La Science Tout Simplement - Atom Scientific
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La Science Tout Simplement
Kits de Diagnostics
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Des Produits conformes aux
normes ISO15189, offrant fiabilité
et constance à la Science,
tout simplement
Notre HistoireAtom Scientific est une société spécialisée dans la fabrication de kits de diagnostic par colorationDepuis 50 ans Atom Scientific œuvre à délivrer une qualité exceptionnelle au service de l’industrie scientifique à travers le monde entier
Historique Qualité EquipementsEtablis en 2009, Atom Scientific est
spécialisé dans la fabrication de kits
de diagnostic par coloration ainsi que
dans la fabrication de ses colorants
pour l’industrie Sciences de Vie en
Laboratoires.
Alors que la société s’est agrandie notre
gamme de produits s’est logiquement
étendue pour incorporer une variété
complète de produits chimiques
complémentaires afin de satisfaire les
besoins de nos clients.
Nos principaux objectifs :
• La Qualité
• Le Service
• Le bon rapport Qualité/Prix
Notre Système de gestion en qualité est
certifié ISO9001 :2008
Notre QA/ Service Qualité contrôle et
garantit la conformité des composants
du produit brut au produit fini et
s’assure de la fiabilité de tous nos
produits
Notre Laboratoire d’examen de
Sciences de vie est géré par des
scientifiques expérimentés qui
s’assurent de la conformité requise par
ISO 15189, ce qui fait gagner du temps
et des ressources à nos clients tout en
leur garantissant un travail de qualité
constant
En 2014, la société a ouvert son seul et
unique site de Manchester, qui a permis
d’accroître massivement sa capacité
opérationnelle, tout en s’assurant d’être
en conformité avec la législation actuelle
et future
Nous offrons les produits finis sous
différents formats qui vont de 10ml/10mg
à 25L/25Kg et nous avons une capacité de
production pour des échantillons allant
par exemple de 500ml et jusqu’à 5000L
Nos équipements peuvent faire face à
différentes sortes de demandes allant
d’une commande d’une seule bouteille
de produits à quelques milliers de
bouteilles ce qui nous permet de réduire
considérablement les délais de livraison et
d’offrir des livraisons rapides
Tous les produits chimiques et réactifs
proposés par Atom Scientific sont
fabriqués, emballés par nos soins, et
distribués sur place - dans notre seul et
unique site de Manchester
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0044 (0)161366 5123
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Notre mission est de faire une science pour tous, de proposer des produits certifiés haute qualité, accessibles en termes de prix, emballés soigneusement et livrés en
toute sécurité- où vous voulez - quand vous le désirez.
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Supports Techniques
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• Code produit• Nom du produit• Format du produit • Quantité• Prix
Tous les prix de notre site web sont cotés EXW Sauf erreurs et omissions
Atom Scientific propose sur son site internet les fiches Techniques de ses produits, qui peuvent être téléchargées:
• Fiche Sécurité (MSDS)• Certificat de Conformité• Certificat d’Analyse• Fiche protocole du produit
Si vous nous transmettez l’adresse email de votre service technique, la fiche Sécurité vous sera envoyée automa-tiquement par retour e-mail au moment de l’expédition de votrecommande.
Et si vous avez besoin d’assistance technique, n’hésitez pas s’il vous plait à contacter notreservice à cet adresse mail :
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Kits de Coloration
100 TestCes Kits sont réalisés avec 50ml de composants , conditionnés dans notre emballage Atom Scientific.
Chaque kit contient un protocol d’utilisation du produit.
200 TestCes Kits sont réalisés avec 100ml de composants , conditionnés dans notre emballage Atom Scientific.
Chaque kit contient un protocol d’utilisation du produit.
500 TestCes Kits sont réalisés avec 250ml de composants , conditionnés dans notre emballage Atom Scientific.
Chaque kit contient un protocol d’utilisation du produit.
1000 TestCes Kits sont réalisés avec 500ml de composants , conditionnés dans notre emballage Atom Scientific.
Chaque kit contient un protocol d’utilisation du produit.
Formats100 Test fournis avec des bouteilles de 50ml 200 Test fournis avec des bouteilles de 100ml500 Test fournis avec des bouteilles de 250ml1000 Test fournis avec des bouteilles de 500ml
Qualité
Excellence Technique
Atom Scientific possède un service de controle qualité interne de renommée. Avec les systèmes de découpes, de coloration, de champ lumineux et microscopie fluorescente, chaque échantillon de coloration fabriquée est testé avant d’être mis en vente. Un lot de fabrication du produit est retenu durant la durée de conservation du produit. Les échantillons sont testés à interval régulier pour assurer la stabilité de la qualité sur le long terme. Les tests internes nous permettent de répondre rapidement aux éventuels questions techniques que nos clients peuvent avoir.
Fabriqué dans notre infrastructure à Manchester nous maintenons un large stock . Nous sommes capables de réagir rapidement aux demandes fluctuantes de nos clients.
Certifié ISO9001:2000 et opérant aux stricts normes HSE, notre capacité de fabrication varie de 100ml à 1600L.
Tous les produits chimiques et produits réactifs offerts par Atom Scientific sont préparés, emballés et distribués sur place.
T: 0044 (0)161366 5123 W: www.atomscientific.comT: 0044 (0)161366 5123 W: www.atomscientific.com
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Ce kit de coloration est utilisé pour la coloration des sulfomucines et des protéoglycanes contenant du sulfate. Les tissus qui présentent cette coloration comprennent le cartilage, les mucines des cellules de gobelet du gros intestin et les mucines des glandes séreuses
Kit de Coloration Bleu d’Alcian pH 1.0
Contenu du Kit
Bleu d’alcian - 8GX 1% dans 0.1N HCL
Hémalum de Mayer
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
40 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
15-25 ° C
Résultats
Sialomucines carboxylées, Acide hyaluronique: Pas de coloration
Protocole
1. Déparaffiner les coupes, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet
2. Teindre au bleu alcian 8GX 1% dans 0.1N HCL pendant 30 minutes
3. Bien laver à l’eau distillée
4. Colorer les coupes à l’hémalun de Mayer pendant 30sec -1 minute
5. Différencier rapidement et bleuir dans l’eau courante ou le substitut d’eau du robinet Scotts – non fourni
6. Déshydrater, nettoyer et monter
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK300 2 x 50ml 2 x 100ml 2 x 250ml 2 x 500ml
Hazard Information
Mucines Sulfatées, Protéoglycanes Bleu
Ce kit de coloration est une coloration à large spectre pour les mucines. Il met en évidence les sialomucines, les sulfomucines et les protéoglycanes. Il a été démontré que le bleu Alcian se lie et précipite l’acide hyaluronique, le sulfate de chondroïtine et l’héparine à partir d’une solution aqueuse, mais ne précipite pas le glycogène et est donc glycogène négatif contrairement au PAS qui est positif.
Kit de Coloration Bleu d’Alcian pH 2.5
Contenu du Kit
Solution d’Acide acétique 1% dans 3% Acide Acétiquel
Rouge Neutre 0.1% Aqueux
Solution Acide Acétique 3% x 3
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
45-50 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
15-25 ° C
RésultatsMucosubstances acides, acide hyaluronique, sialomucines: Bleu/Vert
Rouge
Protocole
1. Déparaffiner les coupes, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet
2. Teindre dans 1% de bleu alcian pendant 30 minutes
3. Rincer dans 3% d’acide acétique pendant 10-20 secondes
4. Laver à l’eau courant pendant 5minutes
5. Contre colorer au Rouge Neutre pendant 3 minutes
6. Rincer rapidement dans l’eau et sécher la coloration
7. Déshydrater rapidement dans les alcools, nettoyer et monter
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK400 3 x 50ml 3 x 100ml 3 x 250ml 3 x 500ml
Hazard Information
Noyau/Cytoplasme :
8 9T: 0044 (0)161366 5123 W: www.atomscientific.comT: 0044 (0)161366 5123 W: www.atomscientific.com
Ce kit de coloration est utilisé pour la coloration de Mycobacterium Tuberculosis et d’autres organismes acido-résistants dans les coupes de tissus et les frottis. Les parois des mycobactéries ne sont pas facilement pénétrées, donc le phénol est mélangé avec la fuchsine basique pour surmonter cela. Aucune chaleur n’est requise pour cette méthode.
Kit de Coloration AFB (Contre-Couleur Vert Clair)
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK41 4 x 50ml 4 x 100ml 4 x 250ml 4 x 500ml
Contenu du Kit
Carbol Fuchsin Kinyoun
Différentiateur TB x 2
Vert Clair Aqueux 0.5%
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
20 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
15-25 ° C
Résultats
Bacilles acido-résistants (M.tuberculosis):
Cellules et matériel de base, autres organismes:
Magenta / Rouge
Vert
Protocole
Frottis: Préparez les frottis sur des lames nettoyées et laissez sécher à l’air pendant 5 à 10 minutes. Fixer dans de l’éthanol absolu pendant 10 minutes Tissus: Un fixateur standard à base de formaldéhyde fournit des résultats satisfaisants. Les tissus doivent être traités et inclus dans de la cire de paraffine et coupés à 5 microns
1. Déparaffiner les sections, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet. Pour les frottis, inonder
2. Inonder les lames avec du carbol fuchsine Kinyoun filtré pendant 10 minutes
3. Bien laver à l’eau distillée
4. Démontrer avec le différenciateur TB jusqu’à ce que la préparation soit incolore ou rose pâle (jusqu’à ce
5. Bien laver à l’eau distillée
6. Contre-colorer en vert clair pendant 15 secondes
7. Bien laver à l’eau distillée
8. Déshydrater rapidement, clarifier et monter. L’immersion dans l’huile peut être utilisée pour la visualisa
qu’il n’y ait plus de colorant), environ 3-5 secondes
les lames avec de l’eau distillée
Hazard Information
UN1992
tion du frottis. La préparation doit être séchée à l’air pendant 20 à 30 minutes avant l’utilisation de l’huile d’immersion.
Ce kit de coloration est utilisé pour la coloration de Mycobacterium Tuberculosis et d’autres organismes acido-résistants dans les coupes de tissus et les frottis. Les parois des mycobactéries ne sont pas facilement pénétrées, donc le phénol est mélangé avec la fuchsine basique pour surmonter cela. Aucune chaleur n’est requise pour cette méthode.
Kit de Coloration AFB (Contre-Couleur Bleu de Méthylène)
Contenu du Kit
Carbol Fuchsin Kinyoun
Différentiateur TB x 2
Bleu de Méthylène (AFB)
Informations Générales
Résultats
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK42 4 x 50ml 4 x 100ml 4 x 250ml 4 x 500ml
Hazard Information
UN1992
Protocole
Frottis: Préparez les frottis sur des lames nettoyées et laissez sécher à l’air pendant 5 à 10 minutes. Fixer dans de l’éthanol absolu pendant 10 minutes Tissus: Un fixateur standard à base de formaldéhyde fournit des résultats satisfaisants. Les tissus doivent être traités et inclus dans de la cire de paraffine et coupés à 5 microns
1. Déparaffiner les sections, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet. Pour les frottis, inonder
2. Inonder les lames avec du carbol fuchsine Kinyoun filtré pendant 10 minutes
3. Bien laver à l’eau distillée
4. Démontrer avec le différenciateur TB jusqu’à ce que la préparation soit incolore ou rose pâle (jusqu’à ce
5. Bien laver à l’eau distillée
6. Contre-colorer en bleu de méthylène pendant 15 secondes
7. Bien laver à l’eau distillée
8. Déshydrater rapidement, nettoyer et monter
les lames avec de l’eau distillée
qu’il n’y ait plus de colorant), environ 3-5 secondes
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
20 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
15-25 ° C
Bacilles acido-résistants (M.tuberculosis):
Cellules et matériel de base, autres organismes:
Magenta / Rouge
Bleu
10 11T: 0044 (0)161366 5123 W: www.atomscientific.comT: 0044 (0)161366 5123 W: www.atomscientific.com
Ce kit de coloration est utilisé pour démontrer la présence de myéline normale. Lorsqu’il est combiné avec un contre-colorant violet de crésyl, la myéline et les substances nissl sont démontrées
Kit de Coloration Bleu Rapide de Luxol
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
140 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
15-25°C
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK345 5 x 50ml 5 x 100ml 5 x 250ml 5 x 500ml
Contenu du Kit
Luxol Fast Blue 0,1% dans du méthanol acidifié
Crésyl Violet 0,5% Solution aqueuse
Crésyl Violet Différentiateur (IMS 99%)
Protocole
1. Déparaffiner les sections et hydrater à 95% d’alcool. Ne pas rincer
2. Colorer dans une solution de bleu rapide luxol pendant 2 heures à 60 ° C ou à 37 ° C pendant une nuit
3. Laver dans de l’éthanol dénaturé à 70% pendant 2-3 secondes pour éliminer l’excès de tache
4. Laver à l’eau du robinet
5. Différencier avec du carbonate de lithium solution jusqu’à ce que les matières grise et blanche soient
6. Laver à l’eau du robinet
7. Check differentiation under the microscope. Repeat step 5 if necessary
8. Stain in cresyl violet solution for 10-12 minutes
9. Wash in tap water
10. Differentiate in cresyl violet differentiator for 4-8 seconds
11. Check differentiation under microscope (only look at nissl substances and nuclei)
12. Dehydrate, clear and mount
Solution de carbonate de lithium 0,05%
Ethanol dénaturé 70%
Résultats
Myéline:
Noyaux, substances Nissl:
Bleu/Vert
Violet/Rose
Hazard Information
UN1992
distinguées
Ce kit de coloration est utilisé pour la démonstration des fibres élastiques et les protéines associées aux cuivres (CAP) dans les découpes de tissu. Certains états pathologiques voient une accumulation de cuivre dans les tissus tels que le foie. Une présence excessive de fibres élastiques dans le foie puissent indiquer une fibrose ou une cirrhose
Kit de Coloration Bleu Victoria
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK76 3 x 50ml 3 x 100ml 3 x 250ml 3 x 500ml
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
260 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
15-25°C
Contenu du Kit
Permanganate de Potassium 0.5% Aqueuse x 2
Acide Sulfurique 3% Aqueuse
Acide Oxalique 1% Aqueuse
Résultats
Copper associated protein, elastic fibres:
Other tissues:
Blue
Red/Pink
* Cette image type pour illustrer seulement
Coloration Bleu de Victoria
Rouge Neutre 0.1% Aqueuse
Protocole
Préparation du Permanganate de Potassium Acidifié
Mélanger 9.5ml de solution de Permanganate de Potassium avec 0.5ml de solution d’acide. sulphurique.
