Les propriétés cinétiques de l'aspartate transcarbamylase - jour 2 aspartate Carbamyl phosphate...

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Les propriétés cinétiques de l'aspartate transcarbamylase - jour 2 aspartat e Carbamyl phosphate carbamyl aspartat e ATCase

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Les propriétés cinétiques de l'aspartate transcarbamylase - jour 2

aspartateCarbamyl phosphate carbamyla

spartate

ATCase

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BCM311 - rappel comportement

embouts

boite vide

boîte moitié vide - retourner au buffet

- remplir (gants) et mettre à l'endroit pour stérilisation ultérieure (ne pas remettre au buffet)

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BCM311 - rappel comportement

remplir flacons laveurs

vider poubelles de table

enlever cuvettes des spectrophotomètres

ne pas laisser des cuvettes pleines sous la hotte

départs hâtifs - manipulations- ménage- vérification du cahier

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Jour 1 - variabilité

0 5 10 15 20 250

1

2

3

[Asp] mM

DO

46

6

1/1001/5001/10001/20001/50001/10000

0 5 10 15 20 250

1

2

3

[Asp] mM

DO

46

6

1/1001/5001/1000

0 5 10 15 20 250

1

2

3

[Asp] mM

DO

46

6

1/1001/5001/10001/2 0001/5 0001/10 000

0 5 10 15 20 250

1

2

3

[Asp] mM

DO

46

6

1/1001/5001/10001/20001/50001/10000

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Jour 1 - allostérie

0 5 10 15 20 250.0

0.5

1.0

1.5

[Asp] mM

DO

46

6

0 5 10 15 20 250.0

0.5

1.0

1.5

2.0

2.5

[Asp] mM

DO

46

6

0 5 10 15 20 250.0

0.5

1.0

1.5

[Asp] mM

DO

46

6

0 5 10 15 20 250.0

0.5

1.0

1.5

2.0

2.5

[Asp] mM

DO

46

6

R2 = 0,9933 R2 = 0,9893

R2 = 0,9961R2 = 0,9997

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Jour 1 - faibles préparations

0 5 10 15 20 250.00

0.05

0.10

0.15

0.20

0.25

[Asp] mM

DO

46

6

1/100

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ATCase - but

ATCase est une enzyme allostérique

1ère semaine - préparation de l'enzyme - détermination de la dilution

étudier les propriétés cinétiques de aspartate transcarbamylase (ATCase) d'E. coli

vite

sse

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Organigramme - semaine 2

effecteurs d’ATCase (séries A, B et C)

Préparation d’ATCase de la première semaine

Dosage d’ATCase sans effecteur(Série A)

Dosage d’ATCase en présence de CTP

(Série B)

Dosage d’ATCase en présence d’ATP

(Série C)

Courbe standard de carbamyl aspartate

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Organigramme - semaine 2

désensibilisation du site allostérique (A,D+E)

Préparation d’ATCase de la première semaine

Dosage d’ATCase sans effecteur(Série A)

Dosage d’ATCase en présence de Hg

(Série D)

Dosage d’ATCase en présence de Hg + CTP

(Série E)

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Organigramme - semaine 2

effecteurs d’ATCase (séries A, B et C)

Préparation d’ATCase de la première semaine

Dosage d’ATCase sans effecteur(Série A)

Dosage d’ATCase en présence de CTP

(Série B)

Dosage d’ATCase en présence d’ATP

(Série C)

Courbe standard de carbamyl aspartate

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CTP est un inhibiteur d'ATCase ATP est un activateur d'ATCase assure une production égale de purines + pyrimidines

Biosynthèse des pyrimidines

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0 10 20 300

1

2

3native+CTP+ATP

Vmax ave

Vmax/2

[aspartate] mM

DO466

ATCase

Vmax ne change pas

Kprime change

+CTP+ATP

À noter: ►Kprime n'est pas la [S] à Vmax/2

►ici à titre d'exemple seulement

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ATCase

enzyme allostérique: cinétique non-michaelienne

0 10 20 300.0

0.5

1.0

1.5

2.0

2.5

native+ATP

+CTP

[aspartate] mM

Vit

esse

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BCM311 - résultats typiques

Michaelis-Menten

0 10 20 300.0

0.5

1.0

1.5

2.0native+CTP+ATP

[aspartate] mM

DO

46

6

+CTP+ATP

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Michaelis-Menten d'ATCase

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Organigramme - semaine 2

désensibilisation du site allostérique (A,D+E)

Préparation d’ATCase de la première semaine

Dosage d’ATCase sans effecteur(Série A)

Dosage d’ATCase en présence de Hg

(Série D)

Dosage d’ATCase en présence de Hg + CTP

(Série E)

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Structure d'ATCase - séries A, D + E

enzyme native, C6R6, 300 kDa

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Structure d'ATCase - séries A, D + E

sous-unité catalytique (C3) catalysent encore la réaction souvent plus active que l’holoenzyme cinétique michaelienne (courbe hyperbolique) pas sous la régulation de CTP ou d’ATP

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Structure d'ATCase - séries A, D + E

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Structure d'ATCase - effet de Hg

