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Universit Universit é é Mohammed V Mohammed V - - Agdal Agdal Facult Facult é é des Sciences de Rabat des Sciences de Rabat Laboratoire de Physiologie Animale Laboratoire de Physiologie Animale Conception Conception : NOUZHA BOUAMOUD NOUZHA BOUAMOUD Participation : Participation : NOUZHA RAMI NOUZHA RAMI FOUZIA BOUZOUBAA FOUZIA BOUZOUBAA IKBAL NACIRI IKBAL NACIRI TRAVAUX PRATIQUES TRAVAUX PRATIQUES de de PHYSIOLOGIE ANIMALE PHYSIOLOGIE ANIMALE

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UniversitUniversitéé Mohammed VMohammed V-- AgdalAgdalFacultFacultéé des Sciences de Rabatdes Sciences de Rabat

Laboratoire de Physiologie AnimaleLaboratoire de Physiologie Animale

ConceptionConception :NOUZHA BOUAMOUDNOUZHA BOUAMOUD

Participation :Participation :NOUZHA RAMINOUZHA RAMI

FOUZIA BOUZOUBAAFOUZIA BOUZOUBAAIKBAL NACIRI IKBAL NACIRI

TRAVAUX PRATIQUES TRAVAUX PRATIQUES dede

PHYSIOLOGIE ANIMALEPHYSIOLOGIE ANIMALE

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1) PRINCIPES DE BASE EN TP DE

PHYSIOLOGIE ANIMALE

1)1) PRINCIPES DE BASE EN TP PRINCIPES DE BASE EN TP DEDE

PHYSIOLOGIE ANIMALEPHYSIOLOGIE ANIMALE

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1) Ne JAMAIS maltraiter les animaux : si l’animal réagit au cours du travail malgrél’anesthésie, compléter la dose d’anesthésique (rat) ou refaire la démédulation ou ladécérebration (grenouille).

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2) Sacrifier le rat à la fin de chaque TP en sectionnant les carotides pour provoquer une hémorragie. Jeter à la poubelle spéciale l’animal après avoir vérifié qu’il est bien mort.

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3) Laisser le plan de travail propre avant de quitter la salle : essuyer les traces de sang, rincer la verrerie, jeter tous les déchets

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4) Se nettoyer longuement les mains et les ongles au savon avant de quitter la salle. Porter une blouse blanche pour protéger ses vêtements.

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5) Bien entretenir son matériel de dissection : les petits ciseaux doivent servir exclusivement aux canulations et tout le matériel doit être soigneusement nettoyé et séché après chaque séance de TP.

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2) ANESTHESIE DU RAT2) ANESTHESIE DU RAT2) ANESTHESIE DU RAT

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Ethyl uréthaneEthyl uréthane

Anesthésique non réversible

Solution mère à 10 g /100 ml

Dose à injecter: 1g par Kg de rat

Type d’injection : intrapéritonéale

Produit utilisé :

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La contention du rat se fait par la peau du dos qui doit être bien tendue afin de l’empêcher de tourner la tête et éviter ainsi les éventuelles morsures.

La contention du rat se fait par la peau du dos qui doit être bien tendue afin de l’empêcher de tourner la tête et éviter ainsi les éventuelles morsures.

1

2

L’aiguille doit être de bonne qualité afin de ne pas maltraiter l’animalAttention

Le plus terrorisé, c’est moi !!!Ne me fais pas mal !!!

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Aiguille perpendiculaire à l’abdomenEnfoncer les deux tiers de l’aiguille

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Aiguille non perpendiculaire : risque d’injection sous-cutanée

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Éviter la zone des organes génitaux

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Éviter de piquer au niveau du foie et de l’estomac(risques d’hémorragies internes fatales)

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3) MATERIEL 3) MATERIEL 3) MATERIEL

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Coton

Cathéters divers

Seringue de 1ml remplie de NaCl 9 o/oo

Fil

Gros ciseaux (peau)

Ciseaux fins (hémisections)

Pinces fines

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Ne pas trop serrer les nœuds coulants autour des pattesAttention

Réalisé avec un animal sous anesthésie générale

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4) LES CANULATIONS 4) LES CANULATIONS 4) LES CANULATIONS

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A) Canulation de laVeine Jugulaire

A) Canulation de laA) Canulation de laVeine JugulaireVeine Jugulaire

Emplacement : le cou

Rôle : 2 veines jugulaires droite et gauche ramènent le sang de la tête au cœur.