Cette solution violette se gardera pendant 3-4 semaines mais devra être jeter après 5 utilisations ou si elle
vire au marron.
1. Déparaffiner les coupes, hydrater dans les alcools et rincer à l’eau du robinet
2. Traiter avec le permanganate de potassium acidifié pendant 5 minutes
3. Laver bien à l’eau et javelliser avec l’acide oxalique durant 1 minute
4. Laver bien à l’eau
5. Rincer dans 70% alcool (pas fourni)
6. Colorer dans le colorant Bleu de Victoria filtré pendant 4 heures à température ambiante (voir note 1)
7. Différencier dans 70% alcool jusqu’à ce que la teinte ne coule pas de la lame. Cette étape peut
8. Bien laver à l’eau
9. Contrecolorer avec le rouge Neutre durant 30 secondes
10. Laver à l’eau
11. Déshydrater rapidement, clarifier et monter
prendre jusqu’à 30 minutes. Vérifier au microscope toutes les 5 minutes jusqu’à ce que le fond soit complètement décoloré.
Hazard Information
UN1170
12 13T: 0044 (0)161366 5123 W: www.atomscientific.comT: 0044 (0)161366 5123 W: www.atomscientific.com
Ce kit de coloration est couramment utilisé pour colorer les oocystes de l’espèce Cryptosporidium dans les frottis foecaux. Il est également utile de confirmer la présence d’oocystes d’Isospora belli et de Cyclospora cayetanensis
Kit de Coloration Cryptosporidium
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
25 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
15-25 ° C
Résultats
Oocystes de Cryptosporidium parvum: Magenta/Rouge
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK75 5 x 50ml 5 x 100ml 5 x 250ml 5 x 500ml
Hazard Information
UN1922
Contenu du Kit
Cryptospridium Fixatif
Carbol Fuchsine Kinyoun
TB Différentiateur x 2
Vert malachite 0,5% aqueux
Protocole
1. Immerger dans le fixateur Cryptosporidium pendant 3 minutes
2. Inonder les lames de carbol fuchsine Kinyoun pendant 20 minutes
3. Bien laver dans de l’eau distillée
4. Différencier avec le différenciateur TB jusqu’à ce que la préparation soit incolore ou rose pâle (jusqu’à
5. Bien laver à l’eau distillée
6. Contre-colorer avec du vert malachite pendant 1 minute
7. Bien laver à l’eau distillée
8. Si une immersion dans l’huile doit être utilisée pour la visualisation des frottis, la préparation doit être
ce qu’il n’y ait plus de colorant environ 10 sec.
séchée à l’air pendant 20-30 min
Oocystes d’Isospora belli:
Oocystes de Cyclospora cayetanensis:
Rouge granulaire
Coloration variable (certaines sont acido-résistantes donnant un trou rond de sphère ridée vitreuse
Ce kit de coloration est utilisé pour la détection de la protéine amyloïde dans les coupes de tissu. L’utilisation de solvants alcooliques alcalins a pour effet de supprimer la coloration d’autres composants tissulaires tout en améliorant la liaison hydrogène, améliorant ainsi la sélectivité pour l’amyloïde. Cette méthode a des solutions stables et a un haut degré de sélectivité.
Kit de Coloration Congo Red (de Highman)
Contenu du Kit
Rouge Congo dans 50% d’éthanol
Hémalun de Mayer
0,2% d’hydroxyde de potassium dans 80% d’éthanol
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
28 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
15-25 ° C
Résultats
Éosinophiles, amyloïde, élastine, kératine: Orange/Rouge
Protocole
1. Déparaffiner les coupes, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet
2. Placer dans une solution de Rouge Congo pendant 15 minutes
3. Faire la différence dans une solution d’hydroxyde de potassium pendant 3 à 10 secondes
4. Laver à l’eau courante
5. Tacher les noyaux avec de l’Hémalum Mayer durant 5 minutes
6. Bien laver à l’eau
7. Différencier dans de l’alcool acide à 1% pendant 2 à 10 secondes
8. Bien laver à l’eau
9. Bleuir dans l’eau du robinet Scotts
10. Bien laver à l’eau du robinet
11. Déshydrater rapidement, nettoyer et monter
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK10 3 x 50ml 3 x 100ml 3 x 250ml 3 x 500ml
Hazard Information
UN1170
Noyau: Bleu
14 15T: 0044 (0)161366 5123 W: www.atomscientific.comT: 0044 (0)161366 5123 W: www.atomscientific.com
Ce kit de coloration peut être utilisé pour démontrer les fibres élastiques dans les coupes tissulaires; recommandé pour la pathologie vasculaire
Kit de Coloration d’Elastique Orcein
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
135 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
15-25°C
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK91 7 x 50ml 7 x 100ml 7 x 250ml 7 x 500ml
Contenu du Kit
Solution d’orcéine (1% d’orcéine dans 1% d’alcool acide)
Permanganate de potassium Solution à 0,5% x 2
Solution d’acide sulfurique à 3%
Solution d’acide oxalique à 1%
Ethanol dénaturé 70%
Hazard Information
UN1170
Protocole
Préparation du permanganate de potassium acidifié.Mélanger 9,5 ml de solution de permanganate de potassium avec 0,5 ml de solution d’acide sulfurique. Cette solution violette se conserve 3-4 semaines mais doit être jetée après 5 utilisations ou si elle devient brune
1. Déparaffiner les coupes, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet
2. Oxyder les coupes avec du permanganate de potassium acidifié pendant 5 minutes
3. Bien laver à l’eau
4. Blanchir avec de l’acide oxalique à 1% pendant 5 minutes
5. Bien laver à l’eau
6. Rincer les coupes dans de l’éthanol dénaturé à 70%
7. Coloration en solution d’orcéine pendant 2 heures à 37 ° C
8. Rincer à l’eau puis à l’éthanol dénaturé à 70%. S’il y a un fond brun (dans le collagène et les
9. Déshydrater, clarifier et monter
noyaux) différencier dans 1% alcool acide - quelques secondes seulement sont nécessaires
Résultats
Antigène de surface de l’hépatite B:
Fibres élastiques:
Protéine associée au cuivre:
Contexte:
Granulés bruns dans le cytoplasme
Marron
Marron foncé/Violet
Rose pâle/Marron
Ce kit de coloration est utilisé pour démontrer les différentes structures tissulaire. L’hématoxyline (Alun) Harris, colore le noyau en bleu-noir et l’éosine colore les cellules cytoplasmiques et la plupart des fibres tissulaires connectives en différentes teintes. Les tons s’intensifient du rose au rouge.
Kit de Coloration d’Eosine et Hématoxyline
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
35 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
15-25 ° C
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK26 4 x 50ml 4 x 100ml 4 x 250ml 4 x 500ml
Hazard Information
UN1770
Contenu du Kit
Hématoxyline Harris
Éosine Y 1% aqueux
Alcool acide 0,5%
Protocole
1. Déparaffiner les coupes, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet
2. Colorer dans de l’hématoxyline de Harris filtrée pendant 10 minutes
3. Bien laver à l’eau courante du robinet
4. Différencier dans de l’alcool acide à 0,5% pendant 5 à 10 secondes
5. Bien laver dans eau courante
6. Bleuir dans l’eau du robinet Scotts
7. Bien laver à l’eau (si l’eau du robinet Scotts est utilisée)
8. Teindre à 1% d’éosine Y pendant 10 minutes
9. Laver à l’eau courante pendant 1 à 5 minutes
10. Déshydrater, clarifier et monter
Eau du robinet Scotts
Résultats
Noyau:
Cytoplasme:
Fibres Musculaires:
Cellules Sanguines:
Fibres:
Bleu/Noir
Différentes teintes de rose
Rose Intense/Rouge
Orange/Rouge
Rose Intense
16 17T: 0044 (0)161366 5123 W: www.atomscientific.comT: 0044 (0)161366 5123 W: www.atomscientific.com
Ce kit de coloration est utilisé pour mettre en évidence les lipides hydrophobes, en particulier les graisses neutres dans les tissus. Afin de pénétrer les graisses, le colorant doit être dissous dans des solvants organiques, le solvant doit être suffisamment dilué (aqueux) pour éviter l’extraction des lipides dans la solution. Le solvant le plus utilisé est l’alcool isopropylique (isopropanol / IPA). En outre, le tissu une fois coloré, peut être montré par la lumière polarisée pour démontrer le biréfringement cholestérol
Kit de Coloration d’Huile Rouge O
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
20 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
15-25°C
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK14 4 x 50ml 4 x 100ml 4 x 250ml 4 x 500ml
Contenu du Kit
Coloration Huile Rouge O Saturé dans l’Alcool
Isopropylique
Hémalum de Mayer
Hazard Information
UN1219
Résultats
Lipides hydrophobes saturés (c’est-à-dire cérébrosides, triglycérides, esters de cholestérol):
Phospholipides:
Noyaux:
Rouge
Rose
Bleu
Solution de stock de travail Solution de travail
Ajouter 4 doses d’eau distillée à 6 doses de colorant O d’huile rouge. Bien mélanger et laisser reposer 10 minutes, filtrer avant utilisation. Utiliser immédiatement après la filtration
Protocole
1. Laver les lames avec de l’eau distillée
2. Mélanger 2 parties de colorant Neisser A avec 1 partie de colorant Neisser B et inonder les lames
3. Rincer doucement à l’eau distillée
4. Colorer les lames avec le colorant Neisser C pendant 5 secondes
5. Rincer doucement à l’eau distillée
6. Colorer au colorant Neisser D pendant 10 secondes
7. Rincer et sécher à sec
8. Utiliser la méthode habituelle de visualisation au microscope, par exemple huile d’immersion
avec le mélange de colorant pendant 20-30 secondes.
Ce kit de coloration est utilisé pour la démonstration de mastocytes dans des coupes de tissus. Les granules dans le cytoplasme des mastocytes sont métachromatiques. La coloration métachromatique est due au pH, à la concentration du colorant et à la température du colorant basique
Kit de Coloration Bleu de Toluidine
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
12 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
15-25°C
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK609 6 x 50ml 6 x 100ml 6 x 250ml 6 x 500ml
Contenu du Kit
Bleu de Toluidine 1% dans 70% d’alcool
Chlorure de sodium 0.9% aqueux x 5
Résultats
Mastocyte:
Contours:
Violet
Nuances de bleu
Protocole
Solution de travail
Bleu de toluidine 1 ml
Solution de chlorure de sodium 9 ml
Faire au dernier moment, jeter après utilisation
1. Déparaffiner les coupes, hydrater avec de l’alcool et rincer à l’eau du robinet
2. Rincer à l’eau distillée
3. Colorer avec la solution de travail au bleu de toluidine pendant 3 minutes
4. Laver avec 3 changements d’eau distillée 5. Déshydrater rapidement à travers les alcools, clarifier et monter
Hazard Information
UN1170
18 19T: 0044 (0)161366 5123 W: www.atomscientific.comT: 0044 (0)161366 5123 W: www.atomscientific.com
Ce kit de coloration est utilisé pour différencier le glycogène des autres éléments PAS positifs dans les coupes de tissus. Le glycogène est éliminé par digestion enzymatique. Il est souvent utilisé en conjonction avec le kit PAS
Kit de Coloration DPAS
Contenu du Kit
Lipase du pancréas porcin
Solution d’acide périodique 1%
Hématoxyline Harris
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
75 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
Réactifs de Schiff & Lipase 2-8°C – Autres Réactifs 15-25°C
Résultats
Noyaux:
Glycogène:
Neutre/Sialomucines
Diverses glycoprotéines, lipofuchsines précoces:
Bleu-Noir
Pas de coloration magenta
Magenta
Magenta
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK150 4 x 50ml 4 x 100ml 4 x 250ml 4 x 500ml
Hazard Information
Réactifs de Schiff (Feulgen)
Protocole
1. Déparaffiner les coupes, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet
2. Traiter avec une solution à 1% de lipase pendant 20 minutes à 37 ° C puis bien laver à l’eau
3. Oxyder les lames avec une solution d’acide périodique pendant 5 minutes
4. Laver bien dans plusieurs changements d’eau distillée
5. Colorer avec du réactif de Schiff pendant 20 minutes à température ambiante
6. Lavez bien les lames à l’eau courante pendant 5 à 10 minutes
7. Colorer les coupes dans l’hématoxyline Harris pendant 1 minute
8. Bien laver à l’eau, différencier dans de l’alcool acide à 0,5% et bleuir à l’eau courante ou au Substitut de
9. Déshydrater rapidement, nettoyer et monter
l’eau du robinet Scotts
Ce kit de coloration est utilisé pour la détection des parasites du paludisme dans les frottis sanguins. La coloration de Fields est l’un des colorants originaux Romanowsky utilisant du bleu de méthylène dans une solution faible d’éosine. Avec quelques modifications, il peut être utilisé de manière assez satisfaisante pour la coloration rapide des frottis sanguins minces.
Kit de Coloration de Field
Contenu du Kit
Coloration de Fields A (Solution aqueuse de bleu de méthylène A)
Coloration de Fields B (Solution aqueuse d’éosine Y B)
Tampons Sorensens 200 x Concentré pH 6,8 25 ml pour faire 5 L
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
35 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
15-25 ° C
Résultats
Parasites du paludisme Bleu/Violet
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK25 3 x 50ml 3 x 100ml 3 x 250ml 3 x 500ml
Hazard Information
Solution Mère Active
Mélanger 1 dose de Coloration B (Eosine Y ) avec 4 doses d’eau distillée. Prendre 12 gouttes de la coloration diluée et ajouter 12 gouttes de Coloration A (Bleu de Méthylène) et mélanger le tout avant application.
Protocole
1. Place fixed smear on staining rack and add freshly prepared stain (as above) for 1 minute
2. Rinse in distilled water
3. Differentiate the smear in Sorensens buffer (25ml diluted to 5L with distilled water) pH 6.8 for 5 seconds
4. Rinse in distilled water for 2-3 seconds
5. Stand upright on filter paper to drain and dry and if required dip the dry smear in xylene and mount
20 21T: 0044 (0)161366 5123 W: www.atomscientific.comT: 0044 (0)161366 5123 W: www.atomscientific.com
Ce kit de coloration est utilisé pour mettre en évidence les micro-organismes Gram positifs et Gram négatifs. Le principe principal de la technique est l’augmentation de l’épaisseur, de la composition chimique et de l’intégrité fonctionnelle des parois cellulaires des bactéries à Gram positif qui, lorsqu’elles meurent, deviennent à Gram négatif.
