieur gauche)

et bipède diagonal gauche (antérieur gauche + postérieur droit).

A titre indicatif, l’amble est une allure dite artificielle dérivée du trot. Au cours de

cette allure le cheval mobilise ses bipèdes latéraux. C’est une allure naturellement pratiquée

par le cheval Islandais et certaines races américaines, mais signant d’un inconfort chez les

autres chevaux en général.

3. Le galop

Le galop est une allure dissymétrique, sautée, à trois temps. Le cheval peut galoper à

gauche ou à droite, ce dernier galopant naturellement du côté où il tourne.

Figure 28 : mécanique du trot du cheval. Chaque avancée de bipède diagonale est suivie d’une phase de propulsion conférant son caractère « sauté » à l’allure.

Figure 29 : mécanique du galop à droite. Le cheval engage le postérieur gauche puis son bipède diagonal gauche et son antérieur droit avant d’avoir une phase de propulsion.

81

Le galop peut être désuni : le cheval engage le bipède latéral au lieu de son bipède

diagonal. Ce type de galop est généralement observé chez les jeunes chevaux car possédant

peu d’équilibre ou chez ceux présentant une douleur.

B. Déroulem

1. Conduite du cheval

L’examen du cheval se fait en main, sa tête et son encolure étant laissées libres de

mouvements. Il est fortement préférable que la personne conduisant l’animal soit

expérimentée afin de pallier aux réactions éventuelles du cheval. De même il est conseillé

que ce dernier soit bridé (ou ait un chifney) plutôt qu’en licol car plus facilement contrôlable.

Le cheval ne doit pas avoir été monté le jour de l’examen, il doit également être ferré

pour éviter la sensibilité du pied due à une corne trop fragile ; cependant une ferrure trop

récente n’est pas l’idéal car l’animal peut être douloureux. A noter également qu’il est

préférable que le cheval soit dans une période de travail ; en effet l’observation de la

boiterie sera compliquée si ce dernier est au repos depuis un certain temps car possiblement

atténuée.

2. Types de surfaces

Le vétérinaire doit pouvoir observer le cheval sur surface dure et plane ainsi que sur

surface souple et plane. Attention cependant, la surface dure ne doit pas être glissante faute

de quoi le cheval aura une démarche hésitante et une foulée réduite. De même une surface

glissante augmente les risques de chutes ce qui pourrait avoir des conséquences

dramatiques sur le cheval et le praticien. La surface souple ne doit pas être trop profonde

également.

Les sols durs ont tendance à exacerber les boiteries consécutives à une lésion des

tissus durs tandis que sur surface meuble ce sont les tissus mous.

82

3. Observation du cheval

Le vétérinaire observera dans un premier le cheval sur un aller-retour au pas puis au

trot sur sol dur en ligne droite, de face, dos et profil. Il faut évaluer le placement des

membres, l’amplitude de la foulée (et décomposer les phases de protraction, soutien et

rétraction de chaque membre), la descente du boulet, les amplitudes de mouvement de

chaque articulation ainsi que les mouvements de la tête. Le rythme découlant du poser des

membres sur le sol peut être un élément intéressant à écouter. L’utilisation de vidéographie

peut s’avérer extrêmement utile lors de l’examen dynamique.

Le cheval est ensuite mis sur un cercle sur sol dur au pas et au trot, au départ sur

grand cercle qui sera réduit progressivement afin d’exacerber des gênes éventuelles. Le

cercle sera bien évidemment réduit dans les limites du réalisable. Il est également possible

de faire évoluer le cheval sur un 8 de chiffre au pas sur sol dur afin d’évaluer ses capacités

proprioceptives et coordinatrices.

Enfin on fait trotter et galoper le cheval sur un cercle sur sol souple aux deux mains.

Cela permet d’évaluer les mouvements du dos et d’observer le cheval à vitesse plus élevée

qui plus est sur une allure dissymétrique. La mise en place d’un surfaix est également un

examen réalisable et permet de mettre en évidence certaines dorsalgies ou peut modifier les

caractéristiques d’une boiterie.

Il est également possible d’évaluer le cheval en montée/descente sur pente dans le

but d’apprécier les mouvements du dos ou d’exacerber certaines boiteries. A la suite d’un

accord entre propriétaire et vétérinaire le cheval peut être observé monté bien que cette

étape ne soit pas nécessaire.

Enfin, certains chevaux nécessitent des conditions particulières d’observation : il est

ainsi préférable d’observer les coureurs sur piste pour évaluer la présence de troubles

locomoteurs à grande vitesse. Les animaux non débourrés ou jeunes nécessiteront des

précautions particulières, tout comme les pur-sangs qui peuvent être difficile à contenir.

83

C.

1. Boiterie thoracique

Ce type de boiterie est en général plus facile à reconnaitre qu’une boiterie pelvienne.

Il est fondamental d’observer les mouvements de la tête et de l’encolure : un cheval boiteux

d’un membre thoracique élèvera la tête au moment du poser du membre atteint. De même

la tête s’abaisse lorsque le controlatéral sain est posé. Dans le langage commun, on dit que

« le cheval tombe du côté sain ».

Une boiterie thoracique bilatérale se manifestera par un report du poids sur l’arrière-

main ainsi qu’une élévation constante de la tête.

2. Boiterie pelvienne

Pour évaluer une boiterie pelvienne unilatérale, il faut observer attentivement

l’amplitude de mouvement des hanches : l’amplitude est augmentée du côté atteint. Cela se

manifeste également par une élévation verticale du bassin lors du poser du membre boiteux

et par conséquent, comme pour la tête, une descente verticale du bassin lors du poser du

controlatéral sain. Une boiterie pelvienne bilatérale se manifestera plutôt par un défaut

d’engagement des membres pelviens.

Au sein des boiteries pelviennes, on distingue les boiteries d’impact (douleur du

cheval lors du poser du membre) des boiteries de propulsion (douleur au moment de la

phase propulsive).

3. Descente du boulet

En règle générale le boulet du membre atteint descend moins bas car le cheval tente

de faire peser le plus de poids sur le membre sain. Cette descente du boulet peut être

évaluée plus commodément sur des vidéos, de même il est plus facile d’observer ce

phénomène au pas plutôt qu’au trot.

84

4. Indices sonores

Un cheval boiteux aura tendance à poser son membre sain plus fortement que son

controlatéral boiteux ce qui se traduit par une bruit plus sourd. Pour évaluer ces différences

sonores il faut que le cheval soit ferré et qu’il évolue sur une surface plane et dure. A noter

cependant que des fers anciens (qui « clochent »), une disparité de ferrure ou une asymétrie

podale vont fausser les bruits de poser des membres.

L’écoute de la régularité du rythme est également utile et permet de déceler les

disparités mais aussi la réponse de l’animal aux analgésies sémiologiques.

D.

Bien que la gradation de la boiterie ne soit pas totalement objective, d’autant plus

qu’il existe différentes échelles de notation, elle permet d’effectuer un classement et de

quantifier les éléments observés. La notation la plus répandue est celle de l’AAEP (American

Association of Equine Practicionners), elle grade les boiteries de 1 à 5 selon le principe

suivant :

- Grade 1 : normal, boiterie difficile à observer quelles que soient les

circonstances ;

- Grade 2 : boiterie légère, difficile à observer au pas et au trot en ligne droite,

apparente dans certaines conditions ;

- Grade 3 : boiterie modérée visible au trot dans toutes les circonstances ;

- Grade 4 : boiterie sévère, visible au pas et au trot, mouvement de tête et de

hanche marqué ou raccourcissement de la foulée ;

- Grade 5 : suppression d’appui ou appui minimal au repos et en mouvement,

incapacité à se déplacer.

E.

Compte tenu d’une augmentation des forces en compression et extension appliquées

sur les membres, les boiteries sont en général plus apparentes sur le cercle. Il est de ce fait

85

intéressant de faire évoluer le cheval en cercle aux deux mains sur sol dur (pas, trot) et

souple (pas, trot, galop). Remarquons que cela permet de faire ressortir les boiteries mais ne

permet pas en général de localiser la zone douloureuse.

1. Membre thoracique

Les affections localisées de la région du boulet à celle du pied auront tendance à

mieux ressortir lorsque le membre sera en position interne. A l’inverse les lésions de

suspenseurs, les atteintes du carpe ou de l’os canon sont souvent amplifiées lorsque le

membre est à l’extérieur du cercle.

2. Membre pelvien

La majorité des atteintes du membre postérieur auront tendance à mieux ressortir

lorsque celui-ci est en position interne du cercle. Les lésions du suspenseur pourront être

amplifiées lorsque le membre sera en position externe.

86

VII. Manipulation

Les tests de mobilisation passive consistent à manipuler le cheval et à évaluer ses

réponses aux flexions, extensions, abduction et adduction de diverses articulations. Ils

doivent être réalisés avant d’observer le cheval en mouvement.

Les tests de flexion permettent d’exacerber une douleur existante. Ils sont réalisés

sur chacun des membres, leur durée se situant entre 45 et 60 secondes, à la suite desquelles

le cheval est mis au tort sur un aller et retour au trot en ligne droite sur sol dur. Une flexion

est jugée positive si la boiterie est présente au-delà des 3 premières foulées.

A. mobilisation passive2011)

1. Mobilisation du membre thoracique

Il existe 4 manipulations à effectuer au niveau du membre thoracique auxquelles se

rajoute le test de la planche.

a. Test de flexion digitée (Spriet, 2002)

Ce test est parfois improprement appelé test de flexion du boulet alors qu’il porte en

flexion le boulet et les articulations interphalangiennes. Il permet d’évaluer la mobilité de

ces articulations lors de la flexion et d’apprécier éventuellement une réponse douloureuse

de la part du cheval.

b. Test de flexion du carpe

Il permet d’évaluer la mobilité du carpe et de mettre en évidence des douleurs des

articulations radio-carpienne, intercarpienne et carpo-métacarpienne ainsi que des tissus

mous de cette région : ligaments, insertions et bride carpienne. Chez un cheval normal on

doit facilement pouvoir amener le boulet contre la partie palmaire de l’avant-bras.

87

c. Protraction/rétraction

Les mobilisations en protraction et rétraction du membre thoracique doivent être

réalisée de façon progressive pour ne pas induire de fausse douleur et surtout pour prévoir

les réactions du cheval.

La mise en protraction s’effectue en prenant le membre en arrière du boulet et en le

positionnant progressivement vers l’avant, à la suite de quoi on réalise la protraction. Un

cheval normal répondra par une extension active de l’épaule à savoir qu’il va s’appuyer. Une

non réponse et/ou une élévation de l’encolure laisse supposer une douleur plutôt localisée

au niveau de l’épaule.

La rétraction doit se faire également de manière très progressive et consiste à

amener le membre vers l’arrière. Un cheval normal est censé répondre en tirant vers l’avant.

Il faut une fois de plus différencier une réaction douloureuse d’une réaction

comportementale en comparant avec l’autre côté. Cette observation par ailleurs valable est

valable pour tous les autres tests.

d. Test à la planche

Ce test a pour but de provoquer une hyperextension phalangienne : la planche doit

être placée dans l’axe du doigt et devra donc parfois être en rotation interne ou externe

selon si le cheval est cagneux ou panard, il faudra également veiller à ne pas mettre le cheval

en position campé ou sous lui du devant. Le pied sera placé avec les talons le plus au bord

possible de la planche : les glomes doivent ainsi être sortis de la planche. Le lever de la

planche s’effectue progressivement par paliers d’une dizaine de centimètres.

Une réaction douloureuse se manifestera par une élévation de l’encolure et de la tête

voire une fuite du cheval. A noter qu’il est également possible d’induire un déséquilibre

latéro-médial avec la planche afin d’apprécier la tension des ligaments collatéraux et de la

branche du suspenseur.

88

2. Mobilisation des membres pelviens

Cette mobilisation requiert d’être vigilant car elle peut présenter des risques : le

caractère du cheval sera ainsi apprécié au cours des étapes antérieures et il vaudra mieux ne

pas réaliser de manipulation postérieure lors de doute.

a. Flexion globale

Il faut prendre le membre au niveau du boulet et lever ce dernier à une quarantaine

de centimètres du sol. Il permet d’évaluer la sensibilité et la souplesse globale du cheval.

b. Tests de protraction/rétraction

Lors de la protraction on doit pouvoir amener le pied du cheval au niveau de son

pisiforme. Cela permet de tester l’élongation des muscles fémoraux caudaux.

La rétraction ne se fera que sur cheval serein car elle comporte des risques non

négligeables de blessure du vétérinaire. La protraction permet d’évaluer la mobilité lombo-

sacrale, l’interprétation étant à nuancer en fonction du comportement du cheval.

3. Mobilisation du dos

Il y a 10 tests permettant de mobiliser le dos :

- Flexion et extension thoracique : lors de l’extension le cheval lève la tête et la

baisse lors de la flexion (s’explique par l’action du longissimus se terminant sur les

vertèbres cervicales) ;

- Extension thoracolombaire ;

- Extension lombosacrale ;

- Flexion lombosacrale et thoraco lombaire ;

- Latéroflexion droite et gauche ;

- Rétractions des membres pelviens évaluant la mobilité lombosacrale droite et

gauche ;

89

- Latéroflexion cervicale droite et gauche : il faut prendre la queue et appâter le

cheval avec de la nourriture. La tête doit parvenir jusqu’à la tubérosité ischiatique

tout en restant dans le plan vertical.

B.

Dans cette partie nous allons détailler tous les tests de flexion possibles mais lors

d’un examen locomoteur il n’est possible de se contenter que des flexions totales de chaque

membre et éventuellement d’investiguer plus en détail une région suspecte.

1. Flexion du membre thoracique

a. Flexion pied-boulet

Il s’agit de réaliser la même flexion que lors des tests de mobilisations passives. Une

réponse positive signe une atteinte des structures distales du membre : articulations

interphalangiennes, métacarpo-phalangienne, os et bourse naviculaires, fléchisseurs,

sésamoïdes proximaux, terminaisons du suspenseur. A noter que le pied doit être placé le

plus près possible du sol afin d’éviter de fléchir d’autres articulations.

Il est également possible de fléchir uniquement le boulet ou les articulations

interphalangiennes : des photographies sont disponibles sur le CD-Rom.

b. Flexion carpienne

Il s’agit du test le plus spécifique parmi tous les tests de flexion du membre

thoracique : une réponse positive signe habituellement d’une atteinte du carpe. Il est

possible d’induire un valgus de stress sur le carpe en plus de sa flexion.

90

c. Manipulation de la partie proximale du membre thoracique

Compte tenu de l’anatomie de la partie proximale du membre, la manipulation du

coude mobilise également l’articulation de l’épaule. Deux tests sont de ce fait possibles : le

test de flexion de l’épaule et extension du coude et le test d’extension de l’épaule et flexion

du coude.

