Clave de Murciélagos - Quiróptera - Del Cono Sur --Diaz_et_al_2010 ..

8/20/2019 Clave de Murciélagos - Quiróptera - Del Cono Sur --Diaz_et_al_2010 ..

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Título original: Clave de identificación de los murciélagos del cono sur deSudamérica

Cita bibliográfica: Díaz M. M., L. F. Aguirre & R. M. Barquez. 2011. Clave deidentificación de los murciélagos del cono sur de Sudamérica. Centro de Estudiosen Biología Teórica y Aplicada. Cochabamba, Bolivia. 94 pp.

Primera Edición en Español: No está permitida la reproducción total o parcialde este libro, ni su tratamiento informático, ni la transmisión en ninguna forma yasea electrónica, mecánica, por fotocopia, por registro u otros métodos, sin el previopermiso por escrito de los titulares de derechos de autor.

Derechos reservados: 2011 Centro de Estudios en Biología Teórica y Aplicada

ISBN: 978-99954-809-2-9

Depósito Legal: 8-1-1820-11

Impreso en Bolivia por Imprenta ETREUS, Cochabamba, Bolivia

Ilustraciones de portada: Enrique Guanuco, Norberto Pedro Giannini



Programa de Conservación de los Murciélagos de Argentina (PCMAPrograma para la Conservación de los Murciélagos de Bolivia (PCMB)

Red Latinoamericana para la Conservación de los Murciélagos (RELCOM)2011

CLAVE DE IDENTIFICACIÓN DE LOS MURCIÉLAGOSDEL CONO SUR DE SUDAMÉRICA

(Key to the bats of the Southern Cone of South America)

(ARGENTINA-BOLIVIA-CHILE-PARAGUAY-URUGUAY)

M. Mónica Díaz1, Luis F. Aguirre2 y Rubén M. Barquez1

1PIDBA (Programa de Investigaciones de Biodiversidad Argentina); PCMA(Programa de Conservación de los Murciélagos de Argentina); CONICET

(Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas)Facultad de Ciencias Naturales e Instituto Miguel Lillo, Universidad Nacional

de Tucumán, Tucumán, Argentina

2Centro de Biodiversidad y Genética, Universidad Mayor de San Simón;Programa para la Conservación de los Murciélagos de Bolivia, Centro de

Estudios en Biología Teórica y Aplicada (PCMB-BIOTA)



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CLAVE DE IDENTIFICACIÓN DE LOS MURCIÉLAGOS DEL CONO SUR DE SUDAMÉRICA

ÍNDICE /CONTENTS

Prólogo...............................................................................................................3Agradecimientos ...........................................................................................................5Introducción........................................................................................................6Morfología externa ............................................................................................10Morfología craneal ............................................................................................12Medidas externas...............................................................................................13Medidas craneales .............................................................................................13

Introduction ......................................................................................................15 External morphology .........................................................................................19

Cranial morphology ..........................................................................................21 External measurements ......................................................................................22Cranial measurements ................................................................................................22Lista de especies / List of species ........................................................................24Clave de familias / Key to the families ........................................................................31Familia / Family Emballonuridae ........................................................................35Familia / Family Phyllostomidae ................................................................................39Subfamilia / Subfamily Carolliinae ......................................................................42

Subfamilia / Subfamily Desmodontinae ......................................................................45Subfamilia / Subfamily Glossophaginae ...............................................................46Subfamilia / Subfamily Lonchophyllinae .............................................................49Subfamilia / Subfamily Phyllostominae ......................................................................50Subfamilia / Subfamily Stenodermatinae (Sturnirini) ............................................57Subfamilia / Subfamily Stenodermatinae (Stenodermatini) ....................................59Familia / Family Mormoopidae ..................................................................................67Familia / Family Noctilionidae ...........................................................................69

Familia / Family Furipteridae .....................................................................................69Familia / Family Thyropteridae...........................................................................69Familia / Family Molossidae ..............................................................................70Familia / Family Vespertilionidae ...............................................................................77Literatura citada / Literature cited .......................................................................84Apéndice 1 / Appendix 1: Mapa de países del Cono Sur de Sudamérica /

Map showing the countries of the Southern Cone of South America .........................89Apéndice 2 / Appendix 2: Explicación de las figuras / Description of figures............90



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PRÓLOGO

El estudio de los murciélagos en América del Sur ha ido creciendo encantidad y calidad de sus investigadores. Una de las principales necesidadesen actualidad para satisfacer esta demanda, es actualizar las claves parala identificación de estos animales. Mónica, Rubén y Luis vienen alrescate del conocimiento de los murciélagos del sur de América del Surcon este hermoso volumen. El libro está ampliamente ilustrado y lainformación escrita permite reconocer los rasgos de estos animales.

Esta obra es por tanto, de fundamental importancia porque coloca al día

el estado de conocimiento de la fauna de murciélagos del cono sur deAmérica del Sur, mediante la revisión de la lista de especies actuales yla manera de poder identificarlas.

La identificación de las especies es el primer paso para aquellos quequieren estudiar murciélagos, más allá de ser un instrumento importantepara científicos y naturalistas de la vida silvestre. Esa obra es tambiénsinónimo de integración de dos Programas de Conservación de losMurciélagos de Argentina (PCMA) y de Bolivia (PCMB) que ciertamente

atenderá a todos los países que comparten la rica fauna de murciélagossudamericanos.

Los PCMs son programas para Conservación de los Murciélagos en Lati-noamerica y como miembro del programa en Brasil (PCMBr) y de laRELCOM, es un honor y un gusto poder contar con un trabajo tanimportante que demuestra el trabajo de los PCMs hermanos en investigacióncientífica y fundamentalmente en la conservación de los murciélagos ylos procesos ecológicos en que están involucrados.

Ludmilla Moura de Souza AguiarPrograma para la Conservación de los Murciélagos de Brasil

Pós Graduação em Ecologia - Departamento de ZoologiaUniversidade de Brasília



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AGRADECIMIENTOS

Queremos agradecer a los miembros de los programasde conservación de murciélagos de Argentina y Bolivia(PCMA-PCMB), ya que sin su dedicación constante,estimulo y monumentales ganas puestas en cada unade las actividades realizadas, sería muy difícil seguiradelante con la tarea de conservar y proteger a nuestrosmurciélagos. Además, agradecemos a cada una de lasinstituciones que nos apoyan para llevar a cabo nuestrosproyectos de investigación. R. M. Barquez y M. M. Díazagradecen por el apoyo y financiamiento al CONICET(Proyecto PIP 1587), CIUNT (Centro de Investigacionesde la Universidad Nacional de Tucumán, Proyecto26/G407) y AGENCIA (Agencia Nacional de PromociónCientífica y Tecnológica, proyecto PICT 13280). L. F.Aguirre agradece el apoyo del Centro de Biodiversidady Genética (Universidad Mayor de San Simón), EcoHealthAlliance, y el financiamiento de Whitley Fund for Nature.



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INTRODUCCIÓN

Desde los últimos años del siglo pasado, el interés por el estudio de losmurciélagos ha comenzado a crecer, de una manera tan extraordinaria en todoslos países de América del Sur, que resulta difícil entender su impacto sin un

análisis, aunque sea somero, de las razones que han inducido a esa reacción.Visto desde la óptica de investigadores que han iniciado sus estudios a principiosde los años 70, cuando la ausencia de estudiosos locales y regionales era lanorma, el panorama del conocimiento pintaba un futuro prometedor para quienesse atrevieran a desafiar las dificultades que imponían entonces los gobiernosregionales para apoyar ese tipo de investigaciones. Estudiar murciélagos oratones en aquellos tiempos, no era atractivo para los gobiernos o institucionesacadémicas, excepto si los proyectos representaban resultados de impactoeconómico como la rabia paresiante para la ganadería; poco importaban la

historia evolutiva, la genética, la ecología o la sistemática de los murciélagos.Este escenario posicionaba a la mayoría de los académicos sudamericanos enun desinterés palpable para insertarse en el estudio de estas temáticas, favoreciendoel desarrollo de un nicho vacío, o mínimamente subocupado, y muchas vecesla emigración o cambio de rumbo vocacional. Sin embargo, la frecuentepresencia de investigadores, principalmente extranjeros debe reconocerse, haactuado en muchos casos como semilla para la formación de focos científicosque más tarde han movilizado tanto el estudio de sus faunas locales, como laformación de nuevos profesionales dispuestos a permanecer en sus países y a

transitar las adversidades, dando lugar al origen de pequeños grupos regionalesque comenzaron a nuclearse en organizaciones, sociedades y programas.

Vivida así esa breve historia, hoy Latinoamérica cuenta ya con una RedLatinoamericana de Conservación de los Murciélagos (RELCOM) conformadaa su vez por programas de conservación de casi todos los países, desde Méxicohacia el Sur. Cada uno de estos países reúne profesionales, estudiantes, ycolaboradores de otras especialidades y orígenes, que ya han realizado lasinvestigaciones básicas, impresionantes campañas de educación ambiental adiferentes niveles, y finalmente actúan en planes concretos de conservación delos murciélagos.

En la actualidad se reconocen para Sudamérica nueve familias, 74 géneros yaproximadamente 250 especies de murciélagos (Gardner, 2007). Cabe destacarque la escasez de conocimiento sobre este grupo se manifiesta en la cantidadde novedades registradas en los últimos años, como lo demuestran las variasespecies que fueron descriptas o están en proceso de descripción para las selvasneotropicales ( Micronycteris matses Simmons et al., 2002; Lonchophyllachocoana Dávalos, 2004; Lophostoma aequeatorialis Baker et al., 2004;



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Lophostoma yanusi Fonseca y Pinto, 2004; Carollia manu Pacheco et al., 2004; Anoura fistulata Muchhala, Mena y Albuja, 2005; Xeronycteris vierai Gregoriny Ditchfield, 2005; Anoura cadenai Mantilla-Meluk y Baker, 2006; Carolliabenkeithi Solari y Baker, 2006; Eptesicus tadei Miranda et al., 2006; Micronycterisgiovanniae Fonseca et al., 2007).

También resultan notables los cambios sistemáticos propuestos para diversostaxones, algunas subespecies elevadas a especies (e.g. Micronycteris homezi,Peropteryx trinitatis, Simmons y Voss, 1998; Histiotus laephotis, Barquez yDíaz, 2001; Anoura aequatoris Mantilla-Meluk y Baker, 2006; Myotis dinellii,Barquez, 2006; Cynomops milleri, Eumops delticus, Eger, 2007; Anoura peruanaMantilla-Meluk y Baker, 2010; Platyrrhinus incarum Velazco et al., 2010),cambios de nombre (e.g. Molossus ater por Molossus rufus) y modificacionessignificativas de los rangos de distribución de varios géneros y especies (Barquez

et al., 1999a,b, 2009; Barquez y Díaz, 2001; Aguirre et al., 2003; Angulo yDíaz, 2004; Azurduy y Emmons, 2005; Siles et al., 2003; Botto, 2009; Díaz yBarquez, 2009; Stevens et al., 2010; entre otros).

En el caso particular de Molossus currentium, aunque se acepta tentativamentesu validez específica, y en consecuencia su presencia en Argentina, Bolivia,Paraguay y Uruguay (López-González y Presley, 2001; Eger, 2007; Aguirre et al., 2010), consideramos que se necesitan estudios más profundos que permitanestablecer con mayor claridad las características que la diferencian de M.molossus y es urgente resolver de manera mas precisa los límites de distribución

de cada especie.En la presente clave se considera “Cono Sur” al área geográfica que incluyeArgentina, Bolivia, Chile, Paraguay y Uruguay. La fauna de murciélagos deesos países totaliza 156 especies (siete de las cuales son probables para Bolivia,dos para Paraguay y una para Argentina, ver lista de especies) representadaspor nueve familias: 10 emballonúridos, 82 filostómidos, 5 mormoópidos, 2noctiliónidos, 2 furiptéridos, 2 tiroptéridos, un natálido, 25 molósidos y 27vespertiliónidos. El país con mayor diversidad en el cono sur es Bolivia con138 especies, seguido por Argentina con 63, Paraguay 56, Uruguay 25 y Chile12, cifras que incluyen especies confirmadas y probables.