Kit de Coloration de Gram (Contre-Coloration Fuchsine de Gram)
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
18 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
15-25 ° C
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK3 5 x 50ml 5 x 100ml 5 x 250ml 5 x 500ml
Hazard Information
Contenu du Kit
Crystal Violet (0,5% aqueux)
Iode de Gram
Différentiateur de Gram* x 2
Gram Fuchsine (Carbol Fuchsine)
Résultats
Organismes Gram Positifs:
Organismes Gram Négatifs:
Noyaux:
Bleu/Noir
Rouge/Rose
Rouge/Rose
Protocole
1. Déparaffiner les sections, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet. Pour les frottis, inondez
2. Colorer au cristal violet pendant 3 minutes (filtrer avant utilisation)
3. Bien rincer à l’eau distillée
4. Traiter les lames avec de l’iode Grams pendant 3 minutes
5. Bien laver à l’eau distillée, égoutter
6. Différencier avec le différenciateur Grams jusqu’à ce qu’il n’y ait plus de couleur sort de la préparation.
7. Bien laver à l’eau
8. Contre-colorer avec de la fuchsine Gram 1 minute
9. Laver à l’eau et éponger (laisser sécher les frottis)
10. Déshydrater rapidement avec les alcools, effacer et monter
(1-5 sec) Rincer rapidement, les sections tourneront jaune paille
UN1993
les lames avec l’eau distillée
* Veuillez noter que la formule de ce produit a été révisée le 12/08/19
Ce kit de coloration est utilisé pour mettre en évidence les micro-organismes Gram positifs et Gram négatifs. Le principe principal de la technique est l’augmentation de l’épaisseur, de la composition chimique et de l’intégrité fonctionnelle des parois cellulaires des bactéries à Gram positif qui, lorsqu’elles meurent, deviennent à Gram négatif.
Kit de Coloration de Gram (Contre-coloration Rouge Neutre)
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
20 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
15-25 ° C
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK5 5 x 50ml 5 x 100ml 5 x 250ml 5 x 500ml
Hazard Information
UN1993
Contenu du Kit
Crystal Violet 0.5% Aqueux
Gram d’iode
Grammes Différentiateur* x 2
Protocole
1. Déparaffiner les sections, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet. Pour les frottis, inonde
2. Colorer avec du cristal violet pendant 3 minutes (filtrer avant utilisation)
3. Bien rincer à l’eau distillée
4. Traitez les lames avec de l’iode Grams pendant 3 minutes
5. Bien laver à l’eau distillée, égoutter
6. Faites la différence avec le différenciateur de Grams jusqu’à ce que plus aucune couleur ne sorte de la
7. Bien laver à l’eau
8. Contre-colorer avec du rouge neutre pendant 1 minute
9. Laver à l’eau et sécher (pour les frottis, laisser sécher)
10. Déshydrater rapidement dans les alcools, nettoyer et monter
les lames avec de l’eau distillée
préparation. (1 à 5 secondes) Rincer rapidement, les sections
Rouge Neutre (0.5%) Aqueux
Résultats
Organismes à Gram positif:
Organismes à Gram négatif:
Noyaux:
Bleu/Noir
Rouge
Rouge
* Veuillez noter que la formule de ce produit a été révisée le 12/08/19
22 23T: 0044 (0)161366 5123 W: www.atomscientific.comT: 0044 (0)161366 5123 W: www.atomscientific.com
Ce kit de coloration est utilisé pour mettre en évidence les micro-organismes Gram positifs et Gram négatifs. Le principe principal de la technique est l’augmentation de l’épaisseur, de la composition chimique et de l’intégrité fonctionnelle des parois cellulaires des bactéries à Gram positif qui, lorsqu’elles meurent, deviennent à Gram négatif.
Kit de Coloration de Gram (Contre-coloration Safranine)
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
18 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
15-25 ° C
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK4 5 x 50ml 5 x 100ml 5 x 250ml 5 x 500ml
Hazard Information
UN1993
Protocole
1. Déparaffiner les sections, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet. Pour les frottis, inondez
2. Colorer avec du cristal violet pendant 3 minutes (filtrer avant utilisation)
3. Bien rincer à l’eau distillée
4. Traiter les lames avec de l’iode Grams pendant 3 minutes
5. Bien laver à l’eau distillée, égoutter
6. Différencier avec le différenciateur Grams jusqu’à ce qu’il n’y ait plus de couleur sort de la préparation. (1
7. Bien laver à l’eau
8. Contre-colorer avec de la safranine pendant 1 minute
9. Laver à l’eau et sécher (pour que les frottis sèchent)
10. Déshydrater rapidement à travers les alcools, nettoyer et monter
les lames avec de l’eau distillée
à 5 secondes) Rincer rapidement , les sections seront de couleur jaune paille
Contenu du Kit
Crystal Violet 0.5% Aqueux
Gram d’iode
Grammes Différentiateur* x 2
Safranine (0.5%) Aqueux
Résultats
Organismes à Gram positif:
Organismes à Gram négatif:
Noyaux:
Bleu/Noir
Rouge
Rouge
* Veuillez noter que la formule de ce produit a été révisée le 12/08/19
Ce kit de coloration est utilisé pour mettre en évidence les micro-organismes Gram positifs et Gram négatifs. Le principe principal de la technique est l’augmentation de l’épaisseur, de la composition chimique et de l’intégrité fonctionnelle des parois cellulaires des bactéries à Gram positif qui, lorsqu’elles meurent, deviennent à Gram négatif.
Kit de Coloration de Gram (Contre-Couleur de Twort)
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
18 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
15-25 ° C
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK45 6 x 50ml 6 x 100ml 6 x 250ml 6 x 500ml
Hazard Information
UN1993
Contenu du Kit
Crystal Violet 0.5% Aqueux
Gram d’iode
Grammes Différentiateur* x 2
Protocole
1. Déparaffiner les sections, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet. Pour les frottis, inondez
2. Colorer avec du cristal violet pendant 3 minutes (filtrer avant utilisation)
3. Bien rincer à l’eau distillée
4. Traiter les lames avec de l’iode Grams pendant 3 minutes
5. Bien laver à l’eau distillée, égoutter
6. Différencier avec le différenciateur Grams jusqu’à ce qu’il n’y ait plus de couleur sort de la préparation. (1
7. Bien laver à l’eau
8. Mélanger le colorant Twort A&B (solution active Twort) immédiatement avant utilisation, comme
9. Lavez à l’eau, séchez et laissez sécher à l’air
10. Déshydratez rapidement des alcools, nettoyez et montez.
les lames avec de l’eau distillée
suit: solution A (0,2%Rouge Neutre ) 3 mesures , pour 1 mesure de Solution B (0.2% Vert Rapide), Diluer ensuite 1mesure sur 5 avec l’eau distillée. Ex : 1.5ml Twort A + 0.5ml Twort B + 8ml d’eau distillée. Colorer avec la Solution de travail pendant 3 minutes.
à 5 secondes) Rincer rapidement , les sections seront de couleur jaune paille
Solution de Twort A (0.2% Rouge Neutre dans
l’alcool pure)
Solution de Twort B (0.2% Vert Rapide dans l’alcool
Résultats
Organismes à Gram positif:
Organismes à Gram négatif:
Noyaux:
Cellules sanguines et la plupart des structures cytoplasmiques:
Fibres Elastique:
Bleu/Noir
Rouge/Rose
Rouge/Rose
Vert
Noir
* Veuillez noter que la formule de ce produit a été révisée le 12/08/19
24 25T: 0044 (0)161366 5123 W: www.atomscientific.comT: 0044 (0)161366 5123 W: www.atomscientific.com
Ce kit de coloration est utilisé pour mettre en évidence les micro-organismes Gram positifs et Gram négatifs. Le principe principal de la technique est l’augmentation de l’épaisseur, de la composition chimique et de l’intégrité fonctionnelle des parois cellulaires des bactéries à Gram positif qui, lorsqu’elles meurent, deviennent à Gram négatif.
Kit de Coloration de Gram (Hucker&Conn)
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
20 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
15-25 ° C
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK200 5 x 50ml 5 x 100ml 5 x 250ml 5 x 500ml
Hazard Information
UN1993
Contenu du Kit
Crystal Violet Hucker&Conn
Gram d’iode
Grammes Différentiateur* x 2
Safranine 0.5% Aqueux
Résultats
Bactéries Gram positives et champignons:
Bactéries Gram négatives:
Bleu foncé/violet
Rouge
Protocole
1. Déparaffiner les sections, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet. Pour les frottis, inondez
2. Appliquez une solution de cristal violet et laissez agir 2-3 minutes
3. Lavez à l’eau
4. Appliquez de l’iode Grams et laissez agir 2-3 minutes
5. Appliquez plusieurs changements de différenciateur Grams jusqu’à ce qu’il ne semble plus s’écouler de
6. Laver bien dans l’eau
7. Appliquer la Safranine pendant 4 minutes
8. Laver à l’eau et sécher. Pour les frottis, laisser sécher
9. Déshydrater rapidement, nettoyer dans le xylène et monter (Pour les frottis, disposer dans le xylene et
les lames avec de l’eau distillée
* Veuillez noter que la formule de ce produit a été révisée le 12/08/19
la préparation
monter)
Protocole
1. Déparaffiner les sections, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet. Pour les frottis, inondez
2. Oxyder les coupes avec de l’acide chromique pendant 60 minutes à température ambiante
3. Rincer à l’eau distillée
4. Traiter les coupes avec une solution de métabisulfite de sodium pendant 1 minute
5. Bien laver à l’eau courante du robinet puis dans plusieurs changements d’eau distillée
6. Colorer coupes dans la solution d’argent préchauffée à 56 ° C pendant 15 à 20 minutes jusqu’à ce
7. Laver dans plusieurs changements d’eau distillée
8. Tonifier les coupes avec du chlorure d’or pendant 5 minutes
9. Laver dans plusieurs changements d’eau distillée
10. Traiter avec du thiosulfate de sodium pendant 5 minutes
11. Laver à l’eau distillée et contre-colorer dans une solution vert clair durant 30 sec
12. Rincer à l’eau. Déshydrater, clarifier et monter
que la coupe vire au brun jaunâtre (vérifiez au microscope après le lavage dans de l’eau distillée distillée - les champignons doivent être brun foncé). Si la coloration n’est pas complète, retournez
Ce kit de coloration est utilisé pour mettre en évidence les champignons, la membrane basale et certains autres organismes (par ex.Pneumocystis Carnii et l’histoplasme)
Kit de Coloration de Grocott
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
105 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
Nitrate d’Argent 2-8°C. Autres réactifs : 15-25°C
100 Test 200 Test
Code - 100 -200
RRSK80 11 x 50ml 11 x 100ml
Hazard Information
UN3082
Résultats
Champignons, pneumocystis, mélanine, membrane basale:
Mucines, Glycogène:
Fond:
Noir
Beige/Gris
Vert Pâle
Contenu du Kit
Solution d’acide chromique à 5% x 2
Solution d’hexamine (méthanamine) à 3% x 2
Solution de nitrate d’argent à 5%
Solution de tétraborate de sodium à 5% x 2
Solution de métabisulfite de sodium à 1%
Chlorure d’or Solution à 0,1%
Thiosulfate de sodium Solution à 2%
Vert clair (0,2% dans 0,2% d’acide acétique)
Solution Mère Active
Solution Active d’Héxamine-argent:Dans un contenant cliniquement propre, mesurer 23ml d’Héxamine et 1.25ml de Nitrate d’Argent 5% . Un précipité blanc va se former et se dissoudre lorsque agiter. Ajouter 3ml de Tétraborate de sodium et 25ml d’eau distillée. Préparer frais à chaque fois.Filtrer la solution dans une cuvette de Coplin et mettre au four ou bain-marie à 56°C dans l’obscurité. Vérifier la température de solution avant de commencer.
à la solution d’argent chauffée pendant 2-3 minutes. Répéter la procédure d’examen
les lames avec de l’eau distillée
26 27T: 0044 (0)161366 5123 W: www.atomscientific.comT: 0044 (0)161366 5123 W: www.atomscientific.com
Ce kit de coloration est utilisé pour la coloration de Mycobacterium Tuberculosis et d’autres organismes acido-résistants dans les coupes de tissus et les frottis. Les parois des mycobactéries ne sont pas facilement pénétrées, de sorte que le phénol est mélangé à la fuchsine basique pour surmonter cela. Aucune chaleur n’est requise pour cette méthode.
Kit de Coloration de Kinyoun Froid (Contre-couleur de Vert de Malachite)
Contenu du Kit
Carbol Fuschsine Kinyoun
Différentiateur TB x 2
Vert de Malalchite 0.5% aqueux
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
20 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
15-25 ° C
Résultats
Bacilles acido-résistants (M.tuberculosis):
Cells and background material, other organisms:
Magenta/Rouge
Vert
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK7 4 x 50ml 4 x 100ml 4 x 250ml 4 x 500ml
Hazard Information
UN1992
Protocole
1. Déparaffiner les coupes, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet. Pour des frottis, sub
2. Submerger les lames avec la Carbol Fuschsine Kinyoun pendant 10 minutes.
3. Laver bien à l’eau distillée.
4. Différentier avec le différentiateur TB jusque la préparation soit incolore ou rose pale (jusqu’à ce qu’il
5. Bien laver à l’eau distillée
6. Contre-colorer avec du bleu de méthylène pendant 15 sec
7. Bien laver à l’eau distillée
8. Déshydrater rapidement à travers l’alcool absolu, nettoyer et remonter
n’y ait plus de colorant. Environ 3-5sec
merger les lames avec de l’eau distillée.
Ce kit de coloration est utilisé pour la coloration de Mycobacterium Tuberculosis et d’autresorganismes acido-résistants dans les coupes de tissus et les frottis. Les parois des mycobactéries ne sont pas facilement pénétrées, de sorte que le phénol est mélangé à la fuchsine basique pour surmonter cela. Aucune chaleur n’est requise pour cette méthode.
