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1 Mise à jour septembre 2016 RÈGLES RELATIVES AUX DEMANDES DE RECONNAISSANCE DACQUIS EXTRASCOLAIRES MÉTHODOLOGIE ET PRATIQUE DES SOINS INFIRMIERS : SOINS CRITIQUES (SIN-3150) POLITIQUE DE RECONNAISSANCE DES ACQUIS EXTRASCOLAIRES Il ne sera plus possible de déposer une demande de reconnaissance des acquis pour ce stage après janvier 2017 L’Université Laval a adopté une Politique de reconnaissance des acquis scolaires et extrascolaires: https://www2.ulaval.ca/fileadmin/Secretaire_general/Politiques/Politique_de_reconnaissance_des _acquis.pdf En vue de se conformer à cette politique, la Faculté des sciences infirmières (FSI) formule ces règles suivantes pour la demande de reconnaissance d’acquis extrascolaires: SIN-3150 Méthodologie et pratique des soins infirmiers (soins critiques) Le cas échéant, il s’agit de reconnaître aux étudiantes et étudiants concernés, ce qu’ils ont acquis à travers des expériences professionnelles variables en durée, en intensité et aussi en qualité. Pour être admissible à une telle demande, l’étudiante ou l’étudiant doit avoir : Acquis un minimum de 1650 heures d’expériences professionnelles récentes (depuis moins de 3 ans) dans le ou les domaines de pratique reliés au cours-stage faisant l’objet de la demande, en excluant les heures consacrées à la période d’orientation à l’emploi, le cas échéant; Suivi et réussi les cours préalables au cours-stage ciblé dans la demande ou avoir obtenu une équivalence pour ce ou ces cours. Si le cours théorique en soins critiques est suivi en concomitance, il doit être réussi pour obtenir la reconnaissance du cours stage SIN-3150. Réussi un examen écrit au cours de la session où sera déposée la demande de reconnaissance des acquis et obtenir un résultat minimal de 70%. Cet examen porte sur le contenu abordé lors des activités de laboratoire et touche les divers secteurs des soins critiques. Une question à développement portant sur votre expérience clinique est aussi incluse dans l’examen. Une question à développement vous sera soumise, vous serez ainsi invité à démontrer votre jugement clinique et votre autonomie professionnelle par une situation clinique vécue dans le cadre de votre travail. Puisque la décision est prise par un jury de trois personnes, l’étudiant ne pourra se prévaloir d’une demande de révision comme stipule l’article 282 du Règlement des études. Si l’étudiant ne réussit pas l’examen, il devra s’inscrire au cours-stage SIN-3150 à une session prochaine, selon la disponibilité des places. En ANNEXE 1, vous trouverez un document préparatoire à l’examen. Vous devez vous inscrire à l’examen pour être autorisée à y participer. L’inscription doit se faire auprès de Mme [email protected]

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Mise à jour septembre 2016

RÈGLES RELATIVES AUX DEMANDES DE RECONNAISSANCE D’ACQUIS EXTRASCOLAIRES

MÉTHODOLOGIE ET PRATIQUE DES SOINS INFIRMIERS : SOINS CRITIQUES (SIN-3150)

POLITIQUE DE RECONNAISSANCE DES ACQUIS EXTRASCOLAIRES

Il ne sera plus possible de déposer une demande de reconnaissance des acquis pour ce stage après janvier 2017

L’Université Laval a adopté une Politique de reconnaissance des acquis scolaires et extrascolaires: https://www2.ulaval.ca/fileadmin/Secretaire_general/Politiques/Politique_de_reconnaissance_des_acquis.pdf

En vue de se conformer à cette politique, la Faculté des sciences infirmières (FSI) formule ces règles suivantes pour la demande de reconnaissance d’acquis extrascolaires:

SIN-3150 Méthodologie et pratique des soins infirmiers (soins critiques)

Le cas échéant, il s’agit de reconnaître aux étudiantes et étudiants concernés, ce qu’ils ont acquis à travers des expériences professionnelles variables en durée, en intensité et aussi en qualité. Pour être admissible à une telle demande, l’étudiante ou l’étudiant doit avoir :

Acquis un minimum de 1650 heures d’expériences professionnelles récentes (depuis moins de 3 ans) dans le ou les domaines de pratique reliés au cours-stage faisant l’objet de la demande, en excluant les heures consacrées à la période d’orientation à l’emploi, le cas échéant;

Suivi et réussi les cours préalables au cours-stage ciblé dans la demande ou avoir obtenu une équivalence pour ce ou ces cours. Si le cours théorique en soins critiques est suivi en concomitance, il doit être réussi pour obtenir la reconnaissance du cours stage SIN-3150.

Réussi un examen écrit au cours de la session où sera déposée la demande de reconnaissance des acquis et obtenir un résultat minimal de 70%. Cet examen porte sur le contenu abordé lors des activités de laboratoire et touche les divers secteurs des soins critiques. Une question à développement portant sur votre expérience clinique est aussi incluse dans l’examen. Une question à développement vous sera soumise, vous serez ainsi invité à démontrer votre jugement clinique et votre autonomie professionnelle par une situation clinique vécue dans le cadre de votre travail.

Puisque la décision est prise par un jury de trois personnes, l’étudiant ne pourra se prévaloir d’une demande de révision comme stipule l’article 282 du Règlement des études. Si l’étudiant ne réussit pas l’examen, il devra s’inscrire au cours-stage SIN-3150 à une session prochaine, selon la disponibilité des places.

En ANNEXE 1, vous trouverez un document préparatoire à l’examen.

Vous devez vous inscrire à l’examen pour être autorisée à y participer. L’inscription doit se faire auprès de Mme [email protected]

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Mise à jour septembre 2016

Préparation du dossier personnel de demande de reconnaissance d’acquis extrascolaires

Élaborer ce dossier comportant une page de présentation incluant :

Nom, Prénom NIP Adresse électronique UL Numéro de téléphone à votre résidence et de votre téléphone cellulaire Titre du programme d’études

Y joindre les pièces suivantes :

1. Une lettre personnelle présentant brièvement la demande de reconnaissance d’acquis extrascolaires;

2. Une attestation provenant du service des ressources humaines d’un employeur fournissant la preuve de cette expérience et détaillant le nombre d’heures d’expérience dans le domaine ciblé;

3. Une lettre d’évaluation et d’appréciation formulée par un supérieur immédiat détenant un poste de cadre;

4. Un curriculum vitae à jour (expériences pertinentes); Vérification du dossier par la gestion des études de 1er cycle de la Faculté des sciences infirmières

Présenter le dossier de la demande à Madame Carole Laverdière, agente de gestion des études, qui en fera une première validation ([email protected])

Dépôt du dossier à la Direction du programme de premier cycle, évaluation et décision

Après avoir donné suite aux recommandations de Madame Laverdière, remettez-lui votre dossier complet dans le respect des dates identifiées plus bas. Il sera alors acheminé à la directrice de programme.

Si votre dossier est retenu, vous serez invité à rencontrer un membre du personnel enseignant en vue de la préparation à la passation de l’examen. Un rendez-vous vous sera alors proposé.

Dates limites de réception du dossier à la Direction du programme de premier cycle de la FSI :

Date limite pour déposer une demande de reconnaissance: JANVIER 2017

Si votre reconnaissance est refusée suite à l’échec de votre examen ou à défaut de présenter les

autres conditions attestant de votre expérience , vous aurez à faire votre stage au plus tard à

l’été 2017.

Communication de la décision par la Direction générale des programmes de premier cycle (DGPC)

• La DGPC, en collaboration avec la FSI, avisera l’étudiante ou l’étudiant de la décision rendue;

• Si une décision favorable à la reconnaissance des acquis extrascolaires est confirmée : Une facture de 35 $ par crédit accordé sera envoyée à l’étudiante ou l’étudiant; Les crédits apparaîtront au dossier de l’étudiante ou de l’étudiant avec la note,

lorsque les frais auront été acquittés.

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MÉTHODOLOGIE ET PRATIQUE DES SOINS INFIRMIERS - SOINS CRITIQUES (SIN-3150)

PRÉPARATION À L’EXAMEN DE RECONNAISSANCE DES ACQUIS

L’examen du cours Méthodologie et pratique des soins infirmiers - Soins critiques est d’une durée de 3 heures. Il comporte des questions à choix multiples ainsi qu’à courts développements sur les notions figurant dans le tableau ci-dessous. De plus, une question à développement, ayant comme objectif d’évaluer votre jugement clinique en lien avec votre expérience de travail dans un milieu de soins critiques, est ajoutée à la suite de l’examen. Une période additionnelle de 45 minutes pourra vous être allouée au besoin pour répondre à cette question. La date, l’heure et le local vous seront transmis par la gestion des études. Bonne chance!

NOTIONS

TRAVAIL À LA MAISON TRAVAIL AU LABORATOIRE

Lectures

Exercices Activités d’enseignement /

apprentissage MM

1 PM

2 PC

3

Électrocardiographie (ECG) Urden, Stacy & Lough (2010)

Electrocardiography, p. 363-369 (arrêter à Ventricular Axis).

Urden, Stacy & Lough (2014)

VOA : Electrocardiography, p. 274-280 (arrêter à Ventricular Axis). VF: Électrocardiographie, p. 299-308 (arrêter à Axe électique du coeur)

Monitoring cardiaque Urden, Stacy & Lough (2010) Pratique :

Dysrhythmia Interpretation, p. 378-379. Installer des électrodes

Urden, Stacy & Lough (2014)

VOA: Dysrhythmia Interpretation, p. 289-291

Analyser un tracé Calculer la fréquence cardiaque à partir d’un tracé

VF: Interprétation de l'arythmie cardiaque, p. 318-321

1 MM: manipulation de matériel; 2 PM: pratique sur mannequin ou à partir de situations simulées (simulateurs) ou réelles ; 3 PC: pratique entre collègues.

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NOTIONS

TRAVAIL À LA MAISON TRAVAIL AU LABORATOIRE

Lectures

Exercices Activités d’enseignement /

apprentissage MM

1 PM

2 PC

3

Principaux troubles du Urden, Stacy & Lough (2010) Dallaire & Ébacher Démonstration :

rythme : Sinus Rhythms (normal sinus rhythm), (2011), Exercices sur Présentation des principaux troubles

- Rythme sinusal - Bradycardie sinusale - Tachycardie sinusale - Extrasystoles auriculaires - Flutter auriculaire - Fibrillation auriculaire - Extrasystoles ventriculaires - Tachycardie ventriculaire - Fibrillation ventriculaire - Asystolie ventriculaire

- Bloc AV 1er

2e

et 3e

degrés - Artéfact

p. 379-380. Sinus Bradycardia, p. 380. Sinus Tachycardia, p. 380-381. Premature Atrial Contractions, p. 381. Atrial Flutter, p. 384-385. Atrial Fibrillation, p. 385-389 (sauter le paragraphe «Types of Atrial Fibrillation». Premature Ventricular Contractions, p. 390-393. Ventricular Tachycardia, p. 393-394. Ventricular Fibrillation, p. 394. Atrioventricular Conduction

l’interprétation de tracés électrocardiographiques

du rythme sur l’écran d’un moniteur

Pratique : Interpréter des tracés à partir de situations cliniques réelles ou simulées

Distrubance, p. 396-399.

Urden, Stacy & Lough (2014)

VOA: Sinus Rhythms (normal sinus rhythm), p. 291. VF: Rythmes sinusaux (rythme sinusal normal), p. 321

VOA: Sinus Bradycardia, p. 291. VF: Bradycardie sinusale, p. 321

VOA: Sinus Tachycardia, p. 291-292. VF: Tachycardie sinusale, p. 321-322

VOA: Premature Atrial Contractions, p. 292-293. VF: Extrasystoles auriculaires, p. 323

VOA: Atrial Flutter, p. 295-296. VF: Flutter auriculaire, p. 326-327

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NOTIONS

TRAVAIL À LA MAISON TRAVAIL AU LABORATOIRE

Lectures

Exercices Activités d’enseignement /

apprentissage MM

1 PM

2 PC

3

VOA: Atrial Fibrillation, p. 296-301 (sauter le paragraphe «Types of Atrial Fibrillation». VF: Fibrillation auriculaire, p. 327-333 (sauter le paragraphe «Types de fibrillation auriculaire»)

VOA: Premature Ventricular Contractions, p. 302-304. VF: Extrasystoles ventriculaires. p. 334-337

VOA : Ventricular Tachycardia, p. 305- 306. VF : Tachycardie ventriculaire, p. 337- 338

VOA : Ventricular Fibrillation, p. 306. VF : Fibrillation ventriculaire, p. 338- 339

VOA : Atrioventricular Conduction Distrubance, p. 309-311. VF : Bloc auriculoventriculaire du 1

er, 2

e

et 3e

degré, p. 342-345

Lewis, Heitkemper & Dirksen (2010) Asystole, p. 918-919.

Lewis, Heitkemper & Dirksen (2011)

Éd. française

Asystolie, Tome 2 p. 735.