En Argentina, la diversidad de especies ha aumentado desde la Guía deMurciélagos de Barquez et al. (1993) y se han producido algunos cambiostaxonómicos y de distribución; esto ha llevado a la publicación de una nuevaclave, publicada por Barquez y Díaz (2009). Hasta el momento se han registradocuatro familias, 27 géneros y 63 especies en el país, lo que indica el incrementode un género y cinco especies con respecto a los datos anteriores, de 1993,además de una especie (Vampyriscus bidens) considerada probable (Sánchez



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et al., 2008) con respecto al listado de Barquez y Díaz (2009). Para muchasespecies las distribuciones se han ampliado significativamente, incluyendo otrasprovincias y regiones fitogeográficas donde no se conocían (Merino et al., 2000,2003; de Souza et al., 2008; Udrizar Sauthier et al., 2008; de Souza y Pave,2009; Lutz y Merino, 2010). El género Micronycteris fue incorporado, sinidentidad específica, a la fauna argentina por Barquez et al. (1999b), perorecientemente fue posible identificar la especie como Micronycteris microtis;también se agregó recientemente a Eptesicus chiriquinus (Díaz y Barquez, 2009;Barquez et al., 2009) a la fauna Argentina. Dos subespecies fueron revalidadascomo especies ( Histiotus laephotis y Myotis dinellii) por Barquez y Díaz, (2001)y Barquez (2006). Otros cambios en la nominación de algunas especies respectoa Barquez et al. (1993) son el uso de Dasypterus ega en lugar de Lasiurus ega(Barquez et al., 1999a), Molossus rufus por Molossus ater , Lasiurus blossevilliipor Lasiurus borealis, y Platyrrhinus lineatus por Vampyrops lineatus (ver

Simmons, 2005). Lasiurus salinae, considerada válida por algunos autores(Simmons, 2005; Gardner y Handley, 2007) es aquí tratada como sinónimo de Lasiurus blossevillii (Barquez et al., 1999a; Barquez y Díaz, 2001).

Para Bolivia, una de las primeras listas publicada sobre murciélagos fue la deAnderson (1985) quien mencionó 82 especies para el país. Desde entonces losesfuerzos de investigaciones locales ha permitido agregar muchas especies ylas listas subsiguientes agregaron muchas especies, elevando el número a 122(Aguirre, 2007), 126 y 132 (Aguirre et al. 2009, 2010). La última utiliza lanomenclatura empleada por Aguirre (2007) y está basada principalmente enSimmons (2005) y en cambios posteriores a dicho trabajo, que surgen derevisiones de grupos sistemáticos como el de Velazco (2005) para Platyrrhinus,Sánchez-Hernández et al. (2005) para Stunira, o Solari y Baker (2006) paraCarollia. Siguiendo a Gardner (2007), consideramos como Lichonycteris degener a las formas de la vertiente Amazónica de Sudamérica tratadas como Lichonycterisobscura. Adicionalmente, aquí reconocemos Artibeus planirostris en lugar de A. jamaicensis principalmente en base a la evidencia molecular aportada porLim et al. (2004) y Larsen et al. (2007). El reconocimiento de Platyrrhinusincarum en lugar de P. helleri para las poblaciones de Bolivia, se basa en los

resultados reportados por Velazco et al. (2010). Asimismo consideramos como Natalus espiritosantensis a las poblaciones de Bolivia, en lugar de N. stramineusde acuerdo con Tejedor (2011), destacando que ya Gardner (2007) reconocióla separación geográfica de estas poblaciones respecto a las de las Antillas, perosólo a nivel de subespecies. Finalmente consideramos Myotis dinellii a losejemplares de Bolivia previamente tratados como Myotis levis siguiendo aBarquez (2006).

Chile es el país con el menor número de especies de murciélagos en Sudamérica.Osgood (1953) incluyó siete especies, y algunas de las subespecies tratadas



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entonces por ese autor, son actualmente consideradas especies, como es el casode Lasiurus varius o Histiotus magellanicus. Más tarde, Mann Fischer (1978)agregó los géneros Amorphochilus y Mormopterus a la fauna chilena. En lasúltimas décadas los estudios en Chile sobre la distribución y taxonomía de losmurciélagos han sido muy escasos y con muy pocas información publicada(Gantz y Martínez, 2000; Iriarte, 2008). Actualmente se reconocen 12 especiespresentes en ese país, la mayoría de ellas insectívoras representantes de lasfamilias Vespertilionidae, Molossidae, y Furipteridae, y dos especies representantesde Phyllostomidae, un hemotófago ( Desmodus rotundus) y un frugívoro (Platalinagenovesium) con registro marginal.

Las primeras listas de murciélagos de Uruguay se remontan a principios y amediados del siglo pasado (Devincenzi, 1935; Acosta y Lara 1950, 1951; Acostay Lara y Muñoa, 1962). Más tarde diversos autores realizaron aportes al

conocimiento de este grupo en el país, como Ximénez, 1969, Ximénez et al.,1972, González J. C. (1977, 1989), González y Vallejos (1980), González E.M. (2001), y Achaval et al. (2004). Desde la creación del GIM (Grupo deInvestigaciones y Conservación de los Murciélagos de Uruguay), a fines de2005, el conocimiento sobre las especies y su distribución ha crecidoconsiderablemente, y recientemente se ha incorporado un nuevo género y especiea Uruguay, Promops centralis (Botto, 2009). Estas investigaciones permitierondefinir que en Uruguay existen, hasta el momento, 25 especies de murciélagos(3 filostómidos, 9 molósidos y 13 vespertiliónidos).

A finales de la década de los 90’s, la fauna de murciélagos de Paraguay fueobjeto de una atención considerable y, como resultado, se han listado 56 especies(López-González, 1998, 2005; López-González et al., 1998; Stevens et al.,2007, 2010). Aún hoy, una de las áreas menos conocidas en Paraguay, conrespecto a su fauna de murciélagos, es el ecosistema del Pantanal, dondesolamente se han relevado dos sitios de muestreo. En el Pantanal, 17 especiesfueron reportadas por López-González (2005), correspondiendo a casi un terciode todo el territorio. Recientemente se ha incorporado a Myotis levis (Stevenset al., 2010) a la fauna paraguaya y se espera que numerosas nuevas especies

puedan ser encontradas en zonas húmedas del país en los próximos años.En los últimos años, en toda Latinoamérica se han formado agrupacionesdestinadas a difundir información real sobre los murciélagos, incluyendo susaspectos beneficiosos, para erradicar el concepto errado de que son animalesdañinos, plagas, o que representan peligro para la salud humana. En estecontexto, Argentina, Bolivia y Uruguay, ya forman parte de la RedLatinoamericana para la Conservación de los Murciélagos (RELCOM) queincluye a todos los programas latinoamericanos constituídos, para consolidarobjetivos comunes, especialmente sobre especies migratorias y amenazadas



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compartidas entre los países. Paraguay y Chile se encuentran actualmente enproceso de constituir sus programas de conservación, para luego incorporarsecomo miembros de la RELCOM.

La presente clave, estructurada a nivel de familias, subfamilias, géneros y

especies, incluye a todas las especies citadas hasta ahora para el Cono Sur deLatinoamérica. Es nuestro objetivo que pueda ser de utilidad para la identificaciónde especies en el campo, no sólo para investigadores, sino también paraestudiantes, guardaparques, y público en general y, al mismo tiempo, que ayudea incentivar el estudio de este grupo de mamíferos en la región. Los caracteresutilizados en la clave han sido pensados para ayudar, principalmente, en laidentificación de especies en el campo; sin embargo, con cierta frecuencia lasdiferencias entre especies no pueden marcarse solamente con morfología externa,por lo que hemos tenido que agregar caracteres craneales y de dentición. Los

dibujos de esta clave fueron modificados de Barquez (1987), Díaz y Barquez(2002), y Barquez y Díaz (2009); los dibujos originales fueron realizados porEnrique Guanuco (EG), Norberto P. Giannini (NPG), M. Mónica Díaz (MMD),y Rubén M. Barquez (RMB). En el Apéndice 3, a continuación de la leyendade cada figura, se indican las iniciales del artista original del dibujo. A continuaciónse detallan algunos caracteres externos y craneales que se mencionan en laclave, y que son usados frecuentemente para la identificación de las especiesde murciélagos:

Morfología externa

Alas: los miembros anteriores están modificados en alas y cubiertos por unamembrana que se denomina patagio.

Antitrago: prominencia de piel localizada en la escotadura de la oreja (Fig. 2).

Banda interauricular : En algunas especies las orejas pueden estar unidas poruna membrana, o banda de unión, o presentar una muesca (entrada) en elcentro (Fig. 45, 48a).

Cola: apéndice caudal con diferente grado de desarrollo según los grupos; puedeestar reducida o ausente, completa o parcialmente contenida en el uropatagio,perforándolo y apareciendo por el lado dorsal del uropatagio, o extendidamás allá de su margen posterior (cola parcialmente libre) (Figs. 6, 7, 9).

Discos de succión: estructuras de adhesión que poseen las especies de la familiaThyropteridae en los pulgares y las patas que les sirve para trepar en lashojas que usan como refugio (Fig. 10).

Dactilopatagio: membrana ubicada entre los dedos (Fig. 1).



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Hocico: puede ser largo y delgado o corto y ancho, lo que está relacionado conel tipo de alimentación de las especies. El rostro también presenta diferenciapudiendo presentar una quilla (Fig. 2), o parte saliente y afilada que seextiende entre las narinas hacia atrás entre los ojos.

Hoja nasal: apéndice cutáneo de tamaño variable localizado en el extremo dela nariz, característico de la familia Phyllostomidae (Fig. 4); en los vampiros(Desmodontinae) la hoja se reduce, perdiendo la lanceta y presentando unamuesca dorsal (Fig. 5).

Organo natálido: presente en los machos de la familia Natalidae, es una estructuragrande con forma de campana sobre el hocico compuesto por célulassensoriales y glandulares (Fig. 13).

Pata: extremidad posterior del cuerpo que posee un sistema de tendones en los

cinco dedos que permite el cierre o bloqueo de las garras en los murciélagos.Esto les facilita permanecer colgados cabeza abajo cuando reposan; losdedos están lateralmente achatados y poseen uñas en forma de garras biendesarrolladas; en los molósidos poseen largos pelos que sobrepasan lasgarras.

Patagio: membrana de piel que forma las alas de los quirópteros, uniendo losdedos y extremidades. El patagio incluye al brazo, antebrazo, y mano conlos alargados metacarpos y falanges de cuatro dedos. El patagio recibedistintos nombres según su ubicación (Propatagio, Dactilopatagio,Plagiopatagio y Uropatagio).

Plagiopatagio: membrana ubicada a los costados, entre el quinto dedo y elcuerpo (Fig. 1).

Propatagio: membrana antebraquial, que se ubica entre el hombro y el pulgar,del lado hacia el que se dobla el brazo (Fig. 1).

Pulgar : dedo con uña no incluido en la membrana alar y con diferente gradode desarrollo según las especies. En los vampiros presenta almohadillas en

la base (Fig. 34, 35).Quilla de la oreja: reborde saliente y afilado de extensión variable localizada

en el lado interno de la oreja (Fig. 2).

Saco glandular : estructura presente en el uropatagio o propatagio de algunasespecies de murciélagos emballonúridos, esta produce olores relacionadoscon los despliegues sociales y el marcado de territorio. Este saco es másgrande y mejor desarrollado en los machos. En el uropatagio esta estructuratiene dos lóbulos y se ubica en el centro cerca del extremo de la cola (Fig.



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11). En el propatagio varia de posición de acuerdo al género en el que estápresente, se puede abrir paralelo al antebrazo, en desde el borde anterior dela membrana hasta cerca del codo o cerca del borde del ala (Fig 17).

Tibia: hueso largo que une la rodilla con el tobillo (Fig. 1).

Trago: pequeña prominencia de piel localizada delante del conducto auditivoexterno (Fig. 2). El trago y el antitrago pueden presentar diferentes formasy desarrollo dependiendo de las especies.

Uropatagio: membrana que se encuentra entre las patas; en algunas especiescontiene a la cola. El margen posterior se apoya en parte en el calcar (ocalcáneo), un cartílago que se extiende desde el tarso, y que tiene diferentegrado de desarrollo; el margen del uropatagio puede presentar un fleco depelos con diferente grado de desarrollo (Fig. 1, 59).