Utilité de la canulation : injection intraveineuse d’une hormone ou d’un produit pour étudier ses effets

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TêteTête

CœurCœur

1ère Ligature

2ème Ligature

Sens de circulationSens de circulationdu sangdu sang

Veine Jugulaire

Cathéter utilisé

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1ère Ligatureserrée

2ème Ligature

3)Serrer(Double nœud)3)Serrer

(Double nœud)

1) Réaliser une hémisection1) Réaliser une hémisection

2) Introduire le cathéter dans l’ hémisection

2) Introduire le cathéter dans l’ hémisection

Attention

Ne pas enfoncer le cathéter jusqu’au cœur

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1) Placer une Seringue de NaCl 9 °/001) Placer une Seringue de NaCl 9 °/00

2)Aspirer délicatement2)Aspirer délicatement

3) Renvoyer le sang dans la circulation3) Renvoyer le sang dans la circulation

4) Laisser la seringue en place4) Laisser la seringue en place

Vérification de la canulation de la jugulaireVérification de la canulation de la jugulaire

Laisser la seringue de NaCl en place pour éviter les coagulations dans le cathéterAttention

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Emplacement des jugulaires

Réalisé avec un animal sous anesthésie générale

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Dilacération des graisses sous-cutanées et séparation des glandes salivaires

Réalisé avec un animal sous anesthésie générale

Ne pas utiliser de ciseaux pour dilacérer (doigts et pinces)Attention

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Jugulaire droite

Réalisé avec un animal sous anesthésie générale

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Pose d’une ligature serrée côté tête et d’une ligature en attente sous la jugulaire côté cœur

Réalisé avec un animal sous anesthésie générale

Fil de la ligature passant sous la jugulaire

Ne pas isoler la veine des tissus sous-jacents pour la ligature côtécœurAttention

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Réalisation d’une hémisection sur la jugulaire

Réalisé avec un animal sous anesthésie générale

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Introduction du cathéter dans la jugulaire

Réalisé avec un animal sous anesthésie générale

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Jugulairegauche

Réalisé avec un animal sous anesthésie générale

Jugulaire droite canulée

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B) Canulation de laTrachée Artère

B) Canulation de laB) Canulation de laTrachTrachéée Arte Artèèrere

Utilité de la canulation : soulager les problèmes respiratoires de l’animal généralement liés à l’anesthésie en lui permettant de respirer directement par trachéotomie

Emplacement : le cou

Rôle : met en relation les voies aériennes supérieures avec les poumons

Muscle sterno-hyoidien

Dilacération

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La trachée artère doit être canulée uniquement dans le cas ou l’animal présente des problèmes respiratoiresau cours de la manipulation (effet de l’anesthésie).

Toutefois, cette canulation doit être préparée àl’avance : trachée artère dégagée et ligature prête à être serrée.

Attention

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Muscle sterno-hyoidien entourant la trachée artère

Glandes salivaires(après dilacération)

Réalisé avec un animal sous anesthésie générale

Dilacération àl’aide de pinces

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Ouverture du muscle sterno-hyoïdien par dilacération

Réalisé avec un animal sous anesthésie générale

Attention

Ne pas utiliser de ciseaux pour dilacérer le muscle sterno-hyoidien (risque de sectionner une carotide…)

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Dégagement de la trachée artère après ouverture du muscle sterno-hyoidien

Réalisé avec un animal sous anesthésie générale

Glande thyroïde

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Pose d’une ligature en attente sous la trachée

Réalisé avec un animal sous anesthésie générale

Fil

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1

Réalisé avec un animal sous anesthésie générale

43

Tête

Poumons

2

hémisection

Ne pas introduire le cathéter plus de 1 cmAttention

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Sens de la canulation de la trachéeSens de la canulation de la trachée

Canuler la trachée avec le bout rond du cathéter !

Poumons Tête

Canuler la trachée vers les poumons !

Ne pas enfoncer le cathéter dans les poumons !Attention

Cathéter

Serrer la ligature

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C) Canulation du Canal Cholédoque

C) Canulation du Canal C) Canulation du Canal CholCholéédoquedoque

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Duodénum(Anse duodénale)

Foie

Estomac

Canal cholédoque

La bile sécrétée par le foie et la sécrétion pancréatique sont déversées dans le duodénum en passant par le canal cholédoque Les nutriments issus de la digestion sont transportés de l’intestin vers le foie par la veine porte

EmplacementEmplacement

Veine porte

Pancréas

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Utilité de la canulation :

Emplacement : relie le foie au duodénum en traversant le pancréas diffus.