2. Tests de flexion des membres pelviens (Starke, et al., 2012)

a. Partie distale du membre

Les tests effectués sur la partie distale du membre pelvien sont les mêmes que ceux

réalisés sur le membre thoracique.

b. Flexion du jarret

Compte tenu de la présence de l’appareil réciproque, la flexion du jarret induit

forcément une flexion du grasset. Il faut prendre le membre légèrement proximalement au

boulet et le lever jusqu’à avoir l’os canon porté à l’horizontale. Il faut être vigilant lors de la

réalisation de ce test sur cheval difficile. Une alternative à ce test consiste à fléchir toutes les

articulations du membre : grasset, jarret, boulet et interphalangiennes.

c. Flexion du grasset

Ce test n’est pas facilement mis en œuvre et reste relativement dangereux. Il peut

cependant exacerber des boiteries chez des chevaux présentant une atteinte du grasset

comme de l’ostéoarthrose. Une fois de plus le jarret reste tout de même en flexion dans ce

cas.

91

d. Varus/valgus de stress

Bien que pouvant être réalisées sur de nombreuses articulations, les mises en valgus

ou varus sont le plus souvent exécutées au niveau du grasset. Il faut éviter de fléchir trop

intensément les articulations lors de mise en abduction ou adduction car le membre de

cheval n’est mécaniquement pas adapté à de fortes contraintes dans le plan frontal.

C.

Il est possible d’observer le cheval au trot sur ligne droite sol dur après utilisation de

la pince à sonder ou à la suite d’une pression directe sur une région.

La pression digitale est maintenue sur la région douteuse pendant 15 à 30 secondes

avant d’envoyer trotter le cheval. Cette pratique est souvent réalisée sur le membre

thoracique au niveau de la partie dorso-proximale de P1, de la partie dorsale de l’os canon,

des branches du suspenseur et de la partie proximo-palmaire de la région métacarpienne.

Au niveau du membre pelvien on investigue communément les métatarsiens rudimentaires

(compression indirecte de l’origine du suspenseur).

La pince à sonder peut être appliquée pendant 15 à 30 secondes avant d’évaluer le

cheval au trot. Il est fréquent d’obtenir de faux positifs mais la comparaison de la réponse

entre membre gauche et droit permet de les déceler.

Afin de tester la proprioception du cheval, il pourra être amené à monter descendre

une marche telle qu’un trottoir. La queue pourra être tirée brusquement d’un côté lorsque

l’animal sera au pas pour tester son équilibre.

92

VIII. Anesthésies sémiologiques

Les anesthésies sémiologiques restent un outil essentiel dans l’examen locomoteur

car elles permettent de localiser la source de la douleur. Elles demandent une bonne

connaissance de l’anatomie et de la biomécanique du membre ainsi qu’une certaine

technique mais un investissement faible en contrepartie.

A. tion

1. Principes de base

Le premier principe est que le vétérinaire doit avoir une bonne connaissance de

l’anatomie du cheval afin de connaître précisément les trajets des nerfs ou les voies d’abord

des articulations. Un autre principe, considéré comme fondamental, est de commencer à

travailler distalement et de remonter proximalement sauf lors d’atteinte évidente d’une

région.

Lors de la réalisation d’un bloc il est important de tester son efficacité avant d’évaluer

le cheval : en règle générale on appuie avec un stylo sur la région anesthésiée en cachant

l’œil de l’animal et on compare sa réaction avec la stimulation de la région homologue

controlatérale.

Lors de la réalisation d’anesthésies il faudra privilégier les moyens de contentions

physiques (tord nez, pli d’épaule, éventuellement pli du grasset) plutôt que les moyens

chimiques pouvant entraîner une ataxie ou encore abolir la boiterie surtout si elle est de

faible grade. Ce principe pourra cependant être révisé lors de l’anesthésie d’un membre

pelvien sur un cheval difficile.

2. Préparation du cheval

La peau et les poils doivent être soigneusement nettoyés, le rasage n’étant

généralement pas nécessaire sauf si les poils compromettent le repérage précis de la zone à

93

ponctionner ou s’ils empêchent de la nettoyer de manière correcte. Le site sera désinfecté à

l’éponge moussante avec de la chlorhexidine ou de la povidone iodée selon les méthodes

d’asepsie habituelles. Cette asepsie sera cependant bien plus rigoureuse lors d’anesthésie

intra-articulaire : gants stériles et tonte.

3. Matériel

Il est préférable d’utiliser des aiguilles de petit diamètre : de 20 à 25 gauges.

Différentes molécules sont à la disposition du vétérinaire mais seule la lidocaïne possède

une AMM cheval. Le temps d’action varie selon le site utilisé mais prend en moyenne une

dizaine de minute. La dernière sensibilité à disparaitre est celle de la pression profonde.

Produit Nom déposé Propriétés Durée d'action

indicative et élimination

Procaïne Procaïne ND Gold standard 3 heures

Lidocaïne Lidocaïne, Xylocaïne, Xylovet Plus stable, peu de toxicité 30 min à 3 heures

Mepivacaïne Carbocaine ND Bien tolérée par les synoviales 2 à 3 heures

Bupivacaïne Bupivacaïne ND, Marcaïne ND Plus cardiotoxique 4 à 6 heures

Ropivacaïne Naropéine ND Moindres effets cardiaques 6 à 10 heures

Tableau 2 : comparaison des principaux anesthésiques locaux utilisables. En pratique la lidocaïne est la plus utilisée, la mépivacaïne est très répandue chez nos confrères anglo-saxons. D’après (Birague, 2006).

94

B.

Le vétérinaire pourra être amené à anesthésier différentes parties du membre

thoracique par le biais d’anesthésies tronculaires, intra-articulaires, des bourses séreuses ou

des gaines tendineuses.

1. Anesthésies tronculaires

Il s’agit d’injecter de l’anesthésique à proximité du passage des nerfs. On distingue

dans le sens disto-proximal l’anesthésie digitale distale, la digitale proximale, la

métacarpienne distale, la métacarpienne proximale, l’anesthésie proximale du suspenseur,

du nerf ulnaire et du nerf médian.

2. Anesthésies intra- articulaires

Lors de la réalisation de tels actes, nous rappelons que les précautions d’asepsie sont

importantes pour éviter toute complication. Il est possible d’insensibiliser toutes les

articulations du membre antérieur. Certaines étant plus souvent utilisées que d’autres.

3. Anesthésies des bourses et gaines tendineuses

Il est possible d’insensibiliser la bourse podotrochléaire, la gaine des fléchisseurs, la

gaine carpienne, la bourse olécranienne et la bourse bicipitale.

95

C. thoracique

Figure 30 : Stratégie analgésique sur le membre thoracique: du pied au carpe. IPD : interphalangienne distale, IPP : interphalangienne proximale, MCP : métacarpo-phalangienne, Mc : métacarpienne. Adapté d’après (Ross & Dyson, 2011) et (Birague, 2006).

96

Figure 31 : Stratégie analgésique sur le membre thoracique : de l’avant-bras à l’épaule.

Adapté d’après (Moyer, et al., 2007), (Birague, 2006), (Baxter, 2011) et (Ross & Dyson, 2011).

97

Nom Type Quantité d'anesthésique Temps d'attente

Digitale distale PN 2 x 2mL 10 min

Digitale proximale PN 2 x 1,5 à 2 mL 10 min

Métacarpienne distale PN 3 mL nerfs palmaires 2,5 mL nerfs métacarpiens

10 min

Métacarpienne proximale PN 3 à 5 mL nerfs palmaires 2 à 3 mL nerfs métacarpiens

10 min

Anesthésie proximale du suspenseur PN 3 à 5 mL 10 min

Nerf médian PN 10 mL 10 à 30 min

Nerf ulnaire PN 10 mL 10 à 30 min

Interphalangienne distale IA 5 mL maxi 5 min max

Interphalangienne proximale IA 5 à 10 mL 5 min

métacarpo-phalangienne IA 10 mL 5 à 10 min

Intercarpienne IA 5 à 10 mL 5 à 10 min

Radio-carpienne IA 5 à 10 mL 5 à 10 min

Articulaire du coude IA 20 à 25 mL 10 à 20 min

Articulaire de l'épaule IA 25 à 30 mL 10 à 30 min

Gaine digitale IS 10 à 15 mL 5 à 10 min

Bourse naviculaire IS 10 à 20 mL 10 min

Gaine carpienne IS 10 à 15 mL 10 min

Bourse bicipitale IS 10 à 20 mL 10 min

Tableau 3 : Anesthésies du membre thoracique : type, quantité à injecter et temps d’attente. A noter que certaines anesthésies seront bien plus précises sous échoguidage. (Baxter, 2011)

98

D. Anesthésies

Tout comme sur le membre thoracique, il est possible d’effectuer des anesthésies

tronculaires, articulaires ou d’insensibiliser diverses gaines et bourses. Compte tenu de

l’équivalence anatomique des parties distales des membres thoraciques et pelviens, il sera

possible d’effectuer des anesthésies similaires sur les régions distales de ces deux membres.

1. Anesthésies tronculaires

Il est possible de réaliser les anesthésies digitales distale et proximale, la

métatarsienne distale, la métatarsienne proximale et l’anesthésie jambière.

2. Anesthésies intra-articulaires

Chaque articulation pourra être injectée : interphalangiennes, métatarso-

phalangienne, tarso-métatarsienne, intertarsienne distale, tarso-crurale, fémoro-rotulienne,

fémoro-tibilae latérale et médiale, coxofémorale.

3. Anesthésies des gaines et des bourses

Le praticien pourra injecter la gaine digitale, la bourse cunéenne, la gaine tarsienne et

la bourse calcanéenne.

99

Figure 32 : Stratégie analgésique sur le membre pelvien : du pied au jarret. IPD : interphalangienne distale, IPP : interphalangienne proximale, MTP : métatarsophalangienne, TMT : tarsométatarsienne, FD : fléchisseurs du doigt.

Adapté d’après (Moyer, et al., 2007) et (Ross & Dyson, 2011).

100

Figure 33 : Stratégie analgésique sur le membre pelvien : de la jambe à l’articulation coxo-fémorale. FPD : fléchisseur profond du doigt.

Adapté d’après (Moyer, et al., 2007) et (Ross & Dyson, 2011).

101

Nom Type Quantité d'anesthésique

Temps d'attente

Nerf péronier profond PN 15 à 25 mL 20 à 60 min

Nerf péronier superficiel PN 15 mL 20 à 60 min

Tarso-métatarsienne IA 4 à 8 mL 5 à 10 min

Intertarsienne distale IA 4 à 5 mL 5 à 10 min

Tarso-crurale IA 20 à 30 mL 10 à 30 min

Fémoro-rotulienne IA 20 à 30 mL 20 à 60 min

Fémoro-tibiale M IA 20 à 30 mL 20 à 60 min

Fémoro-tibiale L IA 20 à 30 mL 20 à 60 min

Coxo-fémorale IA 25 à 30 mL 20 à 30 min

Gaine tarsienne IS 10 à 15 mL 10 à 20 min

Bourse calcanéenne IS 10 mL 20 à 30 min

Tableau 4 : Anesthésies du membre postérieur : type, quantité à injecter et temps d’attente. A noter que certaines anesthésies seront bien plus précises sous échoguidage (Baxter, 2011).

104

Après avoir mené son investigation clinique et posé un diagnostic anatomique, le

clinicien aura recours à divers examens complémentaires afin d’explorer les régions

suspectes. Lors d’un examen locomoteur, il s’agira surtout d’examens d’imagerie médicale :

radiographie, échographie, IRM, tomodensitométrie et scintigraphie. Cependant il est

également possible d’effectuer d’autres investigations complémentaires comme des

analyses hématologiques et biochimiques, des arthroscopies, des cytologies, etc… Nous

verrons dans cette partie l’indication de ces examens après avoir expliqué succinctement

leur fonctionnement, puis leur réalisation et enfin leur utilité et leur limite.

I. Radiographie

La radiographie est l’acquisition d’images radiographiques et la radiologie leur

interprétation. La radiographie est un examen de choix lors de bilan locomoteur car elle

donne des détails précis des structures osseuses et articulaires et permet également de tirer

quelques informations sur les tissus mous avoisinants. C’est également un examen peu cher

et facilement réalisable, pour peu que les conditions de radioprotection soient respectées.

L’arrivée de la technologie numérique et des capteurs plans ont révolutionné la

qualité des clichés et de ce fait a permis une analyse pointue des structures dans les détails.

Ainsi la radiographie est un examen complémentaire de premier choix qui sera quasi

systématiquement réalisé sur les zones suspectes. Dans certains cas il est même préférable

de procéder à la réalisation de clichés radiographiques avant les étapes d’analgésies

sémiologiques, notamment lors de suspicion de fracture.

A.

Réaliser un cliché radiographique consiste à produire un faisceau de rayons X et à

mesurer la quantité de rayons frappant une surface de mesure. Cette quantité de rayons

dépend du nombre total de rayons émis (milliampérage multiplié par le temps d’exposition :

mAs), de la distance du film par rapport à la source d’émission des rayons (distance focal-

105

film), et de la capacité des rayons à traverser les tissus dépendant des kV. Ces facteurs

doivent être correctement utilisés afin d’obtenir des clichés de bonne qualité et de limiter le

rayonnement diffusé responsable d’une diminution de la qualité radiographique et

d’augmentation de l’exposition des personnes à proximité de l’animal.

B. lor

Lors d’un examen locomoteur, le vétérinaire sera plutôt amené à radiographier les

régions du membre voire le dos si son équipement radiographique le lui permet. La prise de

clichés radiographiques reste un examen complémentaire et ne doit de manière générale

être réalisée que lors de présomption clinique.

1. Réalisation pratique (Butler, 2003)

Le praticien doit disposer d’un appareil de radiographie fixe ou portatif et de films de

qualité suffisante, de porte-films, de protections plombées adéquates : lunettes, tablier,

gants, protèges thyroïde et paravents.

Il est préférable de tranquiliser le cheval afin que celui-ci garde son calme, reste

immobile lors du tirage des clichés et évite ainsi de constituer un danger pour les personnes

autour et le matériel. L’effet analgésique de la sédation est également utile car la douleur

peut empêcher le praticien de placer l’animal dans une position adéquate nécessaire à

certaines vues. Dans la mesure du possible l’animal sera également déferré afin d’avoir des

radiographies les plus claires possibles.