Verrugas o papilas: saliencias de la piel presentes en la quijada con diferentedisposición, número y forma (Fig. 27, 28c,d). También hace referencia a lassaliencias presentes en la lengua de algunos taxones.

Morfología craneal (Fig. 3)

Arco cigomático: estructura ósea delgada a los lados del cráneo, formada porlos huesos maxilar, escamoso y yugal.

Bulla timpánica: estructura ósea hueca que contiene el oído medio y el interno.

Cresta sagital: cresta ósea de variada elevación que se ubica a lo largo de lasutura sagital del cráneo.

Cuspúlido: eminencias lobulares oclusales de los premolares y molares inferiores.

Dentición: Los murciélagos poseen una dentadura decidua cuando nacen,caracterizada por dientes estiliformes y curvados que las crías utilizan parafavorecer la fijación a las mamas durante el vuelo de la madre. Esta denticiónes posteriormente reemplazada por la dentición definitiva, y el número de

dientes varía en los diferentes taxones, y esto es escrito de manera abreviada,en fracciones, o fórmula dental.

Emarginación palatina: hendidura anterior del paladar.

Exoccipital: uno de los pares de huesos a los lados del foramen magnum quelleva los cóndilos occipitales.

Fosa mesopterigoidea: cavidad o depresión delimitada por los pterigoides pordetrás del paladar, se continúa anteriormente con las fosas nasales.



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Formula dental: En los casos en los que en la clave se indica la cantidad dealgún tipo de diente en modo de fracciones, el numerador indica la cantidadde dientes de la hemimaxila y el denominador el de la hemimandíbula. Porejemplo Incisivos 1/2 significa en la hemimaxila hay 1 incisivo, y en lahemimandíbula hay 2. Para indicar el tipo de dientes se usan mayúsculaspara los superiores y minúsculas para los inferiores: incisivos (I, i), caninos(C, c), premolares (P, p), molares (M, m).

Fosetas basiesfenoides: hendiduras localizadas en el basiesfenoides, huesoubicado posteriormente en la base del cráneo.

Paladar : estructura ósea interior y superior de la boca que incluye al premaxilar,maxilar y palatinos.

Procesos paraoccipitales: porción lateroposterior del exoccipital.

Medidas externas (Figs. 1, 2)

Longitud total (LT): distancia entre el extremo del hocico y la punta de la cola.

Longitud cabeza y cuerpo (LCC): distancia entre el extremo del hocico y lainserción de la cola al cuerpo.

Longitud de la cola (LC): distancia desde la inserción de la cola al cuerpo y laúltima vértebra caudal.

Longitud de la pata (LP): distancia desde el talón y el extremo del dedo máslargo incluyendo la uña.

Longitud de la oreja (LO): distancia entre la escotadura basal y el extremo distaldel pabellón auricular.

Antebrazo (AB): distancia entre el codo y la muñeca con el ala plegada.

Envergadura alar (EA): distancia de una extremo al otro de las alas completamenteextendidas.

Medidas craneales (Fig. 3)

Longitud total del cráneo (LTC): distancia entre el extremo más anterior delrostro hasta el extremo más posterior del cráneo.

Longitud cóndilobasal (LCB): distancia entre el punto más anterior de lapremaxila y el punto más posterior de los códilos occipitales.

Ancho caja craneana (ACC): ancho máximo de la caja craneana medida desdeel lado dorsal y posteriormente a los arcos cigomáticos.



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Constricción postorbital (CP): constricción menor del cráneo medida detrás delos procesos orbitales.

Ancho cigomático (AC): distancia mayor entre las márgenes externas de losarcos cigomáticos.

Ancho mastoideo (AM): ancho mayor del cráneo incluyendo el mastoideo.

Hilera superior de dientes (HSD): tomada desde el borde anterior del alvéolodel primer diente del maxilar hasta el borde posterior del último molar.

Longitud del paladar (LP): distancia entre el extremo anterior del paladar pordetrás de los incisivos hasta la espina caudal o borde medio posterior delpaladar.

Longitud de la bulla timpánica (LB): máxima longitud de la bulla.

Canino-canino (C-C): distancia extrema entre los márgenes externos de loscaninos superiores.

Molar-molar (M-M): distancia extrema entre los márgenes externos de losúltimos molares superiores.

Longitud de la mandíbula (LM): distancia entre el extremo anterior y el extremoposterior de la mandíbula.

Hilera inferior de dientes (HID): distancia entre el extremo anterior del alvéolodel canino o el primer diente yugal hasta el borde posterior del último molar.



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INTRODUCTION

Since the final years of the last century, the interest in the study of bats hasbegun to grow in such an extraordinary way in all countries of South America,that is difficult to understand their impact without an analysis, even if brief, of

the reasons that have led to that reaction. Viewed from the perspective of researchers who began their studies in the early 70's, when the absence of regional and local researchers was the rule, the perspectives of knowledge were just a bright future for those who dare to challenge the difficulties imposed thenby the regional governments to support that kind of researches.

The study of bats and mice in those days was not attractive to governments oracademic institutions, except if the projects represented some impact on theeconomy as the resolution of rabies to cattle; evolutionary history, genetics,ecology and systematic of bats, barely mattered.

This scenario positioned the majority of South Americans academics in a tangibledisinterest for getting involved into the study of these topics, favoring thedevelopment of an empty niche, or at least underoccupied, and often favoringthe migration, or changes in vocational directions.

However, the frequent presence of researchers, mainly foreigners (it should berecognized in many cases acted as a seed for the formation of groups of scientistswho later mobilized both the study of their local faunas, as the training of newprofessionals, willing to stay in their home countries, and go through adversity,giving rise to small regional groups, who were then the origins of importantorganizations, societies and programs.

After this brief history, it is proud to say that Latin America already has a LatinAmerican Network for Conservation of Bats (RELCOM) formed in their turnby conservation programs of nearly all countries from Mexico to the south.

Each of these countries gathers professionals, students, and staff from otherspecialties and backgrounds, who have done basic research, impressiveenvironmental education campaigns to different levels, and finally they act onspecific plans for conservation of bats.

Currently, nine families, 74 genera and approximately 250 species are recognizedin South America (Gardner, 2007). It is noteworthy that the poor knowledge of this group is manifested in the numbers of new described species or in processof description for the Neotropical forest ( Micronycteris matses Simmons et al.,2002; Lonchophylla chocoana Dávalos, 2004; Lophostoma aequeatorialis Bakeret al., 2004; Lophostoma yanusi Fonseca and Pinto, 2004; Carollia manuPacheco et al., 2004; Anoura fistulata Muchhala, Mena and Albuja, 2005;



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Xeronycteris vierai Gregorin and Ditchfield, 2005; Anoura cadenai Mantilla-Meluk and Baker, 2006; Carollia benkeithi Solari and Baker, 2006; Eptesicustadei Miranda et al., 2006; Micronycteris giovanniae Fonseca et al., 2007).

This is also seen in the frequent systematic changes proposed for various taxa,

including subspecies elevated to species (e.g. Micronycteris homezi, Peropteryxtrinitatis, Simmons and Voss, 1998; Histiotus laephotis, Barquez and Díaz,2001; Anoura aequatoris Mantilla-Meluk and Baker, 2006; Myotis dinellii,Barquez, 2006; Cynomops milleri, Eumops delticus, Eger, 2007; Anoura peruanaMantilla-Meluk y Baker, 2010; Platyrrhinus incarum Velazco et al., 2010),nomenclatorial changes (e.g. Molossus ater by Molossus rufus) and the wideextension of geographical ranges found for several genera and species (Barquezet al., 1999a,b, 2009; Barquez and Díaz, 2001; Aguirre et al., 2003; Angulo andDíaz, 2004; Azurduy and Emmons, 2005; Siles et al., 2003; Botto, 2009; Díaz

and Barquez, 2009; Stevens et al., 2010, and others).With respect to Molossus currentium, although its validity is tentatively acceptedhere, and therefore its presence in Argentina, Bolivia, Paraguay and Uruguay(López-González y Presley, 2001; Eger, 2007; Aguirre et al., 2010), we considerthat more detailed studies are needed in order to define more accurately thecharacters that differentiate this species from Molossus molossus. It is alsourgent to reanalyze all specimens in the whole distributional range of the twospecies to establish well their distributional limits

The geographic area that includes Argentina, Bolivia, Chile, Paraguay andUruguay is what we here refer to as "the Southern Cone" for the purposes of this study. The bat fauna of these countries comprises 156 species (includingseven probable for Bolivia, one for Argentina and two for Paraguay, see list of species) represented by nine families: 10 Emballonuridae, 82 Phyllostomidae,5 Mormoopidae, 2 Noctilionidae, 2 Furipteridae, 2 Thyropteridae, 1 Natalidae,25 Molossidae, and 27 Vespertilionidae. The most diverse country in the SouthernCone is Bolivia with 138 species, followed by Argentina with 63, Paraguay 56,Uruguay 25, and Chile 12, numbers that include confirmed and probable species.

In Argentina, since the publication of the Guide to the Bats by Barquez et al.(1993), the diversity of species has increased. Also there have been sometaxonomic and distributional changes which has led to the publication of a newkey, by Barquez and Díaz (2009). Currently four families, 27 genera and 63species are recognized in the country, one genus and five more species than in1993, plus one species considered as probable (Vampyriscus bidens) with respectto Barquez and Díaz (2009) (Sánchez et al., 2008); for many of them theirdistributions have been significantly expanded to other provinces andphytogeographic regions (Merino et al., 2000, 2003; de Souza et al., 2008;



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Udrizar Sauthier et al., 2008; de Souza and Pave, 2009; Lutz and Merino, 2010).Barquez et al. (1999b) cited the genus Micronycteris in the fauna of Argentina,but only recently the species was identified as Micronycteris microtis (Díaz andBarquez, 2009). Also Eptesicus chiriquinus was added to Argentina (Barquezet al., 2009). Among other nomenclatorial changes since Barquez et al. (1993),we can mention two subspecies revalidated as species, Histiotus laephotis and Myotis dinellii (Barquez and Díaz, 2001; Barquez (2006). Other differencescompared with Barquez et al. (1993) are the use here of Dasypterus ega by Lasiurus ega (Barquez et al., 1999a), Molossus rufus by Molossus ater , Lasiurusblossevillii by Lasiurus borealis, Platyrrhinus lineatus by Vampyrops lineatus(see Simmons, 2005). Lasiurus salinae, considered as a valid species by someauthors (Simmons, 2005; Gardner and Handley, 2007), is here included in Lasiurus blossevillii as treated by Barquez et al. (1999a) and Barquez and Díaz(2001).

One of the earliest published lists of Bolivian bats was that of Anderson (1985),who mentioned 82 species for the country. Since then the efforts of localresearchers have added several species and the following lists after Anderson(by Aguirre, 2007) have first increased the number to 122 (Aguirre, 2007), andthen to 126 and 132 species (Aguirre et al., 2009, 2010). Aguirre et al. (2010)follow basically the nomenclature adopted by Simmons (2005), but includingsome changes proposed later in Velazco (2005) for Platyrrhinus, Sánchez-Hernández et al. (2005) for Stunira, and Solari and Baker (2006) for Carollia.The specimens of Lichonycteris obscura from the Amazon region are treatedas Lichonycteris degener in agreement with Gardner (2007). Additionally werecognize Artibeus planirostris instead of A. jamaicensis following Lim et al.(2004) and Larsen et al. (2007), and Platyrrhinus incarum instead of P. hellerias stated by Velazco et al. (2010). Likewise we treat the Bolivian specimens as Natalus espiritosantensis instead of N. stramineus as suggested by Tejedor(2011) and agreeing with Gardner (2007), who already recognize the geographicseparation of these populations from those of the Antilles, although to the levelof subspecies. The specimens previously treated as Myotis levis in Bolivia arenow considered Myotis dinellii following Barquez (2006).

Chile is the South American country with the lowest number of species of bats.Osgood (1953) included seven species, but some of his subspecies are currentlytreated to the species level, for example Histiotus magellanicus and Lasiurusvarius. Later, Mann Fischer (1978) added two genera ( Amorphochilus and Mormopterus) to the fauna of Chile. In general, the studies about distributionand taxonomy of bats in Chile have been very scarce, but exceptions are thecompendia of Gantz and Martinez (2000) and Iriarte (2008). Twelve species of bats are currently recognized for that country, most of them representatives of the insectivorous families Vespertilionidae, Molossidae, and Furipteridae, and



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two species of Phyllostomidae, an hematophagous ( Desmodus rotundus) andone frugivore (Platalina genovesium).

