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MANUEL DE
PRELEVEMENT
MQ MU PRE 001 Version 2
Groupe BiopyrénéesLab
Ce document ne peut être reproduit sans l’autorisation du laboratoire
Mise à jour : 24/12/2014
Manuel de Prélèvement MQ MU PRE 001 Version : 2
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Réalisé par :
Dr D. HEYRAUD
Date : 29/01/13
Signature :
ENTITE OUEST
Validé et émis par :
Mme ROUCH
Date : 29/01/13
Signature :
ENTITE EST
Validé et émis par : Dr Antoine GAYON
Date : 29/01/13
Signature :
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SOMMAIRE
Sommaire ................................................................................ 4
Introduction ............................................................................ 6
Présentation du Groupe BiopyrénéesLab .......................... 7 Groupe BiopyrénéesLab ......................................................................... 9
Les laboratoires .................................................................................... 10
Saint – Gaudens .............................................................................................. 10
Lannemezan .................................................................................................... 11
Bagnères de Luchon ........................................................................................ 12
Saint – Girons ................................................................................................. 13
Carbonne ......................................................................................................... 14
Tarbes .............................................................................................................. 15
Lourdes – Argeles Gazost ............................................................................... 16
Analyses et Prélèvements .................................................... 17 1. Liste des analyses ............................................................................. 19
2. Liste du matériel à disposition des préleveurs ................................. 19
2.1. Tubes pour prélèvements sanguins.......................................................... 19
2.2. Matériel pour prélèvements bactériologiques ......................................... 26
2.3. Prélèvements urinaires sur pots de recueil .............................................. 28
2.4. Autres Matériels ...................................................................................... 29
2.5. Matériel périmé ....................................................................................... 30
3. L’Ordonnance et la fiche de prélèvement ........................................ 30
3.1. Ordonnance ............................................................................................. 30
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3.2. Fiche de prélèvement .............................................................................. 31
4. Identification de l’échantillon .......................................................... 33
5. Le prélèvement sanguin ................................................................... 34
5.1. Préparation du patient.............................................................................. 34
5.2. Prélèvements à réaliser impérativement au laboratoire ........................... 35
5.3. Fiches de consentements et d’attestation de consultation obligatoire ..... 36
5.4. Déroulement du prélèvement sanguin ..................................................... 36
6. Prélèvements bactériologiques ......................................................... 39
6.1. Généralités ............................................................................................... 39
6.2. Cas particulier : prélèvements urinaires à l’aide d’un pot de recueil ...... 41
7. Hygiène et sécurité ........................................................................... 43
7.1. Elimination du matériel ........................................................................... 43
7.2. Accident d’exposition au sang (A.E.S.) .................................................. 44
8. Transport et conservation avant analyse .......................................... 44
9. Examens urgents .............................................................................. 45
10. Stockage des échantillons et rajout d’analyse................................ 46
**** Réferences bibliographiques **** ............................................. 47
*** Sommaire des Annexes *** .......................................................... 48
Annexe 1 Liste des analyses et conditions particulières .... 49
Annexe 2 Conduite à tenir en cas d’AES .................................. 79
Annexe 3 Transport des échantillons .......................................... 85
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INTRODUCTION
Le groupe BiopyrénéesLab est heureux de vous adresser son Manuel de prélèvement. Ce document a été élaboré pour vous offrir le meilleur service dans la prise en charge de nos patients communs.
L’objectif de ce manuel de prélèvement, qui comporte l’ensemble des analyses réalisables dans nos laboratoires, est d’expliciter le plus simplement et exhaustivement possible les différentes informations nécessaires à la phase pré-analytique selon les nouvelles exigences réglementaires (ordonnance 2010-46 du 16 janvier 2010).
Parmi ces exigences, et notamment celles de la norme ISO EN NF 15189, les conditions de réalisation et de transmission des prélèvements biologiques constituent une étape importante impliquant une étroite collaboration entre les préleveurs et le laboratoire. Le respect de ces exigences est essentiel pour garantir des résultats d’analyses fiables.
Votre implication et votre participation à cette étape pré-analytique nous permettent, ensemble, d’améliorer le service rendu aux patients.
Nous souhaitons donc que ce Manuel de prélèvement vous apporte une aide utile et précieuse dans votre pratique professionnelle.
Nous restons à votre écoute pour toute remarque ou suggestion qui pourrait contribuer à faciliter notre partenariat.
Vous pouvez également consulter ce manuel de prélèvement sur notre site internet : www.biopyrenees.fr.
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PRESENTATION DU
GROUPE BIOPYRENEESLAB
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GROUPE BIOPYRENEESLAB
Le groupe BioPyrénéesLab est le fruit d'une association de onze laboratoires de biologie médicale situés dans les Pyrénées centrales.
BioPyrénéesLab est associé au réseau Cerba European Lab (CEL). Les laboratoires de ce réseau partagent des activités complémentaires, des valeurs communes fondées sur l'éthique médicale, la satisfaction des patients et la qualité au coeur du service rendu.
Notre site internet : www.biopyrenees.fr
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LES LABORATOIRES
SAINT – GAUDENS
Biologistes
Dr Antoine GAYON Médecin biologiste D.E.S. de Biologie Médicale Ancien interne des Hôpitaux
Dr Valérie HERVOUIN Pharmacien biologiste D.E.S. de Biologie Médicale Ancien interne des Hôpitaux
Dr Dominique HEYRAUD Médecin biologiste D.E.S. de Biologie Médicale Ancien interne des Hôpitaux
Dr Mathieu KUENTZ Pharmacien biologiste D.E.S. de Biologie Médicale Ancien interne des Hôpitaux
Laboratoire DE LARRARD
12 rue du Pape Clément V 31800 St GAUDENS Tel : 05 61 94 62 00 Fax : 05 61 94 70 16
Horaires d’ouverture
Du lundi au Vendredi de 7h30 à 19h Le Samedi de 7h30 à 18h
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LANNEMEZAN
Biologistes
Dr Claire THEBAULT Médecin biologiste D.E.S. de Biologie Médicale Ancien interne des Hôpitaux
Laboratoire THEBAULT
200 Rue du 8 mai 1945 65300 LANNEMEZAN Tel : 05 62 98 23 11 Fax : 05 62 98 23 14
Horaires d’ouverture
Du lundi au Vendredi de 7h30 à 19h Le Samedi de 7h30 à 14h
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BAGNERES DE LUCHON
Biologistes
Dr Claude PINOS Pharmacien biologiste C.E.S. Bactériologie, Virologie, Hématologie, Parasitologie, Mycologie, Biochimie clinique, Immunologie, Pathologie médicale Ancien interne des Hôpitaux Ancien élève de l’Institut Pasteur de Lille
Laboratoire PINOS
4 place Gabriel ROUY 31110 BAGNERES DE LUCHON Tel : 05 61 79 15 39 Fax : 05 61 79 16 99
Horaires d’ouverture
Du lundi au Vendredi de 7h30 à 12h00 puis de 14h00 à 18h00. Le Samedi de 7h30 à 12h
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SAINT – GIRONS
Biologistes
Dr Marie Laure BRESSOLLES Pharmacien biologiste D.E.S. Biologie médicale Ancien interne des Hôpitaux Lauréat des Universités
Dr Françoise PERES Pharmacien biologiste D.E.S. Biologie médicale D.U. Antibiothérapie hospitalière Ancien interne des Hôpitaux Ancien attaché des Hôpitaux
Dr Thérèse COUZINET Pharmacien biologiste D.E.S. Biologie médicale
Laboratoire du CHAMP DE MARS
2, place Jean Ibanès 09200 St GIRONS Tel : 05 61 66 08 64 Fax : 05 61 04 88 92
Horaires d’ouverture
Du lundi au Vendredi de 7h30 à 19h Le Samedi de 8h à 14h
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CARBONNE
Biologistes
Dr Marie Laure BRESSOLLES Pharmacien biologiste D.E.S. Biologie médicale Ancien interne des Hôpitaux Lauréat des Universités
Dr Françoise PERES Pharmacien biologiste D.E.S. Biologie médicale D.U. Antibiothérapie hospitalière Ancien interne des Hôpitaux Ancien attaché des Hôpitaux
Dr Thérèse COUZINET Pharmacien biologiste D.E.S. Biologie médicale
Laboratoire de CARBONNE
43, place de la République 31390 CARBONNE Tel : 05 61 87 86 21 Fax : 05 61 87 86 77
Horaires d’ouverture
Du lundi au Vendredi de 7h30 à 18h30 Le Samedi de 8h30 à 11h30
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TARBES
Biologistes
Dr Pierre AURIOL Biologiste médical D.E.S. Biologie médicale Ancien interne des Hôpitaux
Dr Jacques DALEAS Biologiste médical C.E.S. bactériologie, virologie, immunologie, hématologie, biochimie, pathologie médicale DU antibiothérapie clinique Ancien interne des Hôpitaux
Dr François DAUTEZAC Biologiste médical D.E.S. Biologie médicale Ancien interne des Hôpitaux
Dr Bruno CLUZAN Biologiste médical D.E.S. Biologie médicale Ancien interne des Hôpitaux
Laboratoire BioAdour et Horaires d’ouvertures
Laboratoire Tarbes - Larrey 11 Bis r Larrey 65000 TARBES Tel : 05 62 34 19 59 Fax : 05 62 34 41 94
Du lundi au vendredi : 7h30-12h30 / 13h30-19h Le samedi : 7h30 / 13h
Laboratoire de Tarbes - Joffre 24 av Maréchal Joffre 65000 TARBES Tel : 05 62 93 20 84 Fax : 05 62 93 02 Du lundi au vendredi : 7h15-12h15 / 13h45-18h30 Le samedi : 7h15 / 12h
Laboratoire de Tarbes - Verdun 1 av Bertrand Barère 65000 TARBES Tel : 05 62 93 43 39 Fax : 05 62 51 11 32
Du lundi au vendredi : 7h30-12h30 / 13h30-18h30 Le samedi : 8h / 12h30
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LOURDES – ARGELES GAZOST
Biologistes
Anne ROUCH Biologiste médical C.E.S. Bactériologie, virologie, immunologie, hématologie, parasitologie et pathologie médicale Ancien interne des Hôpitaux
Philippe de SEABRA Biologiste médical C.E.S. bactériologie, virologie, immunologie, hématologie, biochimie, pathologie médicale Ancien interne des Hôpitaux
Dr Denise CLUZAN Biologiste médical D.E.S. Biologie médicale Ancien interne des Hôpitaux
Dr Jacques DALEAS Biologiste médical C.E.S. bactériologie, virologie, immunologie, hématologie, biochimie, pathologie médicale DU antibiothérapie clinique Ancien interne des Hôpitaux
Laboratoire AlphaBio et horaires d’ouvertures
Laboratoire d'Argelès-Gazost 12, av Général Leclerc 65 400 Argelès-Gazost Tel : 05 62 90 34 56 Fax : 05 62 97 59 92 Du lundi au vendredi : 7h30-12h30 / 13h30-18h Le samedi : 8h / 12h Laboratoire de Lourdes Foch 15, pl Champ Commun 65 100 Lourdes Tel : 05 62 94 01 71 Fax : 05 62 94 92 22
Laboratoire de Lourdes République 2, pl République 65 100 Lourdes Tel : 05 62 94 56 65 Fax : 05 62 94 74 21 Du lundi au vendredi : 7h30 / 18h30 Le samedi : 7h30 / 13h
Du lundi au vendredi : 8h-13h / 14h-16h Fermé le samedi
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ANALYSES ET
PRELEVEMENTS
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1. L ISTE DES ANALYSES La liste des analyses effectuées au laboratoire et les principales analyses transmises à un laboratoire sous-traitant sont disponibles dans deux documents :
� Liste des analyses par ordre alphabétique (annexe 1), � Guide de prélèvements sanguins : document pratique
correspondant à la liste simplifiée des analyses.