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Stimulateurs cardiaques (pacemakers)

Urden, Stacy & Lough (2010)

Pacemakers, p.498-510.

Urden, Stacy & Lough (2014)

VOA: Pacemakers, p.412-424. VF: Stimulateurs cardiaques, p. 467- 481

Démonstration : Présentation d’un pacemaker ex- terne, d’un pacemaker endoveineux et d’un pacemaker permanent Présentation d’un spicule de pace sur l’écran d’un moniteur

Défibrillation Cardioversion

Lewis, Heitkemper & Dirksen (2010)

Defibrillation, p. 919-921.

Lewis, Heitkemper & Dirksen (2011)

Éd. française

Défibrillation, Tome 2 p. 736-740.

Démonstration : Défibrillation Cardioversion

Pratique : Différencier les arythmies nécessitant une défibrillation ou une cardioversion Mettre en fonction un défibrillateur en mode synchrone et asynchrone Mettre en place les palettes du défibrillateur

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Mise à jour septembre 2016

NOTIONS

TRAVAIL À LA MAISON TRAVAIL AU LABORATOIRE

Lectures

Exercices Activités d’enseignement /

apprentissage MM

1 PM

2 PC

3

Intubation Urden, Stacy & Lough (2010) Dallaire & Ébacher Démonstration :

Artificial airways, p. 644-652. (2011), Exercices sur Présentation du matériel de

Urden, Stacy & Lough (2014)

VOA: Artificial airways, p. 552-563. VF: Tube endotrachéale, p. 636-647

l’intubation endotra- chéale

management des voies respiratoires : tubes naso-pharyngé et oro-pharyngé, masque laryngé, tu endotrachéal

Assistance à l’intubation Vérification de l’emplacement du tube endotrachéal

Fixation du tube endotrachéal

Aspiration endotrachéale Urden, Stacy & Lough (2010)

Suctioning, p. 650-651.

Urden, Stacy & Lough (2014)

VOA: Suctioning, p. 560-561. VF: Effectuer au besoin l'aspiration endotrachéale, p. 645-647

Dallaire & Ébacher (2011), Exercices sur l’aspiration des sécré- tions endotrachéales

Démonstration : Présentation du matériel Techniques d’aspiration (circuit ouvert et circuit fermé)

Pratique : Réaliser toutes les étapes de la technique d’aspiration des sécrétions buccales et d’un tube endotrachéal

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Ventilation mécanique Urden, Stacy & Lough (2010) Dallaire & Ébacher Démonstration :

- Modes de ventilation Invasive Mecanical Ventilation, (2011), Exercices sur la Présentation d’un ventilateur et de mécanique p. 653-662. ventilation mécanique ses composantes (circuits, tableau de

- Composantes du ventilateur - Systèmes d’alarme - Systèmes de distribution de

l’O2

Urden, Stacy & Lough (2014)

VOA: Invasive Mecanical Ventilation, p. 563-571. VF: Ventilation mécanique effractive, p. 647-660.

bord, systèmes de distribution d’O2) Déclenchement des alarmes représentant certains problèmes

(obstruction respiratoire, O2, etc.) Utilisation du tube en T

Pratique : Repérer les différentes composantes

Vérifier les divers paramètres sur les panneaux de contrôle

Reconnaître les alarmes

Mise en situation :

Simuler certains problèmes (O2, obstruction respiratoire, etc.)

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Mise à jour septembre 2016

NOTIONS

TRAVAIL À LA MAISON TRAVAIL AU LABORATOIRE

Lectures

Exercices Activités d’enseignement /

apprentissage MM

1 PM

2 PC

3

Monitoring hémodynamique Urden, Stacy & Lough (2010) Dallaire & Ébacher Démonstration :

Bedside Hemodynamic Monitoring, p. 323-326.

(2011), Exercices de

terminologie sur Présentation du matériel (moniteur, transducteur, amplificateur, capteur)

Urden, Stacy & Lough (2014) l’hémodynamie

Présentation du capteur de pression VOA: Bedside Hemodynamic Monitoring p. 237-240. VF: Monitorage hémodynamique

Fonctionnement du circuit relié au capteur de pression

clinique, p. 251-254 Étapes de la mise à zéro

- Surveillance de la pression Urden, Stacy & Lough (2010) Dallaire & Ébacher Démonstration :

artérielle (PA) Intraarterial Blood Pressure Monitoring, (2011), Exercices sur la Présentation du cathéter artériel p. 326-334. pression artérielle périphérique

Urden, Stacy & Lough (2014) VOA: Intraarterial Blood Pressure Monitoring, p. 240-247. VF: Monitorage intra-artériel de la

invasive Sites d’insertion du cathéter artériel Étapes de la mise à zéro Ajustement des limites pour l’alarme de TA

pression artérielle, p. 254-264 Pratique :

Vous devez également consulter la méthode de soins de l'AQESSS concernant

Mettre à zéro et faire la lecture de la TA (courbe et chiffres)

la canule artérielle ainsi que l'article La canule artérielle de Perspective Infirmière (Janvier/février 2015, 12(1))

- Surveillance de la pression veineuse centrale (PVC)

- via cathéter veineux central

- via cathéter de l'artère pulmonaire (Swan-Ganz)

Urden, Stacy & Lough (2010) Central Venous Pressure Monitoring, p. 335-338.

Urden, Stacy & Lough (2014) VOA : Central Venous Pressure Monitoring p. 247-252. VF: Monitorage de la pression veineuse centrale, p. 264-270

Dallaire & Ébacher (2011), Exercices sur la

pression veineuse centrale

Démonstration : Étapes de la mise à zéro incluant la mise à niveau

Pratique : Mettre à zéro et faire la lecture de la TVC (courbe et chiffres)

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NOTIONS

TRAVAIL À LA MAISON TRAVAIL AU LABORATOIRE

Lectures

Exercices Activités d’enseignement /

apprentissage MM

1 PM

2 PC

3

- Cathéter de l’artère

pulmonaire (Swan-Ganz)

Urden, Stacy & Lough (2010) Pulmonary Artery Catheters, p. 346-354.

Urden, Stacy & Lough (2014)

VOA: Pulmonary Artery Catheters p. 258-268. VF: Cathéter artériel pulmonaire, p. 277-286

Dallaire & Ébacher (2011), Exercices sur le cathéter de l’artère pulmonaire

Démonstration : Présentation du cathéter Swan-Ganz et de ses composantes nécessaires à la lecture de :

Pression veineuse centrale Pression de l’artère pulmonaire Pression capillaire pulmonaire (wedge) Débit cardiaque

- Surveillance de la pression Urden, Stacy & Lough (2010)

Démonstration :

de l’artère pulmonaire (PAP) Pulmonary Artery Catheters, Ajustement des limites pour l’alarme p. 348-349. de PAP

Urden, Stacy & Lough (2014) Pratique : VOA: Pulmonary Artery Catheters p. Mettre à zéro et faire la lecture de la 260-261. TAP (courbe et chiffres) VF: Cathéter artériel pulmonaire p. 280-281

- Surveillance de la pression capillaire pulmonaire (wedge)

Démonstration : Étapes de la mesure de la pression capillaire pulmonaire (wedge) Analyse de la PCP (courbe et chiffres)

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Mise à jour septembre 2016

Thérapie rénale de remplacement continu (TRRC)

- Cathéter

Urden, Stacy & Lough (2010) Renal replacement therapy: Dialysis p. 805-815

Urden, Stacy & Lough (2014) VOA: Renal replacement therapy: Dialysis. p. 722-730 VF: Approche thérapeutique: suppléance rénale, p. 840-849

Familiarisation:

Découverte du cathéter dédié à la thérapie de remplacement rénal continu

- Composante

Familiarisation: Les différentes composantes du système de filtration extra-rénale Identifier sur la photo de l'appareil

PRISMAFLEXTM

les parties suivantes du système en y apposant les étiquettes d'identification appropriées.

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Mise à jour septembre 2016

- L'appareil Pratique:

Comment l'infirmière responsable vérifie si les données affichées sur l'écran de l'appareil correspondent aux prescriptions médicales Relevez maintenant les données qui vous renseigneront sur les conditions de fonctionnement de la TRRC Effectuer les calculs horaires permettant de déterminer l'objectif de prélèvement à programmer

Mise en situation: Gestion des alarmes courantes en TRRC Surveillance de différents éléments en TRRC Surveillance des risques potentiels d'instabilité hémodynamique en TRRC Simuler certains problèmes (baisse O

, obstruction respiratoire, etc.)

2

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Mise à jour septembre 2016

Triage et priorisation de soins

1) Urden, Stacy & Lough (2014) VOA: trauma p. 851-854 et brûlure p. 926-935 VF: Trauma p. 993-999, brûlure p. 1085-1094 et particularité de la clientèle pédiatrique p. 1215-1219

Urden, Stacy & Lough (2010)

trauma p.940-943 brûlure p.1018-1025

2) Lewis, Heitkemper & Dirksen (2011) Éd. française Tome 3 p. 216-229

3) Le triage à l'urgence: lignes

directrices pour l'infirmière au triage à

l'urgence. OIIQ (2007)

Disponible sur le site de l'OIIQ: https://www.oiiq.org/sites/default/files/23

0_doc_0.pdf

Objectifs: Définir la nature, les buts et les fonctions du triage Énumérer les aptitudes de l’infirmière au triage Nommer des informations à recueillir lors du triage Classifier les différentes catégories d’urgence Faire l’évaluation initiale et secondaire (ABCD) Définir les particularités du triage pédiatrique et les outils utilisés (Triangle d’évaluation pédiatrique et échelle Yale) Effectuer l’évaluation en cours d’évolution

1 MM: manipulation de matériel;

2 PM: pratique sur mannequin ou à partir de situations simulées (simulateurs) ou réelles ;

3 PC: pratique entre collègues.

Séances de laboratoire : Monitoring cardiaque : 2h00

Monitoring hémodynamique : 2h15

Intubation endotrachéale et Ventilation mécanique : 1h45

Thérapies de remplacement rénal continues (TRRC) : 1h30

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Mise à jour septembre 2016

Annexe 2 .

Cahier d’exercices Méthodologie et pratique des soins infirmiers

(soins critiques)

SIN-3150 Automne 2015

Préparé par : Danièle Dallaire et Marie-France Ebacher

Révisé par : Pascale Bouchard (automne 2014)

Sous la direction scientifique de Maria-Cécilia Gallani

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TABLE DES MATIÈRES

EXERCICES PRÉPARATOIRES AU LABORATOIRE DE SOINS CRITIQUES

TRACES ÉLECTROCARDIOGRAPHIQUES 1

INTUBATION ENDOTRACHÉALE 19

ASPIRATION DES SECRÉTIONS ENDOTRACHÉALES 23

VENTILATION MÉCANIQUE 25

MONITORING CARDIAQUE 30

HÉMODYNAMIE : GÉNÉRALITÉS 32

MONITORING HÉMODYNAMIQUE : PRESSION ARTÉRIELLE INVASIVE 33

MONITORING HÉMODYNAMIQUE : PRESSION VEINEUSE CENTRALE 36

HÉMODYNAMIE : CATHETER DE L’ARTÈRE PULMONAIRE (SWAN-GANZ) 39

THÉRAPIES DE REMPLACEMENT RÉNAL CONTINUES (TRRC) 41

DOCUMENTS DESTINÉS AUX ÉTUDIANTS POUR LES LABORATOIRES

MONITORING CARDIAQUE 44

INTUBATION ENDOTRACHÉALE ET VENTILATION MÉCANIQUE 50

MONITORING HÉMODYNAMIQUE 59

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1

TRACÉS ÉLECTROCARDIOGRAPHIQUES Exercices - Interprétez les tracés électrocardiographiques suivants :

A) Tracé 1 :

1. Impression générale :

2. Régularité du tracé (ondes R) :□ Régulier □ Régulièrement irrégulier □ Irrégulièrement irrégulier

3. Fréquence cardiaque : / min

4 Ligne isoélectrique facile à repérer : □ Oui □ Non

5. Onde P : a) Une onde P devant chaque complexe QRS :

□ Oui

□ Non

b) Chaque onde P est suivie d’un complexe QRS : c) Morphologie identique des ondes P : d) Intervalle PP= intervalle RR

□ Oui □ Oui □ Oui

□ Non □ Non □ Non

6. Intervalle PR : a) Durée : seconde (s)

b) Constant tout au long du tracé : □ Oui □ Non

7. Complexe QRS : a) Présence d’un complexe QRS pour chaque cycle : □ Oui □ Non b) Morphologie identique des complexes QRS : □ Oui □ Non c) Durée : seconde (s)

8. ST Particularités : □ Oui □ Non

Interprétation :

Étiologie :

Surveillance clinique et interventions :

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2

B) Tracé 2 :

1. Impression générale :

2. Régularité du tracé (ondes R) :□ Régulier □ Régulièrement irrégulier □ Irrégulièrement irrégulier

3. Fréquence cardiaque : / min

4 Ligne isoélectrique facile à repérer : □ Oui □ Non

5. Onde P : a) Une onde P devant chaque complexe QRS :

□ Oui

□ Non

b) Chaque onde P est suivie d’un complexe QRS : c) Morphologie identique des ondes P : d) Intervalle PP= intervalle RR

