Pathologie oculaire commune Spécifique aux...

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Pathologie oculaire commune

Spécifique aux chats

Pas de prédilection de sexe ni d’âge

Généralement unilatérale

Multifactorielle

Races brachycéphales

Herpèsvirus félin type 1

Kératotomie et débridement

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Zone localisée de nécrose stromale

Dégénérescence du collagène et des kératocytes du stroma

Épithélium cornéen absent ou nécrosé

Membrane basale détériorée

Épithélium

Stroma

Zone de nécrose

Cornée saine

Épithélium

Stroma

Membrane basale

Cornée avec séquestre

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Zone localisée de nécrose stromale

Lésion cornéenne ambrée à noire

Profondeur et étendue variables

Centrale à paracentrale

3 sem 8 sem

* Une tache brune sur la cornée féline est

pathognomonique de cette pathologie

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Diagnostics différentiels

Hernie de l’iris Perforation de l’œil et dyscorie

Mélanome du limbe Rare chez le chat

Région dorso-temporale du limbe

Dermoïde de la cornée Présent à la naissance

Région temporale de la cornée

Kératomycose Rare chez le chat. Rare au Québec.

Masse brune intra-stromale

Corps étranger

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Signes cliniques et examen oculaire variables

Blépharospasme

Épiphora

Enophtalmie

Protrusion de la nictitante

Chémose

Hyperhémie conjonctivale

Néovascularisation

Anorexie

Abattement

Etc.

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Indications Animal confortable Séquestre superficiel

Principes du traitement médical Antibiotique topique

Tobramycine 0.3% ou Érythromycine 0.5%

Larmes artificielles

Antiviral topique Idoxuridine 0.1% ou Viroptic 1%

L-Lysine

Antidouleur Métacam, Buprénorphine

Sérum ophtalmique

Collier élisabethain

Corticostéroïdes

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Le séquestre peut prendre des mois à des années avant

de desquamer

Risque que le séquestre progresse

Perforation de l’oeil

Animal inconfortable

Chirurgie plus complexe

Apparence clinique

Cicatrice cornéenne importante

4 mois

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Indications

Animal inconfortable

Séquestre profond

Options du traitement chirurgical

Kératectomie superficielle seule

Kératectomie suivie d’une greffe Greffe de cornée

Greffe de conjonctive

Transposition conjonctivo-cornéenne

Greffe de biomatériaux

Péricarde bovin ou équin

Sous-muqueuse intestinale de porc

Membrane amniotique

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Applications en médecine humaine

Membrane amniotique humaine

1910 : greffe de peau

1940 : application en ophtalmologie

Intérêt émergent depuis 1995

Applications en ophtalmologie vétérinaire

Membrane amniotique équine

Fin 90 : 1ère description expérimentale

Début 2000 : 1ère application clinique

Néoplasie oculaire, brûlure chimique, ulcère fondant,

symblépharon, etc.

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Origine, préparation et préservation de la membrane

amniotique équine (MA)

MA obtenue d’une jument ayant subi une césarienne

Dissection de la MA du chorion

Rinçage de la MA avec une solution antibiotique

Mise en place de la MA sur un papier de nitrocellulose

Découpage en morceaux de 5X5 cm

Conservation à -80°C dans un milieu antibactérien, antifongique

et contenant du glycérol

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Propriétés

Anti-inflammatoires, antibactériennes, antivirales, immunologiques

Favorise l’épithélialisation, diminue la douleur, minimise la fibrose

résiduelle

Apporte oxygénation, hydratation, support et protection physique à

la cornée

Épithélium

Stroma Stroma

Membrane basale Membrane basale

MA équine avant préservation MA équine après préservation

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Technique chirurgicale

Anesthésie générale standard

Préparation standard du site chirurgical

Kératectomie superficielle

Décongélation, rinçage et coupe du greffon

Suture du greffon à la cornée

Vicryl 8-0 ou 9-0

Patron simple continu

Blépharorraphie temporaire

Soie 5-0

Points en U

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La greffe de membrane amniotique équine, suite

à la kératectomie, est une alternative valide au

traitement du séquestre cornéen félin

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Évaluer le temps de guérison, les complications,

le taux de récidive et l’apparence clinique lors

de greffe de membrane amniotique équine dans

le traitement du séquestre cornéen félin

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Recherche dans le logiciel clinique «Logivet»

Critères d’inclusion

Chats présentés en ophtalmologie au Centre Vétérinaire DMV

entre 2011 et 2014 ayant reçu un diagnostic de séquestre

cornéen

Traités par kératectomie suivie d’une greffe de membrane

amniotique équine

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34 chats avec diagnostic de séquestre cornéen confirmé