2. L ISTE DU MATERIEL A DISPOSITION DES PRELEVEURS
2.1. TUBES POUR PRELEVEMENTS SANGUINS PRESENTATION DES TUBES DE PRELEVEMENT
Tube citrate de sodium 9 NC
Tube sec avec gel séparateur de sérum
Tube sec sans additif
Tube héparine de lithium avec gel séparateur de plasma
Tube fluorure de sodium
Tube EDTA K2
Tube citrate de sodium 4 NC, si fourni
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CONDITIONNEMENT DES TUBES DE PRELEVEMENT
Ces tubes sont conditionnés dans des boites de prélèvement conformes à la législation. Nous fournissons :
� Des boites de prélèvement standard qui contiennent également
♦ 2 aiguilles de sécurité,
♦ un corps de pompe (si les préleveurs extérieurs n’en détiennent pas un stock),
♦ éventuellement, une lingette alcoolisée,
♦ éventuellement, un pansement,
♦ une liste simplifiée des analyses les plus courantes avec au verso, des recommandations pour l’utilisation du matériel de sécurité (aiguilles Eclipse et unité de prélèvement).
� Des boites pour prélèvements difficiles (sur demande motivée et si fournies par le site) Elles contiennent en plus du matériel classique
♦ soit des unités de prélèvements (ailette) avec tube neutre de purge,
♦ soit des seringues.
1 BOITE = 1 PATIENT Chaque boite est à l’usage exclusif d’un seul patient. Ne jamais grouper à l’intérieur d’une même boite ou d’une même poche les échantillons provenant de patients différents.
� Des sachets de tubes pour prélèvements particuliers (sur demande motivée et si fournies par le site)
Elles contiennent :
♦ un paquet de tubes demandés,
♦ et éventuellement, une étiquette rappelant les analyses pour lesquelles ce type de tubes est préconisé.
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ROLE DES ADDITIFS PRESENTS DANS LES TUBES
HEPARINATE DE LITHIUM : Anticoagulant puissant (anti-thrombine)
Il empêche la transformation du fibrinogène en fibrine.
� Il est essentiel pour le ionogramme et la réserve alcaline (bicarbonates).
� Il permet également la réalisation de la majorité des analyses de chimie ou d’immuno-analyses.
La présence d’un gel séparateur le rend particulièrement adapté pour ces dosages où il représente le choix préférentiel.
� ATTENTION toutefois à certaines sérologies, certains dosages hormonaux ou aux bilans d’auto immunité qui ne sont pas toujours réalisables sur ce tube (cf. Liste des analyses et conditions particulières – Annexe 1).
� Ce tube est INTERDIT pour : � les Tests de Coagulation (TP, TCA …),
� l’Electrophorèse des Protéines (présence du fibrinogène).
� Ce tube est NON APPROPRIE pour la cytologie hématologique (NF).
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SEC AVEC OU SANS SILICE : activateur de la coagulation irréversible
Il permet l’obtention du Sérum après coagulation.
� Il permet la réalisation des quelques analyses de Chimie et d’Immuno-analyses qui ne sont pas réalisables sur tube héparine. Exemples : Auto-immunité, Electrophorèse des Protéines, Sérothèque des sérologies... (cf. Annexe 1)
� ATTENTION : Le ionogramme ou la glycémie peuvent être légèrement faussés ou se modifier dans le temps.
� Ce tube est INTERDIT pour :
� tout examen d’hémostase (TP, TCA …). Tous les facteurs de la coagulation ont été consommés par la formation du caillot.
� la cytologie hématologique (NF).
FLUORURE DE SODIUM :
anticoagulant lié à l’oxalate de K+ associé Il inhibe la consommation du sucre par blocage enzymatique.
� Il permet la stabilité du dosage de la glycémie pendant 24 heures.
Selon la technique utilisée, il peut permettre le dosage de l’HbA1c si pas de tube EDTA prélevé. Consulter le laboratoire.
� Ce tube est INADAPTE à la plupart des autre dosages.
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CITRATE DE SODIUM :
anticoagulant réversible (chélateur de Ca++) Il entraîne une décalcification du plasma (la recalcification est effectuée au moment des analyses).
� Ce tube est le SEUL MILIEU UTILISABLE POUR LES BILANS
D’HEMOSTASE (= COAGULATION). Remarque : La quantité de citrate liquide présent dans le tube entraîne une dilution de l’échantillon au 9/10 qui doit être constante. POUR ETRE CONFORME, LE TUBE DOIT ETRE REMPLI AU
MOINS JUSQU’AU TRAIT DE REMPLISSAGE MINIMUM.
� Ce tube est INADAPTE à la plupart des autre dosages.
EDTA = COMPLEXON :
anticoagulant irréversible – K2 (chélateur du Ca++) � Il permet la meilleure conservation des éléments figurés du sang (NF, Plaquettes, Réticulocytes).
� Il est utilisé également pour :
� VS, HbA1c, Groupe sanguin, Coombs, Groupe HLA,
� BNP,
� Amonémie (à l’exception des urgences hospitalières),
� Immunophenotypage
� Certains médicaments … (cf. Annexe 1).
Remarque : Sa forme micronisée n’entraîne pas de phénomène de dilution et donc le niveau de remplissage n’est pas essentiel.
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CITRATE DE SODIUM * :
anticoagulant réversible (chélateur de Ca++) (Dilution finale de l’échantillon au ¼).
� Ce tube est utilisé UNIQUEMENT POUR VS. (Il permet la réalisation de la VS directement sur le tube selon la méthode référence de Westergreen). La quantité d’anticoagulant présent dans le tube entraine une dilution de l’échantillon au 4/5. Remarque : Pour être conforme le tube doit être rempli entre les traits de remplissage minimum et maximum.
* SI CE TUBE N’EST PAS FOURNI, PRELEVER SUR TUBE EDTA.
� Cette dilution est IMPROPRE à la réalisation des tests de coagulation.
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CHOIX SIMPLIFIE DES TUBES DE PRELEVEMENT
Choix des tubes de façon simplifiée
Si tests de COAGULATION Tube citrate TP-INR, TCA, Fibrinogène
Héparine, anti Xa, D-DIMERES(1), Anti thhrombine III, Protéines S, Protéines C Résistance à la protéine C activée…
Si IONOGRAMME seul Tube heparine gel
Tube heparine gel Si une des analyses suivantes (x2, pour Bioadour et Alphabio)CHIMIE, IMMUNOLOGIE ETSEROLOGIE, HORMONOLOGIEMARQUEURS TUMORAUX ou Tube sec
avec ou sans gel
+Si GLYCEMIE Tube fluorure
Si NF, plaquettes, Réticulocytes, Tube EDTAHBA1C, CTX, BNPGROUPES SANGUINS, RAI,Ciclosporine, Prograf, Tacrolimus, Sirolimus,Typage lymphocytaire, Groupage HLA
Si VS Tube VS si absent tube EDTA
(1) Pour toute demande après 14h00, pour les sites Pinos, Thébault, Champ de Mars et Carbonne :
- MARQUEURS CARDIAQUES tube spécifié plus haut(Troponine, Myoglobine) + - D DIMERES tube EDTA
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2.2. MATERIEL POUR PRELEVEMENTS BACTERIOLOGIQUES
Flacons d’hémoculture BACT/ALERT contenant un indicateur de la croissance bactérienne à température ambiante
Nos boites de prélèvements bactériologiques contiennent des écouvillons avec un milieu de transport permettant la conservation des germes pendant au moins 24 heures
Flacons pour Hémoculture
Ecouvillons
Flacons pour ECBU, recueil des selles, compte d’Addis, urines de 24 h
A identifier par le patient : Nom, prénom et date de naissance
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CONDITIONNEMENT DU MATERIEL
Chaque kit de prélèvement comprend :
♦ une fiche de prélèvement, ♦ une fiche d’instruction pour le prélèvement et
éventuellement de renseignements cliniques spécifiques.
� ECBU (Examen cytobactériologique des urines)
Les flacons sont dans une double poche avec un buvard absorbant.
� Prélèvement de selles (coproculture, examen parasitologique des selles)
Les flacons sont dans une double poche.
� Prélèvements bactériologiques superficiels
L’écouvillon avec milieu de transport est emballé dans une pochette identifiée au nom du laboratoire.
� Prélèvements urétro-génitaux
Le matériel est conditionné dans une boite spéciale “prélèvement gynécologique” avec :
♦ un écouvillon avec milieu de transport E – Swab, permettant chez la femme d’utiliser un seul écouvillon pour le prélèvement du col et des culs de sac vaginaux et de réaliser les analyses de bactériologie, mycologie, PCR, et culture cellulaire.
♦ un flacon d’urines.
� Sécrétions broncho-pulmonaires
Les flacons stériles sont dans une double poche avec un buvard absorbant.
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� Hémocultures
Le matériel est dans une boite spécifique “hémoculture” avec :
♦ un flacon aérobie, ♦ un flacon anaérobie, ♦ le corps de pompe adapté (si les préleveurs
extérieurs n’en détiennent pas un stock), ♦ une unité de prélèvement (ailette).
� Prélèvements articulaires
Les tubes nécessaires sont fournis par le laboratoire (sur demande motivée). Eventuellement, selon le site, une boite « prélèvements articulaires » est transmise avec :
♦ un tube sec stérile pour la Bactériologie,
♦ un tube héparine sodium pour la Cytologie et la Chimie,
♦ une seringue 20 ml,
♦ une aiguille IM.
2.3. PRELEVEMENTS URINAIRES SUR POTS DE RECUEIL
Sont fournis par le laboratoire dans une pochette identifiée au nom du laboratoire :
♦ un flacon spécifique de recueil des urines,
♦ un tube vert et un tube jaune/rouge pour la réalisation des CBU,
♦ un tube ocre pour la réalisation des analyse de chimie urinaire,
♦ une fiche de prélèvement,
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♦ une fiche d’instruction pour le prélèvement et éventuellement de renseignements cliniques spécifiques.
CBU = +
CHIMIE URINAIRE = (Glycosurie, albuminurie)
2.4. AUTRES MATERIELS
En fonction des prescriptions médicales, le matériel suivant est éventuellement utilisé :
♦ flacons pour recueil d’urines de 24 heures,
♦ flacons pour compte d’Addis,
♦ lames pour Scotch test (recherche d’oxyure …).
♦ flacons pour recueil de sperme (analyse : spermogramme, spermo - cytogramme, spermoculture),
♦ matériel pour frottis Cervico – vaginaux : une brosse « cervex brush », un flacon fixateur à bouchon bleu et une fiche de renseignements pour les frottis cervico-vaginaux,
♦ HPV oncogène (Papillomavirus),
♦ gazométrie artérielle,
♦ aspiration nasopharyngée/bronchique,
♦ sondes gastriques, vésicales, aspiglaire (Test de Hüner).
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2.5. MATERIEL PERIME
Le matériel de prélèvement vous est remis avec une date de péremption éloignée.
En cas d’usage peu fréquent ou de stock non renouvelé, il se peut que les dates de péremption soient dépassées. Nous vous rappelons qu’il est de votre responsabilité de vérifier que le matériel ne soit pas périmé au moment de son utilisation.
En présence de matériel périmé, remettre celui-ci à la coursière du laboratoire ou le ramener directement au laboratoire en spécifiant bien qu’il s’agit de matériel périmé.
3. L’O RDONNANCE ET LA FICHE DE PRELEVEMENT
3.1. ORDONNANCE L’ordonnance est à joindre avec la fiche de prélèvement.
L’ordonnance doit obligatoirement comporter :
♦ identification du patient,
♦ nom et prénom du médecin prescripteur,
♦ numéro d’identification du prescripteur,
♦ adresse complète du prescripteur,
♦ téléphone et/ou fax du prescripteur,
♦ date et signature du prescripteur.