□ Oui □ Oui □ Oui

□ Non □ Non □ Non

6. Intervalle PR : a) Durée : seconde (s)

b) Constant tout au long du tracé : □ Oui □ Non

7.Complexe QRS : a) Présence d’un complexe QRS pour chaque cycle : □ Oui □ Non b) Morphologie identique des complexes QRS : □ Oui □ Non c) Durée : seconde (s)

8.ST Particularités : □ Oui □ Non

Interprétation :

Étiologie :

Surveillance clinique et interventions :

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3

C) Tracé 3 :

1. Impression générale :

2. Régularité du tracé (ondes R) :□ Régulier □ Régulièrement irrégulier □ Irrégulièrement irrégulier

3. Fréquence cardiaque : / min

4 Ligne isoélectrique facile à repérer : □ Oui □ Non

5. Onde P : a) Une onde P devant chaque complexe QRS :

□ Oui

□ Non

b) Chaque onde P est suivie d’un complexe QRS : c) Morphologie identique des ondes P : d) Intervalle PP= intervalle RR

□ Oui □ Oui □ Oui

□ Non □ Non □ Non

6. Intervalle PR : a) Durée : seconde (s)

b) Constant tout au long du tracé : □ Oui □ Non

7.Complexe QRS : a) Présence d’un complexe QRS pour chaque cycle : □ Oui □ Non b) Morphologie identique des complexes QRS : □ Oui □ Non c) Durée : seconde (s)

8.ST Particularités : □ Oui □ Non

Interprétation :

Étiologie :

Surveillance clinique et interventions :

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4

D) Tracé 4 :

1. Impression générale :

2. Régularité du tracé (ondes R) :□ Régulier □ Régulièrement irrégulier □ Irrégulièrement irrégulier

3. Fréquence cardiaque : / min

4 Ligne isoélectrique facile à repérer : □ Oui □ Non

5. Onde P : a) Une onde P devant chaque complexe QRS :

□ Oui

□ Non

b) Chaque onde P est suivie d’un complexe QRS : c) Morphologie identique des ondes P : d) Intervalle PP= intervalle RR

□ Oui □ Oui □ Oui

□ Non □ Non □ Non

6. Intervalle PR : a) Durée : seconde (s)

b) Constant tout au long du tracé : □ Oui □ Non

7.Complexe QRS : a) Présence d’un complexe QRS pour chaque cycle : □ Oui □ Non b) Morphologie identique des complexes QRS : □ Oui □ Non c) Durée : seconde (s)

8.ST Particularités : □ Oui □ Non

Interprétation :

Étiologie :

Surveillance clinique et interventions :

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5

E) Tracé 5 :

1. Impression générale :

2. Régularité du tracé (ondes R) :□ Régulier □ Régulièrement irrégulier □ Irrégulièrement irrégulier

3. Fréquence cardiaque : / min

4 Ligne isoélectrique facile à repérer : □ Oui □ Non

5. Onde P : a) Une onde P devant chaque complexe QRS :

□ Oui

□ Non

b) Chaque onde P est suivie d’un complexe QRS : c) Morphologie identique des ondes P : d) Intervalle PP= intervalle RR

□ Oui □ Oui □ Oui

□ Non □ Non □ Non

6. Intervalle PR : a) Durée : seconde (s)

b) Constant tout au long du tracé : □ Oui □ Non

7.Complexe QRS : a) Présence d’un complexe QRS pour chaque cycle : □ Oui □ Non b) Morphologie identique des complexes QRS : □ Oui □ Non c) Durée : seconde (s)

8.ST Particularités : □ Oui □ Non

Interprétation :

Étiologie :

Surveillance clinique et interventions :

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6

F) Tracé 6 :

1. Impression générale :

2. Régularité du tracé (ondes R) :□ Régulier □ Régulièrement irrégulier □ Irrégulièrement irrégulier

3. Fréquence cardiaque : / min

4 Ligne isoélectrique facile à repérer : □ Oui □ Non

5. Onde P : a) Une onde P devant chaque complexe QRS :

□ Oui

□ Non

b) Chaque onde P est suivie d’un complexe QRS : c) Morphologie identique des ondes P : d) Intervalle PP= intervalle RR

□ Oui □ Oui □ Oui

□ Non □ Non □ Non

6. Intervalle PR : a) Durée : seconde (s)

b) Constant tout au long du tracé : □ Oui □ Non

7.Complexe QRS : a) Présence d’un complexe QRS pour chaque cycle : □ Oui □ Non b) Morphologie identique des complexes QRS : □ Oui □ Non c) Durée : seconde (s)

8.ST Particularités : □ Oui □ Non

Interprétation :

Étiologie :

Surveillance clinique et interventions :

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7

G) Tracé 7 :

1. Impression générale :

2. Régularité du tracé (ondes R) :□ Régulier □ Régulièrement irrégulier □ Irrégulièrement irrégulier

3. Fréquence cardiaque : / min

4 Ligne isoélectrique facile à repérer : □ Oui □ Non

5. Onde P : a) Une onde P devant chaque complexe QRS :

□ Oui

□ Non

b) Chaque onde P est suivie d’un complexe QRS : c) Morphologie identique des ondes P : d) Intervalle PP= intervalle RR

□ Oui □ Oui □ Oui

□ Non □ Non □ Non

6. Intervalle PR : a) Durée : seconde (s)

b) Constant tout au long du tracé : □ Oui □ Non

7.Complexe QRS : a) Présence d’un complexe QRS pour chaque cycle : □ Oui □ Non b) Morphologie identique des complexes QRS : □ Oui □ Non c) Durée : seconde (s)

8.ST Particularités : □ Oui □ Non

Interprétation :

Étiologie :

Surveillance clinique et interventions :

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8

H) Tracé 8 :

1. Impression générale :

2. Régularité du tracé (ondes R) :□ Régulier □ Régulièrement irrégulier □ Irrégulièrement irrégulier

3. Fréquence cardiaque : / min

4 Ligne isoélectrique facile à repérer : □ Oui □ Non

5. Onde P : a) Une onde P devant chaque complexe QRS :

□ Oui

□ Non

b) Chaque onde P est suivie d’un complexe QRS : c) Morphologie identique des ondes P : d) Intervalle PP= intervalle RR

□ Oui □ Oui □ Oui

□ Non □ Non □ Non

6. Intervalle PR : a) Durée : seconde (s)

b) Constant tout au long du tracé : □ Oui □ Non

7.Complexe QRS : a) Présence d’un complexe QRS pour chaque cycle : □ Oui □ Non b) Morphologie identique des complexes QRS : □ Oui □ Non c) Durée : seconde (s)

8.ST Particularités : □ Oui □ Non

Interprétation :

Étiologie :

Surveillance clinique et interventions :

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9

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I) Tracé 9 :

1. Impression générale :

2. Régularité du tracé (ondes R) :□ Régulier □ Régulièrement irrégulier □ Irrégulièrement irrégulier

3. Fréquence cardiaque : / min

4 Ligne isoélectrique facile à repérer : □ Oui □ Non

5. Onde P : a) Une onde P devant chaque complexe QRS :

□ Oui

□ Non

b) Chaque onde P est suivie d’un complexe QRS : c) Morphologie identique des ondes P : d) Intervalle PP= intervalle RR

□ Oui □ Oui □ Oui

□ Non □ Non □ Non

6. Intervalle PR : a) Durée : seconde (s)

b) Constant tout au long du tracé : □ Oui □ Non

7.Complexe QRS : a) Présence d’un complexe QRS pour chaque cycle : □ Oui □ Non b) Morphologie identique des complexes QRS : □ Oui □ Non c) Durée : seconde (s)

8.ST Particularités : □ Oui □ Non

Interprétation :

Étiologie :

Surveillance clinique et interventions :

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10

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J) Tracé 10 :

1. Impression générale :

2. Régularité du tracé (ondes R) :□ Régulier □ Régulièrement irrégulier □ Irrégulièrement irrégulier

3. Fréquence cardiaque : / min

4 Ligne isoélectrique facile à repérer : □ Oui □ Non

5. Onde P : a) Une onde P devant chaque complexe QRS :

□ Oui

□ Non

b) Chaque onde P est suivie d’un complexe QRS : c) Morphologie identique des ondes P : d) Intervalle PP= intervalle RR

□ Oui □ Oui □ Oui

□ Non □ Non □ Non

6. Intervalle PR : a) Durée : seconde (s)

b) Constant tout au long du tracé : □ Oui □ Non

7.Complexe QRS : a) Présence d’un complexe QRS pour chaque cycle : □ Oui □ Non b) Morphologie identique des complexes QRS : □ Oui □ Non c) Durée : seconde (s)

8.ST Particularités : □ Oui □ Non

Interprétation :

Étiologie :

Surveillance clinique et interventions :

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11

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K) Tracé 11 :

1. Impression générale :

2. Régularité du tracé (ondes R) :□ Régulier □ Régulièrement irrégulier □ Irrégulièrement irrégulier

3. Fréquence cardiaque : / min

4 Ligne isoélectrique facile à repérer : □ Oui □ Non

5. Onde P : a) Une onde P devant chaque complexe QRS :

□ Oui

□ Non

b) Chaque onde P est suivie d’un complexe QRS : c) Morphologie identique des ondes P : d) Intervalle PP= intervalle RR

□ Oui □ Oui □ Oui

□ Non □ Non □ Non

6. Intervalle PR : a) Durée : seconde (s)

b) Constant tout au long du tracé : □ Oui □ Non

7.Complexe QRS : a) Présence d’un complexe QRS pour chaque cycle : □ Oui □ Non b) Morphologie identique des complexes QRS : □ Oui □ Non c) Durée : seconde (s)

8.ST Particularités : □ Oui □ Non

Interprétation :

Étiologie :

Surveillance clinique et interventions :

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12

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L) Tracé 12 :

1. Impression générale :

2. Régularité du tracé (ondes R) :□ Régulier □ Régulièrement irrégulier □ Irrégulièrement irrégulier

3. Fréquence cardiaque : / min

4 Ligne isoélectrique facile à repérer : □ Oui □ Non

5. Onde P : a) Une onde P devant chaque complexe QRS :

□ Oui

□ Non

b) Chaque onde P est suivie d’un complexe QRS : c) Morphologie identique des ondes P : d) Intervalle PP= intervalle RR

□ Oui □ Oui □ Oui

□ Non □ Non □ Non

6. Intervalle PR : a) Durée : seconde (s)

b) Constant tout au long du tracé : □ Oui □ Non

7.Complexe QRS : a) Présence d’un complexe QRS pour chaque cycle : □ Oui □ Non b) Morphologie identique des complexes QRS : □ Oui □ Non c) Durée : seconde (s)

8.ST Particularités : □ Oui □ Non

Interprétation :

Étiologie :

Surveillance clinique et interventions :

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13

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M) Tracé 13 :

1. Impression générale :

2. Régularité du tracé (ondes R) :□ Régulier □ Régulièrement irrégulier □ Irrégulièrement irrégulier

3. Fréquence cardiaque : / min

4 Ligne isoélectrique facile à repérer : □ Oui □ Non

5. Onde P : a) Une onde P devant chaque complexe QRS :

□ Oui

□ Non

b) Chaque onde P est suivie d’un complexe QRS : c) Morphologie identique des ondes P : d) Intervalle PP= intervalle RR

□ Oui □ Oui □ Oui

□ Non □ Non □ Non

6. Intervalle PR : a) Durée : seconde (s)

b) Constant tout au long du tracé : □ Oui □ Non

7.Complexe QRS : a) Présence d’un complexe QRS pour chaque cycle : □ Oui □ Non b) Morphologie identique des complexes QRS : □ Oui □ Non c) Durée : seconde (s)

8.ST Particularités : □ Oui □ Non

Interprétation :

Étiologie :

Surveillance clinique et interventions :

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14

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N) Tracé 14 :

1. Impression générale :

2. Régularité du tracé (ondes R) :□ Régulier □ Régulièrement irrégulier □ Irrégulièrement irrégulier

3. Fréquence cardiaque : / min

4 Ligne isoélectrique facile à repérer : □ Oui □ Non

5. Onde P : a) Une onde P devant chaque complexe QRS :

□ Oui

□ Non

b) Chaque onde P est suivie d’un complexe QRS : c) Morphologie identique des ondes P : d) Intervalle PP= intervalle RR

□ Oui □ Oui □ Oui

□ Non □ Non □ Non

6. Intervalle PR : a) Durée : seconde (s)

b) Constant tout au long du tracé : □ Oui □ Non

7.Complexe QRS : a) Présence d’un complexe QRS pour chaque cycle : □ Oui □ Non b) Morphologie identique des complexes QRS : □ Oui □ Non c) Durée : seconde (s)

8.ST Particularités : □ Oui □ Non

Interprétation :

Étiologie :

Surveillance clinique et interventions :

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15

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O) Tracé 15 :