Contenu du Kit
Carbol Fuschsine Kinyoun
Différentiateur TB x 2
Bleu de Méthylène
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
15 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
15-25 ° C
Résultats
Bacilles acido-résistants (M.tuberculosis):
Cellules et matériel de base, autres organismes
Magenta/Rouge
Bleu
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK8 4 x 50ml 4 x 100ml 4 x 250ml 4 x 500ml
Protocole
1. Déparaffiner les coupes, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet. Pour des frottis, sub
2. Submerger les lames avec la Carbol Fuschsine Kinyoun pendant 10 minutes
3. Laver bien à l’eau distillée
4. Différentier avec le différentiateur TB jusque la préparation soit incolore ou rose pale (jusqu’à ce qu’il
5. Bien laver à l’eau distillée
6. Contre-colorer avec du Bleu de Méthylène pendant 15 secondes
7. Bien laver à l’eau distillée
8. Déshydrater rapidement, nettoyer et remonter
n’y ait plus de colorant. Environ 3- 5 sec
Hazard Information
UN1992
merger les lames avec de l’eau distillée
Kit de Coloration de Kinyoun Froid (Contre- Couleur de Bleu de Méthylène)
28 29T: 0044 (0)161366 5123 W: www.atomscientific.comT: 0044 (0)161366 5123 W: www.atomscientific.com
Ce kit de coloration permet la différenciation de la fibrine, du collagène et du muscle. La fibrine précoce et les globules rouges sont également mis en évidence avec cette technique
Kit de Coloration de Martius Bleu Ecarlate
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
45 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
15-25°C
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK2 6 x 50ml 6 x 100ml 6 x 250ml 6 x 500ml
Hazard Information
UN1170
Résultats
Fibrine:
Muscle:
Noyaux:
Collagène; membranes basales; réticuline:
Rouge (la fibrine précoce peut tacher en jaune et la vieille fibrine en bleu)
Rouge Pale
Bleu/Noir
Rouge pâle Bleu / noir
Bleu
Jaune
Contenu du Kit
Martius Yellow Sat. Alcoolique avec 2% d’acide phosphotungstique
Acide phosphotungstique Solution à 1%
Hématoxyline Weigerts (Solution A)
Brilliant Crystal Scarlet
Bleu d’aniline (aqueux à 1%)
Hématoxyline Weigerts (Solution B)
Protocole
1. Préparer de l’hématoxyline Weigert fraîche en mélangeant des volumes égaux de solution A et B selon les besoins 2. Déparaffiner les coupes, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet 3. Tacher les noyaux avec de l’hématoxyline ferrique Weigerts pendant 10 minutes 4. Laver rapidement à l’eau et différencier en Solution d’alcool acide à 1% (RRSP187 - non fournie), laissant les noyaux
5. Bien laver à l’eau courante puis au bleu dans l’eau ou à l’eau du robinet Scotts 6. Bien laver à l’eau courante 7. Rincer à l’alcool à 95% (non fourni) 8. Tacher avec une solution jaune de Martius pendant 5 minutes 9. Laver rapidement eau courante du robinet 10. Colorer avec une solution de cristal écarlate pendant 5 minutes 11. Laver à l’eau courante du robinet 12. Traiter avec une solution d’acide phosphotungstique pendant 10 minutes, vérifier au microscope. Traitez encore 5
13. Laver à l’eau courante du robinet 14. Tacher avec une solution de bleu d’aniline pendant 5 minutes 15. Laver à l’eau du robinet
16. Déshydrater, nettoyer et monter
légèrement sur colorés
minutes si nécessaire.
Fibres Elastiques:
Erythrocites:
Ce kit de coloration est utilisé pour la démonstration des mucines acides. La molécule de colorant active est un complexe d’acide carminique d’aluminium connu sous le nom de carmin (Lillie 1977). Le mécanisme exact n’est pas entièrement compris, mais on pense que les sels d’aluminium forment un complexe chélate avec l’acide carminique qui confère une charge positive globale au complexe carmin attirant les sialomucines et les sulfomucines et les colore ainsi tandis que les mucines neutres ne tachent pas
Kit de Coloration de Mucicarmine Southgate
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
45 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
Mucicarmine 2-8°C - Autres réactifs 15-25°C
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK13 4 x 50ml 4 x 100ml 4 x 250ml 4 x 500ml
Hazard Information
UN1170
Contenu du Kit
Mucicarmine (Southgate)
Substitut d’eau du robinet Scotts
Martius Yellow Saturé Alcoolique
Hémalun de Mayer
Résultats
Mucines carboxylées, Sulfomucines:
Noyaux:
Tissu de fond:
Rouge
Bleu/Noir
Jaune
Protocole
1. Déparaffiner les sections, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet
2. Colorez les noyaux avec de l’hémalum de Mayer pendant 5 minutes.
3. Lavez bien à l’eau
4. Faites la différence entre de l’alcool acide à 0,5% et du bleu dans un substitut d’eau du robinet
5. Colorer dans la solution de mucicarmine pendant 30 minutes
6. Bien rincer à l’eau distillée
7. Contre-colorer avec une solution jaune martius 30 secondes
8. Rincer rapidement à l’eau distillée
9. Déshydrater, nettoyer et monter
Scotts ou de l’eau courante. Les noyaux doivent être bleus / noirs lorsqu’ils sont vérifiés au microscope
30 31T: 0044 (0)161366 5123 W: www.atomscientific.comT: 0044 (0)161366 5123 W: www.atomscientific.com
Ce kit de coloration est utilisé pour mettre en évidence certaines souches de bactéries filamenteuses dans des coupes de tissus et / ou des frottis. La méthode peut démontrer les bactéries Bio-P responsables de l’élimination biologique du phosphate
Kit de Coloration de Neisser
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
5 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
15-25°C
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK62 4 x 50ml 4 x 100ml 4 x 250ml 4 x 500ml
Hazard Information
Contenu du Kit
Neisser Stain A (solution de bleu de méthylène)
Neisser Stain B (Solution Crystal Violet)
Neisser Stain C (solution d’iode)
Neisser Stain D (solution de chrysoidine)
Résultats
Organismes positifs:
Organismes négatifs:
Bleu/Noir
Jaune/Marron
Protocole
1. Laver les lames avec de l’eau distillée
2. Mélanger 2 parties de colorant Neisser A avec 1 partie de colorant Neisser B et inonder les lames
3. Rincer doucement à l’eau distillée
4. Colorer les lames avec le colorant Neisser C pendant 5 secondes
5. Rincer doucement à l’eau distillée
6. Colorer au colorant Neisser D pendant 10 secondes
7. Rincer et sécher à sec
8. Utiliser la méthode habituelle de visualisation au microscope, par exemple huile d’immersion
avec le mélange de colorant pendant 20-30 secondes
Ce kit de coloration est utilisé pour la démonstration de cellules gynécologiques dans des
Kit de Coloration Papanicolaou
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
35 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
15-25°C
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK28 3 x 50ml 3 x 100ml 3 x 250ml 3 x 500ml
Contenu du Kit
Papanicolau EA50
Papanicolau OG6
Hématoxyline Harris
Hazard Information
UN1992
Résultats
Noyaux:
Cytoplasm (Non-keratinising squamous cells):
Keratonising Cells:
Bleu/Noir
Bleu/Vert
Rose/Orange
Protocole
1. Laver les lames avec de l’alcool à 50% pendant 1 minute
2. Rincer à l’eau du robinet, tremper 15 fois
3. Immerger dans la solution (hématoxyline), jusqu’à ce que les noyaux soient bleus, ou pendant 5 minutes
4. Rincer à l’eau pendant 2 minutes
5. Différencier à 0,5% alcool acide pendant 10 secondes
6. Rincer à l’eau pendant 2 minutes
7. Bleuir dans le Substitut d’eau du robinet Scotts pendant 2 minutes
8. Rincer à l’eau pendant 2 minutes
9. Déshydrater dans de l’alcool à 70% pendant 2 minutes
10. Déshydrater dans de l’alcool à 95% pendant 2 minutes
11. Déshydrater dans de l’alcool frais à 95% pendant 2 minutes
12. Coloration en Pap. Colorer OG6 pendant 2 minutes
13. Rincer dans de l’alcool à 95% pendant 2 minutes
14. Rincer dans de l’alcool frais à 95% pendant 2 minutes
15. Teindre avec du Pap. Colorer EA50 pendant 2 minutes
16. Rincer dans de l’alcool à 95% pendant 1 minute
17. Déshydrater, nettoyer et monter
32 33T: 0044 (0)161366 5123 W: www.atomscientific.comT: 0044 (0)161366 5123 W: www.atomscientific.com
Ce kit de coloration est utilisé pour la démonstration de mucines neutres, de glycogène et de certaines lipofuchsines précoces. La technique est basée sur la réactivité des groupes aldéhyde libres dans les hydrates de carbone, le réactif de Schiff formant un produit final magenta rouge vif
Kit de Coloration de PAS
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
35 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
Schiff Reagent 2-8 °C. Autres réactifs 15-25 °C
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK15 3 x 50ml 3 x 100ml 3 x 250ml 3 x 500ml
Contenu du Kit
Solution d’acide périodique 1%
Hématoxyline Harris
Réactifs Schiff (Feulgen)
Hazard Information
Résultats
Noyaux:
Glycogènes:
Neutre /sialomucines:
Diverses glycoprotéines, lipofuchsines précoces:
Bleu-Noir
Magenta
Magenta
Magenta
Protocole
1. Déparaffiner les coupes, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet
2. Oxyde les lames avec une solution d’acide périodique pendant 5 minutes
3. Bien laver dans plusieurs changements d’eau distillée
4. Colorer avec le réactif de Schiff pendant 20 minutes à température ambiante
5. Bien laver les lames dans de l’eau courante pendant 5 à 10 minutes (les coupes doivent être
6. Colorer les coupes à l’hématoxyline pendant 1 minute
7. Bien laver à l’eau, différencier dans de l’alcool acide à 0,5% et bleuir à l’eau courante ou au Substitut d’eau
8. Déshydrater, nettoyer et monter
macroscopiquement roses / magenta en coloration
du robinet Scotts
Ce kit de coloration est utilisé pour la coloration des mucopolysaccharides acides sulfatés et carboxylés, et pour les radicules glucidiques (par exemple le glycogène). La technique du bleu Alcian et du PAS se combine pour différencier les mucines neutres des mucines acides. Il est utilisé comme colorant à large spectre pour les mucines, un manque de coloration avec le stade PAS combiné indique que la substance n’est pas de la mucine.
Kit de Coloration de Bleu d’Alcian - PAS
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK6 4 x 50ml 4 x 100ml 4 x 250ml 4 x 500ml
Contenu du Kit
Solution d’Acide Périodique 1%
Hémalum de Mayer
Réactifs de Schiff (Feulgen)
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
60 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
Réactif de Schiff 2-8 ° C / Autres Réactifs 15-25°C
Hazard Information
Bleu d’Alcian Blue 1% dans 3% Acide Acétique (pH 2.5)
Protocole
1. Dewax sections, hydrate through alcohols and rinse in tap water
2. Teindre au bleu alcian pendant 10 minutes
3. Bien laver à l’eau distillée
4. Traiter avec une solution d’acide périodique à 1% pendant 5 minutes
5. Bien laver avec de l’eau distillée
6. Traitez avec le réactif de Schiff pendant 20 minutes
7. Laver à l’eau courante pendant 5 à 10 minutes (les coupes doivent être macroscopiquement roses /
8. Colorer les coupes à l’hémalum Mayer pendant 1 minute
9. Rincer à l’eau courante, différencier dans 0,5% d’alcool acide et bleu dans l’eau courante ou l’eau du
10. Déshydrater, nettoyer et monter
magenta
robinet Scotts
Résultats
Acides mucines (sulfomucines et sialmucines): Bleu
Bleu
Bleu clair
Mélange des deux: Violet
Mucines Neutres, Glycogène, différentes glycoprotéines: Rouge
Protéoglycanes et acide hyaluronique:
Noyaux:
34 35T: 0044 (0)161366 5123 W: www.atomscientific.comT: 0044 (0)161366 5123 W: www.atomscientific.com
Ce kit de coloration est basé sur le fait que les parois cellulaires fongiques sont riches en polysaccharides qui peuvent être convertis par oxydation en dialdéhydes et démontrés avec le réactif de Schiff
Kit de Coloration PAS pour parois cellulaires fongique (modified McManus 1946)
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
35 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
Schiff reagent 2-8 °C. Autres réactifs 15-25 °C
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK157 3 x 50ml 3 x 100ml 3 x 250ml 3 x 500ml
Contenu du Kit
Solution d’acide périodique 1%
Vert Clair 0.2% dans 0.2% d’acide acétique
Réactifs Schiff (Feulgen)
Résultats
Parois cellulaires fongiques:
Glycogène tissulaire:
Contexte:
Magenta
Magenta
Vert Pâle
Hazard Information
Protocole
1. Déparaffiner les coupes, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet
2. Oxyde les lames avec une solution d’acide périodique pendant 5 minutes
3. Bien laver dans plusieurs changements d’eau distillée
4. Colorer avec le réactif de Schiff pendant 20 minutes à température ambiante
5. Bien laver les lames dans de l’eau courante pendant 5 à 10 minutes (les coupes doivent être
6. Colorer les coupes en Vert clair pendant 1-2sec
7. Rincer à l’eau
8. Déshydrater, nettoyer et monter
macroscopiquement roses / magenta en coloration
Protocole
1. Déparaffiner les sections et hydrater à travers les alcools et rincer à l’eau courante
2. Oxyder les sections avec l’acide périodique durant 20-30 à température ambiante
3. Rincer à l’eau distillée
4. Colorer les sections dans la solution active préchauffée à 56 °c ( voir note 1) durant 20 mins initialement
5. Laver dans différents changements d’eau distillée
6. Teindre les sections avec le Chlorure d’Or durant 2 minutes
7. Laver dans différents changements d’eau distillée
8. Traiter avec le thiosulfate de Sodium durant 2 minutes
9. Laver à l’eau distillée et contre colorer dans une solution Rouge Neutre durant 30 secondes
10. Rincer à l’eau, déshydrater, clarifier et monter
bien différenciées) Si la coloration n’est pas complète, retourner à la solution active chauffée d’argent pendant 5 minutes d’intervalles et répéter la procédure d’examination
Ce kit de coloration est utilisé pour démontrer les membranes basales glomérulaire (MBG) dans le rein. Les composants du glucide sont d’abord oxydés avec une solution d’Acide Périodique pour produire des aldéhydes qui réduisent par la suite l’argent en argent métallisé concret.