Coller sur l’ordonnance l’étiquette code-barrée envoyée au patient avec ses derniers résultats, sans masquer le nom inscrit sur l’ordonnance. Bien vérifier que pour le patient à prélever, l’identité inscrite sur l’ordonnance et sur les étiquettes est bien la même (attention dans une même famille).
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En l’absence d’ordonnance, les informations ci-dessus seront reportées sur la fiche de prélèvement. Les ordonnances sont systématiquement scannées au laboratoire et, en cas de renouvellement, une copie de l’ordonnance est renvoyée au patient avec les résultats.
3.2. FICHE DE PRELEVEMENT Toutes les rubriques de la fiche doivent être impérativement renseignées :
� Identification du patient
Coller une étiquette envoyée au patient avec ses derniers résultats.
Ou Remplir les différents champs :
♦ nom, ♦ prénom, ♦ date de naissance, ♦ sexe, ♦ nom de jeune fille, ♦ adresse.
� Prélèvement Les réponses sont OBLIGATOIRES :
♦ identité du préleveur, ♦ date et heure du prélèvement, ♦ nombre de tubes prélevés, en répondant dans les
cases en fonction de la nature du ou des tubes prélevés (selon les sites).
� Examens demandés A remplir en l’absence d’ordonnance jointe.
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Dans le cas d’utilisation de cette fiche comme ordonnance, ne pas oublier la signature et le tampon du médecin prescripteur.
� Renseignements cliniques et Traitement Renseigner si possible :
♦ la raison du prélèvement, ♦ le contexte clinique, ♦ le traitement suivi, ♦ le poids si le dosage de créatinine est demandé, ♦ en cas de dosage de médicaments, indiquer la
posologie, l’heure et la date de la dernière prise, ainsi que le poids et la taille du patient.
� Résultats Cocher la case :
♦ « Au laboratoire » si le patient vient chercher son résultat,
♦ « A poster » au patient, ♦ « Par mail sécurisé » au patient, indiquer
l’adresse mail, ♦ « A faxer » au médecin, ♦ « URGENT » s’il s’agit d’une urgence médicale
(précisé par le médecin).
� Renseignements administratifs Ils sont indispensables pour la transmission aux organismes payeurs :
♦ régime obligatoire, ♦ régime complémentaire, ♦ numéro de sécurité sociale, ♦ nom et prénom de l’assuré si le patient n’est pas
l’assuré.
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Points de non conformités
Toute ambiguïté dans l’identification du patient, toute fiche de prélèvement incomplète, l’absence de prescription, entraînent une non conformité qui peut aboutir à la non réalisation des analyses.
4. IDENTIFICATION DE L ’ECHANTILLON
Chaque échantillon biologique doit être parfaitement identifié :
� En collant une étiquette fournie par le laboratoire.
Cette étiquette doit être collée sur l’étiquette blanche du tube, au ras du bouchon, de haut en bas, en laissant impérativement un espace permettant de vérifier le niveau de remplissage du tube.
� En l’absence d’étiquette, noter au stylo nom et prénom sur l’échantillon primaire et remplir de façon complète la partie identification du patient de la fiche de prélèvement qui comporte les informations complémentaires obligatoires (nom, prénom, date de naissance, sexe, nom de jeune fille) - la totalité de ces informations obligatoires difficilement inscriptible sur l’échantillon.
Points de non conformités
Toute ambiguïté dans l’identification des échantillons primaires entraînent une non conformité qui peut aboutir à la non réalisation des analyses.
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5. LE PRELEVEMENT SANGUIN
5.1. PREPARATION DU PATIENT
� Le jeûne assure une meilleure qualité des sérums et des plasmas.
Durant le jeûne, il est possible de boire un verre d’eau. Il est recommandé de prendre un repas léger la veille au soir.
L’état de jeûne est un des éléments permettant la bonne exécution technique des analyses et une interprétation pertinente des résultats.
Il existe deux causes d’erreurs en l’absence de jeûne, soit par influence directe, soit par artéfact analytique dû à la lipémie.
Il est généralement admis que toute variation inférieure à 5% peut être considérée comme négligeable.
♦ Une période de jeûne stricte d’au moins 12 heures est indispensable pour le dosage des triglycérides, du bilan lipidique, du phosphore, voire du glucose (jeûne ≥ à 10 h).
♦ De nombreux autres dosages nécessitent un état de jeûne d’au moins 4 heures tels que l’albumine, l’acide urique, le fer, les transaminases, l’amylase, la créatinine, l’urée… (cf. Annexe 1 « Liste des analyses et conditions particulières »).
♦ Pour les autres analyses ne nécessitant pas un état de jeûne, il est toutefois recommandé d’effectuer le prélèvement, si possible, au moins 2 heures après un repas pauvre en matières grasses.
� Des horaires de prélèvement sont à respecter pour certaines analyses :
La prolactine se prélève après 20 minutes de repos sur pool le matin après 9h (au moins 2h après le lever).
Le cortisol doit être prélevé entre 8h et 9h du matin.
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Les hormones : FSH, LH, Oestradiol doivent être prélevées préférentiellement le matin et selon la période du cycle précisé par le prescripteur (entre le 3e et le 5e jour du cycle en cas d’exploration de la réserve ovarienne). Chez une patiente en aménorrhée, il n’y a pas de jour particulier.
Les principaux horaires particuliers sont mentionnés dans la liste des analyses (annexe 1).
� Conformément à la nomenclature des actes de biologie médicale, le dosage de Médicaments nécessite l’obtention de renseignements à reporter sur la fiche de prélèvement :
♦ les renseignements spécifiques au médicament : - nom du médicament, - dose journalière, - date et heure de la dernière prise.
♦ la date et l’heure du prélèvement, ♦ l’âge, la taille, le poids du sujet, ♦ les raisons de la prescription : recherche d’efficacité et/ou
toxicité, ♦ la date du début de traitement et/ou de la modification de
la posologie.
� Un régime alimentaire particulier est parfois indispensable pour la réalisation de certaines analyses. La nécessité d’un régime peut être visualisée dans la liste des analyses (annexe 1).
5.2. PRELEVEMENTS A REALISER IMPERATIVEMENT AU LABORATOIRE
� Les prélèvements demandés par la préfecture car l’identité du patient doit être certifiée par le biologiste responsable de la réalisation des analyses.
� Les pools d’hormonologie et tests dynamiques.
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� Les prélèvements nécessitant une congélation très rapide du sérum ou du plasma. (cf. Annexe 1)
5.3. FICHES DE CONSENTEMENTS ET D’ATTESTATION DE CONSULTATION OBLIGATOIRE
� Recherche de Cytogénétique,
� Génétique moléculaire,
� Dépistage du risque de Trisomie 21.
N.B. : Les fiches de consentements sont fournies sur demande par le laboratoire ou sur le site internet http://www.lab-cerba.com/ Espace médecin. (Liens utiles Protocoles et feuilles de renseignements)
5.4. DEROULEMENT DU PRELEVEMENT SANGUIN � Discrétion et confidentialité sont nécessaires.
� Le patient doit être confortablement installé.
� Vérification systématique de l’identité du patient avant le prélèvement.
� Identification des tubes.
� Le port de gant est recommandé.
� Le choix du site de ponction doit être soigneux. Ne jamais prélever sur un bras qui est perfusé.
� Désinfection large du site de ponction.
� La ponction de sang veineux doit être réalisée rapidement et sans douleur importante.
� Le garrot ne doit être utilisé que pour faire saillir la veine. Son maintien en place ne doit pas excéder 1 minute et il doit être relâché dès que le sang s’écoule dans le 1er tube.
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� Ordre de prélèvement des tubes :
Flacon Aérobie
Flacon Anaérobie
Tube Citrate de sodium
Tube Sec
Tube SST avec gel séparateur
Tube Hépariné PST avec gel séparateur
Tube EDTA K2
Tube Florure de sodium
Tube VS
Attention en cas d’utilisation d’unité de prélèvement à ailettes, avant de prélever le tube citrate (bouchon bleu), il est impératif de toujours prélever un tube neutre (bouchon beige avec cape transparente – ou à défaut, un tube sec) afin de purger l’air présent dans la tubulure et permettre ainsi un bon remplissage du tube citrate. Tube neutre fourni sur demande.
� Lors du prélèvement, les tubes sont positionnés en dessous du point de ponction avec l’étiquette orientée vers le bas pour pouvoir visualiser l’arrivée du sang dans le tube.
Chronologie à respecter pour éviter toute contamination
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� Le tube citraté (bouchon bleu) doit impérativement être bien rempli pour respecter le rapport sang/anticoagulant. Ce tube présente un indicateur de remplissage minimum (bande dépolie tout autour du tube) qui apporte une solution fiable, simple et visible pour contrôler le remplissage suffisant du tube, selon le critère d'acceptabilité recommandé (recommandations GEHT - 2007).
� Veiller également au bon remplissage des autres tubes
� A chaque changement de tube, homogénéiser par plusieurs retournements lents tous les tubes.
3 à 4 fois le tube citraté ; 5 à 6 fois le tube sec ; 8 à 10 fois les autres tubes
� Enlever l’aiguille puis comprimer la veine avec un coton.
� Maintenir une pression ferme durant au moins une minute pour éviter la formation d’un hématome.
� Mettre un pansement.
Signaler sur la fiche de prélèvement tout problème survenu au cours du prélèvement.
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6. PRELEVEMENTS BACTERIOLOGIQUES
6.1. GENERALITES
Les prélèvements bactériologiques sont :
� Soit à visée diagnostique :
Leurs résultats conduisent à l’instauration d’un traitement. On peut distinguer :
♦ les prélèvements provenant de zones normalement stériles (urines, tissus profonds, sang, pus profonds, liquide céphalo-rachidien, prélèvements per-opératoires…). Ces échantillons sont d’interprétation facile.
♦ la recherche systématique d’une bactérie pathogène nommément désignée dans un contexte clinique bien défini :
- Streptocoque A (Streptococcus pyogenes) et Angine, - Chlamydiae trachomatis et IST, - Mycobacterium tuberculosis et tuberculose, - Streptocoque B (Streptococcus agalactiae) et
Grossesse, - Bactérie entéropathogène (Salmonella spp,
Campylobacter spp, …) et Diarrhée. Ces échantillons posent peu de problèmes même s’ils sont contaminés par les flores commensales.
♦ les prélèvements provenant de zones non stériles (peau, muqueuse, plaies,….). Ces prélèvements superficiels sont d’obtention plus aisée, mais ils sont d’interprétation plus délicate.
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� Soit à visée épidémiologique : ♦ Prélèvements destinés à prévenir la survenue d’infections
nosocomiales : - Recherche de Bactérie Multi Résistante (BMR).
♦ Recherche systématique d’une bactérie nommément désignée : - Staphylocoque doré au niveau nasopharyngé dans
certaines professions. ♦ Prélèvement destiné à connaitre la flore résidente d’un
service hospitalier ou d’une maison de retraite.
Pour tout prélèvement bactériologique, il est indispensable de connaitre :
♦ la nature exacte du site prélevé, ♦ si possible, les renseignements cliniques, ♦ si une antibiothérapie est déjà en cours ♦ la date et l’heure du prélèvement.
Ces éléments sont essentiels pour l’interprétation des résultats.
Comme pour les prélèvements sanguins, l’identification des prélèvements bactériologiques doit être complète et sans équivoque.