15 cas (Perte de suivi ) 19 cas

Traitement médical avec ou sans kératectomie superficielle : 13 cas

Kératectomie + greffe de conjonctive : 1 cas

Kératectomie + transposition conjonctivo-cornéenne : 2 cas

Kératectomie + greffe de membrane amniotique

équine : 3 cas (4 yeux)

Guérison chez 23% des cas au dernier suivi

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Cas 1

Persan, femelle stérilisée, 1 ½ ans

Séquestre et ulcère épithélial OD

Traitements médicaux tentés

Erythromycin 0.5% TID + Idoxuridine 0.1% TID

+ Sérum ophtalmique TID + Méloxicam SID

+ Collier élisabéthain

Lentille cornéenne

Larmes artificielles BID

Tobramycin 0.3% SID + Buprénorphine BID

6 mois entre le diagnostic et la chirurgie

Progression du séquestre

Animal inconfortable

À la présentation

Pré-op immédiat

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Temps de guérison

3 semaines

Animal confortable cliniquement

Diminution ou arrêt de la médication

Retrait du collier élisabéthain

Complication (déhiscence, infection, rejet, décoloration, etc.)

Aucune

Récidive

Aucune

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Apparence clinique - Cas 1

Post-op

immédiat 3 semaines

post-op

7 semaines

post-op

9 mois

post-op

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Apparence clinique - Cas 2

À la présentation Pré-op immédiat Post-op immédiat

3 sem post-op 7 sem post-op 9 sem post-op 5 mois post-op

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Apparence clinique - Cas 3 œil droit

3 sem post-op 7 sem post-op 9 mois post-op 1 sem post-op

À la présentation Pré-op immédiat Post-op immédiat

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Apparence clinique - Cas 3 œil gauche

À la présentation Pré-op immédiat Post-op immédiat

1 sem post-op 3 sem post-op 7 sem post-op 9 mois post-op

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Greffe de

cornée

2014(3)

Greffe de

conjonctive

2004(9)

Transposition

conjonctivo-

cornéenne

2001(6)

Greffe de

MA équine

2010(1)

Greffe de MA

équine

DMV

Nombre de

cas

13

(18 yeux)

64

(80 yeux)

15

(17 yeux)

6

(7 yeux)

3

(4 yeux)

Temps de

guérison

Moyenne de

19.2j N/D

Moyenne de

34j Rapide 3 semaines

Taux de

récidive 5% 18% 0% 0% 0%

Complica-

tions

16%

(pigmentation

cornéenne,

malacie du

greffon)

50%

(décoloration

du greffon,

rejet, abcès,

perforation,

etc)

N/D

29%

(nécrose du

greffon,

perforation)

0%

Apparence

clinique

Cicatrice

légère à

modérée

79%

N/D

Cicatrice

minimale

centrale et

opacité linéaire

100%

Cicatrice

minimale et

bonne

transparence

71%

Cicatrice

minimale et

bonne

transparence

100%

4 mois post

greffe de cornée

2 mois post

greffe de conjonctive 5 mois post

TCC

3 mois post

greffe de MA équine

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Greffe de

cornée

2014(3)

Greffe de

conjonctive

2004(9)

Transposition

conjonctivo-

cornéenne

2001(6)

Greffe de

MA équine

2010(1)

Greffe de MA

équine

DMV

Nombre de

cas

13

(18 yeux)

64

(80 yeux)

15

(17 yeux)

6

(7 yeux)

3

(4 yeux)

Temps de

guérison

Moyenne de

19.2j N/D

Moyenne de

34j Rapide 3 semaines

Taux de

récidive 5% 18% 0% 0% 0%

Complica-

tions

16%

(pigmentation

cornéenne,

malacie du

greffon)

50%

(décoloration

du greffon,

rejet, abcès,

perforation,

etc)

N/D

29%

(nécrose du

greffon,

perforation)

0%

Apparence

clinique

Cicatrice

légère à

modérée

79%

N/D

Cicatrice

minimale

centrale et

opacité linéaire

100%

Cicatrice

minimale et

bonne

transparence

71%

Cicatrice

minimale et

bonne

transparence

100%

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Greffe de membrane amniotique équine

Avantages selon nos résultats

Temps de guérison rapide

Absence de récidive

Absence de complication

Apparence clinique excellente

Disponible et sans controverse éthique

Technique rapide et facile à exécuter

Coût similaire

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Supervision

Dr Franck Ollivier DMV, PhD, DACVO et DECVO

Encadrement

Dr Hugues Lacoste DMV, MS, DACVIM

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1. Barachetti L, Giudice C, Mortellaro CM. Amniotic membrane transplantation for the treatment of feline corneal sequestrum: pilot study. Veterinary ophthalmology 2010; 13(5): 326-330.