Kit de Coloration PAS de Jones
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
105 minutes (environ)
3 ans (à partir de la date de fabrication)
Nitrate d’Argent 2-8 ° C. Les autres réactifs entre 15-25 ° C
100 Test
Code - 100
RRSK303 8 x 50ml
Hazard Information
UN1170
Résultats
Membranes Basales:
Fond:
Noir
Pink/Red
Contenu du Kit
Acide Périodique 1%
Héxamine ( Méthanamine) 3% Solution x 4
Nitrate d’Argent 5%
Tétraborate de Sodium 5% x 2
Chlorure d’Or 0.2%
Thiosulfate de Sodium 2%
Rouge Neutre 0.1%
Solution Mère Active
Solution active Héxamine-Argent:Dans un container cliniquement nettoyé, mesurer 50ml d’héxamine et 2.5ml de Nitrate d’Argent 5%. Un précipité blanc se forme qui se dissoudra lorsque brassé.Ajouter 5ml de Sodium Tétraborate 5%. Renouveller à chaque fois.Filtrer la solution dans une Cuvette de Coplin et mettre au four ou au bain-marie à 56°C dans l’obscurité. Vérifier la temperature de la Solution avant de commencer.
initialement ( vérifier au microscope après laver à l’eau distillée- les membranes basales doivent être
* Cette image type pour illustrer seulement
36 37T: 0044 (0)161366 5123 W: www.atomscientific.comT: 0044 (0)161366 5123 W: www.atomscientific.com
Ce kit de coloration est utilisé pour mettre en évidence l’hémosidérine dans les macrophages de la moelle osseuse et le fer dans les sidéroblastes
Kit de Coloration de Perl (Version Hématologique)
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
30 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
Perls A et B 2-8°C / Rouge Neutre 15-25°C
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK165 3 x 50ml 3 x 100ml 3 x 250ml 3 x 500ml
Contenu du Kit
Solution de coloration de Perls A - Solution d’acide Hydrochlorique 2%
Solution de coloration de Perls B - Solution de ferrocyanure de potassium 2%
Contre-coloration: Solution de rouge neutre 0,5%
Résultats
Noyau:
Fer Ferrique:
Rouge
Bleu
Protocole
Préparation de la solution de ferrocyanure de Perls:
Perls A 2,5 ml, Perls B 2,5 ml
Mélanger immédiatement avant utilisation. Doit être fraîchement préparé pour la coloration.
La quantité de solution A et B utilisée dépend du nombre de lames à colorer
1. Fixez les lames dans un fixateur approprié tel que le méthanol pendant 10 à 20 minutes. Laisser sécher à l’air
2. Traiter les lames avec une solution de ferrocyanure de Perls pendant 20 minutes
3. Laver à l’eau courante du robinet
4. Rincer à l’eau distillée
5. Tacher avec une solution rouge neutre pendant 30 secondes
6. Laver rapidement à l’eau distillée et sécher par essuyage
7. Utiliser la méthode habituelle et observer au microscope, par exemple l’huile d’immersion
Hazard Information
Ce kit de coloration est utilisé pour démontrer les sels ferriques dans les coupes de tissus. Le traitement avec une solution de ferrocyanure acide entraînera le démasquage du fer ferrique sous forme d’hydroxyde Fe (OH) 3 par de l’acide chlorhydrique dilué. Le fer ferrique réagit ensuite avec une solution diluée de ferrocyanure de potassium pour produire un composé bleu insoluble, le ferocyanure ferrique (bleu de Prusse)
Kit de Coloration de Perl
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
30 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
Perls A et B 2-8°C / Rouge Neutre 15-25°C
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK16 3 x 50ml 3 x 100ml 3 x 250ml 3 x 500ml
Contenu du Kit
Perls Stain Solution A - Hydrochloric Acid Solution 2%
Perls Stain Solution B - Potassium Ferrocyanide Solution 2%
Counterstain: Neutral Red Solution 0.1%
Résultats
Noyau:
Fer Ferrique :
Rouge
Bleu
Protocole
Préparation de la solution de ferrocyanure de Perls:
Perls A 2,5 ml, Perls B 2,5 ml
Mélanger immédiatement avant utilisation. Doit être fraîchement préparé pour la coloration.
La quantité de solution A et B utilisée dépend du nombre de lames à colorer
1. Déparaffiner les coupes, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet
2. Bien rincer à l’eau distillée
3. Traiter les lames avec une solution de ferrocyanure Perls pendant 15 minutes
4. Laver à l’eau courante
5. Rincer à l’eau distillée
6. Teindre au rouge neutre solution pendant 15 secondes
7. Laver rapidement à l’eau distillée et sécher à sec
8. Déshydrater rapidement dans les alcools, clarifier et monter
Hazard Information
38 39T: 0044 (0)161366 5123 W: www.atomscientific.comT: 0044 (0)161366 5123 W: www.atomscientific.com
Ce kit de coloration permet la démonstration sélective des muscles, des fibres de collagène et des érythrocytes. Ce colorant trichrome utilise 3 colorants de taille moléculaire différente
Kit de Coloration de Picro-Mallory Trichrome
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
105 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
15-25°C
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK90 6 x 50ml 6 x 100ml 6 x 250ml 6 x 500ml
Contenu du Kit
Acide acétique glacial 0,5% aqueux x 2
Solution aqueuse saturée d’acide picrique
Picro Mallory Solution A
Protocole
1. Déparaffiner les coupes, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet
2. Placer les lames dans une solution saturée d’acide picrique pendant 1 heure à 56°C
3. Laver à l’eau du robinet (3 changements d’eau courante pendant 2 min), puis à l’eau distillée
4. Colorer avec Picro Mallory Solution A pendant 2 minutes
5. Rincer à l’eau distillée
6. Différencier avec de l’acide phosphotungstique pendant 5 minutes
7. Rincer à l’eau distillée
8. Colorer avec Picro Mallory Solution B pendant 30 minutes
9. Rincer avec 0,5% d’acétique glaciale acide pour éliminer les taches excessives
10. Déshydrater, nettoyer et monter
Hazard Information
Picro Mallory Solution B
Solution d’acide phosphotungstique à 1%
Résultats
Noyaux:
Erythrocytes et myéline:
Cytoplasme:
Matrice muqueuse et cartilagineuse:
Collagène:
Rouge
Jaune
Différentes nuances de rouge, rose, orange
Bleu
Bleu
Ce kit de coloration démontre le fer ferrique, le collagène et le tissu conjonctif en sections
Kit de Coloration de Perls Van Gieson
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
30 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
Entreposer les Solutions de Perls 2-8°C / Autre Van Gieson 15-25°C
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK60 3 x 50ml 3 x 100ml 3 x 250ml 3 x 500ml
Contenu du Kit
Solution de coloration de Perls A - Solution d’acide Hydrochlorique 2%
Solution de coloration de Perls B - Solution de ferrocyanure de potassium 2%
Van Gieson Extra
Résultats
Fer Ferric Reactif:
Collagène:
Autres Tissus:
Bleu
Violet/Rouge
Jaune
Protocole
Préparation de la solution de ferrocyanure de Perls:
Perls A 2,5 ml, Perls B 2,5 ml
Mélanger immédiatement avant utilisation. Doit être fraîchement préparé pour la coloration.
La quantité de solution A et B utilisée dépend du nombre de lames à colorer
1. Déparaffiner les coupes, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet
2. Rincer à l’eau distillée
3. Traiter les lames avec une solution de ferrocyanure Perls pendant 20 minutes
4. Laver à l’eau courante du robinet
5. Rincer à l’eau distillée
6. Colorer avec la solution Van Gieson 2-3 minutes
7. Lavez rapidement à l’eau et séchez
8. Déshydratez rapidement avec les alcools, nettoyez et montez
Hazard Information
40 41T: 0044 (0)161366 5123 W: www.atomscientific.com
Kit de Coloration de Réticuline (Sans Chlorure d’Or)Ce kit de coloration est utilisé pour mettre en évidence les fibres de réticuline. La méthode Gordon & Sweet utilise une imprégnation de métal offrant un excellent contraste pour que même les fibres les plus fines puissent être vues
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
50 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
Nitrate d’Argent à 2-8°C - Autres Réactifs 15-25°C
100 Test 200 Test
Code - 100 -200
RRSK102 11 x 50ml 11 x 100ml
Résultats
Fibres Réticulines:
Noyaux:
Autres éléments:
Noir
Noir (Lipofuchsine et Mélamine sont aussi faiblement colorés)
Rouge
Contenu du Kit
Solution de permanganate de potassium à 0,5% x 2
Solution d’acide sulfurique à 3%
Solution d’acide oxalique à 1%
Solution de sulfate d’ammonium ferrique à 2,5%
Solution de nitrate d’argent à 10%
Solution d’Ammoniac à 33%
Solution d’hydroxyde de sodium à 3%
Solution sans tampon de formaldéhyde à 10% (v / v)
Solution de thiosulfate de sodium à 5%
Rouge neutre 0,5%
Hazard Information
UN3316
Protocole
1. Déparaffiner les coupes, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet
2. Oxyder les coupes avec du permanganate de potassium acidifié pendant 5 minutes
3. Bien laver à l’eau du robinet
4. Décolorer avec une solution d’acide oxalique pendant 1 minute
5. Bien laver les coupes à l’eau du robinet
6. Mordancer les coupes dans une solution de sulfate d’ammonium ferrique pendant 15 minutes
7. Bien laver avec plusieurs changements d’eau distillée
8. Traiter avec une solution d’argent ammoniacale filtrée pendant 12-15 secondes
9. Bien laver avec plusieurs changements d’eau distillée (la section doit être translucide)
10. Réduire la solution de formaldéhyde pendant 1 à 2 minutes, vérifier au microscope et si sous
11. Laver à l’eau distillée
12. Traiter avec du thiosulfate de sodium pendant 5 minutes
13. Bien laver à l’eau
14. Si un contre-colorant est nécessaire, colorer au rouge neutre pendant 30 secondes
15. Rincer à l’eau
16. Déshydrater, nettoyer et monter
imprégné répéter l’étape 8-10 fois.
Ce kit de coloration est utilisé pour mettre en évidence les fibres de réticuline. La méthode Gordon & Sweet utilise une imprégnation de métal offrant un excellent contraste pour que même les fibres les plus fines puissent être vues
Kit de Coloration de Réticuline (avec Chlorure d’Or)
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
50 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
Nitrate d’Argent à 2-8°C - Autres Réactifs 15-25°C
100 Test 200 Test
Code - 100 -200
RRSK105 12 x 50ml 12 x 100ml
Hazard Information
UN3082
Résultats
Fibres Réticulines:
Noyaux:
Autres éléments:
Noir
Noir (Lipofuchsine et Mélamine sont aussi faiblement colorés)
Rouge
Contenu du Kit
Solution de permanganate de potassium à 0,5% x 2
Solution d’acide sulfurique à 3%
Solution d’acide oxalique à 1%
Solution de sulfate d’ammonium ferrique à 2,5%
Solution de nitrate d’argent à 10%
Solution d’Ammoniac à 33%
Solution d’hydroxyde de sodium à 3%
Solution sans tampon de formaldéhyde à 10% (v / v)
Solution de thiosulfate de sodium à 5%
Solution de Chlorure d’Or à 0.2%
Rouge neutre 0,5%
Protocole
1. Déparaffiner les coupes, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet 2. Oxyder les coupes avec du permanganate de potassium acidifié pendant 5 minutes 3. Bien laver à l’eau du robinet 4. Décolorer avec une solution d’acide oxalique pendant 1 minute 5. Bien laver les coupes à l’eau du robinet 6. Mordancer les coupes dans une solution de sulfate d’ammonium ferrique pendant 15 minutes 7. Bien laver avec plusieurs changements d’eau distillée 8. Traiter avec une solution d’argent ammoniacale filtrée pendant 12-15 secondes 9. Bien laver avec plusieurs changements d’eau distillée (la section doit être translucide)10. Réduire la solution de formaldéhyde pendant 1 à 2 minutes, vérifier au microscope et si sous
11. Laver à l’eau distillée 12. Tonifier dans la solution à 0.2% de chlorure d’Or pendant 3-5 min13. Laver à l’eau distillée. Traiter avec du thiosulfate de sodium pendant 5 minutes14. Laver bien à l’eau 15. Si un contre-colorant est nécessaire, colorer au rouge neutre pendant 30 secondes 16. Rincer à l’eau 17. Déshydrater, nettoyer et monter
imprégné répéter l’étape 8-10 fois.
42 43T: 0044 (0)161366 5123 W: www.atomscientific.comT: 0044 (0)161366 5123 W: www.atomscientific.com
Ce kit de coloration est utilisé pour la détection des mucopolysaccharides acides et est basé sur l’attraction de cations ferriques dans une solution d’oxyde ferrique colloïdal pour les groupes carboxyle et sulfate chargés négativement des mucines acides et des protéoglycanes. Les ions ferriques liés au tissu sont visualisés par traitement avec du ferrocyanure de potassium pour former des dépôts bleu vif de ferrocyanure ferrique ou de bleu de Prusse
Kit de Coloration du fer Colloïdal
Contenu du Kit
Chlorure ferrique Solution aqueuse à 29%
Acide acétique Solution aqueuse à 25%
Rouge neutre Solution aqueuse à 0,5%
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
100 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
Réactif de Perles 2-8°C. Autres Composants 15-25°C
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK100 5 x 50ml 5 x 100ml 5 x 250ml 5 x 500ml
Hazard Information
UN1760
Perles Colloïdales Réactif B (ferrocyanure de potassium à 5%)
Perles colloïdales Réactif A (acide chlorhydrique à 5%)
Protocol
1. Déparaffiner les coupes, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet
2. Traiter avec de l’acide acétique dilué (12% - 1 dose d’acide acétique 25% pour 1 dose d’eau distillée)
3. Couvrir la lame de test (pas de contrôle) avec une solution de travail de fer colloïdal pendant 1 heure
4. Rincer dans une solution d’acide acétique diluée pendant 3 minutes. Répéter 4 fois
5. Placer le test et la lame de contrôle dans une solution de Perls colloïdale fraîchement préparée pen
6. Rincer brièvement à l’eau distillée
7. Colorer avec une solution rouge neutre à 0,5% pendant 5 minutes
8. Bien rincer à l’eau et sécher
9. Déshydrater rapidement, nettoyer et monter
Working Stock Solution
1. Solution Active mère de Fer colloïdal – Porter 62.5mls d’eau distillée à ébullition et ajouter 1.1ml de
2. Solution Active de Fer colloïdal – Mélanger une dose de Solution mère Ferrique avec une dose de
3. Solution Active de Perles colloïdales – Mélanger une dose de Perles colloïdales Réactif mère A avec une
Chlorure ferrique (Solution à 29%) Continuer l’ébullition jusqu’à ce que la Solution tourne rouge rouge foncé. Lorsque c’est le cas, la Solution doit être retiré du feu et mise à refroidir.
solution d’Acide Acétique à 25%. A préparer juste avant le processus de Coloration.
dose de Perles colloïdales Réactif mère B. Mélanger bien et fait pour usage instantané
Résultats
Protéoglycanes, Acides Mucines, Acides Hyaluronique:
Collagène:
Noyau:
Bleu Intense
Bleu Pale
Rouge
pendant 1 minute
dant 20 minutes
Ce kit de coloration est utilisé pour la détection de la protéine amyloïde dans les coupes de tissu. Cette méthode élimine la nécessité d’une étape de différenciation avec l’utilisation d’une solution de chlorure de sodium hautement concentrée qui réduit la coloration de fond tout en améliorant la liaison hydrogène du rouge Congo à l’amyloïde, ce qui entraîne une coloration progressive et une technique hautement sélective.