The first lists of the bats of Uruguay were published during the beginnings andmiddle of the twentieth century (Devincenzi, 1935, Acosta and Lara 1950, 1951,

Acosta and Lara and Muñoa, 1962). Later, several authors made contributionsto the knowledge of this group in the country (Ximénez, 1969; Ximenez et al.,1972; González J. C., 1977, 1989; Gonzalez and Vallejos, 1980; E. GonzálezM., 2001; Achaval et al., 2004). However, the creation of the GIM (Group forResearch and Conservation of Bats in Uruguay), in 2005, has renewed interestin developing studies of bats in Uruguay, leading to enhance their knowledge,especially regarding the identity of the species and their distribution. All theseinvestigations brought to light that Uruguay, until now, has 25 species of bats(3 phyllostomids, 9 molossids and 13 vespertilionids).

In the late 90's, the bat fauna of Paraguay has been subjected to considerableattention, resulting in a list of 56 species for the country (López-González, 1998,2005; López-González et al., 1998; Stevens et al., 2007, 2010). Even today,one of the less known areas in Paraguay, with respect to its bat fauna, is thePantanal ecosystem, where only two sites have been surveyed, resulting in 17species as reported by López-Gonzalez (2005), a number that is close to just athird of all species reported for the country. A recent addition to the Paraguayanfauna was Myotis levis (Stevens et al., 2010) and it is expected that many newspecies will be found in the wetlands in the coming years.

In recent years many bat research and conservation groups have been formedacross South America, whose objectives are to disseminate accurate informationabout bats, including their benefits, in order to change the wrong thought thatthey are harmful animals, pests, or hazardous to human health. Argentina,Bolivia and Uruguay, are already members of the RELCOM (Latin AmericanNetwork for the Conservation of Bats), which includes all Latin Americanprograms constituted to consolidate common objectives, especially those relatedto the migratory and endangered species shared among Latin American countries.Paraguay and Chile are currently in the process of constituting their conservationprograms, to later become members of the RELCOM.

This key is structured at the level of families, subfamilies, genera and species,and includes all the species cited to date for the “Southern Cone” of LatinAmerica. It is our goal that it can be useful for species identification in the field,not just for researchers but also for students, park rangers, and public in generaland at the same time that helps to encourage the study of this group of mammalsin the region. In general, the characters used in the key were designed to helpin the identification of species in the field, but as frequently the differences



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between species are not only evident by the external morphology, we haveadded also some skull and dental characters. The drawings were modified fromBarquez (1987), Díaz and Barquez (2002), and Barquez and Díaz (2009); theoriginal drawings were made by Enrique Guanuco (EG), Norberto P. Giannini(NPG), M. Mónica Díaz (MMD), and Rubén M. Barquez (RMB). In the Appendix3, in the legend of each figure, are indicated the initials of the original artists.The following are some of the external and cranial characters mentioned in thekey, which are frequently used to identify the bat species:

External morphology

Antitragus: a special structure of skin, located below the ear notch (Fig. 2).

Dactilopatagium: membrane located between the fingers of the wing (Fig. 1).

Ear keel: a sharp crest or keel of variable extension located in the inner side of the ear (Fig. 2).

Glandular sac: structure presents on the uropatagium or propatagium in somespecies of emballonurids, it produces a scent used in social displays and tomark territories. This is larger and better developed in males. On theuropatagium this structure has two lobules and open in centre near tip of tail (Fig. 11). On the propatagium the position varies among the genera, itopens adjacent to the forearm, from anterior border of the membrane almostto elbow or to edge of wing (Fig. 17).

Hind foot : posterior extremity of the leg that has a system of tendons, in thefive toes, that allows the claws to lock, thus permitting the bats to hangupside down, even when asleep; the digits are flattened, with well developedclaws, and in molossids there are long hairs extending beyond the claws.

Natalid organ: presents in adult male of family Natalidae, is a large structureon the muzzle bell-shaped composed of sensory and glandular cells (Fig.13).

Nose leaf : membranous fold of skin of variable size located on or around thenose, characteristic of the family Phyllostomidae (Fig. 4); in vampires(Desmodontinae) the nose leaf is reduced, lacks the lancet, and has a dorsalnotch (Fig. 5).

Patagium: a thin membrane of skin extending between the body and the limbsto form the wings. The patagium includes the arms, forearms, hands and theelongated metacarpals and phalanges of four fingers. The patagium receivesdifferent names according to the location (propatagium, dactilopatagium,plagiopatagium, and uropatagium).



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Plagiopatagium: membrane located at the sides, between the fifth finger andbody (Fig. 1).

Propatagium: antebrachial membrane, which lies between the shoulder andthumb, by the side that bends the arm (Fig. 1).

Snout : long and slender, or short and broad, depending of the diet of the species.The rostrum also presents differences, some species having a keel (Fig. 2),or sharp projection that extends from the nostrils back to the middle of theeyes.

Suction disks or cups: adhesion structures present in the species of Thyropteridaeat the base of the thumbs and ankles that they use it to cling to the insideof the leaves utilized as roost (Fig. 10).

Tail: there is considerable variation in the tail of the bats; it may be variable inlength, reduced, or absent, completely or partially included within theuropatagium, protruding and appearing on the dorsal side of the uropatagium,or extended beyond the posterior margin of the caudal membrane (Figs. 6,7, 9).

Ear band : In some species the ears are united by a membrane or band of skin;some species have a notch on the middle (Fig. 45, 48a).

Thumb: the only finger of the hand with a nail, and not included in the wing

membrane; the thumbs have different levels of development according tothe species; in vampire bats there are two or three well-developed pads onthe thumb (Fig. 34, 35).

Tibia: long bone that connects the knee with the ankle (Fig. 1).

Tragus: A small flap of skin in front of the external opening of the ear (Fig. 2).Tragus and antitragus vary in shapes and sizes, depending on the species.

Uropatagium: a membrane that lays between the legs; in some species it contains

the tail. Its rear edge is bordered in part by the calcar, a cartilage that extendsfrom the tarsus and has different levels of development in each species. Insome species there is a fringe of hairs along the outer margin of theuropatagium (Fig. 1, 59).

Warts or papillae: a variable number of growths of skin on the chin with differentdispositions and shape (Fig. 27, 28c,d). These names are also applied toindicate the papillae of the tongue of certain species.

Wings: the forelimbs are modified in wings, and covered by a thin membrane

of skin called a patagium

.



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Cranial Morphology (Fig. 3)

Basisphenoid pits: concavities or anatomical depressions placed in the

basisphenoid, a single ventral skull bone located immediately anterior to thebasioccipital.

Cuspulid : occlusal lobular knobs present on the lower teeth.

Dentition: bats have deciduous or milk teeth at birth. They are tiny, sharp-pointed, and curved, and used by the offspring to cling more effectively tothe teat of its mother while she is carrying her offspring in flight. Thisdentition is replaced by the permanent dentition. The number of teeth variesin different taxa, and is usually expressed as an abbreviated notation called

the dental formula. Dental formula: In the present key, when a certain type of tooth is indicated as

a fraction, the numerator indicates the number of teeth in the hemimaxillaand the denominator indicates the number of teeth in the hemimandible. Forexample: Incisors 1/2 means one incisor in the hemimaxilla and two in thehemimandible. To indicate the type of teeth we use uppercase for the upperteeth, and lowercase for the lower teeth: incisors (I, i), canines (C, c),premolars (P, p), molars (M, m).

Exoccipital bone: One of a pair of bones on the sides of the foramen magnumbearing occipital condyles.

Mesopterygoid fossa: cavity or depresion bounded by the pterygoid plates behindthe palate continuous eith the nares anteriorly.

Palate: The bony roof of the mouth including the premaxillary, maxillary andpalatine bones.

Palatal emargination: anterior notch of the palate.

Paraoccipital processes: lateroposterior portion of the exoccipital bone.

Sagittal crest : longitudinal ridge of bone, variable in elevation, along top of skull, including parietal and frontal bones.

Tympanic bullae: bony capsule enclosing the middle and inner ear.

Zygomatic arch: thin bars of bone that form an arc structure located on each



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side of the skull, and formed by the maxillae, squamosal, and jugal bones.

External measurements (Figs. 1, 2)

Total length (LT): distance from the tip of the snout to the tip of the tail.

Head and body length (LCC): distance from tip of the snout to the point of insertion of the tail into the body.

Tail length (LC): distance between the point of insertion of the tail into the bodyand the last caudal vertebra.

Hind foot length (LP): distance from the heel to the tip of the longest digitincluding the claw.

Ear length (LO): distance between the notch and the tip of the pinna.

Forearm (AB): distance between the elbow and the wrist when the wing isfolded.

Wing span (EA): distance from the left wingtip to the right wingtip when fullyextended.

Cranial measurements (Fig. 3)

Total length of skull (LTC): distance from the anterior most point of the rostrum

to the posterior most point of the cranium.Condylobasal Length (LCB): distance from the anteriormostedge of the premaxilla

to the posteriormost projection of the occipital condyles.

Breadth of braincase (ACC): width of the cranium measured just posterior of the zygomatic arches.

Postorbital constriction (CP): least distance across the cranium measuredposterior to the postorbital process.

Zygomatic breadth (AC): greatest distance across the outer margins of thezygomatic arches.

Mastoidal breadth (AM): width of cranium including the mastoid processes.

Length of maxillary toothrow (HSD): distance from the anterior margin of thealveolus of the canine to the posterior margin of the alveolus of the lastmolar.

Palatal length (LP): distance from the posterior margin of the alveolus of the



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incisors to the caudal spine or median posterior border of the palate.

Tympanic bullae length (LB): greatest length of the bullae.

Width across canine (C-C): distance between the outer margins of the upper

canines.Width across molar (M-M): distance between the outer margins of the last upper

molars.

Length of mandible (LM): distance from the anteriormost point to the posteriomostpoint of the mandible.

Length of the mandibular toothrow (HID): distance from the anterior marginof the alveolus of the canine to the posterior margin of the alveolus of thelast molar.



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LISTA DE ESPECIES / LIST OF SPECIES

Orden / Order ChiropteraFamilia / Family Emballonuridae

Subfamilia / Subfamily DiclidurinaeCyttarops alecto (Bo) Dicludurus albus (Bo) Diclidurus ingens (Bo*)

Subfamilia / Subfamily EmballonurinaeCormura brevirostris (Bo)Peropteryx kappleri (Bo)Peropteryx macrotis (Bo, Pa) Rhynchonycteris naso (Bo)

Saccopteryx bilineata (Bo)Saccopteryx canescens (Bo)Saccopteryx leptura (Bo)

Familia / Family PhyllostomidaeSubfamilia / Subfamily Carolliinae

Carollia benkeithi (Bo)Carollia brevicauda (Bo)Carollia manu (Bo)Carollia perspicillata (Ar, Bo, Pa) Rhinophylla fisherae (Bo*) Rhinophylla pumilio (Bo)

Subfamilia / Subfamily Desmodontinae Desmodus rotundus (Ar, Bo, Ch, Pa, Ur) Diaemus youngi (Ar, Bo, Pa) Diphylla ecaudata (Bo)

Subfamilia / Subfamily Glossophaginae Anoura aequatoris (Bo) Anoura caudifer (Ar, Bo, Pa) Anoura cultrata (Bo)

Anoura fistulata (Bo) Anoura geoffroyi (Bo) Anoura peruana (Bo)Choeroniscus minor (Bo)Glossophaga soricina (Ar, Bo, Pa) Lichonycteris degener (Bo)

Subfamilia / Subfamily Lonchophyllinae Lionycteris spurrelli (Bo) Lonchophylla dekeyseri (Bo)



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Lonchophylla thomasi (Bo)Platalina genovensium (Ch)