1. Impression générale :

2. Régularité du tracé (ondes R) :□ Régulier □ Régulièrement irrégulier □ Irrégulièrement irrégulier

3. Fréquence cardiaque : / min

4 Ligne isoélectrique facile à repérer : □ Oui □ Non

5. Onde P : a) Une onde P devant chaque complexe QRS :

□ Oui

□ Non

b) Chaque onde P est suivie d’un complexe QRS : c) Morphologie identique des ondes P : d) Intervalle PP= intervalle RR

□ Oui □ Oui □ Oui

□ Non □ Non □ Non

6. Intervalle PR : a) Durée : seconde (s)

b) Constant tout au long du tracé : □ Oui □ Non

7.Complexe QRS : a) Présence d’un complexe QRS pour chaque cycle : □ Oui □ Non b) Morphologie identique des complexes QRS : □ Oui □ Non c) Durée : seconde (s)

8.ST Particularités : □ Oui □ Non

Interprétation :

Étiologie :

Surveillance clinique et interventions :

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16

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P) Tracé 16 :

1. Impression générale :

2. Régularité du tracé (ondes R) :□ Régulier □ Régulièrement irrégulier □ Irrégulièrement irrégulier

3. Fréquence cardiaque : / min

4 Ligne isoélectrique facile à repérer : □ Oui □ Non

5. Onde P : a) Une onde P devant chaque complexe QRS :

□ Oui

□ Non

b) Chaque onde P est suivie d’un complexe QRS : c) Morphologie identique des ondes P : d) Intervalle PP= intervalle RR

□ Oui □ Oui □ Oui

□ Non □ Non □ Non

6. Intervalle PR : a) Durée : seconde (s)

b) Constant tout au long du tracé : □ Oui □ Non

7.Complexe QRS : a) Présence d’un complexe QRS pour chaque cycle : □ Oui □ Non b) Morphologie identique des complexes QRS : □ Oui □ Non c) Durée : seconde (s)

8.ST Particularités : □ Oui □ Non

Interprétation :

Étiologie :

Surveillance clinique et interventions :

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17

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Q) Tracé 17 :

1. Impression générale :

2. Régularité du tracé (ondes R) :□ Régulier □ Régulièrement irrégulier □ Irrégulièrement irrégulier

3. Fréquence cardiaque : / min

4 Ligne isoélectrique facile à repérer : □ Oui □ Non

5. Onde P : a) Une onde P devant chaque complexe QRS :

□ Oui

□ Non

b) Chaque onde P est suivie d’un complexe QRS : c) Morphologie identique des ondes P : d) Intervalle PP= intervalle RR

□ Oui □ Oui □ Oui

□ Non □ Non □ Non

6. Intervalle PR : a) Durée : seconde (s)

b) Constant tout au long du tracé : □ Oui □ Non

7.Complexe QRS : a) Présence d’un complexe QRS pour chaque cycle : □ Oui □ Non b) Morphologie identique des complexes QRS : □ Oui □ Non c) Durée : seconde (s)

8.ST Particularités : □ Oui □ Non

Interprétation :

Étiologie :

Surveillance clinique et interventions :

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18

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R) Tracé 18 :

1. Impression générale :

2. Régularité du tracé (ondes R) :□ Régulier □ Régulièrement irrégulier □ Irrégulièrement irrégulier

3. Fréquence cardiaque : / min

4 Ligne isoélectrique facile à repérer : □ Oui □ Non

5. Onde P : a) Une onde P devant chaque complexe QRS :

□ Oui

□ Non

b) Chaque onde P est suivie d’un complexe QRS : c) Morphologie identique des ondes P : d) Intervalle PP= intervalle RR

□ Oui □ Oui □ Oui

□ Non □ Non □ Non

6. Intervalle PR : a) Durée : seconde (s)

b) Constant tout au long du tracé : □ Oui □ Non

7.Complexe QRS : a) Présence d’un complexe QRS pour chaque cycle : □ Oui □ Non b) Morphologie identique des complexes QRS : □ Oui □ Non c) Durée : seconde (s)

8.ST Particularités : □ Oui □ Non

Interprétation :

Étiologie :

Surveillance clinique et interventions :

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INTUBATION ENDOTRACHÉALE Exercices :

1. L’intubation peut être effectuée par voie nasale ou orale. Veuillez cocher le O si l’avantage ou l’inconvénient correspond à l’intubation orale et N pour ceux de l’intubation nasale.

a) Effectuée rapidement O □ N □

b) Peut causer des hémorragies O □ N □

c) Hygiène buccale difficile à effectuer O □ N □

d) Peut causer des sinusites O □ N □

e) Difficile à effectuer O □ N □ f) Le tube plus large facilite l’aspiration

et les procédures telles que la bronchoscopie O □ N □

g) Le tube a moins tendance à couder O □ N □

h) Possibilité d’effectuer une meilleure hygiène buccale O □ N □

i) Peut causer de l’irritation et des ulcérations à la bouche O □ N □

j) Plus grand confort pour le client et meilleure tolérance O □ N □

k) Moins de risque d’extubation accidentelle O □ N □

l) Facilite la déglutition des sécrétions O □ N □

m) Possibilité d’administrer de petites quantités de liquides si le client peut avaler O □ N □

n) Aspiration des sécrétions plus difficiles car le tube a un diamètre plus petit et est plus

long O □ N □ o) Non recommandée pour le client où il y a suspicion d’une fracture de la colonne cervicale

ou de la mâchoire O □ N □

p) Diminue le « gag reflex » (haut-le-cœur) O □ N □

q) Diminue l’habileté à avaler O □ N □

r) Moins de complications orales O □ N □

s) Peut augmenter la salivation O □ N □

t) Inconfortable O □ N □

u) Communication facilitée O □ N □

2. Complétez :

Une hygiène buccale rigoureuse permet d’éviter l’assèchement excessif des muqueuses

buccales et l’accumulation de salive. Ainsi, les complications telles que l’ ,

les et la sont davantage évitées.

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3. Justifiez et indiquez l’intervalle à laquelle vous devez effectuer chacune des interventions suivantes faites lors des soins de la bouche du patient intubé.

Interventions Intervalle Justifications

Inspection minutieuse de la bouche

Soins usuels : Lubrifications des lèvres et de la muqueuse et aspiration des sécrétions de la cavité buccale

Brossage des dents, de la langue et des gencives

Références complémentaires au Urden à ce sujet :

1. Browne, J.A., Evans, D., Chrismas, L.A., & Rodriguez, M., (2011). Pursing excellence :

Development of an oral hygiene protocol for mechanically ventilated patients. Critical Care

Nursing Quaterly, 34(1), 25-30.

4. Quelles vérifications doivent être faites par l’infirmière pour s’assurer que le tube

orotrachéal/endotrachéal n’a pas été déplacé?

5. Quelles interventions doivent être faites par l’infirmière lors de la préparation à une intubation?

6. Que doit faire l’infirmière immédiatement après l’intubation?

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21

7. Quelles sont les sept (7) complications reliées à l’intubation? Quelles en sont les causes? Comment peut-on les prévenir?

Complications Causes Prévention

1.

2.

3.

4.

5.

6.

7.

8. Où est située l’extrémité du tube endotrachéal?

9. Pourquoi le tube endotrachéal est-il fixé à la lèvre supérieure du patient?

10. A) Pourquoi gonfle-t-on le ballonnet du tube endotrachéal?

B) À quelle pression gonfle-t-on la pression du ballonnet?

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C) À quelle fréquence vérifie-t-on la pression du ballonnet?

11. Quels sont les dangers du gonflement du ballonnet?

12. Que devez-vous faire s’il y a extubation accidentelle?

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ASPIRATION DES SÉCRÉTIONS ENDOTRACHÉALES Exercices :

1. Quelles sont les cinq (5) principales complications reliées à l’aspiration endotrachéale? Que

doit faire l’infirmière pour prévenir chacune d’elles?

Complications Prévention

1.

2.

3.

4.

5.

2. Lors de son évaluation clinique, quels signes indiquent à l’infirmière que le patient a besoin d’une aspiration endotrachéale?

3. L’infirmière doit aspirer les sécrétions d’un patient intubé lorsque celui-ci :

A) présente des crépitements dans tous les lobes pulmonaires; B) n’a pas été aspiré depuis deux heures; C) présente des ronchis dans les bronches; D) a besoin de stimulation pour tousser et respirer profondément.

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4. Que doit-on inscrire dans les notes au dossier après avoir aspiré un patient intubé?

5. Choisir pour chacun des énoncés de la colonne de gauche le terme de la colonne de droite qui lui convient.

1. Lorsque le cathéter à succion y touche, cela provoque un réflexe de toux chez le client :

2. L’aspiration ne doit pas durer plus de secondes.

3. Ce moyen mécanique est utilisé pour préoxygéner le client :

4. Un cathéter de grosseur F est habituellement utilisé pour aspirer les sécrétions chez l’adulte.

a) 10-15 secondes b) Trachée c) Canule orotrachéale d) 14

e) Cartilage cricoïde f) 12

g) 20 secondes h) 5 secondes i) Carène

j) Ventimasque

k) 16

l) 2 minutes à 100% d’O2

via le respirateur

6. Complétez les phrases suivantes :

A) L’utilisation d’un cathéter d’aspiration plus gros que la moitié du diamètre du tube

endotrachéal peut provoquer : .

B) La pression appliquée lors de l’aspiration dans le tube endotrachéal doit se situer entre

et mm Hg.

C) Afin de prévenir l’hypoxémie lors de l’aspiration endotrachéale, l’infirmière doit toujours

le patient avant et après la manœuvre.

7. Quels sont les avantages de l’aspiration endotrachéale en circuit fermé?

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VENTILATION MÉCANIQUE

Exercices : 1. Complétez les phrases ci-dessous par l’un ou l’autre des termes suivants : positive,

négative ou égale.

Dans le phénomène respiratoire normal :

La pression intraalvéolaire est par rapport à la pression atmosphérique lors de l’inspiration. La pression intraalvéolaire est par rapport à la pression atmosphérique los de l’expiration. La pression intraalvéolaire est par rapport à la pression atmosphérique lors de la période de repos.

Dans la ventilation mécanique :

La pression intraalvéolaire est par rapport à la pression atmosphérique lors de l’inspiration. La pression intraalvéolaire est par rapport à la pression atmosphérique los de l’expiration. La pression intraalvéolaire est par rapport à la pression atmosphérique lors de la période de repos.

2. Indiquez la signification et décrivez les termes suivants associés à la ventilation mécanique : (lorsque pertinent, l’abréviation anglaise est écrite en italique)

Fréquence (f) :

Volume courant (Vc, VT) :

FIO2 :

PEP (PEEP) :

AI (PS ou PSV) :

Rapport inspiration/expiration (I :E) :

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26

Débit et temps inspiratoires :

Sensibilité (trigger):

Limite de pression haute :

3. Pourquoi le ballonnet du tube endotrachéal doit-il être toujours gonflé lors de la ventilation mécanique ? Expliquez.

4. A) À quoi sert le filtre placé entre le tube endotrachéal et les conduits du respirateur ?

B) À quoi sert chacun des deux tubes (conduits) reliés au tube endotrachéal ?

5. A) Indiquez la signification et décrivez les modes ventilatoires suivant: (lorsque pertinent,

l’abréviation anglaise est écrite en italique)

Ventilation contrôlée (VC, CMV) :

VAC (ACV ou A/C ou AC ou VOA ) :

VACI (SIMV ou IMV ou VOIS ou VOI) :

CPAP :

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27

B) Quel est le mode le plus fréquemment utilisé dans la ventilation mécanique ? Quels en sont les avantages ?

6. A) Pourquoi met-on le patient ventilé sous sédation?

B) De façon générale, pour un patient intubé et ventilé qui ne présente pas de problématique particulière, que recherche-t-on comme niveau de sédation? Expliquez

C) Quel sont les médicaments le plus souvent utilisés pour créer un état de sédation chez le patient ventilé?

7. Lors de la ventilation mécanique à pression positive, on observe que le débit cardiaque est diminué au bout de quelques minutes.

A) Comment expliquez-vous ce phénomène?

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B) Quel sera l’effet de cette modification du débit cardiaque sur la pression artérielle du client?

C) Quelle sera la principale action infirmière à effectuer en regard de la pression artérielle du client?

8. A) Expliquez comment la ventilation mécanique peut provoquer un barotraumatisme.

B) Que devez-vous surveiller pour déceler rapidement cette complication?

9. Madame Pouliot est ventilée mécaniquement à la suite d’une chirurgie abdominale majeure. Vous observez qu’elle reçoit du midazolam (Versed®) et de la morphine, chacun de ces médicaments en perfusion continue. De plus, elle reçoit des bolus de Rocuronium (Zémuron®) aux deux heures, albutérol (Ventolin®), budésonide (Pulmicort®) et acétylcystéine (Mucomyst ®) au besoin.

A) Quelle est la classe et l’indication de chacun des médicaments administrés.

Médicaments Classe Indication

1.

2.

3.

4.

5.

6.