Rôle : transport de la bile et des secrétions pancréatiques vers le duodénum

recueillir la bile sécrétée par le foie

recueillir la sécrétion pancréatique (dans ce cas l’arrivée de la bile issue du foie est interrompue par la pose d’une ligature serrée sur le cholédoque à sa sortie du foie)

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Bile

Anse duodénale

Foie

Canal cholédoque

2) Charger le canal sur des pinces fines

3) Faire une hémisection sur le canal

4) Canuler en direction du foie

5) Serrer la ligature

1) Poser une ligature en attente sur le canal cholédoque

Ligature

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Photo canal choledoque

Repérer l’apophyse xiphoïde qui servira de pointde départ à l’ouverture de l’abdomen sur 2 cm

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Réalisé avec un animal sous anesthésie générale

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XEmplacement de l’estomac

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Base du Foie

Estomac

DuodénumCanal cholédoque

Pancréas

Tête

QueueRéalisé avec un animal sous anesthésie générale

Ne pas manipuler le duodénum avec des pinces (risques hémorragiques)Attention

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Réalisation d’une hémisection sur le canal cholédoque

Réalisé avec un animal sous anesthésie générale

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Canal cholédoque canulé

Bile progressantdans le cathéter

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D) Canulation de la vessieD) Canulation de la vessieD) Canulation de la vessie

Utilité : mesurer la diurèse en recueillant directement les urines

Vessie

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Urines

Ligature en attente

VESSIE

Cathéter

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Ligature serrée autour du pénis

Ouverture de l’abdomen sur 2cm

Réalisé avec un animal sous anesthésie générale

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Ligament

Vessie

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Réalisation d’une hémisection à l’apex de la vessie

Réalisé avec un animal sous anesthésie générale

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Cathéter à embout rond

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Progression de l’urinedans le cathéter

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Ligature serrée sur le cathéter

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Vessie

Cathéter

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Vessie canulée

Vérifier que le bout du cathéter est bien libre à l’intérieur de la vessieAttention

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Jugulaires

Utilité de la canulation : prélèvement de sang

Emplacement : le cou, à l’intérieur du muscle sterno-hyoïdien

Rôle : 2 artères carotides droite et gauche transportent le sang du cœur vers la tête

D)D) CanulationCanulation de la carotide de la carotide (et rep(et repéérage des nerfs vagues)rage des nerfs vagues)

Tronc vaguo-carotidien

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Séparation du nerf vague et de la carotideSéparation du nerf vague et de la carotide

Tronc vaguo-carotidien

Séparation à l’aide de pinces fines

Isoler la carotide et le nerf sur un

fil et tirer délicatement pour les séparer sur au

moins 1 cmNe pas abîmer le nerf avec les pinces : fragile !!!

Attention

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Dégagement de la trachée artère après ouverture du muscle sterno-hyoidien

Trachée artère

Tronc vago-carotidien

Muscle sterno-hyoidien écarté

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Carotide droite Nerf vague droit

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Réalisé avec un animal sous anesthésie générale

Séparation du nerf vague et de la carotide droits

Glisser les pinces fines fermées entre le nerf vague et la carotide

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Réalisé avec un animal sous anesthésie générale

Séparation du nerf vague et de la carotide droits

Tirer délicatement les deux fils pourséparer le nerf vague de la jugulaire

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Ligature serrée

Carotide

Ligature serrée

Sens de circulationdu sang

Ligature en attente

Ne jamais oublier de poser la pince à artères avant de réaliser l’hémisection :

hémorragie immédiate et mortelle

Attention

Cathéter rempli de NaCl 9°% et bouché à son

extrémité extérieure

Pince hémostatique

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Pour prélever du sang à partir d’une carotide :Pour prélever du sang à partir d’une carotide :

Sang

1) Sectionner l’extrémitédu cathéter

1) Sectionner l’extrémitédu cathéter

3) Prélever le sang dans un tube3) Prélever le sang dans un tube

2) Ouvrir la pince hémostatique2) Ouvrir la pince hémostatique

4) Refermer la pince hémostatique4) Refermer la pince hémostatique

Carotide

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Tête

Ligature serrée

1

Pince hémostatique

3

Ligatureen attente

2

Carotide droite

Réalisé avec un animal sous anesthésie générale

Réalisation d’une hémisection sur la carotide droite

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Réalisé avec un animal sous anesthésie générale

Hémisection

Cathéter(rempli de NaCl 9 °%)

Canulation de la carotide droite

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1) Serrer la ligature sur le cathéter

Réalisé avec un animal sous anesthésie générale

2) Ouvrir la pince hémostatique

3) Recueillir un échantillon de sang

Le sang restant dans le cathéter après prélèvement doit être renvoyé dans la circulation

générale à l’aide d’une seringue afin d’éviter toute coagulation au

sein du cathéter

Attention

Avancée du sang dans le cathéter

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