106

2. Réalisation des principaux clichés (Weaver & Barakzai, 2010)

PIED

dorso-palmaire sur cale projection standard

dorso-palmaire à l'appui, sur cale trois vues : pied, os naviculaire, doigt

latéro-médiale projection standard proximo-distale Vision du naviculaire oblique dorso-latérale film sous le pied oblique dorso-médiale film sur le côté du pied

BOULET

dorso-palmaire projection standard latéro-médiale projection standard

oblique dorso-médiale sésamoïde proximal médial et marges articulaires

oblique dorso-latérale sésamoïde proximal latéral et marges articulaires

latéro-médiale en flexion évaluer mobilité des fragments

dorso-palmaire oblique surface disto-palmaire du condyle métacarpien

proximo-distale de face dorsale profil dorsal condyle Mc, marge articulaire phalange proximale

frontale proximo-axiale des os sésamoïdes proximaux

rechercher fragments à l'attache distale du LSB

OS METACARPIENS

dorso-palmaire projection standard

dorso-latérale projection standard oblique dorso-latérale étude McIV oblique dorso-médiale étude McII

CARPE

dorso-palmaire projection standard dorso-médiale projection standard oblique dorso-latérale projection standard oblique dorso-médiale projection standard latéro-médiale en flexion recherche fracture ou fragments dorso-latérale oblique en flexion proximo-distales en flexion (sky-line) : rangée distale, rangée proximale, extrémité distale du radius

recherche de fractures

COUDE médio-latérale projection standard cranio-caudale, membre en appui projection standard cranio-caudale, membre levé complémentaire des précédentes

EPAULE médio-latérale projection standard oblique caudo-latérale complémentaire de la précedente

Tableau 5 : incidences radiographiques du membre thoracique chez le cheval et indications.

(Weaver & Barakzai, 2010), (Booth & Weawer, 2005) (Kold & Butler, 2003).

107

OS METATARSIENS

dorso-plantaire projection standard

latéro-médiale projection standard oblique dorso-latérale étude MtIV oblique dorso-médiale étude MtII

TARSE

dorso-plantaire projection standard latéro-médiale projection standard oblique dorso-latérale projection standard oblique dorso-médiale projection standard

latéro-médiale en flexion visualiser cadran proximal lèvres du talus, proc coracoïde

proximo-distale en flexion étude du calcaneus, malléoles du tibia, espace talo-calcanéen

GRASSET

latéro-médiale projection standard caudo-crâniale projection standard proximo-distale (sky-line) exploration du "défilé patellaire"

oblique caudo-latérale dégager condyle médial fémoral, lèvre latérale trochlée fémorale

latéro-médiale en flexion confirmer existence de fragments HANCHE ventro-médiale projection standard, cheval couché

Pour ce qui est de la colonne vertébrale, les projections se feront dans le plan

transversal, avec mise en contraintes possible voire injection de produit de contraste

(myélograhie).

Tableau 6 : incidences radiographiques du membre pelvien chez le cheval et indications .

(Butler, et al., 2000).

108

C.

Afin d’éviter les omissions, il est important d’adopter systématiquement la même

démarche, qui peut se diviser en trois temps.

1. Phase critique

Elle permet d’estimer la valeur ainsi que les limites du cas étudié : radiographie

acceptable ou non, conclusions que l’on peut en tirer, etc… Afin d’obtenir une qualité

radiographique optimale, trois points sont à respecter : la préparation de la région, le

respect des qualités géométriques et le respect des qualités photographiques.

Pour ce qui est de la préparation de la région, il faudra s’assurer de sa propreté en

éliminant toutes les souillures ou applications antérieures (composés iodés par exemple).

Les pieds devront être déferrés le plus souvent, les sabots nettoyés et les lacunes furcales

emplies de pâte.

La qualité géométrique repose sur le respect du positionnement et de l’incidence en

réalisant au moins deux clichés orthogonaux de la région à étudier avec un cheval

parfaitement positionné. Le cadrage pourra être étendu lors de lecture d’une région vaste

mais la qualité du cliché en sera d’autant diminuée : le diaphragme de l’appareil devra de ce

fait être fermé au maximum, ce qui limitera par la même le rayonnement diffusé. Le

centrage sera réalisé sur la zone à étudier car sa déformation sera minimale. Enfin, la

distance foyer objet conditionnant la fidélité de l’image, celle-ci devra être scrupuleusement

respectée.

La qualité photographique est représentée par la densité, le contraste et le détail de

la radiographie. Ces caractéristiques seront optimales en réglant correctement les

constantes de l’appareil (kV et mAs) et en plaçant éventuellement une grille. A noter qu’avec

l’arrivée de la technologie numérique, il est possible de « rattraper » de mauvaises

constantes.

109

Ainsi, à l’issue de la réalisation de la radiographie, le cliché pourra être noté :

mauvais, passable, bon ou très bon. Cette note pourra permettre de cerner au mieux les

limites de l’examen et éventuellement de prescrire de nouvelles vues.

2. Phase analytique (Alterescu-Le Floc'h, 2005) (Gatti, 2006)

La phase analytique consiste à la recherche systématique des signes radiographiques

sur les différents tissus ou parties présents sur le cliché. Cette phase dépend vivement de la

région examinée.

Les anomalies des images radiographiques ont été classées en 4 grandes catégories :

- Normales ou variantes anatomiques (N ou V). Ce sont des images rencontrées sur

des chevaux ne présentant jamais de signes cliniques associés.

- Inhabituelles (I). Ces images sont rencontrées occasionnellement, leur nature n’a

pas été décrite et aucune conséquence clinique n’a été documentée.

- Suspectes (S). Ceci regroupe les anomalies dont les conséquences cliniques sont

mal connues, à vérifier ou mineures.

- Anormales (A). Ce sont les images ayant une signification pathologique. Elles sont

associées à des troubles passés ou présents, ou sont connues comme pouvant

engendrer des troubles locomoteurs dans l’avenir.

Après cette première dichotomie, plusieurs subdivisions au sein de chacune des

catégories sont observées.

Pour les images suspectes :

- Suspectes par défaut de documentation (Sd), ou en désaccord avec la littérature

internationale.

- Suspectes transitionnelles (St), entre une image normale et une image

pathologique.

110

- Suspectes par ambiguïté d’image (Sa), il est impossible de conclure sur la

présence ou non d’une image anormale à cause d’un manque d’incidences ou de

limites inhérentes à la méthode.

- Suspectes mais liées (Sl), concomitante à une autre anomalie déjà répertoriée.

Pour les images anormales :

- Anormales d’expression clinique incertaine (Ai) ;

- Anormale d’expression clinique probable (Ap) ;

- Anormales d’expression clinique certaine (Ac).

Pour chaque image potentiellement pathologique, à savoir les St, Ai, Ap et Ac, un

nombre de points est attribué. Il augmente avec la gravité de la lésion soit :

- 1 point pour les St ;

- 2 points pour les Ai ;

- 4 points pour les Ap ;

- 8 points pour les Ac.

Au terme de la lecture du dossier radiographique et suivant le total des points

attribués le cheval, par rapport à son statut ostéo-articulaire, appartient à une catégorie

donnée. On dénombre cinq catégories :

- les chevaux excellents : total inférieur ou égal à 1 ;

- les chevaux bons : total compris entre 2 et 3 ;

- les chevaux moyens : total compris entre 4 et 6 ;

- les chevaux passables : total compris entre 7 et 10 ;

- les chevaux médiocres : total supérieur à 10.

111

3. Phase synthétique

Au niveau de la démarche diagnostique, le clinicien fera le bilan des signes

radiologiques qu’il aura identifiés et il établira ses hypothèses diagnostiques dans un ordre

hiérarchique si possible. Dans un second temps, ces résultats seront confrontés à ceux

obtenus par la clinique afin d’en ressortir les hypothèses diagnostiques les plus probables.

Pour ce qui est de la démarche pronostique médicale, il faudra savoir si les signes

radiographiques :

- traduisent une pathologie actuelle, expliquent ou sont compatibles avec la

clinique ;

- sont les témoins d’une pathologie ancienne ;

- si les éléments relevés peuvent ou non être à l’origine de troubles à venir

(exemple de l’ostéochondrose) (Wright & Minshall, 2005).

Le vétérinaire sera également sollicité pour établir un pronostic d’utilisation en

évaluant les incidences éventuelles des signes observés sur l’activité à venir (mise au pré,

loisir, compétition).

D. radiographique

Il existe cinq types d’opacité en radiographie, par ordre d’intensité on distingue

l’opacité métallique, minérale, liquidienne/tissulaire, graisseuse et aérique. Ce sont les

différences d’opacité entre tissus anatomiquement proches qui permettent d’identifier leur

forme et leur contour sur un cliché radiographique.

Il est important de bien connaître les radiographies de base ainsi que les variations

possibles d’un animal à l’autre afin de pouvoir distinguer les images pathologiques. Chaque

structure devra être analysée à la recherche d’anomalie de forme, de contour ou de densité

radiographique. Remarquons que selon l’ancienneté de la lésion, des signes seront plus ou

moins perceptibles comme lors de fracture où l’ostéopénie met au moins une semaine à

être observable.

112

E. R

Le squelette est un tissu vivant qui se remodèle en permanence en réponse au stress

mécanique. Il existe également des variations dans la composition du squelette au fil de

l’âge : le poulain possède ainsi des os peu minéralisés dont la densité minérale augmente

avec l’âge.

1. Déminéralisation osseuse

a. Généralisée

Une déminéralisation osseuse généralisée, peut être reconnue radiographiquement

par un amincissement des corticales, une augmentation de la structure trabéculaire.

Une déminéralisation touchant l’ensemble du squelette reste rare lors d’un examen

locomoteur et est la conséquence d’une mobilisation des minéraux dont l’organisme a

besoin comme lors de gestation, de carence alimentaire, de maladie rénale, …

b. Localisée

Une déminéralisation localisée à un seul membre survient lors d’insuffisance de

sollicitations mécaniques : boiterie, immobilisation du membre, … De par leur finesse, les os

sésamoïdes proximaux sont des indicateurs précoces de déminéralisation localisée.

c. Focale

Des zones de diminution d’opacité osseuse focales peuvent être la manifestation de

diverses atteintes de l’os : infection osseuse, tumeur (très rares chez le cheval), lésion

kystique, fracture, augmentation de pression chronique.

113

d. Bilan

Dans le cas d’une diminution de densité osseuse, il y aura un risque augmenté de

fracture lorsque le squelette sera soumis à des contraintes trop élevées. Les principales

causes sont les suivantes :

- ostéolyse d’origine traumatique (coupes, marges articulaires, attaches

ligamentaires) ;

- insuffisance de sollicitation mécanique (ostéopénie de non usage) ;

- défaut d’appui (anomalie d’aplomb, bouleture, fourbure, …) ;

- immobilisation.

2. Augmentation de production osseuse

Une augmentation de production osseuse se manifestera radiographiquement par

une densité osseuse augmentée et par conséquent une opacité augmentée.

a. Généralisée

Une augmentation généralisée de la densité osseuse peut être la conséquence d’une

intoxication au fluor ou d’une maladie héréditaire comme l’ostéopétrose. Ce genre

d’observation reste très rare chez le cheval.

b. Epaississement de la corticale

Cet épaississement peut être la réponse de l’os aux contraintes mécanique ou

découler d’anomalies de conformation en varus ou valgus, l’épaississement cortical ayant

lieu au niveau des zones subissant une augmentation des contraintes mécaniques.

114

c. Augmentation osseuse localisée

Il est fréquent d’observer ce genre d’images. Il est possible d’observer une sclérose

osseuse : condensation osseuse de l’os sain en réponse à une agression par stimulation

ostéoblastique. La sclérose sous-chondrale constitue par exemple l’un des signes

d’ostéopathie dégénérative.

L’os peut également présenter des ostéophytes ou des enthéopshytes : les

osétophytes sont des productions péri-articulaires résultant d’une atteinte de l’articulation.

Les enthésophytes sont des productions extra-articulaires survenant au niveau des attaches

tendineuses, ligamentaires et capsulaires.

d. Réaction périostée

Il s’agit d’une néoformation osseuse résultant d’une inflammation du périoste ou de

l’endoste. Cette inflammation peut résulter d’une fracture, d’un traumatisme, d’une

infection, d’une inflammation ou d’une tumeur.

3. Fracture

Une fracture ne sera pas tout de suite observable si elle n’est pas déplacée : la phase

ostéoblastique durant 5 à 10 jours, il faudra attendre quelques jours à plus d’une semaine

avant de pouvoir apprécier la fracture à la radiographie. De même, selon l’orientation du

trait de fracture, certaines ne seront visibles que sur des incidences bien particulières et

passer totalement inaperçues sur les autres. Lors des phases secondaires, les fractures se

manifestent par une condensation osseuse, comme lors de shore-shin ou bucked-shin.

4. Infection osseuse

Les infections osseuses sont le plus souvent d’origine hématogène chez le jeune et

d’origine traumatique chez l’adulte. Les signes radiographiques seront différents selon que

l’atteinte de l’os est aigüe ou chronique.

115

a. Ostéomyélite aigue

Les signes sont objectivables à la radiographie environ 10 jours après l’atteinte

clinique. On distingue, dans l’ordre :

- un engorgement des tissus mous et une disparition des lignes de clivage du tissu

musculaire ;

- une diminution de la densité osseuse et périostite 10 jours après l’apparition des

signes cliniques ;

- une ostéolyse par foyer conférant un aspect mité à l’os (2 à 3 semaines après les

signes cliniques ;

- une réaction périostée importante le long du tissu osseux.

b. Ostéomyélite chronique

On distinguera un foyer d’ostéolyse généralement de taille supérieure à 1 cm, une

ostéosclérose et une néoformation osseuse autour de ce dernier et une réaction périostée

continue à bord plus ou moins réguliers.

5. Séquestre osseux

Il s’agit d’un fragment d’os dévitalisé, isolé du reste de l’os, généralement

accompagné d’un trajet fistuleux. Les causes de formation de séquestre sont à la fois

traumatiques et infectieuses. Cette formation peut être lente à se développer après la

guérison de la plaie.

Le premier signe radiographique est l’apparition de lignes radio transparentes dans

l’épaisseur de la corticale 10 à 12 jours après le traumatisme. En l’absence de guérison, ces

lignes s’étendent et s’élargissent pour isoler le séquestre. Dans la période d’état, l’image

radiographique montre :

- le séquestre de densité osseuse normale ;

- une zone ostéolytique périphérique : l’involucrum ;

- cette zone elle-même est entourée d’un halo de sclérose ;

116

- une réaction périostée importante jusqu’à 10 mm d’épaisseur, plus ou moins

régulière.

6. Atteintes superficielles

On distingue les périostites qui sont d’origine traumatique directe ou accompagnent

une lésion de la corticale osseuse. Elles sont fréquentes au niveau des os superficiels

(métacarpes, métatarses, tibia, radius). L’ostéopathie hypertrophiante ou syndrome de

Cadiot-Ball est très rare chez le cheval.

7. Lésions articulaires

L’analyse radiographique d’une articulation passe par une évaluation des structures

intra et extra-articulaires.