Points de non conformités
Les échantillons bactériologiques dont les garanties de qualité sont insuffisantes ne seront pas acceptés et, conformément à la réglementation, les motifs du refus seront portés à la connaissance du prescripteur et du patient
Les fiches d’instructions pour les prélèvements bactériologiques sont disponibles en annexe 1.
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Pour les prélèvements réalisés par le patient lui-même, les préconisations sont décrites sur les bons de renseignements cliniques fournis avec le kit de prélèvement. Il est impératif que le patient suive ces recommandations. Le laboratoire se tient à la disposition de chaque patient pour lui fournir de plus amples explications.
6.2. CAS PARTICULIER : PRELEVEMENTS URINAIRES A L ’AIDE D ’UN POT DE RECUEIL
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♦ Respecter l’ordre de prélèvement des tubes :
� �
En cas de faible volume d'urines, privilégier le tube destiné à la bacteriologie : tube à bouchon vert
♦ Veiller à respecter les niveaux de remplissage. ♦ Homogénéiser par 8 à 10 retournements. ♦ Retourner au laboratoire les 3 tubes (y compris non
remplis) avec la fiche de transmission et la prescription médicale dans le sachet plastique.
♦ Conserver les tubes à température ambiante. A transférer au laboratoire dans les 48h.
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7. HYGIENE ET SECURITE
7.1. ELIMINATION DU MATERIEL
Conformément à la législation en vigueur, l’élimination des déchets à risque infectieux (DASRI) est à la charge du préleveur (décret n° 97-1048 du 6 novembre 1997).
La filière d’élimination des déchets doit être conduite de manière à ne pas compromettre la santé et la sécurité des préleveurs, du personnel de collecte, du personnel de laboratoire et à ne pas polluer l’environnement.
Pour leur élimination, les matériels utilisés pour les prélèvements sont classés en deux catégories :
� les matériels piquants ou coupants doivent être obligatoirement recueillis dans des récipients conformes à la réglementation (Réf. NF X 30-500) (décret précité) ;
� les autres matériels qui constituent des déchets d’activités de soins à risque infectieux au sens du décret n° 97-1048 doivent être éliminés conformément à la réglementation en vigueur (décret précité).
Points de non conformités
- L’absence d’élimination du matériel piquant ou coupant dans un récipient conforme à la réglementation. - L’absence d’élimination des déchets d’activités de soins à risque infectieux
Le non respect de l’élimination du matériel utilisé expose le personnel du laboratoire au risque d’AES (Accident d’Exposition au Sang).
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7.2. ACCIDENT D ’EXPOSITION AU SANG (A.E.S.)
La personne victime d’un AES doit être immédiatement adressée aux urgences du centre hospitalier le plus proche, une déclaration d’accident du travail doit être envoyée dans les 24 heures à la sécurité sociale ainsi qu’une notification de l’accident au service de la médecine du travail dont dépend la personne.
Une procédure de conduite à tenir en cas d’AES est jointe en annexe (annexe 2).
8. TRANSPORT ET CONSERVATION AVANT ANALYSE
Le transport des échantillons doit respecter des règles qui assurent l’intégrité de l’échantillon et la sécurité des personnels. Ces règles sont retranscrites dans des documents internes au laboratoire, fournis en annexe 3. Elles fixent les conditions particulières de délai de transport, de température de conservation et d’intégrité de l’emballage des échantillons biologiques.
Tous les prélèvements nécessitent d’être transportés à température ambiante (entre 15°C et 25°C) sauf les ECBU et les coprocultures.
Les ECBU, si les tubes de milieux de transport sont utilisés, sont transportés et stockées à température ambiante, pendant une durée maximale de 48h. Sinon, ils sont acheminés à une température de +5°C (+/-3°C) permettant une conservation 24 heures.
Les coprocultures sont recueillis dans des flacons qui doivent être placés au frais +5°C (+/-3°C) - Conservation de 12 heures maximum.
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Des délais maximum de transmission au laboratoire sont définis : le délai de 6 heures est applicable aux analyses les plus courantes sauf le ionogramme et le TCA (4 heures) et pour certains paramètres dont le délai de conservation est très court. Lorsque le délai de conservation très court est incompatible avec un transport trop long, il est signifié dans l’annexe 1 que le prélèvement doit être effectué au laboratoire.
L’étiquetage et la résistance des emballages fournis par le laboratoire sont conformes à la réglementation en vigueur concernant le transport des matières dangereuses (arrêté du 5 décembre 1996 relatif au transport des marchandises dangereuses par route, modifié par les arrêtés du 16 décembre 1997, du 27 février 1998 et du 17 décembre 1998).
Ces règles s’appliquent quels que soient la qualité du préleveur, l’origine des prélèvements et le mode de transport utilisé.
Points de non conformités
Le non respect des délais de transmission, des conditions de température en fonction des échantillons et de l’intégrité de l’emballage de ces échantillons.
9. EXAMENS URGENTS
Lorsqu’un examen est urgent, :
♦ le prescripteur le signale, ♦ sur la fiche de prélèvement, cocher la case « URGENT »,
♦ Pas d’exigence de jeûne ou d’horaire : Les examens étant prescrits dans le but d’une action rapide face à une éventuelle perturbation majeure, les modalités d’interprétation sont adaptées à l’urgence,
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♦ Acheminement immédiat au laboratoire afin de traiter les échantillons et communiquer les résultats le plus rapidement possible.
10. STOCKAGE DES ECHANTILLONS ET RAJOUT D’ANALYSE
Le détail du stockage des échantillons est décrit dans un document à disposition du personnel du laboratoire.
Dans ce document sont énoncés la température de stockage des échantillons après analyses, les analyses complémentaires éventuellement réalisables, les délais pour prescrire ces analyses complémentaires. Ces informations sont disponibles sur appel au laboratoire.
Le stockage des échantillons permet également de pouvoir répéter les analyses en cas de :
♦ défaillance analytique d’un automate, défaillance détectée après la validation analytique des résultats,
♦ pour vérification des résultats ou de l’identité inscrite sur le tube.
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Page 47 sur 92
**** REFERENCES BIBLIOGRAPHIQUES ****
EN NF ISO 15189, Laboratoires d’analyses de biologie médicale – Exigences particulières concernant la qualité et la compétence. AFNOR, 2007
Ghnassia J.C., Échantillons biologiques phase préanalytique et prélèvements en biologie médicale. Elsevier, 1998.
Société Française de Microbiologie, Rémic Référentiel en microbiologie médicale. 2010, Edit 3.
Dehorne J.P., Assurance Qualité Élaboration d’un cahier analytique à l’usage externe. 17èmes Journées Toulousaines de Biologie médicales, 2008
Pr Meyer, Pr Michel Samama, Précis de Biopathologie Analyses médicales spécialisées. Biomnis, 2007, préface.
Szymanowicz A., Démarche et outils pour la maîtrise de la phase pré-analytique Norme EN 15189/22870. Feuillets de biologie, 2010, Vol. LI- N° 292
Groupe d’Étude de l’Hémostase et de la Thrombose, GEHT Recommandations 2007.
Décret n° 97-1048 du 06/11/97 (Article R.44-1 du code de la Santé Publique) relatif à l'élimination des déchets d'activités de soins à risques infectieux et assimilés et des pièces anatomiques et modifiant le code de la santé publique.
ADR 6.2. Accord européen relatif au transport international des marchandises dangereuses par route p. 650
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*** SOMMAIRE DES ANNEXES ***
Annexe 1 : Liste des analyses et conditions particulières
Annexe 2 : Conduite à tenir en cas d’AES
Annexe 3 : Transport des échantillons
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ANNEXE 1
LISTE DES
ANALYSES ET
CONDITIONS
PARTICULIERES
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RappelsPage 52
Ordre de prélèvement des tubes Page 53
Homogénéisation des tubes Page 53
Précaution particulière pour le bon remplissage du tube citrate Page 54
Analyses et conditions particulières
Légende Page 55
Analyses de sang Page 56
Analyses d'urines Page 69
Analyses bactériologiques Page 71
Autres analyses Page 75
SOMMAIRE
Choix des tubes de façon simplifiée
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Choix des tubes de façon simplifiée
Si tests de COAGULATION Tube citrate TP-INR, TCA, Fibrinogène
Héparine, anti Xa, D-DIMERES(1), Anti thhrombine III, Protéines S, Protéines C Résistance à la protéine C activée…
Si IONOGRAMME seul Tube heparine gel
Tube heparine gel Si une des analyses suivantes (x2, pour Bioadour et Alphabio)CHIMIE, IMMUNOLOGIE ETSEROLOGIE, HORMONOLOGIEMARQUEURS TUMORAUX ou Tube sec
avec ou sans gel
+Si GLYCEMIE Tube fluorure
Si NF, plaquettes, Réticulocytes, Tube EDTAHBA1C, CTX, BNPGROUPES SANGUINS, RAI,Ciclosporine, Prograf, Tacrolimus, Sirolimus,Typage lymphocytaire, Groupage HLA
Si VS Tube VS si absent tube EDTA
(1) Pour toute demande après 14h00, pour les sites Pinos, Thébault, Champ de Mars et Carbonne :
- MARQUEURS CARDIAQUES tube spécifié plus haut(Troponine, Myoglobine) + - D DIMERES tube EDTA
Pour plus de détails et pour les analyses peu fréquentes voir les conditionsparticulières de la liste ci après.
Rappels
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Ordre de prélèvement des tubes
Chronologie à respecter pour éviter toute contamination
Homogénéisation des tubes
- Remplissage complet des tubes.
- Homogénéisation par retournements lents.
Attention en cas d’utilisation d’unité de prélèvement à ailettes, avant de prélever le tube citrate (bouchon bleu), il est impératif de toujours prélever un tube neutre (bouchon beige avec cape transparente) afin de purger l’air présent dans la tubulure et permettre ainsi un bon remplissage du tube citrate. Tube neutre fourni dans les boites « Prélèvements difficiles ».
Rappels
3 à 4 fois le tube citraté ; 5 à 6 fois le tube sec ;8 à 10 fois les autres tubes
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Précaution particulière pour le bon remplissage du tube citrate
Le tube citraté (bouchon bleu) doit impérativement être bien rempli pour respecter le rapport sang/anticoagulant. Ce tube présente un indicateur de remplissage minimum (bande dépolie tout autour du tube) qui apporte une solution fiable, simple et visible pour contrôler le remplissage suffisant du tube, selon le critère d'acceptabilité recommandé (recommandations GEHT - 2007).
Rappels
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ANALYSES Analyses hors liste nous consulter
CONDITIONS PARTICULIÈRES
Légende Mise à jour : 24 décembre 2014
Codes couleurs pour les prélèvements sanguins
Tubes spéciaux (fournis sur demande )
Prélèvements nécéssitant des tubes spécifiques Suivre les indications des pictogrammes :
S = Tube pour sérothèque
▲ = Tube exclusif pour l'analyse
et des couleurs de bouchon associés aux pictogrammes
Exemples : S = Prélever 1 tube gel bouchon jaune pour la sérothèque
▲ = Prélever 1 tube EDTA exclusivement
pour cet examen
▲ x2 = Prélever 2 tubes EDTA en
supplément des autres tubes
Analyses suivi d'une * : principales analyses sous-traitées
Analyses suivi de � : congélation rapide nécessaire (prélèvement au labo)
Dosage des médicaments : Se reporter à la rubrique " médicaments" (à la lettre M de la liste qui suit)
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ANALYSES Analyses hors liste nous consulter
CONDITIONS PARTICULIÈRES
S 5 HIA * Prélèvement au laboratoire S
A Acide 5 hydroxy indol acétique Régime alimentaire : éviter 48h avant, A
N banane, chocolat, fruits secs, agrumes, N
G avocat, tomate, prune, kiwi,ananas et G
mollusques.