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B) Nommez 4 interventions infirmières à effectuer lors de l’utilisation d’un médicament de la classe du rocuronium ?

10. Alors que vous réinstallez le client, l’alarme de pression inspiratoire élevée (high pressure limit) se met à sonner.

A) Qu’est-ce qui a provoqué le déclenchement de cette alarme ? Nommez huit (8) causes

possibles.

B) Que faites-vous ?

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MONITORING CARDIAQUE 1. Complétez :

La est une décharge électrique externe qui est programmée pour se

produire sur l’onde R du complexe QRS tandis que la est un choc

asynchrone.

2. Quel est le but de la défibrillation?

3. A) Où installe-t-on les Défib Pad® et les palettes?

1er Défib Pad® 2e Défib Pad®

a) à droite de l’apex a) à gauche du sternum, sous la clavicule

b) face antérieure du thorax b) à gauche de l’apex

c) à droite du sternum, sous la clavicule c) face postérieure du thorax

B) Durant quelle(s) intervention(s) sont-ils utilisés?

C) À quoi servent les Défib Pad®?

4. Où installe-t-on les électrodes multifonctions en vue d’avoir un cardiostimulateur externe?

1er Électrodes multifonctions 2e Électrodes multifonctions

a) à droite de l’apex a) à gauche du sternum, sous la clavicule

b) face antérieure du thorax b) à gauche de l’apex

c) à droite du sternum, sous la clavicule c) face postérieure du thorax

5. En présence de quels rythmes devons-nous effectuer une :

Défibrillation

Cardioversion

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6. Nommez et décrivez en différenciant les 3 types de cardiostimulateurs temporaires?

Cardiostimulateurs temporaires

Description

1.

2.

3.

7. Nommez et expliquez les 3 problèmes qui peuvent survenir avec un cardiostimulateur et associez-les avec le tracé correspondant.

Problème Explications

1.

2.

3.

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HÉMODYNAMIE : GÉNÉRALITÉS

Exercices :

1. Définissez chacun des termes suivants :

Débit cardiaque :

Postcharge :

Contractilité :

Précharge :

Volume d’éjection :

Pression des capillaires pulmonaires (PcP, PAPb, PAOP, POAP, Wedge, PAWP) :

2. Complétez le diagramme ci-dessous représentant l’équation du débit cardiaque.

Débit cardiaque

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MONITORING HÉMODYNAMIQUE : PRESSION ARTÉRIELLE INVASIVE

Exercices sur la surveillance de la pression artérielle invasive.

1. Quelles sont les deux (2) principales indications pour installer une canulation artérielle?

2. Quelles sont les 2 artères privilégiées lors de l’installation d’un cathéter artériel?

3. Quelles sont les principales complications reliées à la présence d’un cathéter artériel? Comment reconnaîtrez-vous chacune de ces complications? Quelles interventions ferez-vous pour les prévenir?

Complications Signes et symptômes Interventions de prévention

4. Vrai ou faux :

a) La canule artérielle peut être utilisée pour perfuser des médicaments

b) La canule artérielle est utilisée pour prélever un gaz veineux

c) La canule artérielle est utilisée pour effectuer des prélèvements sanguins (ex. FSC)

d) La canule artérielle est utilisée pour mesurer le débit cardiaque

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5. A) À quelle pression doit être gonflé le sac de solution d’une tubulure à pression?

B) Qu’arrive-t-il si le sac n’est pas assez gonflé?

6. A) Qu‘est-ce que l’axe phlébostatique?

B) Pourquoi se préoccupe-t-on de cet axe?

C) Comment fait-on pour le localiser?

7. A) Comment calcule-t-on la pression artérielle moyenne?

B) À combien de millimètres de mercure (mm Hg) la pression artérielle moyenne doit-elle être maintenue afin que les organes vitaux demeurent suffisamment perfusés?

8. La pression artérielle obtenue de façon invasive correspond-elle à la pression obtenue de façon non invasive? À quoi devez-vous vous attendre?

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9. Vous constatez que la pression artérielle au brassard est beaucoup plus élevée que la pression artérielle obtenue via la canulation artérielle. Que devez-vous faire?

10. Quelles sont les causes d’une courbe de pression artérielle amortie sur le moniteur cardiaque? Nommez-en cinq (5).

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MONITORING HÉMODYNAMIQUE : PRESSION VEINEUSE CENTRALE

Exercices

1. Quelle est la principale indication pour exercer une surveillance de la pression veineuse

centrale (PVC)?

2. Que mesure la pression veineuse centrale (PVC)?

3. Dites si oui ou non la mesure de la pression veineuse centrale (PVC) est le reflet de :

- la pression dans l’oreillette gauche

- la pression du ventricule droit

- la mesure de la précharge

- le fonctionnement hémodynamique de l’artère pulmonaire

4. Quels phénomènes peuvent influencer la mesure de la PVC? Expliquez.

Phénomènes Explications

1.

2.

3.

4.

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5. À quel niveau doit être placée l’ouverture du robinet du capteur de pression (transducteur) pour obtenir une mesure précise de la PVC?

6. La pression veineuse centrale normale se situe entre mm Hg et mm Hg.

7. Vrai ou faux?

Lorsque l’on effectue le zéro du capteur de pression, il est important de replacer la clé du robinet à la position initiale avant de remettre le bouchon.

Expliquez :

8. A) Dans quelle position installerez-vous le client pour mesurer sa pression veineuse centrale?

B) À quel moment doit-on prendre la mesure de la PVC chez un patient?

C) Est-ce au même moment si le patient est intubé?

D) La PVC mesurée chez le client installé en position dorsale avec la tête de lit élevée à 60 degrés est-elle fiable? Expliquez.

E) Peut-on mesurer la PVC lorsque le client est couché sur le côté? Expliquez.

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9. Dans chacune des situations suivantes, indiquez si la pression veineuse centrale sera

augmentée () ou diminuée () et expliquez pourquoi.

Situation PVC Explication

Hypovolémie

Vasoconstriction

Sténose valvulaire

Choc septique

Tamponnade cardiaque

10. Cocher le (les) cathéter(s) où il est possible de mesurer la PVC

- Cathéter veineux périphérique

- Cathéter veineux central (voie distale)

- Cathéter Swan-Ganz (voie proximale)

- Canule artérielle

- Cathéter veineux central (voie proximale)

- Cathéter Swan-Ganz (voie distale)

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HÉMODYNAMIE : CATHÉTER DE L’ARTÈRE PULMONAIRE (Swan-Ganz)

Exercices :

1. Lorsqu’installé adéquatement, à quel endroit est située l’extrémité distale du cathéter de « Swan-Ganz »?

2. Quelles sont les indications pour installer un tel cathéter? Nommez-en cinq (5).

3. A) À quoi sert le ballonnet situé à l’extrémité de ce cathéter?

B) À quoi sert chacune des voies du cathéter de l’artère pulmonaire (Swan-ganz) et à quel endroit arrive son extrémité distale?

Voie Utilité Localisation de l’extrémité

Voie distale (PA distal)

Voie proximale d’injection (Proximal injectate)

Voie du cardiostimulateur (pacing/infusion) ou proximale d’infusion (proximal infusion)

Voie du ballonnet

Voie de la thermistance

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4. Dites si oui ou non le cathéter de Swan-Ganz permet de mesurer :

- la pression de l’artère pulmonaire

- la pression veineuse centrale

- la pression artérielle

- le débit cardiaque

- la pression capillaire pulmonaire

5. Mis à part la mesure des différentes pressions hémodynamiques, à quoi peut aussi servir le cathéter de Swan-Ganz? Nommez trois (3) utilités.

6. Dans quelle position installerez-vous le client pour mesurer sa pression de l’artère pulmonaire (PAP) et sa pression des capillaires pulmonaire (PCP)?

7. Quelles sont les trois (3) principaux groupes de complications associées à l’utilisation de ce type de cathéter? Donnez des exemples pour chacune d’eux.

1-

2-

3-

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THÉRAPIE DE REMPLACEMENT RÉNAL CONTINUE

Exercices:

1. Définissez chacun des termes suivant :

Diffusion :

Convection :

Dialysat :

Ultrafiltrat :

Solution de remplacement :

2. Nommez les indications pour lesquelles on débute la thérapie de remplacement rénale continue (TRRC). Sont-elles différentes de celles pour lesquelles on débute la dialyse?

3. Faites les associations dans le tableau suivant :

Grosseur de la molécule Exemple de molécule Méthode pour le retrait

Petite molécule Albumine Diffusion

Moyenne molécule Ions, urée, créatinine

Diffusion/Convection

Aucun retrait

Grosse molécule Vancomycine Convection

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4. A) Pour quelles raisons utilise-t-on un anticoagulant lors de la TRRC?

B) Quels anticoagulants sont utilisés lors de la TRRC?

5. Identifiez chacune des structures du circuit :

a) Chambre de dégazage et détecteur de bulles d’air h) Voie bleu

b) Héparine i) Réchauffe sang

c) Dialysat j) Ultrafiltrat

d) Pompe k) Filtre

e) Solution de réinjection (pré ou post)

f) Solution de remplacement

g) Voie rouge

10.

2.

1. 11.

9. 8.

4.

3. 5. 6. 7.

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6. Qu’arrive-t-il si l’on inverse la fonction des voies du cathéter (Quinton)?

7. Quels sont les rôles infirmiers reliés à la prise en charge d’un patient sous TRRC?

8. Associez le mode de TRRC avec son indication et l’explication qui s’y rattache :

Mode Indication Explication

SCUF : Ultrafiltration continue lente

CVVH : Hémofiltration veino-veineuse continue

CVVHD : Hémodialyse veino-veineuse continue

CVVHDF : Hémodiafiltration veino-veineuse continue

Indication :

A) Syndrome de défaillance multiorganique

B) Choc septique

C) Insuffisance cardiaque avec une surcharge liquidienne

D) Débalancement acido-basique critique

Explication :

1) Retrait d’une quantité maximale de liquide et de petites et moyennes molécules

2) Retrait d’une grande quantité de liquide et de molécules par diffusion

3) Retrait significatif de liquide et de molécules par convection

4) Retrait d’une petite quantité de liquide (maximum 300 ml/h)

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Faculté des sciences infirmières

Méthodologie et pratique des soins infirmiers (soins critiques)

SIN-3150

Monitoring cardiaque et détection d’arythmies Défibrillation et cardioversion

Stimulation cardiaque

Document destiné aux étudiants

Danièle Dallaire, professeure clinique

Michel Doré, chargé de cours

Avec la collaboration de Marie-France Ebacher

Révisé par : Michel Doré et Nancy Laverdière, chargés d’enseignement

Maria-Cécilia Gallani, professeure agrégée

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OBJECTIFS

Au terme de cet apprentissage, l’étudiante ou l’étudiant sera en mesure d’analyser un tracé

électrocardiographique et d’y détecter les principales arythmies, de comprendre le fonctionnement

du défibrillateur en mode synchrone ou asynchrone et de comprendre les différences entre les

trois types de stimulateurs cardiaques.

DIRECTIVES

Avant le laboratoire :

L’étudiante ou l’étudiant doit faire les lectures préalables portant sur l’électrocardiographie,

le monitoring cardiaque, les principaux troubles de rythme, la cardioversion/défibrillation et

les stimulateurs cardiaques.

Elle ou il doit lire les grilles d’observation des procédés de soins qui seront réalisées en

laboratoire.

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© Faculté des sciences infirmières, Université Laval

Grille d’observation : Installation des électrodes Cocher

OUI NON

Prépare le matériel : tampons d’alcool, électrodes, papier-mouchoir, rasoir.

Se lave les mains.

Explique la procédure au client.

Installation des électrodes

IMPORTANT : Branche préalablement les électrodes aux (3 ou 5) fils du câble relié au moniteur cardiaque et met le moniteur en fonction.

N.B. Pour le laboratoire, vous n’avez pas à le faire.

Expose la région sous-claviculaire droite et gauche du thorax du client.

Repère le site d’installation de chacune de ces électrodes.

Prépare les sites afin d’assurer une bonne conduction des impulsions électriques :

-rase le site, s’il y a lieu ;

-nettoie le site avec le tampon d’alcool afin d’enlever toute substance huileuse ;

-avec le papier mouchoir, assèche parfaitement le site.

Retire la pellicule à l’endos de l’électrode et s’assure que le gel conducteur est bien humide.

Applique l’électrode sur le site choisi en pressant fermement son contour adhésif sur la peau du client.

Répète la procédure pour l’électrode correspondant à la jambe gauche (LL).

Retrait des électrodes

Détache les fils reliés au moniteur cardiaque.

N.B. Pour le laboratoire, vous n’avez pas à le faire.

Retire délicatement l’électrode en maintenant la peau du client.

S’il y a lieu, essuie avec un papier-mouchoir le gel conducteur qui adhère à la peau.

Évalue l’état de la peau et note toute irritation ou signe d’allergie.

Dispose du matériel.

N.B. Ne pas toucher au gel avec les doigts afin d’éviter sa dispersion.