Subfamilia / Subfamily PhyllostominaeChrotopterus auritus (Ar, Bo, Pa)Glyphonycteris behnii (Bo)Glyphonycteris daviesi (Bo) Lampronycteris brachyotis (Bo) Lonchorhina aurita (Bo) Lophostoma brasiliense (Bo, Pa) Lophostoma carrikeri (Bo) Lophostoma silvicolum (Bo, Pa) Macrophyllum macrophyllum (Ar, Bo, Pa) Micronycteris hirsuta (Bo) Micronycteris megalotis (Bo) Micronycteris microtis (Ar, Bo) Micronycteris minuta (Bo) Micronycteris sanborni (Bo) Micronycteris schmidtorum (Bo) Mimon crenulatum (Bo)Phylloderma stenops (Bo)Phyllostomus discolor (Bo, Pa)Phyllostomus elongatus (Bo)Phyllostomus hastatus (Bo, Pa)

Tonatia bidens (Ar, Pa)Tonatia saurophila (Bo)Trachops cirrhosus (Bo)Trinycteris nicefori (Bo)Vampyrum spectrum (Bo)

Subfamilia/ Subfamily Stenodermatinae Artibeus (Koopmania) concolor (Bo) Artibeus fimbriatus (Ar, Pa) Artibeus lituratus (Ar, Bo, Pa) Artibeus obscurus (Bo) Artibeus planirostris (Ar, Bo, Pa)Chiroderma doriae (Pa)Chiroderma salvini (Bo)Chiroderma trinitatum (Bo)Chiroderma villosum (Bo) Dermanura anderseni (Bo) Dermanura glaucus (Bo) Dermanura gnomus (Bo) Enchisthenes hartii (Bo)



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Mesophylla macconnelli (Bo)Platyrrhinus albericoi (Bo)Platyrrhinus brachycephalus (Bo)Platyrrhinus incarum (Bo)Platyrrhinus infuscus (Bo)Platyrrhinus lineatus (Ar, Bo, Pa, Ur)Platyrrhinus masu (Bo)Platyrrhinus nigellus (Bo)Pygoderma bilabiatum (Ar, Bo, Pa)Sphaeronycteris toxophyllum (Bo)Sturnira erythromos (Ar, Bo)Sturnira lilium (Ar, Bo, Pa, Ur)Sturnira magna (Bo)Sturnira oporaphilum (Ar, Bo)Sturnira sorianoi (Bo)Sturnira tildae (Bo)Uroderma bilobatum (Bo)Uroderma magnirostrum (Bo)Vampyressa pusilla (Ar, Pa)Vampyressa thyone (Bo)Vampyriscus bidens (Ar*, Bo)Vampyrodes caraccioli (Bo)

Familia / Family Mormoopidae

Mormoops megalophylla (Bo*)Pteronotus davyi (Bo*)Pteronotus gymnotus (Bo)Pteronotus personatus (Bo)Pteronotus rubiginosus (Bo)

Familia / Family Noctilionidae Noctilio albiventris (Ar, Bo, Pa) Noctilio leporinus (Ar, Bo, Pa)

Familia / Family Furipteridae Amorphochilus schnablii (Ch)Furipterus horrens (Bo)

Familia / Family ThyropteridaeThyroptera discifera (Bo)Thyroptera tricolor (Bo)

Familia / Family Natalidae Natalus espiritosantesis (Bo, Pa)

Familia / Family MolossidaeCynomops abrasus (Ar, Bo, Pa)Cynomops paranus (Ar, Bo*)



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Cynomops planirostris (Ar, Bo, Pa) Eumops auripendulus (Ar, Bo, Pa) Eumops bonariensis (Ar, Pa, Ur) Eumops dabbenei (Ar, Pa) Eumops glaucinus (Ar, Bo, Pa) Eumops hansae (Bo) Eumops patagonicus (Ar, Bo, Pa, Ur) Eumops perotis (Ar, Bo, Pa) Eumops trumbulli (Bo) Molossops neglectus (Ar, Bo*, Pa*) Molossops temminckii (Ar, Bo, Pa, Ur) Molossus currentium (Ar, Bo, Pa, Ur)** Molossus molossus (Ar, Bo, Pa, Ur) Molossus pretiosus (Bo) Molossus rufus (Ar, Bo, Pa) Mormopterus kalinowskii (Ch) Neoplatymops mattogrossensis (Bo) Nyctinomops aurispinosus (Bo) Nyctinomops laticaudatus (Ar, Bo, Pa, Ur) Nyctinomops macrotis (Ar, Bo, Pa*, Ur)Promops centralis (Ar, Bo, Pa, Ur)Promops nasutus (Ar, Bo, Pa)Tadarida brasiliensis (Ar, Bo, Ch, Pa, Ur)

Familia / Family Vespertilionidae Dasypterus ega (Ar, Bo, Pa, Ur) Eptesicus andinus (Bo) Eptesicus brasiliensis (Ar, Pa, Ur) Eptesicus chiriquinus (Ar, Bo) Eptesicus diminutus (Ar, Bo*, Pa, Ur) Eptesicus furinalis (Ar, Bo, Pa, Ur) Histiotus laephotis (Ar, Bo) Histiotus macrotus (Ar, Ch, Pa) Histiotus magellanicus (Ar, Ch) Histiotus montanus (Ar, Bo, Ch, Ur) Histiotus velatus (Ar, Bo, Pa, Ur) Lasiurus blossevillii (Ar, Bo, Pa, Ur) Lasiurus cinereus (Ar, Bo, Ch, Pa, Ur) Lasiurus varius (Ar, Ch) Myotis aelleni (Ar) Myotis albescens (Ar, Bo, Pa, Ur) Myotis atacamensis (Ch) Myotis chiloensis (Ar, Ch)



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Myotis dinellii (Ar, Bo) Myotis keaysi (Ar, Bo) Myotis levis (Ar, Pa, Ur) Myotis nigricans (Ar, Bo, Pa, Ur)

Myotis oxyotus (Bo) Myotis riparius (Ar, Bo, Pa, Ur) Myotis ruber (Ar, Pa, Ur) Myotis simus (Ar, Bo, Pa) Rhogeessa io (Bo)

Arg: Argentina, Bo: Bolivia, Ch: Chile, Pa: Paraguay, Ur: Uruguay.* Especies probables / Probable species**Barquez y Díaz consideran a M. molossus y M. currentium como sinónimos/

Barquez and Díaz consider that M. molossus and M. currentium are

synonyms



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Fig. 1. Morfología y morfometría externa (ver descripciones en el texto) / External morphology and morphometry (see descriptions in text ).

Fig. 2. Medidas y caracteres del rostro y orejas (ver descripciones en el texto) / Measurements and characters of the ears and rostrum (see descriptionsin text ).



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Fig. 3. Morfología y Morfometría Craneal (ver explicación de los acrónimosen el texto) / Cranial morphology and morphometry (see explanation of acronyms in text ).



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3. Discos de succión en la base de los pulgares y en las patas (Fig. 10) / Suction disks on thumbs and hind foot (Fig. 10)....................................... ........

Thyropteridae…Pag. 693’. Discos de succión ausentes / No suction disks on thumbs and hind foot ......4

CLAVE DE FAMILIAS / KEY TO THE FAMILIES

1. Con hoja nasal, bien desarrollada y triangular (Fig. 4), o rudimentaria yredondeada (Fig. 5) / Nose leaf present, well developed and triangular (Fig. 4), or rudimentary and rounded (Fig. 5) .......................................... .........

Phyllostomidae…Pag. 391’. Sin hoja nasal / Nose leaf absent ............................................................2

Fig. 4 Fig. 5 Fig. 6

2. Cola sobrepasa el borde del uropatagio con una porción libre (Fig. 6) / Tail extended beyond the edge of the uropatagium (Fig. 6)...............................

Molossidae…Pag. 702’. Cola total o casi totalmente incluida en el uropatagio / Tail entirely or

almost entirely included within the uropatagium....................................3

Fig. 7 Fig. 8 Fig. 9



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Fig. 10

4. Cola corta, perfora el uropatagio y la punta aparece dorsalmente (Fig. 7)/ Tail short, included in the uropatagium, with tip appearing on the dorsalsurface (Fig. 7)........................................................................................5

4’. Cola completamente o casi completamente incluida en el uropatagio (Fig.

9)/ Tail entirely or almost entirely enclosed within the uropatagium (Fig.9).............................................................................................................6

5. Labio inferior sin pliegues; rostro sin verrugas o hendiduras; alas seinsertan lateralmente al costado del cuerpo, no dando la apariencia dezonas desnudas; muchas especies con sacos en el propatagio o en eluropatagio (Fig. 11, 17 a,b,c); falanges del tercer dedo curvadas primerohacia afuera, y luego hacia adentro / Lower lip without folds; face without warts or slits; wings attached laterally to the side of the body, not givingthe appearance of naked areas; several species with sacs on propatagium

or uropatagium (Fig. 11, 17 a,b,c); phalanges of the third finger bended outward and then inward ..............................Emballonuridae…Pag. 355’. Labio inferior con pliegues o verrugas y labio superior con una hendidura;

alas insertas latero-dorsalmente, dando la apariencia de zonas desnudas;sin sacos; falanges del tercer dedo curvadas hacia adentro / Lower lipwith folds or warts, upper lip with a pronounced vertical groove or fold;wings attached latero-dorsally to the sides of the body giving the appearanceof naked areas; sacs absent; phalanges of third finger bended inward .......................

8



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Fig. 11

6. Pulgar corto y cubierto por el propatagio a excepción de la diminuta uña(Fig. 12) / Thumb short and enclosed in the propatagium except for thetiny claw (Fig. 12)..................................................Furipteridae …Pag. 69

6’. Pulgar desarrollado y libre del propatagio / Thumb developed and free from propatagium ..............................................................................................7

7. Orejas en forma de embudo; ojos muy pequeños; órgano natálido en losmachos a manera de masa glandular sobre el hocico, dando una aparienciainflada (Fig. 13); patas largas; largo de la tibia mayor a la mitad del largodel antebrazo; cola se extiende hasta el borde del ancho uropatagio / Ears funnel-shaped; eyes very small; glandular structure in males, or natalid organ, gives and inflated appearance (Fig. 13); legs long, the length of thetibia more than half the length of the forearm; tail reaches the margin of a wide uropatagium........................Natalidae ( Natalus espiritosantensis)

7’. Orejas de formas variadas, pero no como embudo; ojos variables, pequeñoso grandes; sin órgano natálido; largo de la tibia menos de la mitad delantebrazo, pero si es más entonces antebrazo es mayor de 40 mm; la colase extiende hasta el borde, o pasa levemente, del uropatagio en forma deV / Ears variable in shape, never funnel-shaped; eyes small to large; natalid organ absent; length of tibia less than half of forearm lenght; if larger, the forearm should be more than 40 mm; tail reaches or slightly surpass themargin of the V-shaped uropatagium ..............Vespertilionidae…Pag. 77



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8. Labio superior hendido, con aspecto de labio leporino (Fig. 8); labio inferiornormal; uñas de las patas alargadas / Upper lip with a pronounced verticalgroove or fold (Fig. 8); lower lip of normal appearance; claws of hind foot long ....................................................................... Noctilionidae…Pag. 69

8’. Labio superior entero, de apariencia normal; labio inferior con plieguesirregulares o verrugas (Fig. 14); patas con uñas normales / Upper lip without groove or fold; lower lip with irregular folds o warts (Fig. 14); claws of

hind foot not elongated ........................................ Mormoopidae…Pag. 67

Fig. 12 Fig. 13

Fig. 14



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FAMILIA EMBALLONURIDAE / FAMILY EMBALLONURIDAE

1. Pulgar cubierto por el propatagio (Fig. 15); orejas cortas y redondeadas;porción distal de la cola apenas sobresale del uropatagio; rostro con unadepresión en forma de copa / Thumb enclosed in the propatagium (Fig. 15);ears short and rounded; distal portion of the tail barely protrudes from themiddle of uropatagium; rimmed depression on the rostrum......................... .........