5' Nucléotidase
17 Béta Estradiol
17 OH progestérone *
A Ac anti nucléaire (ACAN) ou A
Ac anti récepteurs TSH * ▲
Ac anti-thyroidien (ACAT: anti TPO,
antiTGB)
Ac anti-ag nucléaires solubles ou
-ENAT (SSA, SSB..)
Ac anti-cardiolipine * ▲
(anti-phospholipides)
Ac anti-cellules pariétales
Ac anti-cytoplasme polynucléaires * ▲
(ANCA, PANCA)
Ac anti-DNA ou
Ac anti endomysium IgA ou IgG * ▲
Ac anti LKM (réticulum dysfonctionnement n°3-140828-1
endoplasmique ou microsomes)
Ac anti-mitochondries dysfonctionnement n°3-140828-1
Ac anti-muscle-lisse dysfonctionnement n°3-140828-1
Ac anti-protéines citrullinées
(ACCP)
Ac anti-… ▲
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ANALYSES Analyses hors liste nous consulter
CONDITIONS PARTICULIÈRES
ACAN (Ac anti-nucléaires) ou
ACAT (Ac anti-thyroidiens )
Ac anti-transglutaminases IgA ou
Ac anti-transglutaminases IgG ou
ACE + S
Acides Biliaires totaux * ▲
Acide Folique (Vit B9) A JEUN (jeûne ≥ 12h)
Acide Folique érythrocytaire * + ▲
Acides gras à très longues chaines *
Acides gras libres * ▲ A JEUN (jeûne ≥ 12h), prélèvement
au laboratoire.
Acide Hyaluronique * ▲
Acide lactique � * A JEUN et repos >2H prélèvement au
et parfaitement bouché. Placer
immédiatement le sang sur la glace,
Centrifuger à + 5°C (+/-3°C) et congeler
dans les 30 mn suivant le prélèvement.
Acide urique A JEUN de préférence
ACTH � * ▲ ou ▲ Prélèvement au laboratoire, tube
refroidi à + 5°C (+/-3°C)
ADH -Hormone antidiurétique * ▲ ou ▲ Prélèvement au laboratoire, tube
refroidi à + 5°C (+/-3°C)
AFP (Alpha foeto protéine) + S
ALAT (TGP) A JEUN de préférence sauf urgence
Albumine
Alcoolémie Ne pas utiliser d'alcool comme
désinfectant pour le prélèvement
laboratoire . Tube complètement rempli
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ANALYSES Analyses hors liste nous consulter
CONDITIONS PARTICULIÈRES
Aldolase * ▲ Prélèvement de préférence après 30mn
de repos
Aldostérone * ▲ Prélèvement le matin. Préciser debout ou
couché (après 3h décubitus). Régime
alimentaire : régime normosodé
Alpha -1 Antitrypsine * ▲
Alpha2macroglobuline * ▲
Aluminium * Tube spécial héparinate de sodium
fourni sur demande
Amoniémie � * ▲ A JEUN, Arrêter de fumer au moins 6 h
avant prélèvement au laboratoire,
tube EDTA. Tube complètement rempli
et parfaitement bouché. Placer
immédiatement le sang sur la glace,
centrifuger à + 5°C (+/-3°C) et congeler
dans les 30 mn suivant le prélèvement.
AMH - Hormone anti-Mullérienne * ▲
Amylase * A JEUN de préférence sauf urgence
AMP Cyclique � ▲ Prélèvement au laboratoire, tube
refroidi à + 5°C (+/-3°C). Centrifuger
à + 5°C (+/-3°C), séparer le plasma et
congeler immédiatement à - 23°C
(+/-5°C).
Angiotensine Convertase * ▲
Anti-coagulant circulant
Anticorps anti… voir Ac anti…
Anti-streptodornase ou
Anti-thrombine III � * Prélèvement au laboratoire
Apo A1, Apo B A JEUN (jeûne ≥ 12h)
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ANALYSES Analyses hors liste nous consulter
CONDITIONS PARTICULIÈRES
ASAT (TGO) A JEUN de préférence sauf urgence
ASLO (anti-streptolysines) ou
B β HCG + S Préciser la date des dernières règles B
β 2 microglobuline
Bilirubine (totale, conjuguée, libre)
BNP ▲ Stable 4h à tempéraure ambiante et
24h à +5°C (+/-3°C)
BW (sérologie Syphilis) + S
C C Peptide A JEUN sauf si post prandial ou cycle C
CA 125 ; CA 15.3 ; CA 19.9 + S
Calcium A JEUN
Calcium ionisé � * ▲ Prélèvement au laboratoire, domicile
déconseillé
Catécholamines � * ou A JEUN, prélèvement au laboratoire
le matin. Régime alimentaire : éviter
48h avant, banane, agrumes, thé, café,
chocolat.
CDT * ▲
( Carboxy DéficienteTransferrine)
Céruléoplasmine * ▲
Chlore (Cl)
Cholestérol (total, HDL, LDL) A JEUN (jeûne ≥ 12h)
CLA pneumallergènes ou ou
trophallergènes
CMV (Cytomégalovirus) + S
Coefficient de Saturation en fer
Complexes immuns circulants * ▲
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ANALYSES Analyses hors liste nous consulter
CONDITIONS PARTICULIÈRES
Complément total � * ▲ Prélèvement au laboratoire
Cortisol Le matin à 8h, ou cycle
Cortisol après synacthène Prélèvement au laboratoire.
Le patient venant avec l'ampoule de
Synacthène immédiat.
Cortisol après dectancyl Préciser la prise de dectancyl + horaire
CPK - CPK MB
Créatinine A JEUN de préférence, préciser le poids
CRP (C Réactive protéine)
Cryoglobuline
CTX (Cross Laps) * ou A JEUN, le matin avant 9h si possible
Cuivre Tube spécial oligoélément fourni sur
demande
D D-Dimères A transmettre au laboratoire en moins D
de 4h
+
Delta 4 androstènedione (D4A) * ▲
DHA et DHA-S * ▲ Prélèvement sur pool pour DHA
DNA (Ac anti DNA) ou
E EAL (exploration anomalie A JEUN (jeûne ≥ 12h) E
lipidique)
EBV (sérologie Epstein Barr Virus S ou
- Mononucléose infectieuse)
Electrophorèse de l’hémoglobine * (EHB)
Electrophorèse des protéines (EPR) ou
Erythropoïétine * ▲ Prélèvement le matin
Estradiol Info. Complémentaire : jour du cycle ou
aménorrhée
Prélèvement au laboratoire, tube à 37°C (+/-1°C)
pour toute demande après 14h (sites Pinos
Thébault, champ de mars, Carbonne)
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ANALYSES Analyses hors liste nous consulter
CONDITIONS PARTICULIÈRES
F Facteurs de la coagulation � Prélèvement au laboratoire F
(VIII, IX…)
Facteurs rhumatoides (FR - Latex, +
WR)
Fer A JEUN de préférence et le matin (cycle
nycthéméral)
Ferritine
Fibrinogène
Fibromètre A JEUN, prélèvement au laboratoire
Fructosamine + S
FSH Info. Complémentaire chez la femme :
jour du cycle ou aménorrhée
G G6PD - Glucose-6 phosphate * Gdeshydrogénase
GammaGT (GGT)
Gastrine � * ▲ A JEUN, prélèvement au laboratoire
Gazométrie Prélèvement au laboratoire
GH - Hormone de croissance * ▲ Plvt sur pool (au laboratoire si possible)
(ou STH)
Glycémie A JEUN (jeûne ≥ 10h) sf si postprandial
ou cycle. Si postprandial : 1H30 à 2H
après le début du repas
Groupage sanguin Nom de naissance indispensable
H Haptoglobine H
Hb A1c (Hémoglobine glyquée)
HCG + S Voir βHCG
Préciser la date des dernières règles
Hématocrite
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ANALYSES Analyses hors liste nous consulter
CONDITIONS PARTICULIÈRES
Hémochromatose (recherche * ▲ Joindre fiche de consentement
mutation gène HFE) + attestation de consultation (génétique
moléculaire)
Hémoglobine glyquée (A1C)
Hémogramme (NF - plaquettes)
Héparinémie – Activité anti Xa Prélèvement préférable au laboratoire
Préciser heure injection et heure de
prélèvement, le nom de l'héparine
et la posologie. HNF : plvt à mi distance
entre 2 injections. HBPM : 3 à 4h après
injection (Lovenox®, Fraxiparine®,
Fragmine®..) 4 à 6 h après injection
( Innohep®, Fraxodi®)
Hépatite B Charge virale ou DNA * ▲ x 2 Si sérologie : cf. Page 66
viral
Hépatite C Charge virale ou RNA * ▲ x 2 Si sérologie : cf. Page 66
viral
HIV Charge virale ou DNA viral * ▲ x 2 Si sérologie : cf. Page 66
HLA B27 * ▲ Non réalisable le samedi et veille de jour
férié
HLA Groupage (classe I, classe II) * ▲ x 2 Non réalisable le samedi et veille de jour
férié. Joindre la fiche de renseignements
cliniques et l'attestation de consultation
HGPO ou Test de charge glucosée A JEUN prélèvement au laboratoire
sur 1h, 2h
I IGE totales I
IGE spécifiques - RAST ou
IGF1 – somatomédine C * ▲
IgG, IgA, IgM
Immuno-électrophorèse des ou
protéines
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ANALYSES Analyses hors liste nous consulter
CONDITIONS PARTICULIÈRES
Immuno-phénotypage * ▲ x 3 Non réalisable le samedi et veille de jour
lymphocytaire férié
Inhibine B � * ▲ Prélèvement au laboratoire
INR – TP Préciser médicament anticoagulant et
dose
Insuline A JEUN sauf si post prandial ou cycle
Ionogramme : Na, K (Cl) Transmettre au laboratoire en moins
de 4 h (K)
Ionogramme complet (Na, K,Cl, RA, Transmettre au laboratoire en moins
Protides) de 4 h (K)
K K (Potassium) A transmettre au laboratoire en moins de K
4 h
L Latex (facteurs rhumatoïdes) + L
LDH
LH Prlvt sur pool au laboratoire si bilan
fertilité. Info. Complémentaire chez la
femme : jour du cycle ou aménorrhée
Lipase A JEUN de préférence sauf urgence
Lp(a) * ▲ A JEUN (jeûne ≥ 12h)
Lipides totaux * ▲ A JEUN (jeûne ≥ 12h)
Lipidogramme * ▲ A JEUN (jeûne ≥ 12h)
Lymphocytes CD4, CD8 * ▲ Non réalisable le samedi et veille de jour
férié
M Magnésium érythrocytaire * Tube à demander au laboratoire M
Magnésium sérique
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CONDITIONS PARTICULIÈRES
Médicaments
medx Ac. Valproïque (dépakine)
medx Amiodarone (Cordarone) � * ▲ Prélèvement au laboratoire
medx Carbamazépine (Tégrétol) *
medx Ciclosporine (néoral ) Préciser : résiduel ou 2 heures après la
prise
medx Clonazepam (Rivotril) * ▲
medx Digoxine - Digitoxine
medx Everolimus (certican) *
medx Lithium (neurolithium, ou
téralithe…)
medx Lithium érythrocytaire *
medx Phénobarbital (gardénal) *
medx Sirolimus (rapamune) *
medx Tacrolimus (prograf -FK506) *
Methoxyamines � * ou A JEUN, Prélèvement au laboratoire
(métanéphrines) Régime alimentaire : éviter 48h avant,
banane, agrumes, thé, café, chocolat.