Au niveau intra-articulaire il faudra observer les contacts entre les surfaces

articulaires à la recherche d’une éventuelle subluxation. L’interligne articulaire est

également importante à évaluer : celle-ci peut être irrégulière lors de subluxation et

diminuée lors d’arthropathie dégénérative.

Au niveau extra-articulaire il faudra rechercher une éventuelle distension de la capsule et un

gonflement des tissus mous avoisinants.

8. Kystes osseux

Un kyste osseux apparait comme une géode claire au sein de l’os, généralement

entourée d’une réaction de sclérose en son pourtour. Les kystes sont souvent proches d’une

articulation et peuvent ou non être associés à une boiterie.

117

9. Ostéochondrose (Wright & Minshall, 2005)

L’ostéochondrose est considérée comme un défaut d’ossification endochondrale

mais il semblerait qu’elle puisse aussi résulter d’une lésion primaire sous-chondrale. Les

articulations fémoro-patellaire, tarso-crurale, métacarpo-phalangienne, métatarso-

phalangienne et scapulo-humérale sont les plus couramment affectées chez le cheval. Les

signes radiographiques sont les suivants :

- Présence de fragments ostéochondraux

- Altération du contour de la surface articulaire

- Plages claires irrégulières au sein de l’os sous-chondral

- Sclérose au pourtour de ces plages

- Remodelage secondaire de l’articulation.

Les lésions ne sont pas toujours significatives cliniquement et doivent être

interprétées en fonctions des symptômes.

10. Arthropathie dégénérative (Tamba, 2005)

Les signes radiographiques d’une arthropathie dégénérative doivent être recherchés

sur toute articulation suspecte car il s’agit d’une affection survenant fréquemment à la suite

d’un défaut de fonctionnement biomécanique correct de l’articulation :

- Ostéophytes péri-articulaires

- Sclérose osseuse sous-chondrale, perte de l’aspect trabéculé ;

- Plages claires sous-chondrale ;

- Kystes osseux sous-chondraux ;

- Rétrécissement de l’interligne articulaire ;

- Distension de la capsule articulaire ;

- Gonflement des tissus mous péri-articulaires.

Tous ces signes ne sont pas systématiquement présents lors d’arthropathie

dégénérative. Les ostéophytes doivent également être différenciés des enthésophytes.

118

F. adiographie

La radiographie est quasiment systématiquement indiquée lors de l’investigation

d’une région suspecte. Elle est cependant peu précise pour évaluer les tissus mous, la

superposition des structures peut masquer des lésions, même lors de la multiplication des

vues possibles. Son couplage à l’échographie permet d’avoir une bonne évaluation de

l’ensemble tissus mous/tissu osseux cependant.

119

II. Echographie

L’échographie est un examen de choix pour évaluer les tissus mous : elle est facile à

réaliser car non invasive. Elle demande cependant de bonnes connaissances techniques et

anatomiques de la part du vétérinaire. L’échographie est très complémentaire à la

radiographie pour l’évaluation d’une région suspecte c’est pourquoi elle devrait être

systématiquement être réalisée conjointement à une radiographie.

A.

L’échographie est une technique d’imagerie basée sur l’émission/réception

d’ultrasons. Le principe consiste à générer une série de pulses d’ultrasons au sein du cheval.

Ces ondes ultrasonores seront réfléchies par les divers tissus et réenregistrées par l’appareil

qui transformera le signal sonore en signal électrique puis en image sur l’écran.

Les échos reçus peuvent être traduite en amplitudes, il s’agit du mode A qui reste

surtout historique et utilisé en ophtalmologie. Le mode B (brillance) consiste à traduire

l’intensité des échos en teintes allant du noir au blanc. Le noir correspond à une absence de

réflexion tandis que le blanc représente une très forte réflexion. Toutes les teintes de gris

intermédiaires sont possibles.

La réalisation d’une échographie nécessite ainsi un milieu favorable à la propagation

des ultrasons : contact de la sonde avec le cheval, tonte de la zone, humidification de la peau

(dans l’idéal 10 min avant) et application de gel échographique. La compréhension du

mécanisme physique permet de comprendre également les artefacts fréquents.

B.

1. Pénétration et atténuation

L’intensité du faisceau ultrasonore est atténuée avec la distance qu’il a parcourue.

Cette atténuation est exponentielle et dépend d’une part de la fréquence d’émission (la

120

pénétration diminue lorsque la fréquence augmente) et d’autre part du milieu de

propagation.

Le coefficient d’absorption est maximal pour les milieux à très faible ou très forte

cohésion moléculaire ; c’est le cas de l’air et l’os. L’eau est en revanche un très bon

conducteur de son, ce qui explique sa large utilisation en échographie pour former une

fenêtre d’exploration.

L’atténuation augmente avec la fréquence de la sonde utilisée. Elle est estimée en

générale à 0.5 à 1 dB/cm/MHz.

2. Résolution de l’image échographique

La résolution d’une image correspond à sa capacité à distinguer deux points proches :

la radiographie reste l’un des examens d’imagerie présentant la meilleure résolution par

exemple.

La résolution latérale correspond à la distance minimale nécessaire entre deux

surfaces réfléchissantes, situées à la même profondeur et perpendiculaires au faisceau

ultrasonore, pour qu’elles forment deux échos séparés. Elle est égale au diamètre du

faisceau ultrasonore, elle-même dépendant de la qualité de focalisation des ultrasons dans

le transducteur (elle est meilleure pour les longueurs d’onde faibles, donc lorsque la

fréquence augmente).

De façon similaire, la résolution axiale correspond la distance minimale, sur l’axe du

faisceau, séparant deux surfaces réfléchissantes produisant deux échos distincts. Elle est

fonction de la longueur d’onde des ultrasons : elle est meilleure lorsque la longueur d’onde

diminue, c'est à dire lorsque la fréquence des ultrasons augmente.

121

C.

L’échographie permet une étude morphologique des diverses structures de la zone

étudiée, d’évaluer leurs tailles, formes, échogénicités, orientations et l’aspect des tissus

avoisinants.

Il est important de bien connaître l’aspect échographique normal de chaque

structure afin de distinguer une image normale d’une pathologique.

D. Technique échographique

1. Matériel

Le type de sonde ainsi que la longueur d’onde utilisée dépendra de la région à

échographier : une sonde sectorielle sera par exemple utilisée lors de réalisation de coupes

transversales alors que la sonde linéaire sera préférable pour les coupes longitudinales.

Remarquons qu’un seul type de sonde avec un spectre de fréquences limité ne permettra

pas une évaluation correcte de l’appareil musculo-squelettique du cheval.

Fréquence des ultrasons Profondeur d'exploration maximale

2,5 - 3,5 MHz > 15cm 5 MHz 10 cm

7,5 MHz 5 - 6 cm 10 - 12 MHz 2 - 3 cm

2. Préparation du cheval

Il peut être préférable de tranquilliser le cheval pour éviter d’effectuer l’examen dans

la précipitation et de risquer des dommages matériels ou humains. Attention cependant aux

chevaux en compétition car les délais dopages devront être respectés. La zone à

échographier doit être tondue (lorsque c’est possible) et nettoyée à la suite de quoi elle sera

généreusement humidifiée et enduite de gel échographique.

Tableau 7 : fréquence sonore en fonction de la profondeur tissulaire étudiée

122

E. membres2012)

L’extrémité distale des membres pourra être aisément étudiée de manière

approfondie compte tenu de la conformation anatomique du cheval. Les membres

thoracique et pelvien pourront respectivement être investigués dans les détails du

carpe/tarse au pied : tendon fléchisseur superficiel du doigt, tendon fléchisseur profond du

doigt, ligament suspenseur du boulet, bride carpienne/tarsienne, ligaments collatéraux

notamment.

L’extrémité proximale pourra également être investiguée afin d’explorer l’aspect de

divers muscles et tendons. Ces échographies, bien que riches d’informations, restent

cependant moins réalisées que celles de l’extrémité distale des membres, qui doivent être

connues de tout vétérinaire pratiquant dans le domaine de la locomotion.

F. E cho

L’échographie est devenue un examen d’imagerie très utile pour évaluer les lésions

articulaires. Comme toujours, elle est très complémentaire à la radiographie pour peu que le

Figure 34 : dénomination des régions distales du membre antérieur et postérieur. (Ross & Dyson, 2011)

123

praticien possède le matériel, les connaissances et la technicité requises pour évaluer

convenablement les diverses structures.

1. Indications (Redding, 2001)

Les indications à la réalisation d’un examen échographique d’une articulation sont les

suivants :

- distension synoviale ;

- gonflement local ;

- les douleurs lors des manipulations de l’articulation ;

- une anesthésie intra-articulaire positive ;

- présence de signes radiographiques ;

- zone chaude à la scintigraphie.

2. Matériel et préparation

Comme lors de toute échographie, la zone à investiguer doit être tondue, lavée et

humidifiée avec de l’eau chaude. Une sonde linéaire de haute résolution (7.5 à 13 MHz) sera

utilisée pour les zones superficielles tandis qu’une sonde convexe de 2.5 à 5 MHz sera plus

adaptée aux régions profondes.

L’articulation controlatérale sera également préparée afin de pouvoir comparer les

images entre elles et conférer ainsi une meilleure spécificité et sensibilité à l’examen.

3. Réalisation pratique (Hoegaerts, et al., 2005) (Cauvin, et al., 1996)

Cet ouvrage n’a pas la prétention de décrire la technique échographique de chaque

articulation. Nous prendrons l’exemple de l’articulation du grasset pour illustrer la démarche

échographique ainsi que les images de référence.

124

La région du grasset étant pluri-articulaire, chacune des articulations sera évaluée au

niveau de ses faces accessible : fémoro-patellaire, fémoro-tibiale latérale et fémoro-tibiale

médiale.

L’articulation fémoro-patellaire sera préférablement investiguée avec une sonde

linéaire de 5 à 10 MHz surmontée d’un pad. Les trois ligaments fémoro-patellaires, les

cartilages fémoraux trochléaires, et les surfaces osseuses sous-chondrales seront étudiées.

Pour ce qui est des articulations fémoro-tibiales, le même matériel échographique

sera nécessaire. Au niveau de l’articulation médiale il faudra évaluer le ligament collatéral

médial, le récessus médial de l’articulation, l’aspect échographique du liquide synovial

(totalement anéchogène normalement), le ménisque médial et les surfaces osseuses

articulaires. A noter que le récessus médial de l’articulation fémoro-tibiale est le reflet du

grasset entier, car sa taille et contenu sont influencés par la présence de lésions.

Latéralement il est possible d’observer les structures similaires. Il est recommandé de

réaliser l’échographie sur membre en appui mais également sur membre fléchi afin

d’analyser toutes les structures observables : ainsi les ménisques ne sont observables que

sur membre en flexion.

Les clichés qui suivent ne constituent pas l’investigation complète du grasset, ils

permettent néanmoins au lecteur de visualiser l’aspect échographique classique d’une

articulation et de diverses structures dignes d’intérêt : os, tendon, ligament, liquide synovial,

ménisques, …

125

a. Face crâniale du grasset


1 : lèvre médiale de la trochlée fémorale

2 : apex de la patella

3 : ligament patellaire intermédiaire

4 : fascia patellaire

5 : peau


1a : gorge de la trochlée fémorale

1b : lèvre médiale de la trochlée fémorale

1c : lèvre latérale de la trochlée fémorale

2 : cartilage articulaire

3 : corps adipeux infra-patellaire

4 : ligament patellaire intermédiaire


6 : peau

Figure 37 : coupe transversale de la face crânio-latérale du grasset (côté médial à gauche)

1 : lèvre latérale de la trochlée fémorale


3 : récessus latéral de la synoviale fémoro-patellaire

4 : ligament patellaire latéral

5 : peau

126

b. Face latérale

c. Face médiale

Figure 38 : coupe transversale de la face latérale du grasset (côté crânial à gauche)

1 : lèvre latérale de la trochlée fémorale

2 : récessus latéral de la synoviale fémoro-patellaire

3 : ligament patellaire latéral

4 : peau

Figure 39 : coupe longitudinale de la face latérale du grasset (extrémité proximale à gauche)

1 : fémur

2 : tibia

3 : tendon poplité

4 : ménisque latéral

5 : ligament collatéral latéral de l’articulation fémoro-tibiale

6 : peau

Figure 40 : coupe transversale de la face crânio-médiale du grasset (côté crânial à gauche)

1 : patella

2 : fémur

3 : fibro-cartilage parapatellaire médial

4 : peau

127

d. Articulation fléchie

Figure 41 : coupe longitudinale de la face médiale du grasset (extrémité proximale à gauche)

1 : condyle fémoral médial

2 : condyle tibial médial

3 : ménisque médial

4 : ligament collatéral médial de l’articulation fémoro-tibiale

5 : peau

Figure 42 : coupe transversale de la face crânio-médiale du grasset en flexion (côté médial à gauche)

1 : condyle fémoral médial


3 : corps adipeux infra-patellaire


5 : peau

Figure 43 : coupe transversale de la face crânio-latérale du grasset en flexion (côté médial à gauche)

1 : condyle tibial latéral


2b : insertion crâniale

3 : muscle troisième péronier

4 : muscle extenseur long du doigt

5 : fascia jambier

6 : peau

128

G. 2003)

La réalisation d’une échographie de la région cervicale et du dos demande une

connaissance approfondie de l’anatomie transverse et longitudinale de ces régions. Il est

possible d’observer les muscles avoisinants sans pouvoir facilement distinguer les différents

groupes musculaires. L’espace articulaire est facilement identifiable sur les images

échographiques ce qui permet à la fois d’évaluer l’aspect de l’articulation voire de réaliser

des injections intra-articulaires.

H.

L’échographie transrectale permet d’évaluer la jonction lombo-sacrale ; en déplaçant

la sonde de part et d’autre latéralement à la vertèbre craniale il est possible d’observer le

départ des nerfs de L6. En tournant la sonde d’environ 30°, on observe les marges

articulaires des articulations sacro-iliaques qui peuvent être le siège de remaniements

osseux.

Figure 44 : coupe longitudinale de la face crâniale du grasset en flexion (extrémité proximale à gauche)

1 : condyle fémoral latéral

2 : condyle tibial latéral

3 : ligament croisé caudal

4 : ligament croisé crânial

5 : synoviale fémoro-tibiale


7 : peau

129

I. 1998)

Il est possible d’évaluer l’aspect des muscles à l’échographie : en temps normal le

muscle apparait hétérogène et marbré. Cet examen permet de mettre en évidence une

blessure musculaire, une myosite, la présence de masses, hématomes, etc… L’échographie

demeure également un examen de choix pour évaluer l’évolution d’une blessure telle

qu’une déchirure ou encore un hématome.