Michaelis-Menten

0 10 20 300.0

0.5

1.0

1.5native+Hg+Hg+CTP

[aspartate] mM

DO

46

6

Michaelis-Menten

0 10 20 300.0

0.5

1.0

1.5native+Hg+Hg+CTP

[aspartate] mM

DO

46

6

ATCase+Hg plus active que natif courbe hyperbolique ATCase ne répond plus à CTP

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Structure d'ATCase - effet de Hg

0 10 20 300.0

0.5

1.0

1.5

2.0

2.5native+CTP

Vmax ave

Vmax/2

VitesseMichaelis-Menten

[aspartate] mM

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Structure d'ATCase - effet de Hg

Michaelis-Menten

0 10 20 300.0

0.5

1.0

1.5native+Hg+Hg+CTP

[aspartate] mM

DO

46

6

Michaelis-Menten

0 10 20 300.0

0.5

1.0

1.5native+Hg+Hg+CTP

[aspartate] mM

DO

46

6

ATCase+Hg plus active que natif courbe hyperbolique ATCase ne répond plus à CTP

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Points techniques

préparer suffisamment d’enzyme diluée pour effectuer les séries en question(A-C ou A+D+E)

diluer l’enzyme immédiatement avant son utilisation

garder l’enzyme sur glace en tout temps sauf durant l’incubation

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préparer le réactif (attention: H2SO4) colorimétrique juste avant son utilisation (protège-le de la lumière)

préparer seulement le volume du réactif requis (~210 ml; surplus à Will)

lire les DO rapidement après la terminaison des réactions: la couleur diminue avec le temps

Lunettes et gants obligatoire

Points techniques

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Réactions à 30oC (bains personnels) réactifs (tubes) préchauffés laissez des intervalles assez longs vérifiez la température des bains

Points techniques

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préparation des solutions

1.aspartate 125 mM(préparer 50 ml / table)

2.carbamyl phosphate 36 mM(préparer 50 ml / table)

solutions préparées semaine I

1.acide perchlorique 2%

2.tampon sodium phosphate 0,16 M pH 7,0

Points techniques

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Études cinétiques = précision chronométrage concentrations/dilutions/volumes homogène température

Points techniques

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ATCase - questions ?

aspartateCarbamyl phosphate carbamyla

spartate

ATCase

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ATCase - graphique de Hill

log (V/Vmax-V) vs log [aspartate]

pente = nh

besoin de Vmax

Vmax historiquement déterminé à l’aide des graphiques "linéaires" de Lineweaver-Burk et d'Eadie-Hofstee

0.5 1.0 1.5

-3

-2

-1

0

1

2native+CTP+ATP

log [aspartate]

log

V/V

ma

x-V

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ATCase - graphique de Hill

pour un enzyme allostérique, la courbe M+M est sigmoïde

Michaelis-Menten

0 10 20 300.0

0.5

1.0

1.5

2.0

2.5Vmax 

[aspartate] mM

Vit

esse

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ATCase - graphique de Hill

alors, les graphiques linéaires (LB et EH) ne sont pas

Comment déterminer Km et Vmax ?

Lineweaver-Burk

-1.0 -0.5 0.0 0.5 1.0

10

20

30

1/[aspartate] mM-1

1/V

Eadie-Hofstee

0.00 0.02 0.04 0.06 0.080.0

0.2

0.4

0.6

0.8

V/[aspartate] DO/mM

V

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Régression non-linéaire ("Curve fitting")

logiciels puissants (Graphpad) utilise le formule MM pour les enzymes

allostériques et détermine Vmax, Kprime et nH pour que la courbe tracée suit les données

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Régression non-linéaire ("Curve fitting")

Effecteurs allostériques

0 10 20 300.0

0.5

1.0

1.5Série A (natif)Série B (+ CTP)Série C (+ ATP)

[aspartate] mM

DO

46

6

Effecteurs allostériques

0 10 20 300.0

0.5

1.0

1.5

[aspartate] mM

DO

46

6

native+CTP+ATP

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GraphPad 6 - utilisation dans BCM311

présentation PowerPoint disponible sur le site internet du cours

régression linéaire (courbe standard) régression non-linéaire (Michaelis-Menten) comparaison de modèles (ex. MM vs sigmoïde)

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Analyse des données - Excel

préparez une « super » tableau avec toutes les données AVANT de faire les graphiques pour une série (ex. Série A)

bien identifier les colonnes (unités etc.) copiez le tableau, changez les DO et tous les

calculs se fait automatiquement pour la 2e série

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Analyse des données - Excel

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Analyse des données - Excel

1 µM = 1 µmole/Lvolume de réaction = 2 ml = 2 x 10-3 L

Alors: µmole CA = µM x 2 x 10-3 L

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Analyse des données - Excel

= µmoles CA / (0,5 hr X 0,1 ml)

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Analyse des données - Excel

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Analyse des données - ExcelSérie A

Série B

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Cette semaine

nouvelle courbe standard chaque équipe analyse ses propres résultats analyse des résultats (graphiques MM) avec GraphPad en fin de journée (fichier à Will)

rapport à remettre dans 2 semaines