Microfilaires (recherche dans le
sang)
Myoglobine
pour toute demande après 14h + A apporter au labo. dans les 4h
MNI Test S ou
N Na (Sodium) N
Préciser : l'âge, la taille, le poids, l'heure de prélèvement,
Préciser pour Téralithe LP400 si
prélèvement résiduel ou 12ème heure.
d'efficacité et/ou de toxicité.
l'heure de la dernière prise, la posologie, la date du début
Prélèvement juste avant la prise suivante (taux
résiduel) sauf prescription particulière.
du traitement et les raisons de la prescription : recherche
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CONDITIONS PARTICULIÈRES
NF (Numération Formule)
NSE � * ▲ dysfonctionnement n°2-141205-1
O Orosomucoide * ▲ O
Ostéocalcine � * ▲ A JEUN le matin Prélèvement au
laboratoire
P Paludisme (recherche) + 3 frottis minces P
Préciser : lieux et dates de séjour
+ traitement
Parathormone (PTH) A JEUN de préférence le matin
PDF � * Prélèvement au laboratoire
Peptide C A JEUN sauf si post prandial ou cycle
Peptides citrullinés
Phadiatop ou
Piroplasmes ou babésiose
Phosphatases alcalines (PAL)
Phosphastases alcalines osseuses � * ▲ Prélèvement au laboratoire
Phosphore A JEUN (jeûne ≥ 12h) le matin (variation
nycthémérale)
Plaquettes
Plombémie *
Pneumallergènes (mélanges de …) ou
Potassium (K) A transmettre au laboratoire en moins
de 4 h
Préalbumine ou
Progestérone Info. Complémentaire : jour du cycle ou
aménorrhée
Prolactine Plvt au laboratoire, si possible sur
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CONDITIONS PARTICULIÈRES
RDV, le matin après 9h, après repos.
Plvt sur pool souhaitable
Protéine C � * Prélèvement au laboratoire
Protéine S � * Prélèvement au laboratoire
Protides totaux
PSA total ou libre + S Eviter manipulations prostatiques avant
le prélèvement
PTH (Parathormone) A JEUN de préférence, le matin
R RAI + R
RAST (IgE spécifiques)
Récepteur soluble de la transferrine ou
Renine * ▲ Régime alimentaire : régime
normosodé
Réserve alcaline (RA)
Résistance à la prot. C activée � * + Prélèvement au laboratoire
Réticulocytes
S Saturation en fer A JEUN le matin S
SCC * ▲
SDHA (Sulfate de DHA) * ▲
Sérologie Brucellose S ou
Sérologie Chlamydiae (trachomatis, * S ou
pneumoniae,psittacci)
Sérologie Coqueluche (Bordetella S ou
pertussis)
Sérologie Epstein Barr Virus (EBV) S ou
Sérologie Fièvre Q * ▲
Sérologie Griffes du chat * ▲
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CONDITIONS PARTICULIÈRES
(Bartonella henselae)
Sérologie Helicobacter pylori S ou
Sérologie Hépatites (A, B, C, E) + S Si Hep B ou C charge virale : cf. Pg 62
Sérologie HIV + S Si charge virale : cf. Page 62
Sérologie de Lyme (Borreliose) S ou
Sérologie Mycoplasma pneumoniae * ▲
Sérologie Mycoplasma urogenitaux S ou
Sérologie Rubéole + S
Sérologie Rickettsiose * ▲
Sérologie Streptococcique * S ou
Sérologie Syphilis (BW) + S
Sérologie Toxoplasmose + S Info. Complémentaire : grossesse, date
de début
Sérologies autres (virales, bact. ou S ou
parasitaires)
Sérotonine � * ▲ Prélèvement au laboratoire. Régime
alimentaire : éviter 48h avant , banane,
chocolat, fruits secs, agrumes, avocat,
tomate, prune, kiwi, ananas et
mollusques
Somatomedine C (IGF1) * ▲
T T3L, T4L A JEUN de préférence. Info. Compl. : T
traitement
TCA - TCK A transmettre au laboratoire en moins de
4 h
Temps de saignement Prélèvement au laboratoire
Test de O' Sullivan - test de charge Prélèvement au laboratoire
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CONDITIONS PARTICULIÈRES
glucosée 50g/1h
Test de charge glucosée 75g/2h Prélèvement au laboratoire
Test de Coombs
Testostérone (totale, libre) Le matin
Testostérone (biodisponible) * ▲ Le matin, A JEUN
TGO ou TGP (ASAT ou ALAT) A JEUN de préférence sauf urgence
Thyroglobuline * ▲
TP – INR Préciser médicament et dose
Transaminases A JEUN de préférence sauf urgence
Transferrine
Triglycérides A JEUN (jeûne ≥ 12h)
Trisomie 21 � * Prélèvement au laboratoire, domicile
déconseillé
Trophallergènes (mélanges de …) ou
Trophatop ou
Troponine
+
TSH Le matin de préférence
U Urée A JEUN de préférence U
V Vit B9 (acide folique) A JEUN (jeûne ≥ 12h) V
Vit B12 ou
Vitamine D - 25 OH-vit.D(D2+D3) = Vitamine D par défaut
VS ou
W Waler Rose + W
Thébault, champ de mars, Carbonne)
pour toute demande après 14h (sites Pinos
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CONDITIONS PARTICULIÈRES
URINES Dosages urinaires / 24h : Flacon à demander au laboratoire
5 HIA - Acide 5 hydroxy indol * Urines de 24h à acidifier au laboratoireacétique Urines à conserver au réfrigérateur entre 2 mictions
Régime alimentaire : éviter 48h avant, banane,chocolat, fruits secs, agrumes, avocat, tomate,prune, kiwi,ananas et mollusques.
U Acétone Echantillon d'urines U
R Acide Homovanilique * Urines de 24h à acidifier au laboratoire RI Urines à conserver au réfrigérateur IN Régime alimentaire : éviter 48h avant, banane, NE vanille, thé, café, chocolat. E
S Acide vanylmandélique * Urines de 24h à acidifier au laboratoire SUrines à conserver au réfrigérateur entre 2 mictionsRégime alimentaire : éviter 48h avant, banane,vanille, thé, café, chocolat.
Albumine Echantillon d'urines ou Urines de 24h
AMP Cyclique * Urines de 24h. Urines à conserver au réfrigérateur
Amylase Echantillon d'urines
Béta2 microglobuline * Urines de 24h
Béta HCG Echantillon d'urines
Bilharzies Urines du matin (fin de miction) ou urines après effort.
Calcium Echantillon d'urines ou Urines de 24h
Calcul urinaire Récuperer l'ensemble du calcul.
Cannabis (ou THC) Échantillon d'urines
Catécholamines * Urines de 24h à acidifier au laboratoireUrines à conserver au réfrigérateur entre 2 mictionsRégime alimentaire : éviter 48h avant, banane,agrumes, thé, café, chocolat.
Chaines légères libres * Urines de 24h
Cocaïne Échantillon d'urines
Compte d'ADDIS Recueil précis des urines dans une unité de tempspar exemple 3 heures ou 24 heures.
Cortisol libre Urines de 24h
Cotinine * Échantillon d'urines
Créatinine Echantillon d'urines ou Urines de 24h
CTX dans les urines * Prélèvement le matin A JEUN sur 1ères urines
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CONDITIONS PARTICULIÈRES
Cuivre urinaire * Urines de 24h
Cystine * 1ères urines du matin, au laboratoire
Cytologie Échantillon d'urines
Ecstasy (MDMA) Échantillon d'urines
U Electrophorèse des proteines Urines de 24h (à conserver à + 5°C (+/-3°C)) UR Glucose Échantillon d'urines RI Hydroxyproline * Urines de 24h IN Urines à conserver au réfrigérateur entre 2 mictions NE Régime alimentaire : éviter 48h avant, aliments ES riches en collagène (viande, gelée ou gélatine, S
glaces, sucreries, charcuterie …)Ionogramme Urines de 24h souhaitableLSD * Échantillon d'urines
Méthoxyamines (Métanéphrines) * Urines de 24h à acidifier au laboratoireUrines à conserver au réfrigérateur entre 2 mictionsRégime alimentaire : éviter 48h avant, banane,agrumes, thé, café, chocolat.
Microalbumine Échantillon d'urines (1ère miction du matin souhaitable)ou Urines de 24 h. Pas de recueil après un effort musculaire intensif ou en cas de fièvre
Opiacés Échantillon d'urines
Osmolarité (calculée) Echantillon d'urines ou Urines de 24h
Oxalate (Oxalurie) * Urines de 24h à acidifier au laboratoire
pH urinaire Échantillon d'urines fraîches
Phosphore Echantillon d'urines ou Urines de 24h
Pigments et Sels biliaires Echantillon d'urines
Plomb * Urines de fin de poste de travail
Protéine Echantillon d'urines ou Urines de 24h
Protéine de Bence Jones (PBJ) Urines de 24h ou échantillon des premières urines du matin
Sang (recherche d'hématurie) Echantillon d'urines
Sérotonine * Urines de 24h à acidifier au laboratoireRégime alimentaire : éviter 48h avant , banane,chocolat, fruits secs, agrumes, avocat, tomate,prune, kiwi, ananas et mollusques
Urée Echantillon d'urines ou Urines de 24h
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CONDITIONS PARTICULIÈRES
Urobiline Urines du matin
BACTÉRIOLOGIEBK secrétions broncho-pulmonaires Les crachats majoritairement salivaires et/ou d'un
volume inférieur à 2ml ne sont pas conformes.Conservation voir expectoration
B BK tubage gastrique Prélèvement le matin A JEUN directement dans BA l'estomac à l'aide d'une sonde gastrique. A
C BK urines Totalité des urines du matin, restriction hydrique la CT veille au soir. Le recueil de 30ml est acceptable. TE Conservation des urines voir ECBU ER Bordetella pertussis (coqueluche) * Prélèvement naso-pharyngé profond. Si toux < 3 sem.RI Milieu de transport M4RT (tube conique, bouchon rouge)IO Chlamydiae trachomatis * Prélèvement sur 1er jet d'urine ou matériel spéc. O
L Coproculture Prélèvement réalisé si possible avant le début de LO l'antibiothérapie. Une seule coproculture est en OG général suffisante. Transport dans l'heure GI sinon Conservation < 12h à + 5°C (+/-3°C) IE Dépistage-portage de BMR Préciser la BMR recherchée ou dépistage E Dispositif intravasculaire Prélèvement effectué matériel en place :
Antisepsie adéquate de type chirurgical puis prélever au même moment (<10mn) une hémoculture parponction veineuse périphérique et une hémoculture sur le matériel après avoir purgé le cathéter.Prélèvement avec ablation du matériel :Procéder stérilement au retrait du matériel et le placer dans un récipient stérile.
ECBU (Examen Cytobactériologique Après lavage hygiénique des mains et toilette des Urines) soigneuse de la région vulvaire chez la femme et du
méat chez l'homme suivi d'un rinçage à l'eau.Éliminer le 1er jet (20ml) pour ne recueillir dans un flacon stérile que les 20-30ml suivants en prenant soin de ne pas toucher le bord supérieur du flacon.Chez le patient sondé , pas de recueil dans le sac collecteur. Le recueil se fait par ponction sur le site spécifique du dispositif de sonde après désinfection.Enfant de moins de 2 à 3 ans , si possible prélever aumilieu du jet après désinfection soigneuse de la vulve oudu prépuce et du gland. Sinon en cas de mise en place d'un collecteur d'urine, celui-ci doit être placé au mieux au laboratoire après désinfection préalable de la vulve, du prépuce, du gland et du périnée.