Remarquons enfin qu’il est possible d’observer d’autres structures plus diverses à

l’échographie :

- certains nerfs (nécessite un matériel de qualité) ;

- blessure pénétrante afin d’évaluer sa profondeur et l’intégrité des tissus

avoisinants ;

- recherche de corps étrangers ;

- os (évaluation de la régularité de sa surface notamment).

130

III. Examen scintigraphique

La scintigraphie est une technique d’imagerie relativement récente basée sur la

détection de radioactivité dans le corps de l’animal grâce à une gamma-caméra, après

injection intraveineuse d’un produit radioactif. En médecine vétérinaire la scintigraphie

osseuse reste la plus souvent réalisée.

A.

La scintigraphie repose sur l’utilisation de radio-isotopes (le plus souvent du

Technétium) qui seront injectés par voie intraveineuse au sein du cheval. Pour la

scintigraphie osseuse, cet isotope est couplé à une molécule appelée « traceur » à savoir un

biphosphonate (type Tildren ND) car il est ostéotrope et se fixe préférentiellement sur l’os

métaboliquement actif (Poircuitte, 2004). La quantité de radio-isotopes fixés sera objectivée

par le nombre de désintégrations, elle-même corrélée au nombre de rayonnements gamma

émis. Ces rayonnements sont mesurés par la gamma caméra.

Le Technétium est le radio-isotope le plus utilisé en imagerie médicale nucléaire car

ses caractéristiques physiques sont presque idéales pour cet usage :

- la demi-vie de 6 heures est assez longue pour permettre de suivre les processus

physiologiques d'intérêt, mais assez courte pour limiter l'irradiation inutile ;

- l'énergie du photon gamma de 140 keV est idéale car assez énergétique pour

traverser les tissus vivants, mais suffisamment faible pour pouvoir être détectée

commodément ;

- l'émission de photons gamma est élevée (88,5 photons pour 100 désintégrations).

Peu de particules non pénétrantes sont émises, d'où une plus faible absorption

d'énergie par les tissus vivants.

131

B.

La scintigraphie osseuse est un examen très sensible et précoce, de ce fait ses

indications sont les suivantes :

- poser un diagnostic précoce avant que les atteintes et lésions ne soient

radiologiquement objectivables ;

- une boiterie qui n’a pas pu être localisée à une région (anesthésies diagnostiques

irréalisables, par exemple, en raison du comportement dangereux du cheval, ceci

est surtout le cas sur les membres pelviens) (Tucker, et al., 1998) ;

- une boiterie dont l’origine a été localisée mais pour laquelle les examens

radiographiques ou échographiques n’ont pas permis d’en déterminer la cause et

la région corporelle ne peut être placée dans l’IRM (comme le grasset) ;

- une boiterie avec suspicion de fracture car l’examen dynamique et les analgésies

diagnostiques sont déconseillées. De plus, il est impossible de mettre en évidence

une fracture récente non déplacée ;

- une boiterie complexe, c'est-à-dire impliquant plusieurs membres ;

- une boiterie pour laquelle les résultats d’anesthésies diagnostiques sont

équivoques ;

- une boiterie intermittente ou qui ne s’exprime qu’à grande vitesse ou un défaut

de performances.

De plus, la scintigraphie permet de suivre de manière plus fine que la radiographie la

cicatrisation osseuse. Elle peut également être utilisée pour donner la signification clinique

de certaines affections comme l’ossification des cartilages ungulaires du pied. La

scintigraphie présente également un intérêt pour l’imagerie de la colonne vertébrale et du

bassin.

132

C.

A t0, on réalise une injection dans la veine jugulaire du radiotraceur (Technétium lié

au diphosphonate) grâce à un cathéter.

1. Pharmacocinétique du radiotraceur

Le radiotraceur va tout d’abord se situer au sein des vaisseaux sanguins : c’est la

phase vasculaire qui a lieu de 0 à 2 minutes après l’injection. Il va ensuite diffuser dans les

muscles et les tissus mous à partir de deux minutes après l’injection : c’est la phase « tissus

mous » exclusivement entre 2 et 10 minutes. Enfin, le produit va se concentrer dans l’os

entre 10 et 20 minutes après l’injection : c’est la phase osseuse. De ce fait il y a

superposition des phases osseuses et « tissus mous » après 10 minutes.

2. Réalisation des acquisitions

La réalisation des acquisitions se fait à l’aide de la gamma-caméra, sur cheval

préalablement tranquillisé.

Durant la phase osseuse, le biphosphonate va se lier aux cristaux d’hydroxyapatite de

l’os, au sein duquel le technétium sera alors détecté. De ce fait, il est préférable de réaliser

les acquisitions durant la phase osseuse entre 2 et 3 heures après l’injection. Dans certains

cas, elles sont effectuées durant la phase « tissus mous » mais cela reste rare car le plus

souvent les lésions chroniques de ces tissus n’entraînent pas de modifications de la fixation

de Technétium (DYSON et MURRAY, 2007) et l’échographie est nettement plus sensible pour

la détection de lésions des tissus mous. De plus la réalisation d’acquisitions durant la phase

tissus mous peut nuire à la phase osseuse puisque le cheval doit alors être tranquillisé peu

après l’injection avec pour conséquence une moins bonne perfusion périphérique et parfois

une élimination rapide du Technétium puisque les Alpha-2-agonistes sont diurétiques.

133

3. Distribution du radiotraceur

L’augmentation de la fixation du technétium est liée à une activité ostéoblastique, à

un métabolisme ou à une irrigation sanguine importante de l’os. Ainsi les images

scintigraphiques sont d’avantage le reflet d’une fonction physiologique que d’une structure

anatomique. De ce fait, cet examen n’a pas une résolution suffisante pour déterminer la

cause spécifique d’une augmentation de fixation et il doit être suivi d’autres investigations

complémentaires telles que la radiographie et l’échographie ou l’IRM. Néanmoins certaines

images peuvent être indicatrices d’affections spécifiques (TWARDOCK, 2001). Les

modifications métaboliques de l’os survenant souvent avant les changements structuraux, la

scintigraphie permet alors de détecter précocement certains processus pathologiques

(fractures de fatigue), ce qui en fait un examen particulièrement sensible pour le diagnostic

des affections osseuses.

4. Lecture des images (Woaye-Hune, 2006)

Il est possible de réaliser des acquisitions sur corps entier ou sur une région plus

localisée. Lors de l’acquisition des images, le nombre de rayonnements émis par chaque

région corporelle est mesuré et transcrit sous forme d’une échelle de niveaux de gris ou

d’une palette de couleurs appelée L.U.T. (Look Up Table).

Figure 45 : réalisation d’acquisition sur un antérieur droit au sein de l’université de Pennsylvanie au New Bolton Center.

134

L’interprétation qualitative des images est la plus pratique et reste la technique la

plus couramment utilisée. Une fois de plus chaque région devra être comparée avec son

homologue controlatérale. Les points dits « chauds » seront les zones où la concentration en

radio-traceur sera augmentée par rapport à la région controlatérale voire à l’ensemble de

l’animal en cas d’atteinte bilatérale.

Figure 46 : image scintigraphique de la région du garrot montrant des points chauds au niveau des processus épineux thoracique. Noter l’échelle des teintes sur la droite.

Cliché CIRALE.

Figure 47 : images de scintigraphie osseuse chez un pur-sang de deux ans. Noter les remaniements physiologiques importants au niveau des physes qui ne doivent pas être pris pour des atteintes de l’os.


135

5. Protection du personnel

En ce qui concerne la radioprotection, le Technétium a l’avantage d’avoir un temps

de demi-vie assez court. Son élimination est donc rapide et quasiment totale après 3 jours.

Durant ce laps de temps, le cheval est radioactif et tout contact direct doit donc être évité

afin de limiter l’exposition d’humains à la radioactivité. De plus, en raison de l’élimination

urinaire du technétium, l’urine est radioactive durant les premiers jours. Il faut donc prendre

des précautions pour éviter le contact avec la litière souillée par l’urine. Pour cela, le cheval

doit être hospitalisé en boxe durant cette période. Les contacts sont minimisés et lorsqu’ils

sont nécessaires des gants, des surbottes et un tablier de plomb doivent être portés. Les

locaux doivent également être adaptés et suivre les indications et obligations préconisées

par l’IRSN (comme la mise ne place de panneaux signalétiques).

Figure 48 : image scintigraphique de la région distale du membre du montrant un points chauds au niveau du boulet gauche. La radiographie ne révèle quant à elle encore aucune anomalie. Noter la différence avec le boulet controlatéral.

Cliché CIRALE.

136

6. Limites de la scintigraphie

a. Manque de spécificité

La limite principale de la scintigraphie est son manque de spécificité qui peut être

compensé par une interprétation raisonnée et une utilisation conjointe de vues

radiographiques ou échographiques. Des vues scintigraphiques complémentaires (obliques,

dorsales du carpe en flexion) peuvent être également réalisées en complément des deux

vues traditionnelles (dorso-palmaire/plantaire et latéro-médiale) afin de localiser

précisément le site de fixation.

La scintigraphie a également l’inconvénient de ne pas détecter les lésions de tissus

mous lors de la phase osseuse. Lors de la réalisation d’anesthésie diagnostique peu avant la

scintigraphie, une augmentation de la fixation peut être visualisée en regard du site

d’injection. Pour éviter de confondre ceci avec une lésion, il faut évaluer la fixation du

radioisotope sur deux vues orthogonales afin de localiser le point chaud (sur l’os ou dans les

tissus mous) et d’interpréter les images en conséquence.

b. Chevaux candidats

La scintigraphie doit être réalisée en choisissant les patients. Elle peut être

décevante, notamment chez les chevaux au repos ou ayant un faible niveau d’activité. A

l’inverse, elle est clairement indiquée chez les jeunes chevaux de course qui subissent des

contraintes et des impacts osseux marqués.

La scintigraphie peut également s’avérer décevante dans le cas d’affections ostéo-

articulaires chroniques peu inflammatoires (ROSS, 2005).

c. Accès à la technique

La scintigraphie reste une technique des moins accessibles car elle présente un coût

et des contraintes importantes. De plus, seuls la clinique vétérinaire équine de chantilly et le

CIRALE disposent des installations nécessaires à la scintigraphie à l’heure actuelle en France.

137

IV. Imagerie par résonance magnétique

L’examen d’imagerie par résonance magnétique (IRM) permet d’évaluer à la fois les

structures osseuses et les tissus mous avec une résolution importante (Audigié, et al., 2007).

A l’heure actuelle il est devenu possible d’effectuer cet examen sur cheval anesthésié mais

également sur cheval debout, ce qui en fait un examen intéressant et beaucoup moins

contraignant qu’auparavant. Compte tenu de l’expérience que peut nécessiter

l’interprétation des images la lecture d’IRM ne sera pas développée ici, nous verrons plutôt

les avantages, limites et indications d’un tel examen.

A. physique

Il s’agit d’exploiter un champ magnétique, créé par un aimant qui peut prendre

différentes formes, le plus souvent un tunnel ou bien 2 disques représentant les deux pôles

de l'aimant. Une fois la région d'intérêt placée dans l'aimant, les atomes les plus abondants

de tout corps vivant, ceux d'hydrogène (H+) s'orientent alors en majorité dans le sens du

champ magnétique. On applique ensuite une longue série de stimulations qui viennent

perturber l'état d'alignement des atomes d'hydrogène. En reprenant leur place alignée à

chaque fois que l'on cesse les stimulations, les atomes renvoient un signal qui est enregistré.

Ce signal est codé dans l'espace et permet la reconstruction d'images en noir et blanc.

La grande force de l'IRM est de permettre de faire varier l'apparence des tissus et des

lésions en fonction des paramètres des stimulations qui sont appliquées. Ainsi, on peut

déterminer avec précision quelle est la nature exacte et le caractère sain ou pathologique

des tissus examinés. Deux grandes natures de séquences sont acquises: celles selon le

principe de l'écho de spin, et celles selon le principe de l'écho de gradient. Une deuxième

distinction est opérée selon le contraste tissulaire obtenu, dit de pondération T1 ou de

pondération T2. Ensuite, un nombre incalculable et en constante progression de séquences a

été mis au point afin d'imager au mieux tel ou tel tissu comme le cartilage ou le tissu osseux.

138

B.

Que ce soit sur cheval debout ou couché, il est important que ce dernier soit

parfaitement immobile au moment de l’acquisition. La réalisation d’un IRM nécessite de

posséder une cage de faraday supprimant la présence de champ magnétique parasite ; de

même l’animal ne doit porter aucune partie métallique (morceaux de clous restant, licol,

etc…). Diverses séquences peuvent être réalisées au besoin de l’imageur les plus connues

étant les séquences T1 et T2.

Tissu T1 T2 Cavité médullaire / os trabéculaire Blanc Gris

Os cortical Noir Noir Cartilage articulaire Blanc Gris Tendon / ligament Noir Noir

Graisse Blanc Gris Membrane synoviale Gris Blanc

Liquide synovial Noir Blanc

C. 2012)

1. Avantages

L’examen d’IRM permet de visualiser toutes les tissus mous selon des orientations

multiples ainsi que les os sans pour autant voir leur structure interne. Les cartilages peuvent

également être étudiés via un examen d’IRM seulement avec un aimant haut champ

cependant. Le dernier avantage mais pas des moindres est que l’IRM est non invasif.

Tableau 8 : aspect des différents tissus sur les séquences T1 et T2 lors d’un examen d’imagerie par résonnance magnétique.

Adapté d’après (Mair, et al., 2005).

139

2. Limites

La principale limite de l’IRM reste le prix de l’équipement bien que la possibilité de le

réaliser debout l’ait rendu plus abordable.

Toutes les zones du cheval ne pourront également pas être évaluées compte tenu de sa

taille et l’interprétation des images nécessite également une grande expérience.

D. Indications

Un examen d’IRM est indiqué lorsque la zone responsable de douleur aura été mise

en évidence mais que la radiographie et l’échographie n’auront pas permis d’observer de

lésion évocatrice. Il permet également d’obtenir une vision plus détaillée des lésions et de

poser un pronostic plus précis.

L’IRM présente un intérêt tout particulier pour l’examen du pied car l’échographie ne

donne que peu d’informations compte tenu de la présence de la boite cornée. Ainsi, un

cheval avec une anesthésie digitale proximale positive ne présentant pas de lésion

radiographique évocatrice sera un candidat de choix pour la réalisation d’un examen d’IRM

(Vallance, et al., 2012).

Un IRM n’est également indiqué que lorsque le siège de la boiterie a été

correctement identifié, le prix et la difficulté d’interprétation de ce genre d’examen ne

permet pas en effet de réaliser des clichés à l’aveugle : la clinique prime avant tout tant

pour l’indication de l’examen que pour la signification réelle des signes observés à

l’imagerie.