Diclidurinae …21’. Pulgar libre del propatagio; orejas puntiagudas y alargadas; porción distal

de la cola proyectándose claramente en la mitad del uropatagio; depresióna manera de copa en el rostro ausente / Thumb free from propatagium; ear larger and pointed; distal portion of tail clearly projecting on surface of

middle of uropatagium; no rimmed depression on the rostrum ..............................Emballonurinae…4

2. Uropatagio con sacos glandulares (Fig. 11); color blanquecino o grisáceoclaro; procesos postorbitales anchos fusionados a las crestas supraorbitales / Uropatagium with glandular sac (Fig. 11); color pattern whitish or palegray; postorbital processes broad and fused to supraorbital ridges ..........3

2’ Uropatagio sin sacos glandulares; color gris a negruzco; procesos postorbitalesangostos, no fusionados a las crestas supraorbitales / Uropatagium without

glandular sac; color pattern smoky gray to black; postorbital processesnarrow, not fused to supraorbital ridges ...................................................... .........Cyttarops alecto

3. Antebrazo entre 60-69 mm; incisivos superiores sencillos; color del pelajeblanco / Forearm between 60-69 mm; upper incisors simple; pelage color white ..................................................................................Diclidurus albus

3’. Antebrazo entre 70-73 mm; incisivos superiores bífidos; color del pelajegris pálido / Forearm between 70-73 mm; upper incisors biphid; pelagecolor dull gray .................................................................Diclidurus ingens

4. Propatagio sin saco alar glandular; penachos de pelos blanquecinos en elantebrazo (Fig. 16) / Propatagium without glandular wing sac; forearm withtufts of whitish hairs (Fig. 16) ..................................Rhynchonycteris naso

4’. Propatagio con saco alar glandular (Fig. 17); sin penachos de pelos blancosen el antebrazo / Glandular wing sac present on the propatagium (Fig. 17); forearm without white tufts of hairs ............................................................5



36


Fig. 15 Fig. 16

5. Saco alar largo y estrecho, ubicado en la parte media del propatagio (Fig.17a); alas unidas a la base de los metatarsos (Fig. 18a); dorso pardo rojizo;

P1 pequeño pero con cúspides anterior y posterior evidentes / Wing sac longand narrow located at the middle of the propatagium (Fig. 17a); wingsattached to metatarsals near the base of the toes (Fig. 18a); dorsum reddishdrab; P1 small but with disctinct anterior and posterior cusps .......................................

Cormura brevirostris5’. Saco alar de diferente forma y ubicación; alas unidas al cuerpo a la altura

de los tobillos (Fig. 18b); dorso color negruzco o pardusco; P1 diminuto,y espiculado / Wing sacs different in shape and location; wings attached tothe tibia near the ankle (Fig. 18b); dorsal color blackish or drabbish;

spicule-like anterior upper premolar ..........................................................6

6. Saco alar pequeño, ubicado cerca del borde anterior del propatagio (Fig.17b); orejas anchas y redondeadas; trago simple y redondeado; sin líneasdorsales; fosetas basiesfenoides unidas / Wing sac small, located near theanterior border of propatagium (Fig. 17b); ears broad and rounded; tragussimple and rounded; dorsal lines absent; basisphenoid pits not divided by

a median septum .......................................Género / Genus Peropteryx...7

Fig. 17



37


6’. Saco alar de tamaño variable ubicado próximo al antebrazo, cerca del codo(Fig. 17c); orejas separadas, angostas y alargadas; trago complejo y truncado;generalmente con líneas dorsales evidentes; fosetas basiesfenoides separadaspor un septo / Wing sac variable in size, located close to the forearm near the elbow (Fig. 17c); ears separated, narrow and tall; tragus complex and

truncated; with two dorsal lines; basisphenoid pits divided by a septum .... .........Género / Genus Saccopteryx…8

Fig. 18

7. Tamaño grande; antebrazo mayor de 47 mm en las hembras y mayor de 45mm en los machos; color dorsal pardo chocolate; orejas negras / Body sizelarge; forearm in females greater than 47 mm and in males more than 45mm; dorsal coloration chocolate brown; ears black ..... Peropteyx kappleri

7’. Tamaño mediano, antebrazo menor de 47 mm en las hembras y menor de45 mm en los machos; color dorsal pardo leonado, orejas oscuras pero nonegras / Medium size; forearm in females less than 47 mm and in malesunder 45 mm; dorsal coloration tawny brown; ears dark but no black ....... .........

Peropteryx macrotis

8. Líneas dorsales blancas bien definidas; dorso negruzco; membranas alaresnegruzcas; tamaño corporal grande, antebrazo 43-52 mm / Dorsum blackish,two well-defined dorsal white lines; wings dark brown; body size large, forearm 43-52 mm .....................................................Saccopteryx bilineata

8’. Líneas dorsales presentes pero poco definidas; dorso de colores pardos;membranas alares pardo oscuras; tamaño corporal mediano, antebrazo menorde 43 mm / Dorsum brownish, with two poorly defined lines; wings dark

brown; medium size, forearm less than 43 mm...........................................9



38


9. Dorso pardo oscuro con matices castaños; líneas dorsales visibles; antebrazo36-43 mm; hilera superior de dientes mayor de 5 mm / Dorsal colorationdark brown with chestnut hues; dorsal lines visible; forearm 36-43 mm;maxillary toothrow longer than 5 mm ..........................Saccopteryx leptura

9’. Dorso pardo con tintes grisáceos; líneas apenas visibles; antebrazo 35-41mm; hilera superior de dientes 5 mm o menos / Pelage gray or brown, lightly frosted with gray; indistinct whitish lines; forearm 35-41 mm; maxillarytoothrow 5 mm or less .............................................Saccopteryx canescens



39


FAMILIA PHYLLOSTOMIDAE: CLAVE DE SUBFAMILIAS / FAMILY PHYLLOSTOMIDAE: KEY TO THE SUBFAMILIES

1. Hoja nasal prominente (Fig. 4); incisivos superiores menores que los caninos;

pulgar normal (Fig. 19) / Nose leaf prominent (Fig. 4); upper incisors smaller than canines; thumb normal (Fig. 19) ........................................................2

1’. Hoja nasal rudimentaria (Fig. 5); incisivos superiores más anchos que loscaninos; pulgar bien desarrollado (Fig. 20) / Nose leaf rudimentary (Fig. 5);upper incisors broader than canines; thumb well developed and long (Fig.20)........................................................................ Desmodontinae...Pag. 45

Fig. 19 Fig. 20

2. Hocico alargado y delgado; labio inferior profundamente surcado (Fig. 21);lengua muy larga con papilas filiformes anterodorsalmente; premolares ymolares reducidos (Fig. 22) / Muzzle long and slender; lower lip with a deep

medial groove (Fig. 21); tongue long, with filiform papillae on the anterodorsalsurface; premolars and molar reduced ....................................................... 3

2’. Hocico corto y ancho; labio inferior sin surco marcado, lengua normal, noalargada; premolares y molares grandes y coronas bien desarrolladas (Fig.25) / Muzzle short and broad; lower lip without groove; tongue normal; premolars and molars large with well developed crowns (Fig. 25) ............4

Fig. 21 Fig. 22

3. Incisivos superiores internos y externos de tamaño similar (Fig. 23a, b);lengua con un penacho de largas papillas filiformes de extremos filamentosos,

y sin surco lateral / Inner and outer upper incisors similar in size

(Fig. 23a,



40


b); tongue with a “paintbrush” tip of long papillae with filamentous tips,and without lateral groove................................Glossophaginae…Pag. 46

3’. Incisivos superiores internos grandes, con puntas anchas, y notablementemayores que los externos (Fig. 24); lengua sin penacho de papilas; surcolateral profundo en cada lado de la lengua / Inner upper incisors large withbroad tips, clearly larger than the outer incisors (Fig. 24); tongue without “paintbrush” tip; a deep lateral groove is present along each side of thetongue ............................................................. Lonchophyllinae…Pag. 49

Fig. 24

Fig. 23

4. Uropatagio bien desarrollado / Uropatagium well developed ...................5

4’. Uropatagio muy reducido o ausente (Fig. 26) / Uropatagium reduced or

absent (Fig. 26) .............................Stenodermatinae/Sturnirini...Pag. 57

Fig. 25 Fig. 26



41


5. Cola ausente; muchas especies con líneas faciales claras; molares sin formade “W” / Tail absent; most species with pale facial stripes; molars not W-shaped ...................................Stenodermatinae/Stenodermatini...Pag. 59

5’. Cola visible (excepto en Vampyrum y Rhinophylla); sin líneas faciales;molares con forma de “W” / Tail visible (except in Vampyrum and

Rhynophylla); facial stripes absent; molars W-shaped ..............................6

6. Mentón con una verruga central grande redondeada, y rodeada por pequeñaspapilas (Fig. 27a) o por una papila ancha y plana a cada lado; arcos cigomáticosincompletos / Chin with a large central papilla surrounded by severalsmaller papillae (Fig. 27a), or by a long plane papillae to each side; zigomaticarches incomplete ...................................................... Carolliinae…Pag. 42

6’. Mentón sin verruga central, con verrugas pequeñas (Fig. 27b) o verrugasdispuestas en forma de V o Y (Fig. 27c); arcos cigomáticos completos / Chin with small papillae (Fig. 27b), or with a pair of dermal pads arranged in a V or Y (Fig. 27c), but without large central papilla; zygomatic archescomplete............................................................... Phyllostominae...Pag. 50

Fig. 27



42


SUBFAMILIA CAROLLIINAE / SUBFAMILY CAROLLIINAE

1. Tamaño pequeño, antebrazo 30-36 mm; membrana alar unida al metatarso

(Fig. 28a); cola ausente; mentón con una verruga central bordeada por unaverruga grande y alargada a cada lado (Fig. 28c) / Body size small, forearm30-36 mm; wings attached to metatarsals (Fig. 28a); tail absent; centralwart on the chin flanked by a single elongated wart on each side (Fig. 28c)Género / Genus................................................................... Rhinophylla…2

1’. Tamaño generalmente mayor, antebrazo más de 33 mm; membrana alarunida al tarso (Fig. 28b); cola pequeña; mentón con una protuberancia centralrodeada de varias verrugas pequeñas y redondeadas (Fig. 28d) / Body sizelarger; forearm more than 33 mm; wings attached to the tarsus (Fig. 28b);tail small; central wart on the chin sorrounded by one or two rows of smaller warts (Fig. 28d) ............................................... Género / Genus Carollia…3

Fig. 28



43


2. Antebrazo mayor de 33 mm; margen del uropatagio desnudo; incisivossuperiores centrales con un cíngulo lateral estilar (Fig 29) / Forearm morethan 33 mm; margin of uropatagium naked; first upper incisors with lateralcingular style (Fig 29)................................................. Rhinophylla pumilio

2’. Antebrazo menor de 33 mm; margen del uropatagio con fleco de pelos;incisivos superiores centrales sin un cíngulo lateral estilar (Fig 30) / Forearmless than 33 mm; margin of uropatagium with a fringe of hairs; first upper incisors without lateral cingular style (Fig 30) ........Rhinophylla fischerae

3. Antebrazo mayor de 40 mm / Forearm more than 40 mm ........................43’. Antebrazo menor de 40 mm / Forearm less than 40 mm ..........................5

4. Pelaje largo; tibia, fémur y dedos muy peludos; uropatagio corto con unamuesca profunda; primer premolar superior en ancho contacto con el canino(Fig. 31); primer premolar inferior más alto que el segundo / Pelage long;tibia, femur and toes hairy; uropatagium short and with a deep notch; first upper premolar widely in contact with the canine (Fig. 31); first lower premolar higher than the second .........................................Carollia manu

4’. Pelaje corto; tibia, fémur y dedos con escasos pelos o desnudos; uropatagiomás largo con muesca menos marcada; primer premolar superior apenasen contacto con el canino (Fig. 32); primer y segundo premolares subigualesen altura / Pelage short; tibia, femur and toes sparsely haired; uropatagiumlong with a shallow notch; first upper premolar with reduced contact withthe canine (Fig. 32); first and second lower premolars are subequal ......... .........