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CONDITIONS PARTICULIÈRES
ECBU Ce dispositif ne doit pas être laissé en place plus (Suite) de 30 mn. Passé ce délai, le dispositif doit être
remplacé par un collecteur neuf.Sondage urinaire aller/retour à l'aide d'une sonde de petit calibre : acceptable que chez la femme si le recueil des urines lors de la miction est impossible.Conservation : < 2h à température ambiante ou < 24h à + 5°C (+/-3°C)
B Gorge Angine : écouvillonage des amygdales ou de BA l'amygdale atteinte en cas d'amygdalite unilatérale. AC En l'absence d'amygdale, prélever au niveau des CT piliers du voile du palais. TE Ulcération ou exsudat : prélever à ce niveau ER Suspicion diphtérie : prélèvement sur la périphérie ou RI sous les fausses membranes. IO Suspicion gonocoque ou meningocoque : ensemenc. OL rapide avec milieu de transport indispensable. LO Candida : prélèvement au niveau de la langue, du palais OG et de la face interne des joues. GI Conservation : Ecouvillon avec milieu de transport IE <12h à température ambiante ; < 2H à température E
ambiante si recherche gonocoque ou menigocoque
Hémocultures Prélever 1 à 5 ml par flacon. Suivre le protocole de prélèvement fourni avec les
flacons. Conservation : < 24h à température ambiante. Il est préférable d'acheminer les flacons le plusrapidement possible au laboratoire afin qu'ils soientincubés dés que possible.
Legionella pneumophila antigène Échantillon d'urine. Conservation : < 2h à température
urinaire ambiante ou 1 sem. à + 5°C (+/-3°C)
LCR Ponction lombaire avec asepsie de type chirurgical.Recueil dans 3 tub. stériles numérotés 1, 2, 3, destinés
aux examens biochimique, cytologique et bactério.Conservation :Acheminement au laboratoire sans délai en raisonde l'urgence vitale et de la fragilité de certaines bactéries
notamment méningocoque et pneumocoque.Transport à température ambianteJoindre les renseignements cliniques et préciserla recherche de Mycobacterium tuberculosis.
Liquide de drain Procéder stérilement au retrait du matériel et le placer dans un récipient stérile.Réalisation systématique d'hémocultures.
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CONDITIONS PARTICULIÈRES
Liquide d'épanchement Désinfection de type chirurgical. Ponction à l'aiguille de gros diamètre montée sur une seringue.Chasser l'air et obturer la seringue.Conservation :Transport inférieur à 4h à température ambiante.En cas de transport supérieur à 4h, ensemencerdes flacons d'hémocultures, en prenant soin degarder un aliquote du prélèvement pour les examensmicroscopiques et chimiques.
B Nasal Prélèvement effectué par écouvillonage. BA Conservation : Ecouvillon avec milieu de transport AC < 12h à température ambiante CT Oculaire Conjonctive : frottis conjonctival avec recueil des secrétions TE et du pus conjonctival prélevé dans l'angle interne de l'œil. ER Cornée : Grattage sur la base et les berges de l'ulcère à RI l'aide d'un écouvillon. Prélèvement à la lampe à fente par un IO ophtalmologiste. OL Endophtalmie, nécrose rétinienne, uvéite : LO Prélèvement specialisé par un ophtalmologiste OG Annexes de l'œil : dacryocystite GI Prélèvement au niveau du canal lacrymal. IE Paupières : Si recherche de Demodex, arracher quelques E
cils à la pince le long des paupières supérieures et
inférieures. Déposer les cils dans une boite de Petri stérile
afin de dénombrer les Demodex.
Conservation : Ecouvillon avec milieu de transport < 12h à température ambiante
Os Suppuration fistulisée: Voir prélèvement sur peau (fistule)
Prélèvement per opératoire ou biopsie , transport < 4 h
à température ambiante, en flacon sterile (éviter le prélèvement sur
écouvillon)
Peau et phanères recherche Préciser la nature de la lésion.de bactéries Sur peau saine ou lésion non suintante : Prélever à l'aide
d'un écouvillon préalablement imbibé d'eau physiologique
stérile.
Sur lésions cutanées superficielles (impétigo, bulle,
furoncle…). Prélèver à l'écouvillon au niveau de la lésion
après avoir nettoyé la zone cutanée aux alentours au serum
physiologique stérile.
Inflammation cutanée, erysipèle, hypodermite: Désinfecter le site (type chirurgical) puis prélever par
ponction à l'aiguille en injectant puis réaspirant dans la lésion
un peu de serum physiologique stérile. Aspirer ensuite 1 ml
d'eau physiologique dans la seringue pour éviter tout
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CONDITIONS PARTICULIÈRES
dessèchement et boucher stérilement.
Abcès fermé, suppuration close:Désinfecter le site (type chirurgical) puis prélever par
ponction à l'aiguille de gros diametre montée sur seringue.
Chasser l'air puis obturer stérilement.
Fistule: désinfection de la peau de type chirurgical*
puis prélever la partie le plus profonde de la fistule
par aspiration à partir d'un cathéter semi rigide monté
sur seringue. Aspirer ensuite si nécessaire 1ml de sérum
physiologique stérile pour éviter tout dessèchement.
B Peau et phanères recherche Plaies, Escarres, lesions nécrotiques: BA de bactéries (suite) A Prélèver lorsque signes d'accompagnements locaux AC (douleurs, inflammation péri-ulcéreuse). CT Nettoyer la plaie, éliminer les exsudats, débrider les tissus TE nécrosés, si nécessaire appliquer un antiseptique cutané, ER laisser sécher, puis rincer au sérum physiologique stérile. RI Cureter le bord actif de la lésion. Le prélevement par IO aspiration avec une aiguille montée sur seringue est OL préférable au prélèvement sur écouvillon. LO Ecoulement de sérosités: OG Aspiration avec une aiguille montée sur seringue et boucher GI stérilement. IE Morsures: Pratiquer plusieurs ecouvillonages profonds, E
ou mieux aspirer le liquide présent dans le blessure
à l'aide d'un catheter semi rigide monté sur seringue;
Aspirer ensuite 1 ml d'eau physiologique dans la seringue
pour eviter tout déssechement.
Conservation : Prélèvement sur écouvillons avec milieux de transport : < 12h à température ambiantePrélèvement sur seringue : < 4h à température ambiante
Peau et phanères recherches Prélèvement à faire au laboratoiremycologiques
Prélèvement uréthral / vaginal Effectuer le prélèvement avec le matériel contenu dans les boites pour prélèvements génitaux.Suivre le protocole inclus dans ces boites.Transport rapide au laboratoire.Conservation: VAGINAL, URETRAL: Le prélèvement au laboratoire est toujours préférable.
Ecouvillons avec milieux de transport : < 24h à température
ambiante. Ne pas réfrigérer.
CHLAMYDIAE PAR PCR : Si plt sur écouvillon dans milieu de transport spécifique
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CONDITIONS PARTICULIÈRES
Prélèvement uréthral / vaginal Conservation : < 5j à température ambiante
(Suite) si prélèvement sur 1er jet d'urines : < 12h non congelé
MYCOPLASMES GENITAUX : < 2h à température ambiante
SYPHILIS: Prélèvement uniquement au laboratoire
Secrétions bronchopulmonaires Éviter la présence de salive source de contaminationpar les bactéries commensales salivaires.Expectoration , protocole rigoureux : le matin, au réveil, après rinçage de la bouche avecun verre d'eau, lors d'un effort de toux, aidé sibesoin d'une kinésithérapie. Recueillir le prélèvement dans les pots prévus à cet effet.
B En milieu hospitalier, les prélèvements par Brossage BA bronchique protégé, Lavage broncho-alvéolaire, AC aspiration endotrachéale et Mini-lavage sont préférés CT à l'expectoration. TE Conservation : < 2h à température ambiante E
R Sinus Le prélèvement par écouvillonnage des fosses RI nasales ne convient pas. IO (Prélèvement à réaliser par le clinicien par ponction). O
L Sperme Prélèvement au laboratoire si possible LO Conservation : < 2h à température ambiante O
G Toxine de Clostridium difficile Recherche directe des toxines A et B dans les selles. GI Conservation : < 24h à + 5°C (+/-3°C) I
E Ulcération ano-génitale Prélèvement obligatoire au laboratoire pour un E(Treponema pallidum) examen microscopique extemporané (Syphilis).
Désinfection de type chirurgical Détersion (Bétadine Scrubb ou Hibiscrubb > 2 mn)(dans l'ordre) Rinçage avec soluté physiologique stérile
Antisepsie avec Bétadine ou Hibitane dermiqueLaisser sécher l'antiseptique avant le prélèvement
AUTRESAdenovirus dans les selles Echantillon de selles
Amibes formes végétatives Prélèvement au laboratoire (selles fraichement émises)
Amibes libres Prélèvement oculaire (cornée) + lentilles (Ophtalmo.)
Anguillule (Baermann) Echantillon de selles
A Bilharzies Echantillon de selles, d'urines. A
U Coccidies * Echantillon de selles U
T Coprologie fonctionnelle * Totalité des selles de 3 jours, à défaut 24 ou 48h TR (Fécalogramme) Envoyer les selles de 72 heures en 1 fois RE Préciser la durée du recueil et la tare du récipient E
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CONDITIONS PARTICULIÈRES
S Créatorrhée * Totalité des selles de 3 jours, à défaut 24 ou 48h S Envoyer les selles de 72 heures en 1 fois
Préciser la durée du recueil et la tare du récipient
Cryptosporidies * Échantillon de selles
Elastase selles * 5 gr minimum de selles
Frottis Cervico-Vaginal * Matériel et modalités de recueil fournis dans les boites pour prélèvement gynécologique
Herpès * Prélèvement cutanéo-muqueux, génital ou oculairemileu de transport sur demande ou présent dans lesboites pour prélèvement gynécologique
A HPV oncogènes (Papillomavirus) * Exclusivement chez la femme suite à un frottis avec AU (ASC-US) Kit de prélèvement fourni sur demande U
T IgE lacrymales * 200 microlitres de larmes T
R Microsporidies * Échantillon de selles R
E Malassezia furfur Recherche par scotch test ES (Pityrosporum ovale) S
Myélogramme Prélèvement au laboratoire sur Rendez Vous
Oxyure Recherche par scotch test (marge anale) au laboratoire
Parasitologie des selles Prélèvement à apporter le plus rapidement aulaboratoire. Trois prélèvements sur trois selles différentes sont souhaitables.
Rotavirus dans les selles Échantillon de selles
Sang dans les selles Échantillon de sellesConservation : STABLE 8 jours entre 2°C et 8°C.
Sarcopte Prélèvement préférable au laboratoire
Scotch test Prélèvement au laboratoire
Spermogramme Prélèvement au laboratoire sur Rendez VousDélai d'abstinence de 3 à 5 jours
Stéatorrhée * Totalité des selles de 3 jours, à défaut 24 ou 48hEnvoyer les selles de 72 heures en 1 foisPréciser la durée du recueil et la tare du récipient
Test à la sueur Prélèvement au laboratoire
Test de Hüner Prélèvement au laboratoire sur Rendez Vous
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CONDITIONS PARTICULIÈRES
Test respiratoire à l'urée * Prélèvement au laboratoire sur Rendez Vous(Helicobacter pylori) À jeun sans boire ni fumer depuis 12 h
Pas de prise d'antibiotiques 4 semaines avantPas de prise d'antisecrétoires 2 semaines avantLe patient doit se procurer le kit en pharmacie
Trichogramme * 50 cheveux environPrélèvement à la pince en trois endroits différents de la tête : sommet du crâne, région temporo-parétale, occiput. Placer ces cheveux dans troistubes différents (bouchon rouge). Conserver env.3cm de tige capillaire, le bulbe seul étant étudié.
VRS Prélèvement au laboratoire par aspir. naso-pharyngée
A discuter avec le prescripteur en cas de grossesse (non recommandé)
Sources documentaires : Phase préanalytique des analyses de biologie médicale (direction générale de la santé); Precis de biopathologie du laboratoire Biomnis; Echantillons biologiques: phase préanalytique et prélèvements en biologie médicale (JC Ghnassia); Feuillet de biologie: "pièges à éviter pour une interprétation correcte des examens biologiques sanguins"; Référentiel en microbiologie médicale (société francaise de microbiologie).