140

V. Examen tomodensitométrique

L’examen tomodensitométrique, également appelé scanner, consiste en une

réalisation de radiographies sur 360° qui une fois assemblées forment des images en 3

dimensions de la région étudiée. Cette image présentera de nombreuses nuances de densité

permettant d’analyser en détail les structures scannées. Le scanner est une technique

d’imagerie avancée qui est devenue accessible depuis peu à la médecine vétérinaire.

A.

1. Recherche d’atteinte osseuse (Hanson, et al., 1996)

La grande force du scanner réside dans le fait qu’il permette une évaluation très

précise du tissu osseux. L’élimination de la superposition permet de détecter des

changements même infimes au niveau du tissu osseux : ostéolyse ou prolifération. Le

scanner reste ainsi l’examen de choix pour évaluer les fractures, les caractériser et poser un

pronostic.

Figure 49 : reconstruction tridimensionnelle de l’articulation métacarpo-phalangienne montrant une atteinte de l’os sous-chondral et la présence d’ostéophytes péri-articulaires.


141

2. Diagnostic de boiterie

Le scanner permet d’obtenir plus d’indications que les examens d’imagerie classique

(radiographie et échographie) mais le praticien devra bien peser le pour et le contre avant de

conseiller la réalisation d’un scanner chez un cheval. En effet cet examen ne peut être

réalisé partout et nécessite une anesthésie générale pour obtenir des images de qualité. Par

ailleurs, il n’est pas possible de « scanner à l’aveugle » c'est-à-dire que le lieu où siège la

douleur devra être identifié afin de ne pas avoir à scanner de nombreuses régions du cheval.

B.

Tout comme l’IRM, le scanner fait partie des techniques d’imagerie avancées

permettant d’obtenir un diagnostic plus fin mais présentent certains inconvénients d’un

point de vue pratique. Ces deux techniques sont complémentaires mais peu réalisables sur

une même région compte tenu des nombreuses contraintes que cela engendre. Le scanner

est préférable pour investiguer la tête, les cervicales, les fractures complexes, les régions

proximales du membre (carpe, tarse et grasset) et les poulains et il est également possible

de reconstruire une image en trois dimensions par la suite. L’IRM est préférable pour le

cerveau, le pied et le boulet et les tissus mous en général (Biggi & Dyson, 2010)

(Bischofberger, et al., 2006)

142

VI. Examen visuel par scopie

Ce type d’examen regroupe l’arthroscopie, la ténoscopie et la bursoscopie.

L’arthroscopie reste la plus pratiquée parmi les trois.

A. Arthroscopie

1. Avantages (Smith & Wright, 2012)

L’arthroscopie permet d’avoir une vue complète de l’articulation : surfaces

articulaires, liquide synovial, membrane synovial, ligaments intra-articulaires, ménisques, …

et ce en créant une effraction minime ce qui diminue les complications septiques et

cicatricielles. Enfin l’arthroscopie présente le gros avantage de pouvoir être curative lors de

certaines affections comme l’ostéochondrite dissécante.

2. Inconvénients

La réalisation d’une arthroscopie nécessite un équipement important : bloc

chirurgical et instruments assez chers. Par ailleurs, la vidéo-arthroscopie n’est pas obligatoire

mais permet un confort de travail bien supérieur tout en offrant la possibilité de pouvoir

stocker des images de l’intervention.

L’arthroscopie nécessite un chirurgien expérimenté car la manipulation des

instruments en ayant le regard fixé sur le moniteur sans créer de dommages à l’animal ou au

matériel nécessite de longues heures d’accommodation et d’observation voire de réalisation

sur cadavres.

3. Indications

L’arthroscopie est souvent un examen complémentaire de second choix permettant

d’évaluer en direct les lésions intra articulaires telles que des avulsions cartilagineuses. Son

143

Figure 50 :

- en A vue radiographique d’un petit fragment d’ostéochondrose au niveau de la rangée carpienne distale ;

- en B aspect arthroscopique de ce fragment ;

- en C aspect arthroscopique de l’articulation après débridement.

(McIlwraith, et al., 2005).

indication reste principalement à but curatif lors d’exérèses de fragments d’ostéochondrose,

de débridements et curetages, de synovectomies partielles ou encore d’incisions

d’adhérences.

4. Réalisation

Le ou les sites articulaires à investiguer seront préparés chirurgicalement : tonte,

nettoyage et asepsie. Différentes voies d’accès sont possibles en fonction de l’articulation et

resteront décidées selon la convenance du chirurgien et des résultats d’imagerie pré-

opératoire.

144

B.

La ténoscopie est la technique consistant à introduire un endoscope au sein d’une

gaine tendineuse alors que la bursoscopie consiste à explorer une bourse synoviale. Compte

tenu des techniques échographiques, ces techniques semblent de nos jours peu

avantageuses car invasives et ne permettant de juger de l’intérieur des structures lors de

ténoscopie par exemple.

La ténoscopie peut se réaliser principalement au sein de la gaine des fléchisseurs et

de la bride carpienne. La bursoscopie peut quant à elle être pratiquée au sein de la bourse

intertuberculaire et de la bourse naviculaire. Les principales indications de ces examens sont

d’ordre curatif tel que la prise en charge d’une atteinte infectieuse ou une exérèse de corps

étranger. L’intérêt diagnostic est très faible face à un examen tel que l’échographie car non

invasif, plus accessible, moins cher et plus facile à réaliser.

145

Figure 51 : aspect du cheval en image thermographique. Noter les différences de température en fonction de leur proximité avec de gros vaisseaux et de leur métabolisme.

VII. Thermographie

La thermographie consiste à mesurer à l’aide d’une caméra thermique le

rayonnement infrarouge de différentes zones du cheval : elle permet de détecter les

différences de température de ce qui est visé avec les alentours mais également de mesurer

la température absolue de la zone investiguée. Tout comme la lumière visible, les

rayonnements infrarouges peuvent être enregistrés, collectés et transformés en signal

électronique : c’est ce que permettent de réaliser les caméras thermiques.

A.

1. Principe exploité

La température de la peau est le reflet direct de la circulation sous-jacente ainsi que

le métabolisme tissulaire. Ainsi une « cartographie thermographique » normale coïncide

avec la circulation sanguine superficielle de l’animal et ses contours corporels. Ainsi une

connaissance des variations normales de température sur la surface corporelle du cheval

sont à connaître pour interpréter les enregistrements de chevaux amenés en consultation.

Par exemple la peau recouvrant les vaisseaux principaux ou à leurs proximités

apparaitront plus chauds tandis que les aires distantes d’un vaisseau apparaitront plus

froides comme les faces métacarpienne/métatarsienne dorsales.

146

2. Prérequis

Il faut savoir que de nombreux facteurs peuvent influencer le rayonnement

infrarouge du cheval en modifiant sa quantité de chaleur reçue et perdue (rayonnements

solaires, tonte, bande de repos), son flux sanguin ou son métabolisme cellulaire.

Un environnement contrôlé est essentiel pour la réalisation d’une acquisition

optimale car de nombreux facteurs peuvent perturber les résultats de l’examen. La

thermographie doit se réaliser si possible dans une salle sans courant d’air d’une

température inférieure à 30°C (si possible aux alentours de 20°C). L’animal doit avoir une

peau et des poils secs et propres, ne doit pas avoir été pansé dans les deux heures précédant

l’examen. Aucun agent topique ne doit avoir été appliqué et les résidus doivent être lavés 24

heures auparavant. L’animal ne doit pas avoir subi de physiothérapie dans les 24h précédant

l’examen ni de manœuvre d’acupuncture dans la semaine le précédent. Il faut éviter de

tranquilliser le cheval (surtout avec des alpha 2) car cela modifie le flux sanguin et la

perfusion superficielle.

3. Examen d’un cheval

La thermographie est un examen non-invasif se réalisant à distance de l’animal. Sur

cheval debout, différentes vues seront réalisées : vue de la région pectorale crâniale, vue

latérale du cou et du corps, vue latérale des hanches, vue dorsale des quatre membres, vue

caudale des membres pelviens, vue de la région des processus épineux thoraciques,

lombaires et sacraux. Pour les aires suspectes les mesures seront répétées au moins une

minute après. (Turner, 1991)

B.

Tout comme la scintigraphie, la thermographie reflète une fonction physiologique de

l’animal évalué. De ce fait elle présente une faible spécificité car elle ne permet pas de

distinguer l’étiologie de l’affection de l’animal. C’est un examen qui s’avère sensible dans la

147

détection des lésions aigües mais qui s’avère inefficace sur les lésions chroniques. (Cetinkaya

& Demirutku, 2012).

La thermographie permet de mettre en évidence des « points chauds » lors de

tendinite aigüe et ce avant même des manifestations cliniques évidentes (Turner, 1991).

L’examen thermographique du pied peut également s’avérer utile compte tenu de la

présence de la boîte cornée limitant fortement l’examen physique. Il permet de détecter la

présence de fourbure, de syndrome naviculaire ou encore d’abcès.

D’autres inflammations pourront être évaluées telles que les synovites aigües, les

atteintes métacarpiennes/métatarsiennes dorsales, les myosites et les atteintes des

processus épineux.

Figure 52 : exemples d’images thermographiques, à gauche image obtenue chez un cheval atteint d’une arthrite de l’articulation métacarpo-phalangienne, à droite cheval atteint d’une tendinopathie des fléchisseurs.

C.

La thermographie se révèle être un examen difficile d’accès car l’équipement est

cher. Par ailleurs cet examen est fortement influencé par les facteurs extérieurs et le cheval

lui-même. Enfin, c’est un examen qui manque de spécificité car représentatif de la

physiologie de l’animal, tout comme la scintigraphie. Ainsi il est indiqué d’utiliser la

thermographie conjointement à d’autres examens, elle ne permet pas de les remplacer

(Cetinkaya & Demirutku, 2012).

148

Les avantages de cet examen résident dans son caractère non invasif et dans le fait

qu’il n’y ait pas de risque d’exposition aux radiations lors de sa réalisation. La thermographie

permet également de suivre la réponse d’un cheval à un traitement et elle constitue un

examen beaucoup plus sensible que la palpation ; les signes thermographiques apparaissent

également avant les signes radiographiques et cliniques ce qui permet de modifier le travail

du cheval ou d’instaurer un traitement avant l’apparition de dégâts importants.

149

VIII. Comparaison des différents examens

complémentaires (Barr, et al., 2006)

Bien que quasiment indispensables lors d’examen locomoteur, les examens

complémentaires restent, comme leur nom l’indique, complémentaires : ils ne doivent pas

être entrepris sans investigation et suspicion clinique préalable. De même, les anesthésies

sémiologiques restent une étape incontournable dans la plupart des cas car elles permettent

un diagnostic régional. Enfin la signification clinique des éléments rencontrés est à évaluer.

A.

Une fois qu’un diagnostic régional a été posé, la radiographie couplée à l’échographie

constituent un excellent moyen d’établir un diagnostic étiologique et lésionnel. Leur force

réside dans leur complémentarité, leur accessibilité au vétérinaire, leur coût relativement

faible par rapport aux autres techniques et leur caractère non invasif.

Bien souvent ces deux seuls examens suffisent à poser un diagnostic définitif voire

proposer un pronostic vital et sportif par le vétérinaire.

B.

1. Complémentaires aux premiers examens

Lorsque la radiographie ou l’échographie n’ont pas pu mettre en évidence des lésions

significatives ou que le propriétaire désire avoir un pronostic des plus fins possible, le

vétérinaire pourra proposer des examens complémentaires de seconde ligne : scanner ou

IRM.

Bien que l’IRM debout ait permis de simplifier grandement cet examen sur les parties

distales du membre, scanner et IRM sont relativement compliqué à réaliser en comparaison

à l’échographie et la radiographie : peu de centres possédant le matériel, coût, anesthésie

générale éventuelle… Ainsi, avant toute prescription d’un tel examen, une discussion

150

approfondie entre vétérinaire et propriétaires sera nécessaire afin de peser le pour et le

contre à chaque fois.

2. A visée diagnostique régionale

Lorsque le cas du cheval est compliqué, qu’il a été vu par des confrères ou par nous-

même et qu’aucune conclusion probante n’aura pu être avancée, il pourra être utile de

proposer une scintigraphie corps entier voire tenter une thermographie (mais sensibilité

bien moindre). La scintigraphie, de par sa sensibilité et sa réalisation possible sur tout le

corps du cheval, reste un bon moyen de rechercher la région à l’origine du problème pour

autant que le propriétaire soit motivé pour réaliser cet examen.

Remarquons que ces types d’examens seront systématiquement suivis d’autres

examens plus spécifiques afin d’orienter son diagnostic étiologique et lésionnel.

3. A visée curative

L’examen scopique et plus particulièrement l’arthroscopie permet éventuellement

d’affiner le diagnostic du praticien en cas de suspicion d’atteinte de la zone investiguée :

visualisation de lésions, quantification de leur étendue et proposition pronostique.

L’arthroscopie permet surtout de proposer un traitement de l’articulation :

traitement qui consistera souvent en un curetage et débridement, une exérèse de fragment

d’OCD, …

151

:

-

152

Le but de ce travail est de réaliser un support multimédia expliquant la réalisation de

l’examen locomoteur chez le cheval en suivant le raisonnement expliqué au cours de la

première partie : depuis la prise d’anamnèse jusqu’au diagnostic final. Les examens

complémentaires sont également résumés au sein de l’application : examens d’imagerie et

réalisation d’anesthésies sémiologiques.

Le second objectif est de constituer une base de données vidéographique en y

incluant les films de l’examen dynamique de chaque cas étudié ainsi que des films de

chevaux sains afin de pouvoir se familiariser avec les manifestations de boiterie chez le

cheval ainsi que les réponses de l’animal à la suite d’un test de flexion ou d’une anesthésie

sémiologique.

I. Collecte des cas

A.

La sélection des chevaux retenus pour figurer sur le CD-Rom s’est effectuée sur les

animaux présentés en consultation pour investigation d’une affection de l’appareil

locomoteur à la clinique équine de Vetagro-Sup, Campus Vétérinaire de Lyon (anciennement

l’Ecole Nationale Vétérinaire de Lyon). Les chevaux présentant une boiterie de grade 1 à 5

sur 5 et sur lesquelles une investigation complète du problème a été réalisée ont été inclus

au logiciel. Au total, 29 cas ont été incorporés au logiciel

Les animaux ne manifestant pas de boiterie le jour de la consultation n’ont pas été

retenus de même que les chevaux présentant une anomalie évidente de l’appareil

locomoteur. En effet, pour le second cas l’examen de l’animal est souvent sommaire étant

donné l’évidence de l’affection. Ce fut par exemple le cas pour un cheval présentant une

distension très sévère du tarse et manifestant une boiterie de grade 4 à 5 sur 5 au pas : seul

un examen au pas a été réalisé associé à des radiographies et une arthroscopie du tarse à

visée pronostic.