Carollia perspicillata

Fig. 29 Fig. 30



44


Fig 31 Fig. 32

5. Antebrazo sin pelos; longitud 34 a 38 mm; coloración dorsal pardo castañopálida, con pelos con bandas poco marcadas, muy tenues; primer molarinferior con cúspide principal baja (Fig. 33a, flecha); segundo premolarinferior más alto que el primero (Fig. 33a) / Forearm naked, 34 to 38 mm;dorsum pale chestnut brown; hairs not clearly banded; first lower molar with main cusp low (Fig. 33a, see arrow); second lower premolar higher than the first one (Fig. 33a).............................................Carollia benkeithi

5’. Antebrazo con pelos; longitud 35 a 40 mm; coloración dorsal pardo oscura,con pelos con bandas bien marcadas; primer molar inferior con cúspideprincipal alta; premolares inferiores casi iguales en altura (Fig. 33b) / Forearmhairy, 35 to 40 mm; dorsum dark brown; hairs clearly banded; first lower molar with main cusp high; first and second lower premolars subequal (Fig.33b) ..............................................................................Carollia brevicauda

Fig. 33



45


SUBFAMILIA DESMODONTINAE / SUBFAMILY DESMODONTINAE

1. Pulgar corto, sin almohadilla basal; uropatagio peludo pero angosto; patas

muy peludas; orejas cortas y redondeadas; incisivos inferiores multilobuladosy formando una hilera cortante continua / Thumb short without a basal pad;uropatagium narrow but hairy; legs thickly haired; ears short and rounded;lower incisors multilobulated and forming a continuous cutting edge ..................

Diphylla ecaudata1’. Pulgar largo, con una o dos almohadillas basales; uropatagio moderadamente

desarrollado y con pocos pelos; patas y orejas no muy peludas; orejaspuntiagudas; incisivos inferiores con dos o tres lóbulos, y no forman unahilera continua / Thumb long with one or two basal pads; uropatagiummoderately developed, sparsely haired; legs and ears not densely haired;

ears pointed; lower incisors bilobed or trilobed not forming a continuousrow...............................................................................................................2

2. Alas con puntas blancas; pulgar con dos almohadillas (Fig. 34); incisivosinferiores con lóbulos apenas evidentes, los externos bilobados, y los internostrilobados; antebrazo 49-54 mm / Wings with white tips; thumb short, withtwo distinct pads (Fig. 34); lower incisors slightly lobed, the outer bilobed and the inner trilobed; forearm 49-54 mm ........................ Diaemus youngi

2’. Alas sin puntas blancas; pulgar con tres almohadillas (Fig. 35); todos losincisivos inferiores bilobados; antebrazo 60-67 mm / Wings without whitetips; thumb larger, with three large pads (Fig. 35); all lower incisors deeplybilobed; forearm 60-67 mm ..........................................Desmodus rotundus

Fig. 34 Fig. 35



46


SUBFAMILIA GLOSSOPHAGINAE / SUBFAMILY GLOSSOPHAGINAE

1. Incisivos inferiores presentes (Fig. 36a) / Lower incisors present (Fig. 36a).................................................................................Glossophaga soricina

1’. Incisivos inferiores ausentes (Fig. 36b) / Lower incisors absent (Fig. 36b) .....2

Fig. 36

2. Uropatagio bien desarrollado (Fig. 37a); dos premolares superiores / Uropatagium well developed (Fig. 37a); two upper premolars ..................3

2’. Uropatagio muy corto, semicircular (Fig. 37b); tres premolares superiores / Uropatagium short, semicircular (Fig. 37b); three upper premolars .........

Género / Genus .......................................................................... Anoura…4

3. Pelaje dorsal tricolor, membrana alar unida al pie más o menos a la mitadde la longitud del metatarsal (Fig. 38a); molares 2/2 / Tricolored dorsal pelage; wing membrane attached to the foot at about mid-length of themetatarsal (Fig. 38a); molars 2/2 ........................... Lichonycteris degener

Fig. 37



47


4. Cola vestigial, poco visible; p1 más grande que los otros premolares y enforma de hoja; caninos superiores muy alargados y con un profundo surcomedial anterior / Tail vestigial, hardly visible; p1 much larger than theother premolars and blade-like; upper canines very large and with a deep

longitudinal sulcus on its anterior face............................. Anoura cultrata4’. Cola pequeña o ausente; p1 similar en tamaño y forma similar a los otros

premolares; caninos superiores no alargados y sin surco medial anterior,o con un surco poco marcado / Tail small or absent; p1 similar to the other premolars in size and shape; upper canine not enlarged and its anterior face flat, or with a shallow sulcus .............................................................5

5. Cola pequeña; uropatagio angosto y bien visible, semicircular y con flecode pelos en el margen; calcar reducido; antebrazo menor de 40 mm; último

premolar superior sin cúspide media interna / Tail smal; uropatagiumnarrow, semicircular and with a fringe of hairs; calcar reduced; forearmless than 40 mm; upper last premolar without medial internal cusp ........6

5’. Cola ausente; uropatagio muy reducido y apenas visible, con muchos pelosbordeando internamente las patas y la rabadilla; calcar ausente; antebrazomayor a 40 mm; último premolar superior con cúspide media interna / Tailabsent; uropatagium barely visible, internal legs and rump with abundant hairs; calcar absent; forearm more than 40 mm; upper last premolar withmedial internal cusp ..................................................................................8

3’. Pelaje bicolor, membrana alar unida al dedo externo (Fig. 38b); molares 3/3 / Bicolored dorsal pelage; wing membrane attached to the base of outer toe(Fig. 38b); molars 3/3 .................................................. Choeroniscus minor

Fig. 38



48


6. Lengua extensible inusualmente larga para el género; labio inferior protruye3 mm, o más, respecto al labio superior / Extensible tongue unusually long for the genus; lower lip protrudes 3 mm, or more, beyond upper lip ........... ...................

Anoura fistulata6’. Lengua extensible pero normal para el género; labio inferior protruye menos

de 3 mm con respecto al labio superior / Extensible tongue long but normal for the genus; lower lip protrudes less than 3 mm beyond upper lip..........7

7. Borde medio ventral del uropatagio con pocos pelos cortos / Hairs on theedge of the uropatagium variable, but mostly short and not dense mid ventrally .............................................................................Anoura caudifer

7’. Borde medio ventral del uropatagio cubierto densamente de pelos largos / Hairs on the edge of the uropatagium longer and denser mid ventrally ...... ...................

Anoura aequatoris

8. Arcos cigomáticos presentes; rostro robusto; coloración marrón canela / Zygomatic arches present; strong rostrum; coloration cinnamon brown ..... ....................

Anoura geoffroyi8’. Arcos cigomáticos ausentes; rostro más delicado; coloración marrón oscuro

a negra / Zygomatic arches absent; delicate rostrum; darker coloration,mummy brown to black ......................................................Anoura peruana



49


3. Tamaño pequeño, antebrazo menor de 34 mm; principalmente de zonas debosque húmedo y piedemonte andino / Small; forearm less than 34 mm;mainly found in rainforests and Andean foothills ....................................... .........

Lonchophylla thomasi3’. Mayor tamaño, antebrazo mayor de 34 mm; se encuentra principalmente

en zonas del Cerrado / Larger ; forearm greater than 34 mm; mainly found in the Cerrado area ..............................................Lonchophylla dekeyseri

SUBFAMILIA LONCHOPHYLLINAE / SUBFAMILY LONCHOPHYLLINAE

1. Antebrazo mayor de 40 mm; molares superiores e inferiores muy reducidos(Fig. 39a,c); sólo presente en Chile / Forearm more than 40 mm; upper and lower molars greatly reduced (Fig. 39a,c); only known from Chile ..............

Platalina genovensium1’. Antebrazo menor de 40 mm; molares superiores e inferiores normales (Fig.

39b) / Forearm less than 40 mm; upper and lower molars not greatlyreduced (Fig. 39b) .....................................................................................2

2. Alas unidas a la base de los dedos (Fig. 40a); pelos dorsales con las basesmás oscuras que las puntas / Wing membrane attaches to the base of thetoes (Fig. 40a); dorsal hairs with bases darker than tips............................ ........

Lionycteris spurrelli2’. Alas unidas a la base de las patas (Fig. 40b); pelos dorsales con bases

pálidas y puntas oscuras / Wing membrane attaches to the base of the foot (Fig. 40b); dorsal hairs with bases paler than tips ..................................... .........

Género / Genus Lonchophylla…3

Fig. 40

Fig. 39



50


SUBFAMILIA PHYLLOSTOMINAE / SUBFAMILY PHYLLOSTOMINAE

1. Cola muy reducida, no visible o ausente; tamaño corporal muy grande,antebrazo mayor de 75 mm; hoja nasal y borde inferior de la “herradura”de la hoja nasal elevado, formando una profunda copa con un anillo

completo alrededor de las aberturas nasales (Fig. 27 c) / Tail reduced, not visible or absent; body size very large, forearm more than 75 mm; noseleaf and lower margin of the “horse shoe” elevated forming an upright cuparound the nostrils (Fig. 27c) ...................................................................2

1’. Cola siempre presente y bien visible; tamaño corporal más pequeño,antebrazo menor de 75 mm (excepto en Phyllostomus hastatus); hoja nasalno forma un anillo completo alrededor de las aberturas nasales / Tail always present and visible; body size small to large, forearm less than 75 mm(except in Phyllostomus hastatus); noseleaf not forming an upright rim

around nostrils ..........................................................................................32. Antebrazo 77-86 mm; pelaje largo y lanoso; dos incisivos inferiores; rostro

medianamente largo y peludo; cola rudimentaria / Forearm 77-86 mm; fur long and woolly; two lower incisors; rostrum relatively long and hairy;tail rudimentary ........................................................Chrotopterus auritus

2’. Antebrazo 100-118 mm; pelaje corto y denso; cuatro incisivos inferiores;rostro alargado y desnudo; cola ausente / Forearm 100-118 mm; fur short and dense; four lower incisors; rostrum long and naked; tail absent ........ ...................

Vampyrum spectrum

3. Cola incluida en el uropatagio casi hasta el borde / Tail included in theuropatagium extending almost to the edge ...............................................4

3’. Cola se extiende aproximadamente hasta la mitad del uropatagio / Tailextends to approximately half of the uropatagium ....................................5

Fig. 41



51


4. Hoja nasal muy estrecha y extremadamente larga (Fig. 41), tan larga comolas orejas (mayores de 15 mm); orejas puntiagudas; calcar más corto quela tibia; dedos cortos; uropatagio sin papilas particulares; antebrazo 43-55mm / Noseleaf very narrow and extremely long (Fig. 41) , as long as theears (greater than 15 mm); ears pointed; calcar shorter than tibia; short digits; uropatagium without peculiar dermal papillae; forearm 43-55 mm....................................................................................

Lonchorhina aurita4’. Hoja nasal ancha y puntiaguda, más corta que las orejas (menores de 15

mm); orejas redondeadas; calcar tan largo como la tibia; dedos muyalargados; área central interna del uropatagio con papilas dermalescaraterísticas dispuestas en series longitudinales (Fig. 42); antebrazo 34-39 mm / Noseleaf wide and pointed, shorter than the ears (less than 15mm); ears rounded; calcar as long as tibia; digits very long; central internalarea of uropatagium with longitudinal rows of peculiar dermal papillaes

(Fig. 42); forearm 34-39 mm ......................Macrophyllum macrophyllum

Fig. 42 Fig. 43

5. Dos incisivos inferiores / Two lower incisors ...........................................65’. Cuatro incisivos inferiores / Four lower incisors.....................................11

6. Orejas grandes y semipuntiagudas; hoja nasal muy larga, más larga queancha, y aserrada (Fig. 43); dorso con una línea clara; dos premolaresinferiores / Large and subacutely pointed ears, noseleaf very long, muchlonger than broad, and serrated (Fig. 43); dorsum with a pale midline; twolower premolars ...........................................................Mimon crenulatum

6’. Orejas muy grandes y redondeadas; hoja nasal corta y simple, no aserrada;dorso sin línea clara; tres premolares inferiores / Ears very large and rounded; noseleaf short and simple, not serrated; dorsum without palemidline; three lower premolars .................................................................7



52


7. Tamaño pequeño a mediano, antebrazo menor de 50 mm / Size small tomedium, forearm less than 50 mm............................................................. 8

7’. Tamaño grande, antebrazo mayor de 50 mm / Size larger, forearm greaterthan 50 mm................................................................................................9

8. Tamaño pequeño, antebrazo menor de 40 mm; orejas separadas, sin bandade unión (Fig. 44) / Size small, forearm less than 40 mm; ears not connected by a band and completely separated (Fig. 44) .....Lophostoma brasiliense

8’. Tamaño mediano, antebrazo mayor de 45 mm; orejas unidas por una bandade piel / Size medium, forearm more than 45 mm; ears connected by a band .................................................................................