Kit de Coloration de Rouge Congo (Puchtler & Sweat)
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
60 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
15-25 ° C
RésultatsEosinophils, Amyloid, Elastin, Keratin:
Various glycoproteins, early lipofuchsins:
Nuclei:
Rouge
Magenta
Bleu
Protocole
Tout d’abord, 2 solutions de travail séparées doivent être préparées.
Solution de travail A - Ajouter 0,25 ml d’hydroxyde de sodium à 25 ml de chlorure de sodium alcoolique.
Utiliser rapidement.
La solution de travail B - Ajouter 0,25 ml de solution d’hydroxyde de sodium à 25 ml de solution de rouge
congo. Utilisez rapidement
1. Déparaffiner les coupes, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet
2. Tacher les noyaux avec hémalun de Mayer pendant 5 minutes
3. Bien laver à l’eau du robinet
4. Différencier avec 1% d’alcool acide 2-10 sec
5. Bien laver à l’eau
6. Bleuir dans l’eau du robinet Scotts
7. Bien laver à l’eau
8. Immerger dans la solution de travail A pendant 20 minutes. Égoutter
9. Immerger dans la solution de travail B de rouge congo pendant 20 minutes
10. Rincer brièvement à l’alcool (80%)
11. Déshydrater rapidement, éliminer et monter
100 Test 200 Test
Code - 100 -200
RRSK9 12 x 50ml 12 x 100ml
Contenu du Kit
Solution alcoolique de chlorure de sodium saturé x 5
Rouge Congo dans 80% d’éthanol saturé x 5
Hémalun de Mayer
Hydroxyde de Sodium 1% Solution Aqueuse
Hazard Information
UN1170
44 45T: +44 (0) 0161 366 5123 W: www.atomscientific.com T: +44 (0) 0161 366 5123 W: www.atomscientific.com
Ce kit de coloration est utile pour démontrer les fibres élastiques, le collagène et les muscles. L’élastine a une forte affinité pour le colorant fer-hématoxyline et conservera donc le colorant plus longtemps que les autres composants tissulaires qui seront décolorés par la différenciation. La différenciation est cruciale à la coloration de fibres élastiques.
Kit de Coloration Elastic Van Gieson (Verhoeffs) (EVG)
Contenu du Kit
Hématoxyline à 5% alcoolique
Chlorure ferrique 10% Solution x 3
Van Gieson Extra
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
45 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
15-25 ° C
Résultats
Tissu élastique et noyaux:
Collagène:
Autres éléments tissulaires:
Noir
Rouge
Jaune (ou selon contre-couleur)
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK40 7 x 50ml 7 x 100ml 7 x 250ml 7 x 500ml
Hazard Information
UN2924
Iodine Lugol
Solution de thiosulfate de sodium à 5%
Protocole
1. Déparaffiner les coupes, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet
2. Colorer dans la solution 1 pendant 30 minutes (conserver la solution jusqu’à ce que la tâche soit
3. Laver à l’eau du robinet
4. Différencier dans la solution 2, vérifier au microscope les fibres noires sur le fond gris
5. Rincer à l’eau
6. Traiter avec du thiosulfate de sodium pendant 1 minute pour éliminer les tâche dues à l’iode seul
7. Laver à l’eau du robinet
8. Contre-colorer dans Van Gieson Stain pendant 2 minutes
9. Tamponner pour éliminer l’excès de tâche
10. Déshydrater rapidement , nettoyer et monter
Solution Mère Active
Solution 1: Ajouter 1.25ml d’ Hématoxylline alcoolique 5% avec 0.5ml de chlorure ferrique à 10% et
Solution 2: Ajouter 5ml de Chlorure ferrique 10% avec 20ml d’eau distillée dans un contenant de type mélanger. Ajouter 0.5ml d’iode de Lugol et mélanger bien. Préparer frais.
trieur pour lame microscopique. Préparer frais chaque fois.
terminée)
Ce kit de coloration utilise une technique combinée pour démontrer les fibres élastiques, le collagène et les muscles. Les fibres élastiques, en particulier les fibres fines, se coloreront intensément en bleu avec la teinture de Miller. Les fibres d’élastine et de pré-élastine sont des ponts disulfure hautement réticulés qui nécessitent une oxydation avec du permanganate de potassium suivie d’un blanchiment avec de l’acide oxalique
Kit de Coloration Elastic Van Gieson (Miller) (EVG)
Contenu du Kit
Solution de permanganate de potassium à 0,5% x 2
Solution d’acide sulfurique à 3%
Solution d’acide oxalique à 1%
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
195 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
15-25 ° C
Résultats
Fibres élastiques:
Mature Collagen:
Other tissues e.g. muscle and red blood cells:
Bleu/Noir
Rouge
Jaune
Protocole
Préparation du permanganate de potassium acidifié Mélanger 9,5 ml de solution de permanganate de potassium avec 0,5 ml de solution d’acide sulfurique. Cette solution violette se conserve 3-4 semaines mais doit être jetée après utilisation 5 fois ou si elle devient brune
1. Déparaffiner les coupes, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet
2. Traiter avec du permanganate de potassium acidifié pendant 5 minutes
3. Bien laver dans de l’eau et de l’eau de javel avec de l’acide oxalique pendant 1 minute
4. Bien laver à l’eau
5. Rincer à l’alcool à 95% (non fourni)
6. Teindre à l’élastine Millers pendant 3 heures à température ambiante
7. Rincer brièvement à l’alcool à 95% pour éliminer excès de tache
8. Bien laver à l’eau
9. Contre-colorer avec un colorant Van Gieson pendant 2 minutes
10. Sécher par tamponnage
11. Déshydrater rapidement, nettoyer et monter
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK11 6 x 50ml 6 x 100ml 6 x 250ml 6 x 500ml
Hazard Information
UN1170
Coloration Millers Elastin
Coloration Van Gieson Extra
46 47T: +44 (0) 0161 366 5123 W: www.atomscientific.com T: +44 (0) 0161 366 5123 W: www.atomscientific.com
Ce kit de coloration est utilisé pour mettre en évidence la mélanine dans les tissus, mais peut également mettre en évidence les granules de cellules d’argentaffine et les lipofuscines
Kit de Coloration Masson Fontana
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
60 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
Stock Nitrate d’Argent à 2-8°C pour une performance optimale
100 Test 200 Test
Code - 100 -200
RRSK12 7 x 50ml 7 x 100ml
Contenu du Kit
Solution d’ammoniaque 33%
Solution de nitrate d’argent à 10% x 4
Solution de thiosulfate de sodium à 5%
Solution de rouge neutre à 0,1%
Hazard Information
UN2672
Résultats
Mélanine:
Granules de cellules d’argentaffine, chromaffine, certaines lipofuchsines:
Noyaux:
Noir
Noir
Rouge
Protocole
PRÉPARATION DE LA SOLUTION D’ARGENT AMMONIACAL - Placer 20 ml d’une solution aqueuse de nitrate d’argent à 10% dans un flacon en verre. À l’aide d’une pipette compte-gouttes à pointe fine, ajoutez goutte à goutte de l’ammoniac concentré, en agitant constamment le flacon jusqu’à ce que le précipité formé se dissolve presque - Ce titrage est essentiel si la méthode doit fonctionner correctement - Le point final du titrage est observé lorsqu’un faible l’opalescence est présente et est mieux visualisée en
- Si trop d’ammoniac est ajouté par inadvertance, l’ajout de quelques gouttes de nitrate d’argent à 10%- À cette solution correctement titrée, ajoutez 20 ml d’eau distillée triple puis filtrez dans un flacon
1. Déparaffiner les coupes, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet
2. Bien laver à l’eau distillée
3. Traiter avec la solution d’argent ammoniacal dans un pot Coplin propre, qui a été recouvert d’aluminium
4. Bien laver dans plusieurs changements d’eau distillée
5. Traiter les coupes avec du thiosulfate de sodium aqueux à 5% (hypo) pendant 1 minute
6. Bien laver à l’eau courante pendant 2-3 minutes
7. Contre-colorer dans 0,1% de rouge neutre pendant 1 minute
8. Rincer à l’eau courante et éponger
9. Déshydrater rapidement, nettoyer et monter
utilisant la lumière réfléchie sur un fond noir
sombre - Les solutions d’argent ammoniacal sont potentiellement explosives si elles ne sont pas stockées correctement - Conservez la solution au réfrigérateur (2-8 ° C) et utilisez-la dans les 4 semaines
Ce kit de coloration est utilisé pour détecter les cellules fœtales dans une circulation maternelle et est basé sur la capacité des cellules fœtales à résister à un pH acide tandis que les globules rouges adultes subissent l’élution de l’hémoglobine
Kit de Coloration Kleihauer
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
45 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
15-25°C
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK33 8 x 50ml 8 x 100ml 8 x 250ml 8 x 500ml
Hazard Information
UN1170
Résultats
Cellules foetales:
Cellules adultes:
Neutrophiles:
Lymphocytes:
Marron rougeâtre
Contours fantômes rose pâle
Apparaissent différenciés comme avec des films hématologiques
Gris/Rose
Contenu du Kit
Solution tampon Kleihauer 1 x 3
Solution tampon Kleihauer 2 x 2
Erythrosine 0,1% Solution Acidifiée
Hémalum Mayer
Ethanol dénaturé 80%
Protocole
Préparation de la solution de travail Kleihauer Buffer – mélanger 13.3ml de Solution 1 de Kleihauer Buffer à 36.7ml de
Solution 2 de Kleihauer Buffer.
La préparer au dernier moment pour une meilleure fraicheur.
1. Après la préparation, laisser les frottis sanguins sécher à l’air pendant 10 à 60 minutes
2. Placer les frottis sanguins secs dans un pot de coplin contenant de l’éthanol dénaturé à 80% pendant environ 5
3. Rincer à l’eau distillée et laisser sécher à l’air
4. Placer les lames dans la solution tampon Kleihauer (préchauffée à 37 ° C dans un pot Coplin) pendant 5 minutes.
5. Rincer à l’eau distillée et sécher à l’air
6. Teindre à l’hémalum de Mayer pendant 3 minutes
7. Rincer à l’eau distillée
8. Colorer avec la solution d’érythrosine pendant 4 minutes
9. Rincer à l’eau distillée et laisser sécher à l’air
10. Les lames doivent être examinées en utilisant une immersion dans l’huile
Agitez les lames à 2min d’intervalle
minutes
48 49T: +44 (0) 0161 366 5123 W: www.atomscientific.com T: +44 (0) 0161 366 5123 W: www.atomscientific.com
Ce kit de coloration est utilisé pour mettre en évidence les tissus conjonctifs. Trois colorants sont utilisés, chacun avec une sélectivité différente pour les muscles, les fibres de collagène et les érythrocytes, d’où le terme coloration «trichrome»
Kit de Colorations de Masson Trichrome (Vert Clair)
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
50 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
15-25°C
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK21 5 x 50ml 5 x 100ml 5 x 250ml 5 x 500ml
Hazard Information
UN1170
Contenu du Kit
Hématoxyline Weigerts (Solution A)
Hématoxyline Weigerts (Solution B)
Solution d’acide phosphotungstique à 1%
Solution Ponceau Fuchsin Masson
Vert Clair Masson (2% Vert Clair dans 2,5% Acide Acétique)
Résultats
Noyau:
Cytoplasme, Fibres de neuroglie et Muscle:
Collagène et Mucus:
Bleu-Noir
Rouge
Vert
Protocole
1. Préparer l’hématoxyline de Weigert en mélangeant des volumes égaux de solution A et B selon les besoins2. Déparaffiner les coupes, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet3. Teindre les noyaux avec de l’hématoxyline de fer de Weigert pendant 20 minutes, laver rapidement à l’eau et
4. Rincer et bleuir dans l’eau5. Rincer et colorer avec la solution de ponceau fuchsine masson pendant 5 minutes. Rincer à l’eau déminéralisée 6. Différencier et mordancer dans l’acide phosphotungstique pendant 15 minutes 7. Transférer sans rinçage dans la solution vert clair pendant 3 minutes8. Rincer à l’eau
9. Déshydrater, nettoyer et monter
différencier dans une solution d’alcool acide à 1% (RRSP175 - non fourni), laissant les noyaux légèrement sur-colorés
Ce kit de coloration est utilisé pour mettre en évidence les tissus conjonctifs. Trois colorants sont utilisés, chacun avec une sélectivité différente pour les muscles, les fibres de collagène et les érythrocytes, d’où le terme coloration «trichrome»
Kit de Colorations de Masson Trichrome (Bleu de Méthyl)
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
50 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
15-25°C
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK20 5 x 50ml 5 x 100ml 5 x 250ml 5 x 500ml
Contenu du Kit
Hématoxyline Weigerts (Solution A)
Hématoxyline Weigerts (Solution B)
Solution d’acide phosphotungstique à 1%
Solution Ponceau Fuchsin Masson
Bleu de Methyl (2% Bleu de Methyl dans 2,5% Acide Acétique)
Hazard Information
UN1170
Résultats
Noyau:
Cytoplasme, Fibres de neuroglie et Muscle:
Collagène et Mucus:
Bleu-Noir
Rouge
Bleu
Protocole
1. Préparer l’hématoxyline de Weigert en mélangeant des volumes égaux de solution A et B selon les
2. Déparaffiner les coupes, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet
3. Teindre les noyaux avec de l’hématoxyline de fer de Weigert pendant 20 minutes, laver rapidement
4. Rincer et bleuir dans l’eau
5. Rincer et colorer avec la solution de ponceau fuchsine masson pendant 5 minutes. Rincer à l’eau distillée
6. Différencier et mordancer dans l’acide phosphotungstique pendant 15 minutes
7. Transférer sans rinçage dans la solution bleu de Methyl pendant 5 minutes
8. Rincer à l’eau
9. Déshydrater, nettoyer et monter
à l’eau et différencier dans une solution d’alcool acide à 1% (RRSP175 - non fourni), laissant les noyaux
besoins
légèrement sur-colorés
50 51T: +44 (0) 0161 366 5123 W: www.atomscientific.com T: +44 (0) 0161 366 5123 W: www.atomscientific.com
Ce kit de coloration est utilisé pour colorer les frottis de sang périphérique et de moelle osseuse afin d’identifier les composants granulocytaires et monocytaires des cellules hémopoïétiques anormales. Le noir de Soudan B ne peut pas être extrait des granulés colorés par des solvants organiques et donne une coloration comparable à celle de la coloration MPO
Kit de Coloration Noir Soudan (Version Hématologie)
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
75 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
15-25°C
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK61 4 x 50ml 4 x 100ml 4 x 250ml 4 x 500ml
Contenu du Kit
Coloration noire du Soudan dans une solution d’éthanol à 70%
Ethanol à 70%
Solution tampon mordant
Hémalun de Mayer
Résultats
Noyaux:
Myélocytes/Promyélocytes:
Lymphocytes:
Neutrophiles matures:
Rouge
Granules Bleu / Noir augmentant avec la maturité cellulaire
Négative
Le cytoplasme contient des granules positifs (bleu / noir) de matière
à réaction positive
Protocole
1. Fixer les frottis selon la méthode habituelle
2. Rincer les frottis dans de l’eau distillée
3. Tacher les frottis dans une solution de colorant de travail, c’est-à-dire 2 doses de solution tampon
4. Retirer de la teinte et rincer dans de l’alcool à 70%. Après 30 secondes, basculez. Répétez 3 fois.
5. Rincer doucement les frottis à l’eau courante du robinet pendant 2 minutes maximum et sécher à l’air
6. Contre-colorer avec de l’hémalun de Mayer pendant 2-3 minutes
7. Rincer doucement à l’eau courante du robinet et essuyer
8. Monter dans un support aqueux ou examiner sous huile d’immersion
mordante pour 3 doses de noir Soudan B colorer pendant 1 heure dans un pot Coplin à couvercle. (Cette solution de travail se conservera 4 semaines)
Cela élimine l’excès de colorant
Hazard Information
UN1170
Ce kit de coloration est utilisé pour la coloration différentielle des éléments cellulaires du sang. Les solutions de coloration Giemsa et May Grunwald sont classées comme colorations «Romanowsky». Ces colorants composés sont relativement insolubles dans l’eau et sont généralement préparés par solubilisation dans le méthanol
Kit de Coloration May Grünwald Giemsa
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
35 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
15-25°C
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK27 3 x 50ml 3 x 100ml 3 x 250ml 3 x 500ml
Hazard Information
UN1230
Contenu du Kit
Coloration May Grunwald
Coloration de Giemsa
Tampon Sorensen (200xconc) PH 6.8
Résultats
Noyau:
Cytoplasme - Lymphocytes / Monocytes:
Granules dans les neutrophiles:
Granules basophiles:
Granules éosinophiles:
Globules rouges:
Rouge/Violet
Bleu pâle
Rouge/Violet
Bleu/Noir
Orange vif
Rose/Orange
Protocole
1. Déparaffiner les sections, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet. Pour les frottis, inondez
2. Filtrer le colorant May Grünwald, diluer avec le tampon Sorensens 1: 1 et colorer pendant 15 minutes
3. Retirer le colorant mais ne pas rincer dans le tampon
4. Filtrer le colorant Giemsa et diluer 1 partie du colorant dans 9 parties du tampon et colorer pendant 10
5. Rincer dans un tampon Sorensens pH 6,8
6. Déshydrater, clarifier et monter. Pour les frottis, monter une fois séché à l’air
les lames avec de l’eau distillée
minutes
52 53T: +44 (0) 0161 366 5123 W: www.atomscientific.comT: +44 (0) 0161 366 5123 W: www.atomscientific.com
Ce kit de coloration est populaire pour la coloration de l’antigène de surface de l’hépatite B et de la protéine associée au cuivre que l’on trouve couramment dans des maladies telles que la maladie de Wilson et la maladie biliaire chronique
Kit de Coloration Orceine Shikata
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
45 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
15-25°C
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK29 6 x 50ml 6 x 100ml 6 x 250ml 6 x 500ml
Contenu du Kit
Orcein solution (1% Orcein in 1% acid alcohol)
Potassium Permanganate 0.5% solution x 2
Sulphuric Acid 3% Solution
Oxalic Acid 1% Solution
Denatured Ethanol 70%
Résultats
Antigène de surface de l’hépatite B:
Fibres élastiques:
Protéine associée au cuivre:
Contexte:
Granulés bruns dans le cytoplasme
Marron
Marron foncé/Violet
Rose pâle/Marron
Protocole
Préparation du permanganate de potassium acidifié Mélanger 9,5 ml de solution de permanganate de potassium avec 0,5 ml de solution d’acide sulfurique. Cette solution violette se conserve 3-4 semaines mais doit être jetée après 5 utilisations ou si elle devient brune
1. Déparaffiner les coupes, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet
2. Oxyde les coupes avec du permanganate de potassium acidifié pendant 5 minutes
3. Bien laver à l’eau
4. Blanchir avec de l’acide oxalique à 1% pendant 1 minute
5. Bien laver à l’eau
6. Rincer coupes dans de l’éthanol dénaturé à 70%
7. Colorer en solution d’orcéine pendant 30 min à 56°C
8. Rincer à l’eau puis à l’éthanol dénaturé à 70%
9. Déshydrater, éclaircir et monter
Hazard Information
UN1170
T: 0044 (0)161366 5123 W: www.atomscientific.com
Ce kit de coloration est utilisé pour colorer les phospholipides ainsi que les graisses neutres. Le soudan black B ne colore pas le cholestérol, les lécithines et les acides gras libres. Il y a deux fractions distinctes dans ce colorant, la première colore les graisses neutres en bleu-noir, tandis que la seconde fraction (un colorant basique) colore les phospholipides en gris. Le noir Soudan B ne tache pas le cholestérol, les leathiris et les acides gras libres
Kit de Coloration Noir Soudan B (Version Histologie)
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
130 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
15-25°C
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK17 3 x 50ml 3 x 100ml 3 x 250ml 3 x 500ml
Contenu du Kit
Sudan Black Stain in 70% ethanol
Ethanol 70% solution
Neutral red 0.5% aqueous
Résultats
Phospholipides:
Esthers insaturés/triglicérides:
Noyaux:
Gris
Bleu/Noir
Rouge
Protocole
1. Rincer les coupes du cryostat dans de l’éthanol à 70%
2. Colorer pendant 2 heures dans une solution de noir soudan B
3. Rincer les coupes dans de l’éthanol à 70% pour éliminer l’excès de colorant pendant 2 à 3 minutes
4. Laver à l’eau du robinet pendant 2 minutes
5. Sécher par essorage et contre-colorer dans une solution rouge neutre pendant 2-3 minutes
6. Bien laver à l’eau
7. Monter dans un support aqueux ou examiner sous huile d’immersion
Hazard Information
UN1170
54 55T: +44 (0) 0161 366 5123 W: www.atomscientific.com T: +44 (0) 0161 366 5123 W: www.atomscientific.com
Ce kit de coloration est utilisé pour l’évaluation différentielle rapide des frottis
Kit de Coloration Rapi-Diff II Extra
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
1 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
15-25°C
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK190 4 x 50ml 4 x 100ml 4 x 250ml 4 x 500ml
Contenu du Kit
RRSP133 - Coloration Rapi-Diff II - Solution A
RRSP134 - Coloration Rapi-Diff II - Solution B
RRSP135 - Coloration Rapi-Diff II - Solution C
Tablette tamponnée PH6.8 (Chaque tablette pour 1L de tamponné)
Résultats
Noyaux:
Cytoplasme – Lymphocytes - Monocytes:
Granules dans les Neutrophiles:
Granules basophiles:
Granules Eosinophile:
Globules Rouges:
Différentes teintes de Rouge/Violet
Bleu Pale
Rouge/Violet
Bleu/Noir
Orange vif
Rose/Orange
Protocole
1. Préparez de fines frottis de sang sur des lames sans graisse et séchez à l’air
2. Fixez par immersion dans la solution A pendant 5 secondes
3. Transférez, sans rinçage ni séchage, dans la solution B et colorez pendant 5 secondes en agitant
4. Transférer la lame dans la solution C et répéter la coloration comme pour la solution B
5. Diluer la tablette tamponnée comme suivant les instructions
6. Rincer brièvement la lame dans de l’eau tamponnée (pH 6,8) et laisser sécher
lentement la lame dans la solution ou immerger et retirer la lame plusieurs fois pendant une périodede 5 secondes. Égouttez l’excès de tache sur du papier absorbant
Hazard Information
UN1230
Ce kit de coloration est utilisé pour l’évaluation différentielle rapide des frottis hématologiques et cytologiques
Kit de Coloration Rapi-Diff II
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
1 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
15-25°C
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK1 3 x 50ml 3 x 100ml 3 x 250ml 3 x 500ml
Contenu du Kit
RRSP133 - Coloration Rapi-Diff II - Solution A
RRSP134 - Coloration Rapi-Diff II - Solution B
RRSP135 - Coloration Rapi-Diff II - Solution C
Résultats
Noyaux:
Cytoplasme – Lymphocytes - Monocytes:
Granules dans les Neutrophiles:
Granules basophiles:
Granules Eosinophile:
Globules Rouges:
Différentes teintes de Rouge
Bleu Pale
Rouge/Violet
Bleu/Noir
Orange vif
Rose/Orange
Protocole
1. Préparez de fines frottis de sang sur des lames sans graisse et séchez à l’air
2. Fixez par immersion dans la solution A pendant 5 secondes
3. Transférez, sans rinçage ni séchage, dans la solution B et colorez pendant 5 secondes en agitant
4. Transférer la lame dans la solution C et répéter la coloration comme pour la solution B
5. Rincer brièvement la lame dans de l’eau tamponnée (pH 6,8) et laisser sécher
lentement la lame dans la solution ou immerger et retirer la lame plusieurs fois pendant une période de 5 secondes. Égouttez l’excès de tache sur du papier absorbant
Hazard Information
UN1230
56 57T: +44 (0) 0161 366 5123 W: www.atomscientific.com T: +44 (0) 0161 366 5123 W: www.atomscientific.com
Ce kit de coloration est utilisé pour la démonstration de la M-Tuberculose et d’autres organismes acido-résistants dans des coupes de tissus et des frottis. Le protocole utilise l’auramine O qui est un colorant cationique jaune utilisé comme fluorochrome qui se fixe aux bacilles tuberculeux et est visualisé à l’aide de la microscopie fluorescente
Kit de Coloration TB Fluorescent II
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK19 3 x 50ml 3 x 100ml 3 x 250ml 3 x 500ml
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
30 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
15-25°C
Contenu du Kit
Solution Auramine Rhodamine Phenol Lempert
Différenciateur de phénol d’auramine
Solution aqueuse de permanganate de potassium 0,5%
Protocole
1. Déparaffiner les sections et hydrater avec de l’alcool et rincer à l’eau. Pour les frottis, rincer à l’eau distillée
2. Préchauffer l’auramine rhodamine à 60°C dans un four ou bain marie. Mélanger après réchauffer
3. Bien rincer à l’eau distillée
4. Différencier avec le différenciateur d’auramine pendant 5 minutes
5. Bien laver à l’eau distillée
6. Traiter avec une solution de permanganate de potassium à 0,5% pour 30 secondes
7. Bien laver à l’eau distillée et égoutter les lames
8. Déshydrater rapidement avec des alcools, nettoyer et monter avec un montage non fluorescent
Résultats
Mycobactéries:
Contour:
Tiges jaunes dorées
Vert foncé
Hazard Information
UN1992
et filtrer les lames- colorer pendant 10 minutes.
Ce kit de coloration est utilisé pour la démonstration de la M-Tuberculose et d’autres organismes acido-résistants dans des coupes de tissus et des frottis. Le protocole utilise l’auramine O qui est un colorant cationique jaune utilisé comme fluorochrome qui se fixe aux bacilles tuberculeux et est visualisé à l’aide de la microscopie fluorescente
Kit de Coloration TB Fluorescent I (Auramine Phénol Lempert)
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
30 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
15-25°C
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK18 3 x 50ml 3 x 100ml 3 x 250ml 3 x 500ml
Contenu du Kit
Solution Auramine Phenol Lempert
Différenciateur de phénol d’auramine
Solution aqueuse de permanganate de potassium 0,5%
Protocole
1. Déparaffiner les sections et hydrater avec de l’alcool et rincer à l’eau. Pour les frottis, rincer à l’eau distillée
2. Colorer les lames avec de l’auramine phénol lempert pendant 15 minutes
3. Bien rincer à l’eau distillée
4. Faire la différence avec le différenciateur d’auramine pendant 5 minutes
5. Bien laver à l’eau distillée
6. Traiter avec une solution de permanganate de potassium à 0,5% pour 30 secondes
7. Bien laver à l’eau distillée et égoutter les lames
8. Déshydrater rapidement avec des alcools, nettoyer et monter avec un montage non fluorescent
Résultats
Mycobactéries:
Contour:
Tiges jaunes dorées
Vert foncé
Hazard Information
UN1992
58 59T: +44 (0) 0161 366 5123 W: www.atomscientific.comT: +44 (0) 0161 366 5123 W: www.atomscientific.com
Ce kit de coloration est couramment utilisé pour la coloration des films fécaux pour aider au diagnostic des protozoaires intestinaux
Kit de Coloration Trichrome de Wheatleys
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
55 min (environ)
3 ans (à partir de la date de manufacture)
15-25°C
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK63 4 x 50ml 4 x 100ml 4 x 250ml 4 x 500ml
Contenu du Kit
Coloration de Trichrome de Wheatley’s
Différentiateur de Wheatley
Ethanol Denaturé 70%
Résultats
Cytoplasme des trophozoïtes protozoaires:
Kystes:
Noyaux et inclusions (corps chromatoïdes, globules rouges, bactéries et cristaux de Charcot-Leyden):
Bleu/Vert
Violet
Rouge, parfois teinté de violet
Protocole
1. Retirez la lame du fixateur de Schaudinn et placez la lame dans de l’éthanol dénaturé à 70% pendant 5 min.
2. Placez la lame dans une solution alcoolique à 2% d’iode pendant 1 min pour les échantillons frais ou 5 à 10
3. Placer la lame dans de l’éthanol dénaturé à 70% pendant 5 min.
4. Placer la lame dans de l’éthanol dénaturé à 70% à nouveau pendant 3 min.
5. Placer dans un colorant trichrome pendant 10 min.
6. Placer dans le différenciateur de Wheatley pendant 1 à 3 secondes. Egouttez immédiatement le panier et
7. Trempez plusieurs fois dans de l’éthanol à 100% (non fourni). Utilisez cette étape comme un rinçage
8. Laisser sécher le frottis pendant une nuit ou après 1 heure à 37 ° C
9. Examiner sous huile d’immersion
Iode 2% alcoolique
Hazard Information
UN1170
min pour les échantillons conservés au PVA
panier et passez au suivant. Ne laissez pas les lames trempées dans cette solution.