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Mise en fonction du défibrillateur en vue d’une défibrillation (mode asynchrone)

OUI NON

Branche le défibrillateur à la prise de courant.

Met le défibrillateur en marche en tournant le bouton de sélection sur MONITEUR.

S’assure que les palettes sont bien connectées au câble multifonctions.

Mise en marche du défibrillateur en mode asynchrone

Sélectionne DEFIB en tournant le bouton de sélection.

Vérifie le niveau d’énergie apparaissant sur l’écran de l’appareil et l’ajuste selon la prescription médicale à l’aide des flèches du sélecteur d’énergie. Prescription médicale = 200 joules.

N.B. Pour le laboratoire, vous devez sélectionner 1 joule.

Retire les palettes de leur support en les saisissant et en appuyant dessus pour relâcher le loquet situé au-dessus de chacune d’elles.

Utilise des défib-pads sur le patient aux endroits appropriés et applique fermement les palettes sur ceux-ci.

Appuie sur le bouton « CHARGE » situé sur la poignée de la palette « APEX » ou demande à une collègue d’appuyer sur celui situé sur le panneau avant.

Une tonalité distincte et continue indiquant que la charge est prête sonnera et le message « DEFIB 200 J PRET » s’affichera à l’écran, indiquant que le défibrillateur est prêt.

Avertis toutes les personnes présentes de s’écarter.

Seules les infirmières détenant une ordonnance collective et la formation nécessaire ont le droit de défibriller un patient. Aux fins de l’atelier, vous devrez toutefois décharger le défibrillateur tel que vous devez le faire lors de toute vérification du matériel d’urgence.

Déchargement sécuritaire du défibrillateur

Remets les palettes du défibrillateur en place.

Sélectionne le niveau d’énergie à 30 joules.

Appuie sur le bouton « CHARGE » situé sur le panneau avant ou sur la poignée de la palette « APEX ».

Attends le signal sonore « charge prête » et vérifier que la valeur d’énergie prête affichée est à 30 joules «DEFIB 30J PRÊT».

Presse avec les pouces et maintient simultanément les boutons « CHOC » (un sur chaque palette) jusqu’à ce que l’énergie soit délivrée. L’écran du défibrillateur affichera alors le message « TEST OK ».

Ferme l’appareil et le débranche de sa source d’alimentation.

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Mise en fonction du défibrillateur en vue d’une cardioversion (mode synchrone)

OUI NON

Branche le défibrillateur à la prise de courant.

Met le défibrillateur en marche en tournant le bouton de sélection sur «MONITEUR».

S’assure que les électrodes sont positionnées de façon standard, qu’elles adhèrent bien à la peau et qu’elles sont bien connectées au câble à ECG.

Mise en marche du défibrillateur en mode synchrone

Sélectionne «DEFIB» en tournant le bouton de sélection.

Appuie sur le bouton « DERIV ou LEAD » pour choisir la dérivation ECG désirée : choisir D II.

Vérifie le niveau d’énergie apparaissant sur l’écran de l’appareil et l’ajuste selon la prescription médicale à l’aide des flèches du sélecteur d’énergie. Prescription médicale = 100 joules.

Appuie sur la touche de fonction « SYNC » en bas à droite de l’écran.

Lorsqu’un patient est branché, le marqueur « » apparaît au-dessus de chaque onde R détectée pour indiquer le moment de la décharge qui se fera de façon automatique. Un message « SYNC 100 J SEL » apparaît à l’écran.

Aucune infirmière n’est autorisée à appliquer un choc de façon synchrone. Cette procédure médicale s’effectue en présence d’un médecin et d’un anesthésiste. L’infirmière doit cependant toujours vérifier que le défibrillateur est bien placé en mode synchrone lors d’une cardioversion. Par la suite, selon les directives médicales, le défibrillateur est chargé en pesant sur le bouton CHARGE et le choc est envoyé par le médecin.

Ferme l’appareil et le débranche de sa source d’alimentation.

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Mise en place des palettes du défibrillateur ou des électrodes multifonctions en vue d’effectuer une défibrillation ou une cardioversion

Deux positions sont recommandées pour placer les électrodes multifonctions ou les palettes du défibrillateur : la position standard ou apex-sternum et la position antéro-postérieure. Cette dernière est surtout utilisée lors de la mise en place d’un stimulateur cardiaque externe ou lors de la défibrillation avec les électrodes multifonctions.

OUI NON

Position standard ou apex-sternum

Place un défib-pad et la palette du défibrillateur identifiée STERNUM à droite de la partie supérieure du sternum, sous la clavicule.

Place le deuxième défib-pad et la palette du défibrillateur identifiée APEX à gauche du mamelon sur la ligne mi-axillaire.

Position antéro-postérieure

Place l’électrode multifonctions identifiée APEX sur la face antérieure du thorax, à la région précordiale juste à gauche du bord gauche du sternum.

Place l’autre électrode multifonctions identifiée STERNUM à la face postérieure du thorax, derrière le cœur à la région située entre le bord interne de l’omoplate et la colonne vertébrale.

Lors d’un choc électrique, la pression exercée sur les palettes est d’environ 12 kg.

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Faculté des sciences infirmières

Méthodologie et pratique des soins infirmiers (soins critiques)

SIN-3150

Intubation endotrachéale et ventilation mécanique

Document destiné aux étudiants

Brigitte Martel, chargée de cours

Danièle Dallaire, professeure clinique

Avec la collaboration de Marie-France Ebacher

Révisé par : Michel Doré et Nancy Laverdière, chargés d’enseignement

Maria-Cécilia Gallani, professeure agrégée

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OBJECTIFS

Au terme de cet apprentissage, l’étudiante ou l’étudiant sera en mesure d’assurer les divers soins et la surveillance d’un patient intubé et ventilé.

DIRECTIVES

Avant le laboratoire :

L’étudiante ou l’étudiant doit faire les lectures préalables.

Elle ou il doit lire les grilles d’observation des techniques qui seront réalisées en laboratoire.

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Grille d’observation : Ventilation à l’aide d’un respirateur manuel avec masque Cocher

OUI NON

Se lave les mains et met des gants non stériles.

Explique la procédure au patient.

Installe le masque sur le respirateur manuel.

Branche le respirateur manuel à une source d’oxygène à l’aide de la tubulure de raccordement à oxygène.

Ouvre la source d’oxygène au maximum (environ 15 litres).

Installe la canule oropharyngée (seulement chez patient inconscient)

-Détermine le calibre de la canule par la longueur entre le coin de la bouche et le lobe de l’oreille ou l’angle du mandibule (voir image 1). -Avant d’installer la canule, effectue une aspiration oropharyngée (procédé de soins appris au collégial ou en Métho chirurgie). -Ouvre la bouche du patient et insère la canule en glissant son extrémité sur le palais. -Quand le palais mou est atteint, tourne la canule de 180

o (voir image 2).

-Vérifie si l’air passe bien dans les voies respiratoires du patient.

Place la partie étroite du masque sur le nez et la base du masque entre la lèvre inférieure du patient et son menton en appuyant de manière à bien sceller le nez et la bouche.

Presse sur le ballon du respirateur manuel de façon à le comprimer à moitié.

Observe l’efficacité de la ventilation en vérifiant les mouvements d’expansion bilatéraux du thorax.

Pour l’exercice, ventile à une fréquence d’environ 10 à 12 respirations par minute, soit une compression du ballon à chaque 5 ou 6 secondes.

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Grille d’observation : Assistance à l’intubation cocher OUI NON

Un membre de l’équipe se présente au patient et lui explique le but de l’intervention.

PRÉPARATION

MEDECIN :

Se lave les mains et met des gants non stériles. Ventile le patient à l’aide du ventilateur manuel, la canule oropharyngée étant en place, tel que démontré dans l’atelier 2. Demande les médicaments avant l’intubation dans l’ordre de leur administration (1. midazolam (Versed©), 2. fentanyl, 3. succinylcholine (Anectine©).

INFIRMIÈRE : Vérifie le bon fonctionnement du ballonnet en injectant 5 à 10 mL d’air par le ballonnet-témoin (test du ballonnet). Retire complètement l’air du ballonnet. Lubrifie l’extrémité du tube avec du lubrifiant hydro-soluble. (N.B. Pour les besoins du labo, cette étape est omise.)

Branche le patient à un saturomètre et au moniteur cardiaque si disponible. (N.B. Pour les besoins du labo, cette étape est omise.)

Se lave les mains et met des gants non stériles. Retire la canule oropharyngée et aspire le contenu de la cavité buccale et du pharynx à l’aide de la succion rigide avant l’intubation. Administre la médication selon l’ordonnance avant l’intubation en débutant par les sédatifs pour terminer avec le curare.

Inhalothérapeute :

Assemble la lame et le laryngoscope. Vérifie le bon fonctionnement de la lumière du laryngoscope.

Prépare le diachylon de fixation du TET (voir image 4).

-Mesure environ 120 cm de diachylon de coton (environ la largeur du lit ou de la civière). -Place une autre pièce de diachylon d’environ 10-15 cm dans le centre de la 1ere pièce de diachylon (pour éviter que le diachylon colle aux cheveux du patient). -Place un abaisse-langue à chaque extrémité du diachylon préparé et le replie sur lui-même une fois.

INTUBATION

Médecin :

Cesse la ventilation et positionne la tête du patient en légère hyperextension (position de reniflement) (voir image 3). Visualise les cordes vocales à l’aide du laryngoscope. Insère le TET à travers les cordes vocales jusqu’à environ 22 cm soit 2 cm au-dessus de la carène. Pendant que le patient est ventilé par l’inhalothérapeute : Injecte lentement de l’air par le ballonnet-témoin jusqu’à ce qu’aucun mouvement d’air ne soit perçu à l’auscultation du larynx (MOT)*** Vérifie la position du TET en auscultant les deux plages pulmonaires.

Branche un détecteur de CO2 au TET pour confirmer la position. (suite à la page suivante)

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Prescrit une radiographie pulmonaire pour valider la position du TET. Prend la relève de l’inhalothérapeute pour ventiler le patient.

Inhalothérapeute :

Se lave les mains et met des gants non stériles. Enlève le masque placé sur le ventilateur manuel. Branche le ventilateur manuel à l’extrémité du TET et ventile le patient jusqu’à ce que le médecin prenne le relais. Observe l’efficacité de la ventilation en vérifiant les mouvements d’expansion bilatéraux du thorax.

Donne le détecteur de CO2 au médecin

Aide l’infirmière à fixer le tube TET.

INFIRMIÈRE : Donne le TET au médecin. Vérifie fréquemment le pourcentage de saturation et les paramètres vitaux du patient. Note la longueur d’insertion en se référant au chiffre sur le TET à la commissure labiale pour l’inscrire au dossier du patient. Fixe le TET avec le diachylon préparé en collaboration avec l’inhalothérapeute (voir image 4).

Attention

***Il existe deux techniques pour gonfler le ballonnet du tube endotrachéal sans léser la fragile muqueuse trachéale. (Source: St. John RE: Airway management, Crit Care Nurse

19(4):79, 1999)

1. « Minimal occlusive technique » ou MOT : consiste à injecter de l’air dans le ballonnet jusqu’à ce qu’aucun mouvement d’air au-dessus de la trachée ne soit perçu lors de l’insufflation avec un ballon-masque.

2. « Minimal leak technique » ou MLT : consiste à injecter de l’air jusqu’à ce que les

pertes d’air soient éliminées. Par la suite, on retire un petit peu d’air du ballonnet jusqu’à ce qu’une petite perte se produise lors de l’insufflation avec un ballon- masque. Attention, il ne faut pas que les alarmes du respirateur sonnent cependant.

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OUI NON

Tous les étudiants se lavent les mains.

Étudiant 1 : Explique au patient le but de l’intervention. Met des gants non-stériles.

Sort le système clos d’aspiration de son emballage de manière à garder l’embout stérile.

Branche le système clos d’aspiration au tube endotrachéal.

Branche la portion de tube annelé au système clos d’aspiration (afin de simuler l’endroit où se trouve le respirateur).

Évalue le besoin de médication selon le niveau de sédation du patient.

Étudiant 2 :

Mesure la longueur d’insertion nécessaire pour une aspiration superficielle. (Il faut que les chiffres inscrits sur le cathéter l’alignent avec ceux sur le TET).

ATTENTION : Lorsque le tube est déjà installé et que le patient est sous ventilation mécanique, il est nécessaire d’augmenter la concentration d’oxygène à 100 % pour assurer une pré-oxygénation optimale à l’aide du bouton « 100 % O2 »

Branche le tube à succion à l’extrémité du système clos d’aspiration et ouvre la succion.

Tourne le loquet (valve d’accès) pour mettre actionner la succion en la soulevant et en la tournant de 180o.

S’assure que la force de succion se situe entre 80 et 120 mm Hg lorsque la succion est actionnée.

D’une main, insère le cathéter d’aspiration par petits coups tout en faisant glisser la gaine protectrice jusqu’à la longueur préalablement

mesurée en tenant fermement la pièce en T de l’autre main.