153

Deux chevaux non boiteux ont également été retenus afin de constituer une base de

données « animaux sains » pour permettre à un utilisateur de se familiariser avec la

réalisation de l’examen locomoteur et de pouvoir observer la dynamique du cheval sur sol

dur et souple aux trois allures.

B.

1. Obtention

Chaque examen dynamique des chevaux retenus a été filmé à l’aide d’un caméscope

numérique haut définition. Le cheval est observé au sein de la clinique équine de Lyon, sur

sol dur et sol souple aux différentes allures et sur plusieurs figures :

- figure de 8 au pas sur sol dur ;

- pas en ligne droite sur sol dur ;

- trot en ligne droite sur sol dur ;

- pas et trot sur le cercle aux deux mains sur sol dur ;

- trot en ligne droite sur sol souple ;

- trot et galop sur le cercle aux deux mains ;

- éventuellement nouvelle observation au trot en ligne droite sur sol dur après

échauffement afin d’évaluer si la boiterie est aggravée à chaud ;

- après chaque test de flexion, au trot en ligne droite ;

- après réalisation d’une anesthésie sémiologique.

L’accès au format HD (haute définition) permet d’obtenir des vidéos de qualité très

satisfaisante qui permet de percevoir des signes mêmes frustes sur les animaux observés.

2. Traitement et analyse

Les vidéos sont transférées du caméscope au PC pour ensuite être traitées compte

tenu du nombre important de vidéos par cheval, il s’est avéré nécessaire de sélectionner les

plus évocatrices (flexion positive par exemple) pour ne pas surcharger la taille de

l’application de manière importante.

154

a. Difficultés techniques

Les vidéos transférées étaient au format AVCHD (Advanced Video Codec High

Definition) et portaient comme extension .mts ce qui ne permettait pas de les monter

directement sur le logiciel sans conversion préalable. Par ailleurs chaque vidéo présentait un

poids important en terme de mémoire (dû au format HD) il a donc fallu les traiter

individuellement pour supprimer les moments qui ne nous intéressaient pas dans le cadre de

notre travail afin d’alléger l’application au maximum.

Il a donc fallu trouver un logiciel permettant à la fois la prise en charge du format des

vidéos, leur découpe et leur conversion en format exploitable et ce sans perte de qualité. En

effet une conversion avec un logiciel peu abouti entraine souvent une perte importante de la

qualité qui ferait qu’au final les vidéos soient de définition standard voire médiocre.

b. Utilisation de videopad video editor

Videopad video editor est un logiciel de montage vidéo de NCH software permettant

d’éditer des films : découpe, montage, modifications des sons, ajout de transition… Ce

logiciel présente l’avantage de gérer les films au format .mts et permet également une

traduction en format exploitable pour le CD-Rom sans perte de qualité. Les films ainsi

exportés sur l’application sont au format mpeg4 avec conteneur .avi et conservent une

haute définition de 1920 pixels par 1080 ce qui rend leur étude beaucoup plus agréable et

permet à l’utilisateur d’observer avec précision la locomotion et les mouvements de chevaux

étudiés.

A noter que pour l’application fonctionne, l’ordinateur doit pouvoir lire les fichiers

vidéographiques de format « .avi ».

155

C. complémentaires

Chaque cheval est présenté sous forme de fiche : en plus des différents films, il est

possible de consulter l’anamnèse, les résultats de l’examen clinique et de l’examen

dynamique.

Les différents examens complémentaires ont également été exportés sur le CD-Rom :

l’utilisateur pourra ainsi à sa convenance consulter les différentes images radiographiques et

échographiques et consulter les comptes rendus de chacun de ces examens. Pour ce qui est

des anesthésies sémiologiques, les résultats sont sous forme de films vidéos, ce qui permet

de juger de la réponse du cheval en dynamique.

Figure 53 : utilisation de vidéopad pour le traitement des vidéos : découpe et conversion notamment. A gauche se situe l’ensemble des films réalisés pour le cheval en cours, à droite la visualisation de la séquence sélectionnée et découpée. La conversion se fait à l’enregistrement.

Cliché personnel.

156

Enfin pour chaque cas l’utilisateur pourra trouver les conclusions cliniques, les

conclusions des examens complémentaires, les traitements et recommandation énoncées.

Lorsque l’animal a été revu par la suite, les conclusions des examens de suivi sont également

rapportées.

Ainsi, pour chaque cheval étudié, il est possible de suivre le raisonnement complet :

de l’anamnèse au traitement en passant par la clinique et les examens complémentaires.

Ceci permet ainsi d’étudier à la fois les signes cliniques et paracliniques d’une boiterie mais

également d’aborder la prise en charge selon le diagnostic.

II. Création du CD-Rom

A.

1. Langage de programmation (Nebra, 2009) (Nebra, 2010)

Le langage choisi pour programmer le CD-Rom doit permettre gérer le multimédia et

l’interactivité tout en étant (relativement) abordable même sans formation poussée

d’informaticien : le langage C++ a ainsi été retenu. Ce langage inventé en 1983 par Bjarne

Stroustrup possède l’avantage d’être très répandu car utilisé pour coder de nombreuses

applications ce qui permet d’avoir accès à une documentation fournie à propos de ce

langage. Le C++ présente également d’autres forces (Eyraud, 2010) :

- Il est rapide, ce qui permet d’obtenir une application plus performante

- Il est portable : le même code source pourra être transformé en application

exécutable pour windows, Mac OS, linux et autres systèmes d’exploitation sans

problème

- Il est multi-paradigme ce qui signifie qu’il est possible de coder de plusieurs

manières, dans notre cas en Programmation Orientée Objet qui permet de

simplifier l’organisation du code dans le programme.

157

Figure 54 : exemple le plus connu de ligne de programmation en langage C++ permettant d’afficher le texte « Hello World ! » à l’écran.

1. #include <iostream> 2. using namespace std; 3. int main() 4. { 5. cout << "Hello world!" << endl; 6. return 0; 7. }

2. Logiciel retenu

a. Outils du programmateur

Pour programmer il est nécessaire de disposer d’au moins un éditeur (dans lequel

notre programme sera écrit en langage C++), d’un compilateur (qui traduira ce langage en

langage binaire : seul langage interprétable par l’ordinateur) et d’un débugger (outil

dépistant les erreurs de programmation). Il est possible d’utiliser ces trois parties

séparément mais il est plus simple de travailler avec un logiciel « trois en un ».

Par ailleurs, le programmeur peut programmer en console ou en fenêtre, la première

de ces possibilités ne permettant pas de gérer les vidéos et ne donnant pas un résultat très

« agréable », la programmation en fenêtre a été choisie.

Figure 55 : à gauche exemple de programme en console, à droite exemple de programme en fenêtres.

Cliché personnel.

158

b. Contraintes imposées

Le logiciel de programmation doit posséder les trois outils préalablement cités, doit

également posséder une bibliothèque permettant de coder en fenêtres et gérant les vidéos.

Enfin le programme créé doit être multiplateformes afin qu’il fonctionne sur tous les

systèmes d’exploitation (windows, Mac OS, …).

Le logiciel ainsi retenu est « Qt Creator » car il obéit à toutes les exigences énoncées

et dispose en plus d’une interface graphique permettant de simplifier une partie de la

programmation lors du positionnement des différents objets de l’application (Blanchette &

Summerfield, 2006).

Figure 56 : aperçu de Qt creator, à gauche les différentes parties du programme, à droite un aperçu du code source d’une de ces parties.

Source personnelle.

159

B.

Comme énoncé précédemment, chaque animal est présent sous forme d’une fiche,

et il est possible de consulter les différentes informations à son sujet.

1. Données texte

Les données textes correspondent aux différents comptes rendus de la clinique et

des examens d’imagerie. Ceux-ci ont directement été obtenus sur le serveur général de

Vetagro-Sup et ont été inclus au sein de l’interface par le biais du designer.

Figure 57 : aperçu de l’interface graphique de Qt creator : Qt Designer. Le Designer permet de placer beaucoup plus rapidement les différents objets conventionnels qui seront utilisés.

Source personnelle.

160

2. Données vidéographiques

Les vidéos une fois découpées et traduites ont été incluses au sein d’un dossier

propre à chaque cheval, portant son nom, et se situant à la racine du programme. Les noms

des dossiers portent les noms des chevaux, mais ne comportent ni accents, ni espace ni

caractère spéciaux.

Remarquons que selon les découvertes cliniques, un cas sera plus ou moins fourni en

vidéographies : films de l’examen dynamique, film des différentes réponses aux tests de

flexion et film après anesthésie sémiologique.

Le principe a été de créer un lecteur vidéo possédant les fonctionnalités de base

propres à la lecture de films et de créer des boutons cliquables pour chaque cas, envoyant

alors la vidéo spécifiée sur le bouton au lecteur vidéo et demandant son ouverture ainsi que

la lecture du film sélectionné.

3. Données images

Les images correspondent aux échographies et radiographies réalisées sur les

différents cas. Tous comme les vidéos les images ont été incluses au sein du dossier propre à

chaque animal. Le même principe que pour les vidéos a été adopté : un bouton radiographie

et échographie a été créé et un clic entraîne l’ouverture d’un lecteur d’image.

Figure 58 : exemple de bouton vidéo, un clic entraîne le chargement et l’ouverture de la vidéo où l’on voit le cas étudié évoluer au trot en ligne droite.

161

III. Utilisation de l’application

L’application ainsi créée se veut un maximum intuitive, pour permettre à tous les

types d’utilisateur de profiter au mieux du CD-Rom. Ainsi peu d’explications sont nécessaires

pour l’utiliser, seule une description générale en sera faite.

A.

Ordinateur Mac :

Processeur PowerPC ou Intel cadencé à 1 GHz ou plus.

512 Mo ou plus de mémoire vive.

MacOs X 10.0.0 ou supérieur (module OpenGl recommandé pour le plein écran).

Nécessité de posséder les codecs de lecture des fichiers .avi.

Ordinateur PC :

Processeur AMD ou Intel cadencé à 1 GHz ou plus.

512 Mo ou plus de mémoire vive.

Windows XP SP 2 ou 3, Windows Vista.

Lecteur de CD-Rom : lecteur CD-Rom compatible avec le format ISO-9660 Niveau 2

(quasiment tous les lecteurs le sont).

Résolution d’écran 1024 x 768 ou résolution supérieure.

Nécessité de posséder les codecs de lecture des fichiers .avi.

B.

Sur Mac OS X, insérer le CD-Rom dans le lecteur et attendre l’apparition du Cd-Rom

nommé boiteries sur le bureau. Si le CD-Rom n’apparait pas sur le bureau, y accéder avec le

Finder via le menu Ordinateur.

162

Sur Windows, insérer le Cd-Rom dans le lecteur. Si la liste d’exécution automatique

est activée, choisir Ouvrir le dossier pour afficher les fichiers.

Sinon, double-cliquer sur l’icône du CD-Rom nommé Boiteries dans le poste de

travail. Double-cliquer sur l’icône de l’application nommé Boiteries.

C.

L’application s’ouvre avec une page d’accueil sur laquelle figure l’intitulé du sujet, un

bouton « menu principal » permet d’entrer au sein de l’application tandis que le bouton

« quitter », comme son nom l’indique, permet d’en sortir.

Le menu principal permet d’accéder à trois parties distinctes par le biais de trois

boutons cliquables : la première est le « déroulement de l’examen locomoteur » et regroupe

de manière résumée le déroulement de cet examen chez le cheval.

La seconde partie, intitulée « données théoriques en images » permet de consulter

les sites d’injection lors d’anesthésie sémiologiques, les tests de flexion, de mobilisation

passive, … le tout en photos. Dans cette partie figure également les vidéographies des

chevaux sains.

La troisième partie permet d’accéder au tableau regroupant les différents cas figurant au

sein de l’application.

D.

Chaque cas est organisé selon le même principe, en suivant la démarche clinique.

L’ensemble des cas est regroupée dans un tableau, un clic sur la ligne correspondant à

l’animal ouvre sa fiche.

163

Figure 59 : Le tableau principal résumant tous les cas de l’application : nom, race, sexe, âge, utilisation de l’animal et motif de consultation.

Source personnelle.

Figure 60 : Aperçu d’un cas, à gauche il est possible de naviguer entre les différentes parties de l’examen, à droite une description de la partie en cours. En bas à droite, les divers boutons vidéo, radiographie, et échographie.

Source personnelle.

164

Figure 61: Consultation d’un examen complémentaire réalisé sur le cas : ici les radiographies avec affichage du compte-rendu

Source personnelle.

Figure 62: Consultation d’une vidéographie d’un cheval.

Source personnelle.

167

CONCLUSION

L’examen locomoteur du cheval constitue une étape majeure qui peut s’avérer longue et difficile et qui de ce fait nécessite de suivre une démarche rigoureuse afin de ne pas omettre d’éléments intéressants. Par ailleurs, examiner un cheval en mouvement demande un œil aiguisé pour reconnaître les manifestations cliniques, aussi frustes soient elles, d’une boiterie mais également de distinguer ces manifestations pathologiques des variations physiologiques de la démarche existant chez les chevaux en fonction de leur conformation et de leur utilisation. Par ailleurs, de solides connaissances en imagerie sont également demandées au clinicien lors de l’examen d’un cheval, tant pour leur réalisation que pour leur interprétation.

Cette application informatique basée sur un nombre maximum de supports visuels dont des vidéos de qualité HD permet ainsi de se familiariser beaucoup plus avec la locomotion du cheval et les différents examens pratiqués. Ce type d’application serait ainsi plutôt destinée aux étudiants vétérinaires comme outil complémentaire à leur formation voire aux vétérinaires praticiens avec peu d’expérience dans le domaine. Evidemment, l’observation et la réalisation d’un examen locomoteur d’un cheval en conditions réelles restent indispensables pour s’exercer et apprendre à gérer les situations difficiles.

Le nombre de cas présents dans cette base de données est bien sûr limité par la durée au cours de laquelle ils ont été collectés et c’est pour cela que d’autres versions de cette application pourraient être produites par la suite afin d’en augmenter le nombre. Il serait également intéressant d’y inclure des suivis afin de porter un accent sur la gestion thérapeutique d’une boiterie, notamment lors de lésions des tissus mous où la période de repos et de rééducation est extrêmement importante pour obtenir une amélioration et éviter les rechutes.

169

BibliographieAlterescu-Le Floc'h, N., 2005. Evolution radiographique des pieds de soixante deux

chevaux entre trois et seize ans. Créteil : faculté de médecine.

Anderson, T., McIlwraith, C. & Douay, P., 2004. The role of conformation in

musculosketal problems in the racing horoughbred. Equine Veterinary Journal, 36(7, pages

571 - 575).