Ce kit de coloration est utilisé dans la démonstration du tissu conjonctif. C’est une coloration trichrome en une étape et peut être utilisée pour différencier le collagène et les fibres musculaires lisses
Kit de Coloration Trichrome de Gomori
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
120 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
15-25 ° C
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK70 6 x 50ml 6 x 100ml 6 x 250ml 6 x 500ml
Hazard Information
UN1170
Contenu du Kit
Solution de Bouins aqueuse saturée
Hématoxyline Weigerts A
Hématoxyline Weigerts B
Alcool acide Solution à 0,5%
Tache de Gomori
Acide acétique glacial à 0,5%
Résultats
Noyau:
Cytoplasme, Kératine, Fibres Musculaire:
Collagène et Mucus:
Bleu/Noir
Rouge
Vert
Protocole
1. Préparer l’hématoxyline de Weigert en mélangeant des volumes égaux de solution A et B selon les
2. Déparaffiner les coupes, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet
3. Bien rincer à l’eau distillée
4. Placer les coupes dans la solution Bouins pendant 1 heure à 56 °C
5. Retirer les lames et laisser refroidir à température ambiante, bien laver à l’eau courante jusqu’à ce que
6. Rincer abondamment à l’eau distillée
7. Colorer les noyaux avec de l’hématoxyline ferrique Weigerts pendant 20 minutes
8. Laver à l’eau et différencier dans une solution d’alcool acide à 0,5%, en laissant les noyaux légèrement
9. Rincer à l’eau courante
10. Colorer avec Gomoris trichrome pendant 15 à 20 minutes
11. Rincer les coupes dans de l’acide acétique à 0,5% et sécher
12. Déshydrater, clarifier et monter
besoins
toute la coloration jaune ait disparu
sur-colorés
60 61T: +44 (0) 0161 366 5123 W: www.atomscientific.com T: +44 (0) 0161 366 5123 W: www.atomscientific.com
Ce kit de coloration est utilisé pour visualiser les dépôts de calcium dans les coupes de tissu. Les coupes sont traitées avec une solution de nitrate d’argent et l’argent est déposé en remplaçant le calcium réduit par une forte lumière qui peut alors être visualisée comme de l’argent métallique
Kit de Coloration Von Kossa
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
75 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
Nitrate d’Argent 2-8°C – Autres Réactifs 15-25°C
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK38 3 x 50ml 3 x 100ml 3 x 250ml 3 x 500ml
Contenu du Kit
Solution Nitrate d’Argent 5%
Solution Thiosulfate 5%
Solution Rouge Neutre (0.5% Aqueux)
Résultats
Sels de Calcium:
Noyau:
Cytoplasme:
Noir
Rouge
Rose
Protocole
1. Déparaffiner les coupes, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet
2. Placer dans une solution de nitrate d’argent et exposer à une forte lumière pendant 1 heure
3. Laver dans 3 changements d’eau distillée
4. Traiter avec du thiosulfate de sodium pendant 5 minutes
5. Bien rincer dans de l’eau distillée
6. Contre-colorer au rouge neutre pendant 5 minutes
7. Rincer à l’eau
8. Déshydrater rapidement avec des alcools, éliminer et monter
Hazard Information
UN3082
Ce kit de coloration est utilisé pour la démonstration des fibres de collagène. La méthode de Van Gieson est un mélange de deux colorants anioniques qui confèrent une couleur au collagène et une autre au cytoplasme, y compris les fibres musculaires et les érythrocytes. En utilisant une hématoxyline de fer (Weigert) qui est une coloration nucléaire résistante aux acides, la contre-coloration de Van Gieson produit la coloration différentielle du collagène et du
Kit de Coloration Van Gieson / Hématoxyline de Weigerts
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
35 min (environ)
3 ans (à partir de la date de manufacture)
15-25°C
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK22 4 x 50ml 4 x 100ml 4 x 250ml 4 x 500ml
Contenu du Kit
Hématoxyline Weigert Coloration A
Hématoxyline Weigert Coloration B
Van Gieson Extra Coloration
Alcool acide 0,5%
Résultats
Noyaux:
Collagène:
Globules Rouges:
Muscle:
Bleu-Noir
Rouge
Jaune
Jaune
Protocole
1. Préparer la solution d’hématoxyline de travail en mélangeant à parts égales les solutions
2. Déparaffiner les coupes, hydrater avec de l’alcool et rincer à l’eau du robinet
3. Colorer dans une solution de travail d’hématoxyline pendant 20 minutes. (conserver la solution
4. Laver à l’eau du robinet
5. Différencier dans de l’alcool acide à 0,5%. Vérifiez au microscope. Sous différenciation est nécessaire
6. Rincer à l’eau du robinet
7. Bleuir dans l’eau du robinet Scotts et rincer à l’eau courante
7. Colorer dans du Van Gieson Stain pendant 2 minutes
8. Rincer rapidement à l’eau distillée, essuyer
9. Déshydrater rapidement dans de l’alcool absolu (l’acide picrique est fortement soluble dans
comme la coloration Van Gieson enlèvera un peu d’Hématoxyline
Hazard Information
UN1170
l’alcool. L’exposition à l’alcool doit être minimale) nettoyer et monter
d’hématoxyline A et B
jusqu’à ce que la coloration soit terminée)
62 63T: +44 (0) 0161 366 5123 W: www.atomscientific.com T: +44 (0) 0161 366 5123 W: www.atomscientific.com
Ce kit de coloration est utilisé pour la coloration de Mycobacterium tuberculosis et d’autres organismes acido-résistants. Les parois cellulaires des mycobactéries ne sont pas facilement pénétrées, donc afin de colorer les mycobactéries, la fuchsine basique est mélangée avec du phénol pour créer une coloration puissante. La chaleur peut être appliquée pour «forcer» la coloration dans le bacille. Une fois coloré, le bacille est très résistant à la décoloration en conservant la teinte même lorsque le reste de la préparation a été décoloré
Kit de Coloration ZN (Bleu de Méthylène)
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
35-45 min (environ)
3 ans (à partir de la date de manufacture)
15-25°C
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK23 4 x 50ml 4 x 100ml 4 x 250ml 4 x 500ml
Contenu du Kit
Carbol Fuchsine ZN
Différentiateur TB x2
Bleu de Méthylène (AFB)
Results
Bacilles acido-résistants (M.tuberculosis):
Cellules et matériel de base, autres organismes:
Magenta/Rouge
Bleu
Hazard Information
UN1992
Protocole
1. Déparaffiner les sections, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet. Pour les frottis, inondez les
2. Placer l’échantillon dans un bocal Coplin de 50 ml (ou dans une enveloppe de 20 ml) de carbol fuchsine.
3. Retirer de la solution de coloration et placer sur le support de coloration et bien laver avec de l’eau
4. Différencier avec le différenciateur TB jusqu’à ce que la préparation soit incolore ou rose pâle 20-30
5. Bien laver à l’eau du robinet pendant 5 minutes
6. Contre-colorer avec le Bleu de Méthylène pendant 15 secondes
7. Bien laver à l’eau distillée
8. Déshydrater rapidement sous alcools purs, clarifier et monter. Si l’huile d’immersion doit être utilisée dans
Mettre au four à 37 ° C, pour les frottis 20min, pour les coupes 30 min
déminéralisée pendant 3-5 min
le cas de visualisation de frottis, la préparation doit être séchée à l’air pendant 20-30 minutes
lames avec de l’eau distillée
secondes
Ce kit de coloration est utilisé pour visualiser les dépôts de calcium dans les coupes de tissu. Les coupes sont traitées avec une solution de nitrate d’argent et l’argent est déposé en remplaçant le calcium réduit par une forte lumière qui peut alors être visualisée comme de l’argent métallique
Kit de Coloration Von Kossa (Fort)
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
75 min (environ)
3 ans ( à partir de la date de manufacture)
Nitrate d’Argent 2-8°C – Autres Réactifs 15-25°C
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK39 3 x 50ml 3 x 100ml 3 x 250ml 3 x 500ml
Résultats
Sels de Calcium:
Noyau:
Cytoplasme:
Noir
Rouge
Rose
Protocole
1. Déparaffiner les coupes, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet
2. Placer dans une solution de nitrate d’argent et exposer à une forte lumière pendant 1 heure
3. Laver dans 3 changements d’eau distillée
4. Traiter avec du thiosulfate de sodium pendant 5 minutes
5. Bien rincer dans de l’eau distillée
6. Contre-colorer au rouge neutre pendant 5 minutes
7. Rincer à l’eau
8. Déshydrater avec des alcools, nettoyer et monter
Hazard Information
UN3082
Contenu du Kit
Solution Nitrate d’Argent 10%
Solution Thiosulfate 5%
Solution Rouge Neutre (0.5% Aqueux)
64 65T: +44 (0) 0161 366 5123 W: www.atomscientific.com
Ce kit de coloration est utilisé pour la coloration de Mycobacterium tuberculosis et d’autres organismes acido-résistants. Les parois cellulaires des mycobactéries ne sont pas facilement pénétrées, donc afin de colorer les mycobactéries, la fuchsine basique est mélangée avec du phénol pour créer une tache puissante. La chaleur peut être appliquée pour «forcer» la tache dans le bacille. Une fois coloré, le bacille est très résistant à la décoloration en conservant la tache même lorsque le reste de la préparation a été décoloré
Kit de Coloration ZN (Vert de Malachite)
Informations Générales
Durée de la procédure
Durée de Conservation
Entreposage
35-45 min (environ)
3 ans (à partir de la date de manufacture)
15-25°C
100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test
Code - 100 -200 -500 -1000
RRSK23 4 x 50ml 4 x 100ml 4 x 250ml 4 x 500ml
Contenu du Kit
Carbol Fuchsine ZN
Différentiateur TB x2
Vert de Malachite 0.5% Aqueux
Résultats
Bacilles acido-résistants (M.tuberculosis):
Cellules et matériel de base, autres organismes:
Magenta/Rouge
Vert
Hazard Information
UN1992
Protocole
1. Déparaffiner les sections, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet. Pour les frottis,
2. Placer l’échantillon dans un bocal Coplin de 50 ml (ou dans une enveloppe de 20 ml) de carbol fuchsine.
3. Retirer de la solution de coloration et placer sur le support de coloration et bien laver avec de
4. Différencier avec le différenciateur TB jusqu’à ce que la préparation soit incolore ou rose pâle 20-30
5. Bien laver à l’eau du robinet pendant 5 minutes.
6. Contre-colorer avec du vert malachite pendant 15-20 secondes
7. Bien laver à l’eau distillée
8. Déshydrater rapidement sous alcools purs, clarifier et monter. Si l’huile d’immersion doit être utilisée
Mettre au four à 37 ° C, pour les frottis 20min, pour les coupes 30 min.
l’eau déminéralisée pendant 3-5 minutes.
dans le cas de visualisation de frottis, la préparation doit être séchée à l’air pendant 20-30 minutes
inondez les lames avec de l’eau distillée
secondes
66 67
Kit de Coloration Bleu d’Alcian pH 1.0Kit de Coloration Bleu d’Alcian pH 2.5Kit de Coloration AFB (Contre-couleur Bleu de Méthylène)Kit de Coloration AFB (Contre-Couleur Vert Clair)Kit de Coloration Bleu Rapide de LuxolKit de Coloration Bleu VictoriaKit de Coloration Congo Red (de Highman)Kit de Coloration Cryptosporidium Kit de Coloration d’Elastique OrceinKit de Coloration d’Eosine et HématoxylineKit de Coloration d’Huile Rouge OKit de Coloration de Bleu de Toluidine Kit de Coloration de DPAS Kit de Coloration de FieldKit de Coloration de Gram (Contre-Coloration Fuchsine de Gram)Kit de Coloration de Gram (Contre-coloration Rouge Neutre)Kit de Coloration de Gram (Contre-coloration Safranine)Kit de coloration de Gram (Contre-Couleur de Twort)Kit de Coloration de Gram (Hucker&Conn)Kit de Coloration de GrocottKit de Coloration de Kinyoun Froid (Contre-couleur de Vert de Malachite)Kit de Coloration de Kinyoun Froid (Contre- Couleur de Bleu de Méthylène)Kit de Coloration de Martius Bleu EcarlateKit de Coloration de Mucicarmine Southgate Kit de Coloration de NeisserKit de Coloration de PapanicolaouKit de Coloration de PASKit de Coloration de Bleu d’Alcian - PASKit de Coloration de PAS pour parois cellulaires fongiques (modifié par McManus 1946)Le Kit de coloration PAS (Periodic Acid Schiff) de JonesKit de Coloration de PerlsKit de Coloration de Perls (Version Hématologie)
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Kit de Coloration de Perls Van GiesonKit de Coloration de Picro-Mallory TrichromeKit de Coloration de Réticuline (avec Chlorure d’Or)Kit de Coloration de Réticuline (Sans Chlorure d’Or)Kit de Coloration de Rouge Congo (Puchtler & Sweat)Kit de Coloration du Fer ColloïdalKit de Coloration Elastic Van Gieson (Miller) (EVG)Kit de Coloration Elastic Van Gieson (Verhoeffs) (EVG)Kit de Coloration KleihauerKit de Coloration Masson FontanaKit de Colorations de Masson Trichrome (Bleu de Méthyl)Kit de Colorations de Masson Trichrome (Vert Clair)Kit de Coloration May Grunwald GiemsaKit de Coloration Noir Soudan (Version Hématologie)Kit de Coloration Noir Soudan (Version Histologie)Kit de Coloration Orcein ShikataKit de Coloration Rapi- Diff IIKit de Coloration Rapi- Diff II ExtraKit de Coloration TB Fluorescent I (Auramine Phénol Lempert)Kit de Coloration TB Fluorescent II Kit de Coloration Trichrome de GomoriKit de Coloration Trichrome de WheatleysKit de Coloration Van Gieson / Hématoxyline de WeigertsKit de Coloration Von Kossa Kit de Coloration Von Kossa (Fort)Kit de Coloration ZN (Bleu de Méthylène)Kit de Coloration ZN (Vert de Malachite)
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