Aspire en appuyant sur le loquet tout en retirant doucement le cathéter

d’une main et tient la pièce en T de l’autre main. L’aspiration ne doit pas

durer plus de 10-15 secondes.

Peut refaire une aspiration selon son évaluation de la tolérance du patient (saturation, signes vitaux, arythmies, coloration, etc.), de la perméabilité du tube et de la quantité de sécrétions.

S’assure que le cathéter est complètement retiré du circuit en visualisant

l’indicateur noir dans la pièce en T au bout du tube endotrachéal.

Installe le contenant de NaCl 0,9% pour inhalation à l’endroit prévu à cette fin sur le système clos d’aspiration (voir image 5).

(suite à la page suivante)

Grille d’observation : Aspiration endotrachéale avec un système clos d’aspiration cocher

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Irrigue le cathéter en aspirant continuellement tout en pressant sur le contenant de NaCl 0,9% de manière à y déloger toutes les sécrétions.

Vérifie l’irrigation adéquate du cathéter.

Retire le contenant de NaCl 0,9% pour inhalation et ferme l’ouverture du conduit.

Ferme le loquet (valve d’accès) en le soulevant et en le tournant de 180o.

Retire le tube à succion et replace le bouchon.

Évalue la réponse du patient.

Dispose du matériel.

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Grille d’observation : Aspiration endotrachéale avec un système ouvert d’aspiration

Cocher

OUI NON

Étudiant 1 et 2 :

Se lave les mains

Rassemble le matériel : cathéter à succion no 14, solution de NaCl

0,9 %(1 bouteille de 1 litre), 1 paire de gants stériles ou 1 gant stérile +1 gant non stérile et un contenant stérile

Met un masque et une visière selon les pratiques de base et les précautions additionnelles

Étudiant 1 :

Vérifie l’identité du patient (bracelet)

Explique la procédure au patient

Ajuste le régulateur de la succion murale entre 80-120 mm Hg

Verse une petite quantité de NaCl 0,9 % dans le contenant stérile, pour avoir une hauteur de liquide d’environ 2-3cm dans le contenant

Ouvre partiellement l’enveloppe du cathéter d’aspiration et le branche au tube d’aspiration tout en le gardant stérile.

Étudiant 2 :

Pré-oxygénation du patient en appuyant sur le bouton « 100% O2 »

Avant de commencer la procédure d’aspiration, il faut vérifier la fréquence et le rythme cardiaque, la saturation et procéder à l’auscultation pulmonaire.

Étudiant 1 :

Met un gant non stérile dans la main non dominante et un gant stérile dans la main dominante OU les gants stériles

Prend le cathéter à succion de la main dominante et lubrifie son extrémité dans le contenant de NaCl 0,9% afin de faciliter son insertion

Afin de vérifier le fonctionnement du système d'aspiration, place le pouce de la main non dominante sur l’évent du cathéter

Étudiant 2 :

Désactive les alarmes sur le respirateur.

Déconnecte le respirateur du tube endotrachéal du patient et évite de diriger le jet d’air vers un intervenant et de contaminer l’embout des conduits.

Étudiant 1 :

Insère délicatement le cathéter par l’ouverture du tube sans appliquer la force d’aspiration jusqu’à la longueur prédéterminée selon le tube endotrachéal utilisé. Si le cathéter rencontre une résistance ou que le patient tousse, retire le cathéter d’un centimètre

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Aspire en plaçant le pouce de la main non dominante sur l’évent du cathéter

Retire doucement le cathéter en le roulant délicatement entre les doigts de la main dominante. Limite le temps d’aspiration à 10-15 secondes

Attention : Pendant la procédure on doit surveiller la fréquence et le rythme cardiaque ainsi que la saturation. On doit interrompre l’aspiration endotrachéal si le patient présente des changements importants de la fréquence cardiaque (augmentation ou diminution significatives par rapport à la fréquence de base), s’il présent une arythmie ou une diminution de la SpO2 au-dessous de ce qui est attendu pour le patient.

Regarde la consistance des sécrétions, la quantité, la couleur, l’odeur et la présence de sang

Rince le cathéter en aspirant un peu de NaCl 0,9%

Étudiant 2 :

Reconnecte le respirateur sur le tube endotrachéal

Laisse au patient le temps de bien s’oxygéner en l’hyperoxygénant avec 100% O2

Étudiant 1 :

Selon son évaluation de la tolérance du patient (saturation, fréquence et rythme cardiaque, coloration, etc.) et de la quantité de sécrétions, peut répéter la procédure en conservant le même cathéter

Pour minimiser le risque de complication, se limiter à un maximum de 3 aspirations endotrachéales consécutives

Lorsque la procédure est complétée, débranche le cathéter du tube d’aspiration, le roule dans le gant de la main dominante et inverse le gant sur sa main de façon à ce qu’il se trouve dans le gant.

Refait l’auscultation pulmonaire pour évaluer l’efficacité de l’intervention.

Retire le gant et le masque s’il y a lieu

Ferme la source d’aspiration et dispose du matériel souillé

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Faculté des sciences infirmières

Méthodologie et pratique des soins infirmiers (soins critiques)

SIN-3150

Monitoring hémodynamique

Document destiné aux étudiants

Lucie Blouin, B. Sc. Inf.

Danièle Dallaire, professeure clinique

Avec la collaboration de Marie-France Ebacher

Révisé par : Michel Doré et Nancy Laverdière,

chargés d’enseignement

Maria-Cécilia Gallani, professeure agrégée

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Objectifs

Au terme de cet apprentissage, l’étudiante ou l’étudiant sera en mesure d’assurer les divers soins et la surveillance d’un patient sous monitoring hémodynamique.

DIRECTIVES

Avant le laboratoire :

L’étudiante ou l’étudiant doit faire les lectures préalables.

Elle ou il doit lire les grilles d’observation des procédés de soins qui seront réalisées en laboratoire.

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Grille d’observation : Calibration d’un système de monitorage de pression

Cocher

OUI NON

Étape 1 : MISE À NIVEAU DU CAPTEUR

Le but de ce procédé est de mettre le capteur au niveau de l’oreillette droite du cœur.

Avise le patient de la procédure.

A) Repérer l’axe phlébostatique

Place le patient en position dorsale. La tête du lit peut être élevée de 0 à 60 degrés.

Prend un ruban rouge de 50 cm. L’étudiant 2 place une extrémité du ruban au quatrième espace intercostal et laisse tomber l’autre extrémité à la verticale vers le lit.

L’étudiant 3 place le deuxième ruban de 50 cm de façon à tracer une ligne horizontale qui séparera le diamètre antéropostérieur en deux parties égales. On se réfère souvent à la ligne mi-axillaire. Cependant, comme la morphologie du thorax peut varier d’une personne à l’autre, l’hémithorax peut différer de celle-ci (Smith 2004, p. 1211).

À l’aide de sa main gauche, l’étudiant 2 place l’autocollant « point repère » à la jonction de ces deux rubans. Ceci indique l’axe phlébostatique. C’est un point à la surface du corps qui correspond au niveau des oreillettes.

B) Effectuer le niveau

L’étudiant 3 prend le ruban de 1 mètre, place une extrémité du ruban sur le «point repère » et l’autre extrémité sur le point rouge du capteur. Le ruban doit être tendu.

L’étudiant 2 ajuste la hauteur du capteur à l’aide de la vis située à l’arrière du support, de façon à obtenir une ligne horizontale entre le capteur et l’axe phlébostatique.

Afin de s’assurer de la validité de la lecture de la PA, une évaluation du niveau doit être faite avant chaque lecture.

VERSO

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62

Grille d’observation : Calibration d’un système de monitorage de pression (suite)

Cocher

OUI NON

►Étape 2 : ZÉRO DU CAPTEUR

Le but de ce procédé est de calibrer l’équipement avec la pression atmosphérique.

L’étudiant 2 se lave les mains.

L’étudiant 2 se tient près du capteur et l’étudiant 3 se tient près du moniteur.

L’étudiant 3 s’assure que le capteur de pression du système de monitorage est bien relié au moniteur par un câble.

L’étudiant 2 repère la position « off » sur le robinet du capteur.

L’étudiant 2 tourne la clé de ce robinet la position « off » vers le cathéter inséré dans l’artère radiale du patient. Dans la réalité, une ligne plane devrait apparaître au moniteur signifiant que le capteur ne perçoit plus les variations de pression provenant du patient.

L’étudiant 2 retire le bouchon aseptiquement et prend garde de ne pas le contaminer. Il peut le déposer sur une compresse stérile.

L’étudiant 3 appuie sur la touche « zéro press » puis sur la touche « zéro ABP ». Cette touche de fonction est située au bas de l’écran du moniteur.

Lorsque le moniteur indique « 0 », l’étudiant 3 observe au bas de l’écran à gauche la mention « zero ABP transducer at : (heure) ».

Dans la réalité, vous devriez voir apparaître une ligne plane et le chiffre 0 ce qui signifie que la pression dans le capteur est à la même pression que la pression atmosphérique

L’étudiant 2 replace la clé du robinet du capteur de pression la position « off »vers la tige du bouchon, puis replace le bouchon

La pose du bouchon occasionne des variations de pression dans le capteur. C’est pour cette raison qu’il est important de replacer la clé du robinet à sa position initiale avant de remettre le bouchon, afin de préserver la mise à zéro.

L’étudiant 3 regarde le moniteur et note si une courbe représentative de la pression artérielle y apparaît. Ceci indique que le système de monitorage est fonctionnel.

Pour obtenir une lecture précise et valide, il est recommandé d’effectuer le zéro des capteurs au début de chaque quart de travail (Urden 2010, p.324).

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Grille d’observation : Ajustement des paramètres de surveillance des pressions artérielles invasives et non invasives au moniteur cardiaque

OUI NON

**Mise en situation 1

Pour contrôler l’hypotension de M. Fillion, le médecin a prescrit une perfusion de Levophed 4 mg dans 250

ml de DW5%. Le débit de la perfusion doit permettre de maintenir une pression artérielle systolique à 100

mm Hg et une pression artérielle moyenne (PAM) à 60 mm Hg. Pour ce faire, il est prescrit d’augmenter ou de diminuer la perfusion de 2 ml/heure aux 15 minutes.

Afin d’assurer une surveillance constante de l’hémodynamie, il est nécessaire que la programmation du système de monitorage soit précise et personnalisée. La calibration (zéro, niveau) doit être adéquate et les paramètres de surveillance doivent s’ajuster à la condition clinique du patient. Pour répondre aux besoins de M. Fillion, la programmation du moniteur doit être faite pour qu’il émette une alarme audible si sa pression

artérielle systolique devient 100 mm Hg.

Étape 1 : Ajuster l’échelle de la courbe de PA

Façon 1:

Repère d’abord sur l’écran le canal de la ligne artérielle (ABP) et appuie sur la valeur numérique de la PA. La fenêtre « setup » ABP apparaît.

Appuie sur « scale ». Une colonne comportant des valeurs de PA systolique apparaît à

droite. Appuie sur une valeur numérique qui est à la PA systolique du patient (ex. 150 mm Hg) afin d’ajuster l’échelle.

Appuie sur le X en haut à droite pour fermer la fenêtre et observe la courbe de la PA à l’écran. Elle doit occuper presque tout l’espace entre la ligne supérieure et la ligne inférieure du canal.

Façon 2:

Le moniteur peut choisir la meilleure échelle. Pour ce faire, appuie sur la valeur numérique de la PA pour faire apparaître la fenêtre « setup ABP ».

Appuie sur les deux flèches () en bas à droite de l’écran. Ceci fait apparaître le deuxième menu.

Appuie sur « optimum scale », ferme la fenêtre et observe la courbe de la PA.

La programmation effectuée ici concerne la pression artérielle systolique. Le moniteur se met en mode alarme uniquement lors d’une perturbation de la PA systolique hors des valeurs programmées. Ainsi, s’il y a une modification de la pression artérielle moyenne, le moniteur n’émettra pas d’alarme. Il est impossible de programmer deux cibles de surveillance sur le même canal.

Étape 2 : Choisir la cible de surveillance de la PA

Repère d’abord sur l’écran le canal de la ligne artérielle (ABP) et appuie sur la valeur numérique de la PA. La fenêtre « setup ABP » apparaît.

Sélectionne l’objet de surveillance, ici c’est la tension artérielle systolique. Pour ce faire, appuie sur la touche « ALARM FROM ». Une colonne apparaîtra à droite.

Appuie sur « SYS ». La surveillance du moniteur porte maintenant sur la pression systolique.

Étape 3 : Programmer les paramètres de surveillance de la PA

Programme la valeur haute à 140 mm Hg en appuyant sur la touche « Sys high » et sur 140 mm Hg sur la colonne de droite.

Programme la valeur basse à 100 mm Hg en appuyant sur la touche « Sys low » et sur 100 mm Hg sur la colonne de droite.

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Étape 4 : S’assurer que les alarmes de la PA sont actives

Vérifie si l’alarme de la PA est active. Pour ce faire, repère la touche « ALARM ». Elle est située sous la touche « Sys low » et observe à droite la mention « ON ».