Audigié, F. et al., 2007. Apport de l'imagerie par résonnance magnétique dans le

diagnostic des affections locomotrices. Bulletin de l'Académie vétérinaire de France, 160(n°1,

pages 19 - 24).

Audigié, F. et al., 2001. Kinematic analysis of the symmetry of limb movements in

lame trotting horses. Equine Veterinary Journal, 33(pages 128 - 134).

Barr, E., Pinchbeck, G., Clegg, P. & Singer, E., 2006. Accuracy of diagnostic techniques

used in investigation of stifle lameness in horses - 40 cases. Equine Veterinary Education,

18(6, pages 326 - 331).

Baxter, G., 2011. Adams & Stashak's Lameness in Horses sixth edition. Chichester:

Wiley-Blackwell.

Berg, L., Nielsen, J., Thoefner, M. & Thomson P.D., 2003. Ultrasonography of the

equine cervical region: a descriptive study in eight horses. Equine Veterinary Journal, Volume

35, Issue 7, Pages 647 - 655.

Biggi, M. & Dyson, S., 2010. Comparison between radiological and magnetic

resonance imaging lesions in the distal border of the navicular bone with particular

reference to distal border fragments and osseous cyst-like lesions. Equine Veterinary Journal,

42, n°8(pages 707 - 712).

Biggi, M. & Dyson, S., 2012. Distal border fragments and shape of the navicular bone:

Radiological evaluation in lame horses and horses free from lameness. Equine Veterinary

Journal, 44(pages 325 - 331).

170

Birague, M., 2006. Anesthésies nerveuses loco-régionales du membre thoracique du

cheval : bases anatomiques et pharmacologiques. Toulouse : université Paul Sabatier.

Bischofberger, A. et al., 2006. Magnetic resonance imaging, ultrasonography and

histology of the suspensory ligament origin: a comparative study of normal anatomy of

Warmblood horses. Equine Veterinary Journal, 38(n°6, pages 508 - 516).

Blanchette, J. & Summerfield, M., 2006. C++ GUI Programming with Qt 4. Courier:

Prentice Hau.

Booth, T. & Weawer, M., 2005. Radiography of the horse, distal cannon bone and

fetlock joint. In Practice, 27(pages 522 - 528).

Buchner, H., Savelber, H., Schamardt, H. & Barneveld, A., 1996. Head and trunk

movement adaptations in horses with experimentally induced fore- or hindlimb lameness.

Equine Veterinary Journal, 28(n°1, pages 71 - 76).

Budras, K., Sack, W. & Röck, S., 2009. Anatomy of the Horse, Fifth, revised edition.

Hannover: Schlütersche Verlagsgesellschaft mbH & Co. KG..

Butler, J., 2003. Radiography of the horse, practical considerations. In practice,

25(pages 130 - 139).

Butler, J. et al., 2000. Clincal Radiology of the Horse, 2nd edition. Oxford: Blackwell.

Cannone, A., 2009. Bilan d'activité d'un centre de référé en pathologie locomotrice

équine : le CIRALE (1999-2007). Créteil : faculté de médecine.

Cauvin, E., Munroe, G., Boyd, J. & Paterson, C., 1996. Ultrasonographic examination

of the femorotibial articulation in horses : imaging of the cranial and caudal aspects. Equine

Veterinary Journal, 28(4, 285 - 296).

Cetinkaya, M. & Demirutku, A., 2012. Thermography in the assessment of equine

lameness. Turkish Journal of Veterinary and Animal Sciences, 36(1, pages 43 - 48).

Clayton, H., 1986. Cinematographic analysis of the fgait of lame horse. Journal of

Veterinary Education, 6(issue 2, pages 70 - 78).

171

Courtois, P., 2007. La fourbure chez le cheval d'endurance, enquête épidémiologique

sur les saisons 2004 à 2007. Créteil : faculté de médecine.

Coussediere, M., 2010. Statut ostéo-articulaire de chevaux d'endurance de haut

niveau. Créteil : faculté de médecine.

Denoix, J., 2000. The Equine Distal Limb. London: Manson.

Eddy, A., Van Hoogmoed, L. & Snyder, J., 2001. The Role of Thermography in the

Management of Equine Lameness. The Veterinary Journal, 162(3, pages 172 - 181).

Engeli, E., Yeager, A., Erb, H. & Haussler, K., 2006. Ultrasonographic technique and

normal anatomic features of the sacroiliac region in horses. Veterinay Radiology &

Ultrasound, 47(Issue 4, pages 391 - 403).

Eyraud, B., 2010. L'auscultation pulmonaire et trachéale : réalisation et interprétation

Etude de la caractérisation de la genèse et de la signification pathologique des sons

pulmonaires et trachéaux chez les mammifères domestiques et réalisation d'un CD-Rom chez

le chien. Lyon : université Claude Bernard.

Farrow, C., 2006. Veterinary Diagnostic Imaging. St Louis: Elsevier.

Fiorentino, L., 2003. Ossification des cartilages ungulaires chez le cheval de trait

sportif - Incidence et influence sur la clinique. Créteil : Faculté de médecine.

Fischer, A., 2002. La tendinite digitale du fléchisseur profond du doigt du cheval :

étude rétrospective sur 39 cas cliniques. Créteil : faculté de médecine.

Gatti, J., 2006. Evolution radiographique des membres (pieds exceptés) de soixante-

deux chevaux entre trois et seize ans. Créteil : faculté de médecine.

Hanson, J., Seeherman, H., Kirker-Head, C. & O'Callaghan, M., 1996. The role of

computed tomography in evaluation of subchondral osseous lesions in seven horses with

chronic synovitis. Equine Veterinary Journal, 28(pages 480 - 488).

Henson, F., 2009. Equine Back Pathology, Diagnosis and Treatment. Chichester:

Wiley-Blackwell.

172

Hinchcliff, K., Geor, R. & Kaneps, A., 2008. Equine Exercise Physiology The Science of

Exercise in the Athletic Horse. Philadelphia: Saunders Elsevier.

Hoegaerts, M., Nicaise, M., Van Bree, H. & Saunders, J., 2005. Cross-sectional

anatomy and comparative ultrasonography of the equine medial femorotibial joint and its

related structures. Equine Veterinary Journal, 37(6, pages 520 529).

Kersten, A. & Edinger, J., 2004. Ultrasonographic examination of the equine sacroiliac

region. Equine Veterinary Journal, 36(7), pp. 602 - 608.

Kold, S. & Butler, J., 2003. Radiography of the horse, foot and pastern. In Practice,

25(pages 208 -215).

Lehn, A., 2011. Le suivi médico-sportif du cheval de concours de saut d'obstacles :

prise en charge de la carrière sportive. Lyon : université Claude Bernard.

Mair, T., Kinns, J., Jones, R. & Bolas, N., 2005. Magnetic resonance imaging of the

distal limb of the standing horses. Equine Veterinary Education, 17(2, pages 74 - 78).

McIlwraith, C., Anderson, T. & Sanschi, E., 2003. Conformation and

musculoskeletalproblems in the racehorse. Clinical Techniques in Equine Practice, 2(4, pages

339 - 347).

McIlwraith, Nixon, Wnight & Boening, 2005. Diagnostic and Surgical Arthroscopy in

the Horse, third edition. St Louis: Elsevier.

Merlin, N., 2007. Les tendinopathies du fléchisseur profond du doigt en région digitale

distale chez le cheval : étude rétrospective sur 205 cas. Créteil : Faculté de médecine.

Moyer, W., Schumacher, J. & Schumacher, J., 2007. A Guide to Equine Injection and

Regional Anesthesia. Township: Veterinary Learning System.

Nagy, A., Dyson, S. & Barr, A., 2010. Ultrasonographic findings in the lumbosacral

joints of 43 horses with no clinical signs of back pain or hindlimb. Veterinary Radiology &

Ultrasound, 51(Issue 5, pages 533 - 539).

Nebra, M., 2009. Apprenez à programmer en C. Paris: Creative commons.

Nebra, M., 2010. Apprenez à programmer en C++. Paris: Creative commons.

173

Nelson, A., 2001. Scintigraphy in the horse : indications and use in the investigation of

lameness and poor performance. In Practice, 23(pages 528 - 532).

Nowak, O., 2005. Bursite de la pointe et de la corde du jarret des équidés. Créteil :

faculté de médecine.

Pease, A., Winter, M., Berry, C. & Reese, D., 2010. Nuclear Scintigraphy in Horses.

Compendium Veterinary Education, Issue pages 1 - 8.

Pilliner, S., Elmhurst, S. & Davies, E., 2002. The Horse in Motion. Oxford: Blackwell.

Poircuitte, G., 2004. Le tiludronate : mode d'action et utilisation thérapeutique dans

l'espèce équine en pathologie locomotrice. Créteil : faculté de médecine.

Pollitt, C., 1995. Color Atlas of the Horse's Foot. Barcelona: Mosby-Wolfe.

Powell, S., 2012. Low-field standing magnetic resonance imaging findings of the

metacarpo/metatarsophalangeal joint of racing Thoroughbreds with lameness localised to

the region: A retrospective study of 131. Equine Veterinary Journal, 44(pages 169 - 177).

Rantanen, N. & McKinnoon, A., 1998. Equine Diagnostic Ultrasonography. Baltimore:

Williams & Wilkins.

Redding, W., 2001. Use of ultrasonography in the evaluation of joint disease in

horses. Part 1: Indications, technique and examination of the soft tissues. Equine Veterinary

Education, 13(n°4, pages 198 - 204).

Reef, V., 1998. Equine Diagnostic Ultrasound. s.l.:Saunders.

Ross, M., 1995. Scintigraphic and clinical findings in the standardbred

metatarsophalangeal joint : 114 cases (1993-1995). Equine Veterinary Journal, 30(pages 131

- 138).

Ross, M. & Dyson, S., 2011. Diagnosis and Management of Lameness in the Horse,

2nd Edition. St Louis: Elsevier.

Rumbaugh, M., Tetens, J. & Calle, J., 2002. Shoulder Lameness in Horses.

Compendium on Continuing Education for the Praticing Veterinarian, 24(8).

174

Seignour, M., Coudry, V., Norris, R. & Denoix, J., 2012. Ultrasonographic examination

of the palmar/plantar aspect of the fetlock in the horse: Technique and normal images.

Equine Veterinary Education, 24(pages 19 - 29).

Smith, M. & Smith, R., 2008. Diagnostic ultrasound of the limb joints, muscle and

bone in horses. In Practice, 30(pages 152 - 159).

Smith, M. & Wright, I., 2012. Endoscopic evaluation of the navicular bursa :

Observations, treatment and outcome in 92 cases with identified pathology. Equine

Veterinary Journal, 44(pages 339 - 345).

Spriet, M., 2002. Diagnostic différentiel des boiteries chroniques de la région palmaire

du pied chez le cheval. Lyon : université Claude Bernard.

Starke, S. et al., 2012. Proximal hindlimb flexion in the horse: Effect on movement

symmetry and implications for defining soundness. Equine Veterinary Journal, Issue DOI:

10.1111/j.2042-3306.2012.00576.x.

Steckel, R., 1991. The role of scintigraphy in the lameness evaluation. Veterinary

Clinics of North American Practice, Aug.7(pages 207 - 239).

Tamba, G., 2005. Le diagnostic de l'arthrose du membre du cheval. Toulouse :

université Paul Sabatier.

Taprest, et al., 2003. Magnetic resonance imaging for the diagnosis of stress fractures

in a horse. Veterinary Radiology & Ultrasound, 44(4, pages 438 - 442).

Thevenot, J., 2002. Contribution à l'étude de l'échographie abdominale chez le cheval

adulte. Toulouse : faculté de médecine.

Tucker, R. et al., 1998. Bone scintigraphy in the diagnosis of sacroiliac injury in twelve

horses. Equine Veterinary Journal, 5(pages 390 - 395).

Turner, T., 1991. Thermography as an aid to the clinical lameness evaluation..

Veterinary Clinics of North America : Equine Practice, 7(pages 311 - 388).

Uhlir, C. et al., 1997. Compensatory movements of horses with a stance phase

lameness. Equine Veterinary Journal, 23(pahges 102 -105).

175

Vallance, S. et al., 2012. Comparisons of computed tomography, contrast-enhanced

computed tomography and standing low-field magnetic resonance imaging in horses with

lameness localised to the foot. Part 2: Lesion identification. Equine Veterinary Journal,

44(pages 149 - 156).

Waguespack, R. & Hanson, R., 2010. Navicular syndrome in equine patients :

anatomy, causes and diagnosis. Compendium : continuing education for veterinarians,

32(12).

Weaver, M. & Barakzai, S., 2010. Handbook of Equine Radiography. London: Sanders

Elsevier.

Woaye-Hune, E., 2006. La scintigraphie osseuse de l'articulation métacarpo-

phalangienne chez le cheval : étude rétrospective de 127 cas cliniques. Créteil : faculté de

médecine.

Wright, I. & Minshall, G., 2005. Diagnosis and treatment of equine osteochondrosis.

In Practice, 27(pages 302 - 309).

MOURRA Esteban Sémiologie de l’examen locomoteur et des affections locomotrices chez le cheval : réalisation d’un CD-Rom d’une base de données cliniques et vidéographiques. Thèse d’Etat de Doctorat Vétérinaire : Lyon, le 11 juillet 2012 RESUME : L’examen locomoteur du cheval lors de consultation de boiterie repose sur l’observation attentive de l’animal dans diverses conditions. Cet examen demande au vétérinaire une bonne connaissance des manifestations cliniques des boiteries ainsi qu’un regard fin permettant de les déceler, même lors de manifestation subtile. Ainsi ce travail a pour but de présenter au lecteur toutes les étapes d’un examen locomoteur complet dans un premier temps ; dans un second temps nous abordons les différents examens complémentaires, leurs indications, leurs avantages et leurs limites. Enfin, la dernière partie représentée par le CD-Rom permet au lecteur de reprendre ces premiers points en image et d’observer des animaux sains en mouvement. La base de données cliniques permet à l’utilisateur d’observer plus d’une trentaine de chevaux en mouvements dans un format vidéo haute qualité tout en ayant accès à leur historique médical complet et aux résultats des différentes investigations complémentaires. MOTS CLES : - Cheval - Sémiotique - Orthopédie vétérinaire - Boiterie - Cédéroms JURY : Président : Madame le Professeur Elvire SERVIEN 1er Assesseur : Monsieur le Professeur Olivier M. LEPAGE 2ème Assesseur : Monsieur le Docteur Serge SAWAYA Membre invité : Madame le Docteur Monica GANGL DATE DE SOUTENANCE : 11 juillet 2012 ADRESSE DE L’AUTEUR : 6 Rue Desault 70 200 VOUHENANS

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