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Manuel de Prélèvement MQ MU PRE 001 Version : 2
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ANNEXE 2
CONDUITE A
TENIR EN CAS
D’AES
Manuel de Prélèvement MQ MU PRE 001 Version : 2
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GESTION DES A. E. S. (ACCIDENTS D’EXPOSITION AU SANG)
Extrait de l’instruction IT MU LHS 005
1. OBJET ET DOMAINE D ’APPLICATION Procédure de rattachement : Gestion des locaux et sécurité du personnel.
Cette instruction décrit la conduite à tenir face à un Accident d’Exposition au Sang.
2. DEROULEMENT DE L ’ACTIVITE 2.1. PREMIERS SOINS A REALISER IMMEDIATEMENT
En cas de piqûre, blessure, contact avec une peau lésée :
♦ Stopper l’activité en cours, laisser saigner, nettoyer à l’eau et au savon, rincer abondamment, sécher ;
♦ Réaliser l’antisepsie de la plaie par trempage au moins 5 minutes dans du Dakin, ou éventuellement de l’eau de Javel à 12° chlorométrique diluée au 1/10°;
♦ En cas de projection sur les muqueuses ou l’œil, rincer abondamment à l’eau ou au sérum physiologique durant 10 minutes.
2.2. RECHERCHER ACTIVEMENT LE STATUT SEROLOGIQUE DE LA
PERSONNE SOURCE
Les tests suivants devront être réalisés : ♦ tests rapides de dépistage du VIH ; ♦ sérologie VIH ; ♦ sérologie VHC ; ♦ sérologie VHB complète si la personne source n'est pas vaccinée.
Manuel de Prélèvement MQ MU PRE 001 Version : 2
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Si la personne source est porteur du VIH, avec son accord, contacter son médecin pour adapter le traitement post-exposition (TPE) de la personne exposée, si nécessaire
2.3. CONTACTER IMMEDIATEMENT UN MEDECIN REFERENT POUR LA
PROPHYLAXIE DU SIDA
Centre de prise en charge des AES et de délivrance d’une trithérapie :
Pour Saint Gaudens, pour Luchon, Service des urgences CH St-Gaudens : 05 61 89 80 51
Pour Lannemezan, Service des urgences CH Lannemezan : 05 62 99 53 62
Pour Saint – Girons, Service des urgences CH St Girons : 05 61 96 20 20
Pour Carbonne, CHU de Purpan : 05 61 77 22 33
Pour Tarbes, Service des urgences Clinique de Tarbes : 05 62 34 15 15
Lourdes et Argeles Gazost, Service des urgences CH Lourdes : 05 62 42 44 31
Donner les éléments suivants au médecin référent afin qu’il évalue le risque infectieux :
♦ type d’exposition; ♦ profondeur de la blessure; ♦ type d’aiguille ou de matériel en cause; ♦ nature du liquide biologique; ♦ statut sérologique et clinique du patient source.
L’accident d’exposition au sang n’est jamais complètement banal, le risque infectieux est bel et bien réel, variable selon le virus : 0,3% pour le VIH, 3% pour le VHC, 30% pour le VHB.
Important : Un traitement prophylactique pourra être proposé à la victime, il devra être débuté dans les heures qui suivent l’accident.
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2.4. DECLARER L ’ACCIDENT DU TRAVAIL
Au plus tard dans les 24h à l’employeur, l’employeur transmettra sous 48h la déclaration d’accident du travail à la CPAM = Caisse primaire d’assurance maladie, du lieu de résidence du salarié.
2.5. FAIRE ETABLIR IMPERATIVEMENT LE CERTIFICAT MEDICAL I NITIAL
Par un médecin, afin d’obtenir la prise en charge au titre d’un accident du travail .
2.6. CONTACTER LE MEDECIN DU TRAVAIL
Pour mise en place du suivi clinique et réalisation des examens biologiques (sérologies) adaptés.
2.7. SUIVI BIOLOGIQUE ET CLINIQUE DU SUJET EXPOSE
(Selon réseau hépatite C Haute Garonne)
Bilan standard après tout AES :
J0 sérologies VIH, VHC et Ac. antiHBs si non documenté TGO + TGP
3 mois sérologie VIH
6 mois sérologie VIH
Si sujet source VHB+ ou inconnu et sujet exposé non vacciné, non répondeur… :
Ajouter SEROVACCINATION
Ajouter à J0, 1 mois, 3 mois, 6 mois : Ag. HBs, Ac. HBs et Ac. HBc
Ajouter tous les 15 jours pendant 3 mois : TGO et TGP
Si apparition Ag. HBs ou Ac. anti HBc : Consultation en service spécialisé
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Si sujet source VHC+ ou inconnu :
Ajouter à 1 mois, 3 mois, 6 mois : sérologie VHC
Ajouter tous les 15 jours pendant 3 mois : TGO et TGP
Ajouter à 1 mois, 2 mois : ARN VHC qualitatif
Si séroconversion ou élévation des TGO ou TGP : PCR VHC et consultation en service spécialisé.
Si sujet source VIH+ ou inconnu :
Envisager le plus tôt possible dans les suites de l’AES une trithérapie antirétrovirale
Evaluation du risque et rediscussion de l’indication par le médecin infectiologue référent à J2.
3. BIBLIOGRAPHIE
PG MU LHS 001 « Gestion des locaux et sécurité du personnel ».
Circulaire DGS/VS2/DH/DRT n° 99-680 du 8 décembre 1999 « Risques de transmission VHB, VHC par le sang et les liquides biologiques. »
Circulaire DGS/DHOS/DRT/DSS n° 2003/165 du 2 avril 2003 relative aux recommandations de mise en oeuvre d’un traitement antirétroviral après exposition aux risques de transmission du VIH.
N° DGS/R12/DHOS/DGT/DSS/2008/91 du 13 mars 2008 relative aux recommandations de prise en charge des personnes exposées à un risque de transmission du virus de l'immunodéficience humaine (VIH)
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ANNEXE 3
TRANSPORT DES
ECHANTILLONS
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TRANSPORT DES ECHANTILLONS Extrait de l’instruction IT MU PRE 032
1. OBJET ET DOMAINE D ’APPLICATION Procédure de rattachement : Transport, Manipulation et Conservation des échantillons
Cette fiche d’instruction décrit les principes de transport des échantillons lors des tournées de collecte de prélèvements effectuées par le laboratoire.
N.B. : Les échantillons transportés sont assimilés à des échantillons de diagnostic (affectés du N° ONU 3373 – Instruction P650 du 02 décembre 2002).
2. DEROULEMENT DE L ’ACTIVITE
2.1. RAPPEL : EMBALLAGES DE TRANSPORT
L’emballage des prélèvements est conforme à la législation en vigueur (cf. GBEA, Instruction P650 : Instructions de transport des marchandises dangereuses par route) basée sur le principe du « triple emballage ». Les normes d’étiquetage de l’emballage extérieur sont respectées (logo UN 3373 ; mention « matières biologiques de catégories B » ; le nom, l’adresse et numéro de téléphone du laboratoire).
- Les prélèvements sanguins sont récupérés dans des tubes étanches en plastique et incassables. UNE boîte de prélèvement contient les tubes d’un SEUL patient.
Les boîtes de prélèvement sont toutes étanches et anti-chocs. Par leur double emballage (tapissé d’un matériau absorbant et d’un autre résistant – cf. GBEA Paragraphe III. 2.2.3. ; Instructions de transport des marchandises dangereuses par route), elles protègent les
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prélèvements de toute détérioration (perforation, casse, altération par la lumière …), préviennent toute perte de contenu.
- Les échantillons bactériologiques de selles ou d’urines sont contenus dans des pots en plastique, spécifiques, étanches et stériles (pour les urines). Ils sont placés dans des sachets plastiques double poche avec du buvard absorbant.
- Les écouvillons pour prélèvement bactériologique sont remis dans leur fourreau plastique stérile avec milieu de conservation une fois le prélèvement effectué, et placés dans des sachets plastiques double poche.
2.2. CONSERVATION DES ECHANTILLONS DANS L ’ATTENTE DU PASSAGE
DU COURSIER DU LABORATOIRE
Les prélèvements effectués dans les tubes et pots de recueil fournis par le laboratoire sont conservés, jusqu’à l’arrivée du coursier, à température ambiante, à l’exception des ECBU (stockées à une température comprise entre 2°C et 8°C si non prélevées sur milieux de transport) et des coprocultures (stockés à une température comprise entre 2°C et 8°C).
2.3. PRINCIPE DE TRANSPORT
Les coursiers du laboratoire effectuent quotidiennement à l’aide d’un véhicule climatisé, des tournées de collecte de prélèvements (cf. IT MU PRE 031), afin de ramener les échantillons au laboratoire dans le respect des délais d’acheminement.
Les prélèvements sanguins dans les boites normées sont transportés à l’intérieur du véhicule dans des sacs isothermes systématiquement refermés après chaque ajout d’échantillons. Ces sacs sont rangés à l’avant du véhicule. Les boites de prélèvements reconditionnées à transmettre aux préleveurs extérieurs sont rangées à l’arrière du véhicule dans des curvers. Ceci afin d’éviter le mélange entre prélèvements récupérés et boites reconditionnées. En cas d’impossibilité à disposer tous les sacs de
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prélèvement à l’avant du véhicule, le coursier déposera à l’arrière de celui-ci le minimum de sac tout en vérifiant pour chacun d’eux l’absence de risque d’ouverture.
Les prélèvements récupérés dans les sachets plastiques double poche sont placés dans des boites de transport spécifiques et homologués.
2.4. DELAIS DE TRANSPORT
Les modalités de tournées de collecte des prélèvements, décrites dans le document IT MU PRE 031, permettent d’assurer une durée de transport minimisée (délai maximum = 4h).
Les coursiers doivent respecter les principes de transport institués par le laboratoire.
2.5. CONDITIONS DE TEMPERATURE
Les échantillons sanguins sont transportés à température ambiante. Pour éviter toute variation de température, ils sont maintenus dans un sac isotherme. De plus, l’été ou chaque fois qu’il fait chaud, des packs de froid sont déposés dans les sacs isothermes afin de maintenir une température fraîche. La climatisation du véhicule est systématiquement utilisée afin de garantir les conditions de température ambiante adéquates.
Pour respecter les conditions de température réfrigérées (5°C +/- 3°C) des échantillons de selles ou d’urines, des packs froids sont placés dans les boites de transport de ces prélèvements bactériologiques. Une étude de la température est réalisée (cf. IT MU STK 001).
2.6. HYGIENE
Le matériel de prélèvement (tubes, pots…) est à usage unique. De plus, avant tout reconditionnement du matériel, une vérification des tubes est systématiquement réalisée.
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Les sacs isothermes et les boites de prélèvements sont maintenus propres et désinfectés.
2.7. TRAÇABILITE
Une traçabilité de la prise en charge des prélèvements est effectuée par les coursiers. Ils notent sur la feuille de route, à chaque étape des tournées le nombre d’échantillons récupérés et l’heure de passage, préalablement défini en collaboration avec les préleveurs extérieurs. cf. IT MU PRE 031
3. BIBLIOGRAPHIE PG MU PRE 004 « Transport, Manipulation et conservations des échantillons ». IT MU PRE 031 « Les tournées ». IT MU STK 001 « Surveillance des températures ». Instruction P650 du 02 décembre 2002 : Instructions de transport des marchandises dangereuses par route. GBEA, chapitre III. 2.2.3..
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Laboratoire BiopyrénéesLab