Ainsi programmé, à quel moment le moniteur émettra-t-il une alarme?

Lorsque la PA systolique sera ou lorsque la PA systolique sera

Pèse sur le X qui apparaît en haut à droite pour fermer la fenêtre. Ceci effectue le retour à la page principale du moniteur.

Observe la courbe de PA au moniteur.

Pour que la courbe soit représentative de la pression artérielle et que les composantes d’une courbe normale de pression systémique soient visibles, l’échelle de la courbe doit être ajustée aux valeurs de PA affichée au moniteur.

Programmation du système de monitorage non invasif de la pression artérielle

** Il est nécessaire d’effectuer une programmation sur deux canaux différents pour que le moniteur exerce une surveillance de la pression systolique et de la pression artérielle moyenne de M. Fillion. Par exemple, on peut programmer la surveillance de la PA systolique sur le canal de monitorage de pression invasive et celle de la PAM sur celui du système de monitorage de pression artérielle non invasive (NBP).

Étape 1 : Sélectionner la cible de surveillance de la NBP

Repère d’abord sur l’écran le canal de pression artérielle non invasive (NBP) et appuie sur la valeur numérique de la NBP. La fenêtre « setup NBP » apparaît.

Appuie sur « alarm from » afin que la cible de surveillance du moniteur devienne la pression artérielle moyenne (PAM). Sélectionne « MEAN ».

Étape 2 : Programmer les paramètres de surveillance

Appuie sur « Mean high » pour programmer la valeur haute et l’ajuster à 80 mm Hg.

Appuie sur « Mean low » pour programmer la valeur basse et l’ajuster à 60 mm Hg.

Ainsi programmé, à quel moment le moniteur émettra-t-il une alarme? Lorsque la PAM sera _ ou lorsque la PAM sera .

Étape 3 : Sélectionner le mode de fonctionnement (automatique ou manuel)

Appuie sur les deux flèches en bas de la fenêtre à droite de la mention « start/stop ». Le deuxième menu apparaît.

Appuie sur la touche « auto » pour sélectionner le mode automatique.

Étape 4 : Programmer la fréquence des répétitions de prise de TA non invasive

Appuie sur touche « Repetition time » et sélectionne, 15 min..

De cette façon, une prise automatique de la TA au brassard est faite q 15 min. Une surveillance de la pression artérielle systolique s’effectue à l’aide de la PA et celle de la pression artérielle moyenne (PAM) à l’aide de la NBP.

L’infirmière doit exercer son jugement clinique lors de l’ajustement des paramètres de surveillance du moniteur cardiaque qui doivent être adaptés à la condition clinique de chaque patient.

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Grille d’observation :Ajustement des paramètres hémodynamiques au moniteur cardiaque

Cocher

OUI NON

** Mise en situation 2

Afin d’effectuer la surveillance de la volémie de M. Fillion, un cathéter a été installé par la jugulaire droite. Un système de monitorage de pression invasive est installé sur ce cathéter et le médecin demande à être avisé si la PVC est < à 8 mm Hg.

Étape 1 : Ajuster l’échelle de la courbe

Façon 1 :

Appuie sur la touche « Upper alarm scale » et choisit un chiffre. Ferme la fenêtre et observe l’aspect de la courbe. Celle-ci doit occuper presque tout l’espace entre la ligne supérieure et la ligne inférieure du canal.

Façon 2 :

Appuie sur la valeur numérique de la PVC. Appuie sur les deux flèches () au bas à droite de la fenêtre pour faire apparaître le deuxième menu et appuie sur la touche « optimum scale ». Ferme la fenêtre et observe la courbe de PVC.

Vérifie la calibration du système de monitorage pour s’assurer de la validité des données affichées.

Étape 2 : Programmer les paramètres de surveillance de la PVC (TVC)

Repère le canal de la PVC sur l’écran principal du moniteur et appuie sur la valeur numérique de la PVC. La fenêtre « setup CVP » apparaît.

Il n’y a pas de cible de surveillance à programmer pour une PVC, car elle est fonction du maintien de la pression artérielle moyenne. Celle-ci sera donc ciblée.

Programme la valeur haute en appuyant sur la touche « mean high » et sélectionne 14 mm Hg.

Programme la valeur basse en appuyant sur la touche « mean low » et sélectionne 8 mm Hg.

Ainsi programmé, à quel moment le moniteur émettra-t-il une alarme? Lorsque la PVC sera ou lorsque la PVC sera .

Étape 3 : S’assurer que les alarmes sont actives

Vérifie que l’alarme est active en regardant à la droite de la touche « Alarm » si la mention « ON » apparaît.

L’alarme de la PVC doit être active sauf lorsque la voie du cathéter central est utilisée pour une perfusion intraveineuse.

Lorsque vous avez terminé, demandez au responsable de l’atelier la feuille-réponses.

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Grille d’observation : Prélèvement sanguin par canule artérielle (gaz artériel) Cocher

OUI NON

**Mise en situation 3

M. Fillion est de plus en plus somnolent. Une prescription pour un gaz artériel est faite.

Vérifie l’identité du patient (bracelet) et lui explique l’intervention.

Se lave les mains et met les gants non stériles.

Suspend l’alarme au moniteur.

Pour cet exercice, vous ne disposez pas d’un moniteur mais retenir que, durant la procédure, l’alarme « PA déconnectée » se fera entendre parce que le moniteur ne pourra afficher la courbe de la pression artérielle.

Ouvre la compresse 4x4 de façon aseptique et l’imbibe d’alcool à 70%.

Ouvre la compresse 2x2 en préservant la stérilité.

Ouvre l’emballage de la seringue de 5 mL et celle du gaz artériel.

Laisse le bouchon protecteur en place sur la seringue.

Place le piston de la seringue de gaz artériel à 1 mL.

Place le bouchon ventilé (bouchon bleu de l’emballage) à proximité.

Repère le robinet servant à effectuer les prélèvements. C’est le robinet proximal, situé sur la tubulure du système, fixé à l’avant-bras par du ruban adhésif.

Prend la compresse imbibée d’alcool et désinfecte le bouchon de même que la tige du robinet.

Certains centres utilisent le raccord « clave ». Celui-ci est installé lors du montage du circuit sur le robinet servant aux prélèvements à la place du bouchon. Lorsque le raccord « clave » est utilisé, il est laissé en place après la désinfection à l’alcool, la seringue de 5 mL est adaptée à ce raccord puis la technique se poursuit comme suit.

Retire le bouchon avec la compresse imbibée d’alcool et le déposer sur la compresse 2x2.

Prendre garde de conserver la stérilité du bouchon. Sinon le remplacer après la technique.

Adapte la seringue de 5 mL au robinet ou au raccord « clave ».

Place la clé du robinet la position « off » vers le dispositif de rinçage de la tubulure.

Détermine l’espace mort en aspirant lentement jusqu’à ce que du sang pénètre dans la seringue. Note à ce moment la quantité de NaCl 0,9% contenu dans la seringue. C’est le volume de l’espace mort.

L’espace mort correspond au volume de soluté (NaCl 0,9%) contenu entre le bout du cathéter et le site de prélèvement sur la ligne artérielle.

Continue d’aspirer jusqu’à ce que le soluté et le sang contenu dans la seringue représente trois fois l’espace mort. Exemple : Si le volume de l’espace mort est de 0,5 mL, il faut aspirer 1,5 mL. VERSO

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67

Cocher

OUI NON

ATTENTION : Lors d’un prélèvement pour coagulogramme, la quantité à prélever est

équivalente à six fois l’espace mort. Ainsi, lors de la procédure, si on ne retire pas suffisamment de soluté, l’échantillon sanguin sera dilué et les résultats de l’examen seront faussés. Par contre, si la quantité de sang retirée est excessive, la perte sanguine peut conduire à de l’anémie et à la détérioration de la condition clinique.

Tourne la clé du robinet la position « off », à mi-chemin entre la tige du bouchon et la valve de rinçage de la tubulure de la ligne artérielle.

De cette façon, il n’y a pas de risque de perte de sang par la ligne artérielle, ni risque de contamination du prélèvement par la solution d’irrigation du système.

Retire la seringue de 5 mL et place la seringue de gaz artériel.

Tourne la clé du robinet la position « off » vers la valve de rinçage du système et observe le sang monter graduellement dans la seringue. Lorsque la quantité désirée (1 mL) est atteinte, tourne la clé du robinet, la position « off » vers la tige du bouchon.

Retire la seringue de gaz.

Place le bouchon ventilé sur la seringue et pousse le piston jusqu’à ce que les bulles d’air soient éliminées et que le filtre soit imbibé de sang.

Actionne la valve de rinçage manuel du système en tirant sur le fil bleu situé sur le capteur. Procède délicatement, par intervalle de deux secondes, jusqu’à ce qu’il n’y ait plus de trace de sang dans la tubulure et ce afin de prévenir la formation de thrombus après le prélèvement.

Tourne la clé du robinet la position « off » vers le site d’entrée du cathéter.

Place la compresse stérile 2x2 sous la tige du robinet et actionne la valve de rinçage manuel jusqu’à ce qu’il n’y ait plus de trace de sang dans la tige du robinet, ceci afin de prévenir la formation de thrombus et les risques de prolifération bactérienne dans la tige du robinet.

Positionne la clé du robinet la position « off » vers la tige du robinet.

Replace le bouchon sans le contaminer.

En présence d’un raccord « clave », place une seringue de 5 mL sur le raccord. Tourne le robinet la position « off » vers le site d’entrée du cathéter. Actionne la valve de rinçage manuel pour rincer la tige du robinet tout en tirant légèrement sur le piston pour éviter qu’il n’adhère. Positionne la clé du robinet la position « off » vers le raccord « clave » et retire la seringue.

Réactive l’alarme sur le moniteur et observe la qualité de la courbe de la pression artérielle.

Dispose du matériel souillé. La seringue souillée doit être déposée avec les déchets biorisque. Pour les fins du laboratoire vider le contenu de la seringue de 5 mL au lavabo puis la replacer dans son emballage.

Place le prélèvement identifié dans le sac ziploc et l’achemine rapidement au laboratoire. Dans certains établissements, le prélèvement doit être déposé sur glace.

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Grille d’observation :Prélèvement sanguin par canule artérielle OUI NON

Suite à l’évaluation de la condition clinique de M. Fillion, un ionogramme est prescrit.

Vérifie l’identité du patient (bracelet) et explique la procédure au patient.

Se lave les mains et met les gants non stériles.

Suspend l’alarme au moniteur.

Ouvre la compresse 4x4 de façon aseptique et l’imbibe d’alcool.

Ouvre la compresse 2x2 en préservant la stérilité.

Fixe l’adapteur Luer-Lock sans aiguille au barillet.

Prend la compresse imbibée d’alcool et désinfecte le bouchon de même que la tige du robinet.

Retire le bouchon avec la compresse imbibée d’alcool, le dépose sur la compresse 2x2 cm. N.B. Omettre cette étape si raccord « clave » en place.

Adapte la seringue de 5 mL au robinet ou au « clave ».

Place la clé du robinet la position « off » vers la valve de rinçage du système.

Aspire lentement jusqu’à ce que le volume de liquide dans la seringue soit égale à trois fois l’espace mort.

Tourne la clé du robinet la position « off » à mi-chemin entre la tige du robinet et la valve de rinçage manuel du système.

Place le barillet sur la tige du robinet (ou sur le raccord « clave »).

Place la clé du robinet la position « off » vers la valve de rinçage du système.

Insère le tube de prélèvement dans le barillet. (Si plus d’un prélèvement, insère tous les tubes un à la suite de l’autre.) Retire le dernier tube en laissant le barillet en place.

Tourne la clé du robinet la position « off » vers la tige du robinet.

Active la valve de rinçage manuel du système. Procède délicatement par intervalle de deux secondes jusqu’à ce qu’il n’y ait plus de trace de sang dans la tubulure.

Tourne la clé du robinet la position « off » vers le site d’entrée du cathéter et retire le barillet.

Place la compresse 2x2 sous la tige du robinet et actionne la valve de rinçage manuel du système jusqu’à ce qu’il n’y ait plus de trace de sang dans la tige du robinet.

En présence d’un raccord « clave », place une seringue de 5 mL à la place du barillet, tourne le robinet la position « off » vers le site d’entrée du cathéter. Actionne la valve de rinçage manuel pour rincer la tige du robinet tout en tirant légèrement sur le piston pour éviter qu’il n’adhère. Positionne la clé du robinet la position « off » vers le raccord « clave » et retire la seringue.

Positionne la clé du robinet la position « off » vers la tige du robinet.

Replace le bouchon sans le contaminer.

Réactive l’alarme sur le moniteur et observe la qualité de la courbe de la PA.

Dispose du matériel souillé. La seringue souillée doit être déposée avec les déchets à biorisque. Pour les fins du laboratoire, vider le contenu de la seringue de 5 mL au lavabo puis la replacer dans son emballage.

Place le prélèvement identifié dans le sac ziploc et l’achemine rapidement au laboratoire. Dans certains établissements, le prélèvement doit être déposé sur glace.

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