2. Mamede A. C., Carvalho M. J., Abrantes A. M., Laranjo M., Maia C.J, Botelho M. F. Amniotic membrane : from structure and functions to clinical applications. Cell Tissue Res 2012; 349: 447-458.

3. Laguna F., Leiva M., Costa D., Lacerda R., Gimenez T.P. Corneal grafting for the treatment of feline corneal sequestrum: a retrospective study of 18 eyes (13 cats). Veterinary ophthalmology 2014; 1-6.

4. Arcelli R., Tibaldini P., Angeli G., Bellezza E. Equine amniotic membrane transplantation in some ocular surface diseases in the dog and cat: a preliminary study. Vet Res Commun 2009; 33 (Suppl 1): S169–S171.

5. Paulo S. M. Barros, Angélica M. V. Safatle, Cíntia A. Godoy, Mirian S. B. Souza, Luiz F. M. Barros, Dennis E. Brooks. Amniotic membrane transplantation for the reconstruction of the ocular surface in three cases. Veterinary Ophthalmology 2005; 8, 3, 189–192.

6. Stacy E. Andrew, Sandra Tou and Dennis E. Brooks. Corneoconjunctival transposition for the treatment of feline corneal sequestra: a retrospective study of 17 cases (1990–1998). Veterinary Ophthalmology 2001; 4, 2, 107–111.

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7. Paula D. Galera, Cassio R. Ribeiro, Harold L. Sapp, James Coleman, Wagner Fontes, Dennis E. Brooks. Proteomic analysis of equine amniotic membrane: characterization of proteins. Veterinary Ophthalmology 2014; 1–12.

8. Wendy M. Townsend, Amy J. Rankin, Jean Stiles and Sheryl G. Krohne. Heterologous penetrating keratoplasty for treatment of a corneal sequestrum in a cat. Veterinary Ophthalmology 2008; 11, 4, 273–278.

9. Heidi J. Featherstone, Jane Sansom. Feline corneal sequestra: a review of 64 cases (80 eyes) from 1993 to 2000. Veterinary Ophthalmology 2004; 7, 4, 213– 227.

10. M. Teresa Pena Gimenez, Inmaculada Morales Farina. Lamellar keratoplasty for the treatment of feline corneal sequestrum. Veterinary Ophthalmology 1998; 1, 163-166.

11. Heidi J. Featherstone, Valerie J. Franklin and Jane Sansom. Feline corneal sequestrum: laboratory analysis of ocular samples from 12 cats. Veterinary Ophthalmology 2004; 7, 4, 229– 238.

12. Caryn E. Plummer. The use of amniotic membrane transplantation for ocular surface reconstruction: a review and series of 58 equine clinical cases (2002–2008). Veterinary Ophthalmology 2009; 12, supplement 1, 17–24.

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13. F. J. Ollivier, M. E. Kallberg, C. E. Plummer, K. P. Barrie, S. O’Reilly, D. P. Taylor, K. N. Gelatt and D. E. Brooks. Amniotic membrane transplantation for corneal surface reconstruction after excision of corneolimbal squamous cell carcinomas in nine horses. Veterinary Ophthalmology 2006; 9, 6, 404–413.

14. Mary E. Lassaline, Dennis E. Brooks, Franck J. Ollivier, Andras M. Komaromy, Maria E. Kallberg and Kirk N. Gelatt. Equine amniotic membrane transplantation for corneal ulceration and keratomalacia in three horses. Veterinary Ophthalmology 2005; 8, 5, 311–317.

15. Ul Soo Choi, Philippe Labelle, Sehoon Kim, Jury Kim, Jaegwan Cha, Ki Chang Lee, Hae-Beom Lee, Nam-Soo Kim and Min-Su Kim. Successful treatment of an unusually large corneal epithelial inclusion cyst using equine amniotic membrane in a dog. Veterinary Ophthalmology 2010; 13, 2, 122–125.

16. Dulaurent T., Azoulay T., Goulle F., Dulaurent A., Mentek M., Peiffer R.L., Isard P-F. Use of bovine pericardium (Tutopatch) graft for surgical repair of deep melting corneal ulcers in dogs and corneal sequestra in cats. Veterinary Ophthalmology 2014; 17, 2, 91–99.

17. Charles L. Martin. Ophthalmic Disease in Veterinary Medecine. Manson 2010; 269 et 272.