Lophostoma carrikeri

9. Orejas grandes (33-40 mm), unidas por una banda baja con una muescaprofunda (Fig. 45); rostro, orejas, antebrazos, piernas y patas desnudas;

incisivos inferiores estrechos y alargados; constricción postorbital menorde 5 mm / Ears large (33-40 mm), connected by a low band, with a deepnotch (Fig. 45); rostrum, ears, forearms, legs, and feet naked; lower incisorsnarrow and elongated; postorbital constriction less than 5 mm ................. ...................

Lophostoma silvicolum9’. Orejas cortas y anchas (30-32 mm), separadas y sin banda de unión (Fig.

44); rostro, orejas, antebrazos, piernas y patas peludas; incisivos inferioresanchos y bajos; constricción postorbital mayor de 5 mm / Ears short and wide (30-32 mm), separated and without connecting band (Fig. 44); rostrum,

ears, forearms, legs, and feet hairy; lower incisors wide and low; postorbitalconstriction more than 5 mm ........................Género / Genus Tonatia…10

10. Bordes internos de los caninos inferiores muy cercanos entre sí, casi unidoso apenas separados; segundo premolar inferior muy reducido (ver Fig. 46a);constricción postorbital mayor de 5.5 mm; sin línea clara sobre la cabeza / Inner margins of the lower canines almost in touch or sligthly separated by a narrow gap; second lower premolar well reduced; postorbitalconstriction more than 5.5 mm; no pale stripes on the top of the head ...... ...................

Tonatia bidens

Fig. 44 Fig. 45



53


10’. Bordes internos de los caninos inferiores bien separados entre sí; segundopremolar inferior pequeño pero no muy reducido (see Fig. 46b); constricciónpostorbital menor a 5.5 mm; línea clara sobre la cabeza / Inner margins of the lower canines separated by a wide space; second lower premolar small,but not extremely reduced; postorbital constriction less than 5.5 mm; with pale stripes on top of the head ....................................Tonatia saurophila

Fig. 46

11. Dos premolares inferiores / Two lower premolars ................................................Género / Genus Phyllostomus...12

11’. Tres premolares inferiores / Three lower premolars ...............................14

12. Tamaño grande, antebrazo mayor de 78 mm / Size large, forearm morethan 78 mm .............................................................Phyllostomus hastatus

12’. Tamaño mediano, antebrazo menor de 70 mm / Size smaller, forearm lessthan 70 mm ..............................................................................................13

13. Región ventral blanquecina, contrastante con el color del dorso; calcar máscorto que la pata; orejas pequeñas (menos de 25 mm); cresta sagital ausenteo levemente desarrollada / Ventral side whitish, contrasting with the dorsum;calcar shorter than foot; ears small (less than 25 mm); sagittal crest absent

or weakly developed ................................................Phyllostomus discolor13’. Región ventral de coloración similar a la dorsal; calcar más largo que lapata, orejas grandes (más de 29 mm); cresta sagital bien desarrollada / Dorsal and ventral coloration similar, not contrasting; calcar longer than foot, ears large (more than 29 mm); sagittal crest well developed .....................

Phyllostomus elongatus

14. Premolares inferiores desiguales, p2 < p3; antebrazo mayor de 55 mm / Lower premolars unequal, p2 < p3; forearm more than 55 mm ............15



54


14’. Premolares inferiores de tamaño similar; antebrazo menor de 58 mm / Lower premolars subequal; forearm less than 58 mm ............................16

15. Labios cubiertos de granulaciones muy proyectadas (Fig. 47); hoja nasalcon bordes crenulados y herradura no fusionada al labio superior; p1 encontacto con p3, p2 desplazado hacia adentro / Papilla-like protuberanceson the chin and lips (Fig. 47); margins of the noseleaf finely serrated, and horseshoe not fused to the upper lip; p1 in contact with p3, p2 displaced inward ..........................................................................Trachops cirrhosus

15’. Labios sin granulaciones; hoja nasal con bordes lisos y herradura fusionadaal labio superior; p1 separado del p3, p2 no desplazado / Lips without warts,noseleaf with entire edges and horseshoe fused to the upper lip; p1 separated from p3, p2 not displaced ..........................................Phylloderma stenops

Fig. 47

16. Orejas muy anchas y redondeadas, conectadas en la frente por medio deuna banda (Fig. 48a)/ Ears large, wide and rounded, connected by a notched band across the forehead (Fig. 48a)............................................................ ...................

Género / Genus... Micronycteris...1716’. Orejas afinadas, bien separadas y no conectadas por una banda (Fig. 48b) /

Ears not rounded, widely separated (Fig. 48b) .......................................22

Fig. 48



55


17. Tamaño grande, antebrazo mayor de 41 mm; pelaje en los hombros muylargo (11-14 mm); incisivos inferiores largos y estrechos / Size large, forearm more than 41 mm; pelage on shoulders long (11-14 mm); lower incisors long and narrow ......................................... Micronycteris hirsuta

17’. Tamaño menor, antebrazo menor de 39 mm; pelaje en los hombros máscorto (menos de 11 mm); incisivos inferiores cortos y anchos / Size smaller, forearm less than 39 mm; pelage on shoulders shorter than 11 mm; lower incisors short and broad ..........................................................................18

18. Vientre oscuro, de color similar al dorso / Venter dark, similar to dorsum..........19

18’. Vientre más claro que el dorso; blanco, grisáceo, o anteado claro / Venter paler than dorsum; white, grayish, or pale buffy ....................................20

19. Coloración rojiza, pelos en el borde interno de la oreja largos (7-8 mm);longitud de las orejas 22-23 mm / Coloration reddish; fur on internal edgeof the ear long (7-8 mm); ear length 22-23 mm ......................................... .........

Micronycteris megalotis19’. Coloración marrón grisácea oscura; pelos en el borde interno de la oreja

cortos (menos de 3 mm); longitud de las orejas 19-21 / Coloration dark grayish brown; fur on internal edge of the ear short (less than 3 mm); ear length 19-21 mm .....................................................Micronycteris microtis

20. Calcar más largo que la pata; ancho cigomático menor que la caja craneana / Calcar longer than foot; zygomatic breadth narrower than braincase .... ......... Micronycteris schmidtorum

20’. Calcar igual o más corto que la pata; ancho cigomático más ancho que lacaja craneana / Calcar equal or shorter than foot; zygomatic breadth wider than braincase .........................................................................................21

21. Pulgar pequeño (7.5 mm o menos); pelos de la espalda con 2/3 o 3/4 de labase blanca; vientre blanco claro; calcar de igual longitud que la pata / Thumb small (7.5 mm or less); 2/3 to 3/4 of the base of hairs of the back are white; venter white; calcar the same length of the foot ........................ .........

Micronycteris sanborni21’. Pulgar normal; pelos de la espalda con 1/3 o 1/2 de la base blanca; vientre

grisáceo o anteado claro; calcar más corto que la pata / Thumb normal;basal 1/3 to 1/2 of hairs on the back white; venter grayish or pale buffy;calcar shorther than foot .........................................Micronycteris minuta



56


22. Con reborde nasolabial bien pronunciado y formando una cresta (Fig. 49b);calcar más largo que la pata; garganta amarillenta / Inferior horseshoe isthickened ridge (Fig. 49b); calcar longer than foot; throat yellowish ............................

Lampronycteris brachyotis22’. Sin reborde nasolabial de la hoja nasal; límite entre el labio y la hoja nasal

indistinguible (Fig. 49a); calcar más corto que la pata; garganta no amarillenta / Inferior horseshoe grades smoothly into upper lip, no distinct boundarybetween lip and horseshoe (Fig. 49a); calcar shorter than foot; throat not yellowish..................................................................................................23

Fig. 49

23. Orejas medianas y angostas; incisivos superiores anchos y espatulados;labio inferior en forma de “Y”; dorso pardo o pardo canela oscuro; pelaje

corto, antebrazo 36-39 mm; P1 pequeño y mucho menor que el P2 / Earsmedium size and narrow; upper incisors wide and spatulated; lower lip“Y”-shaped; dorsum brown or dark cinnamon brown; pelage short; forearm36-39 mm; P1 small, much smaller than P2................Trinycteris nicefori

23’. Orejas grandes y anchas; incisivos superiores alargados, similares a loscaninos en longitud; labio inferior en forma de “V” baja y alargada; dorsonegruzco; pelaje largo; antebrazo mayor de 40 mm; P1 molariforme, detamaño similar al P2 / Ears big and wide; upper incisors long similar toincisors in length; lower lip “V”shaped; dorsum blackish; pelage long;

forearm more than 40 mm; P1 molariform, similar in size to P2 ............... ...................Género / Genus Glyphonycteris...24

24. Tamaño grande, antebrazo mayor de 50 mm; pelaje apenas bicoloreado;un par de incisivos superiores / Size large, forearm more than 50 mm; fur sligthly bicolored; one pair of upper incisors ........Glyphonycteris daviesi

24’. Tamaño menor, antebrazo menor a 50 mm; pelaje tricoloreado; dos paresde incisivos superiores / Size smaller, forearm less than 50 mm; fur tricolored;two pairs of upper incisors ......................................Glyphonycteris behnii



57


SUBFAMILIA STENODERMATINAE / SUBFAMILY STENODERMATINAE (Sturnirini)

1. Bordes internos de los molares inferiores aserrados (Fig. 50a) / Inner margins of the lower molars serrated (Fig. 50a).......................................2

1’. Bordes internos de los molares inferiores lisos (Fig. 50b) / Inner marginsof the lower molars smooth (Fig. 50b) ......................................................3

Fig. 50

2. Pelos del dorso con bandas fuertemente marcadas; incisivos superiorescentrales anchos y levemente bilobados; borde lingual de los molaresinferiores poco aserrados; antebrazo generalmente mayor de 45 mm / Dorsalhairs strongly banded; upper inner incisors wide, slightly bilobed; lingualmargin of the lower molars slightly serrated; forearm more than 45 mm ...........

Sturnira tildae2’. Pelos del dorso con bandas poco marcadas; incisivos superiores centralesfrecuentemente en punta; borde lingual de los molares inferiores fuertementeaserrados; antebrazo generalmente menos de 45 mm / Dorsal hairs slightlybanded; inner upper incisors often pointed; lingual side of lower molarsdeeply serrated; forearm usually less than 45 mm .............Sturnira lilium

3. Antebrazo 55 mm o más; cráneo 28-29 mm / Forearm 55 mm or more;length of skull 28-29 mm ...................................................Sturnira magna

3’. Antebrazo menos de 55 mm, cráneo menor de 28 mm / Forearm less than

55 mm; skull less than 28 mm....................................................................4



58


4. Incisivos superiores internos bicuspidados, incisivos inferiores trilobados / Bicuspid upper inner incisors, lower incisors trilobed ............................. ...................

Sturnira sorianoi4’. Incisivos superiores internos suavemente bilobados o con margen redondeado;

incisivos inferiores bilobados / Upper inner incisors little bilobed or withrounded tips; lower incisors bilobed .........................................................5

5. Antebrazo mayor de 44 mm; hilera superior de dientes casi recta (Fig. 51a);incisivos superiores medios con margen recto o suavemente bilobado / Forearm more than 44 mm; upper toothrow straight (Fig. 51a); inner upper incisors straight edged or a little bilobed ...............Sturnira oporaphilum

5’. Antebrazo menor de 43 mm; hilera superior de dientes curvada (Fig. 51b);incisivos superiores medios con margen redondeado / Forearm less than43 mm; upper toothrow curved (Fig. 51b); inner upper incisors with rounded

tips .............................................................................Sturnira erythromos

Fig. 51



59


SUBFAMILIA STENODERMATINAE / SUBFAMILY STENODERMATINAE (Stenodermatini)

1. Hombros con manchas (blancas, amarillentas o naranja); ojos con aspectode hinchados (Fig. 24) / Shoulders with spots (white, yellowish or orange);eyes with a swollen appearance (Fig. 24) .................................................2

1’. Hombros sin manchas; ojos de aspecto normal (excepto Chiroderma)/ Shoulders without spots, eyes of normal appearance (except Chiroderma)...................................................................................................................

3

2. Hoja nasal reducida; con protuberancia carnosa en la frente (visor) (Fig.52); labio superior sin pliegue doble; nasal y maxilar orientados verticalmentecon las aberturas nasales en la base del cráneo dando aspecto de primate / Noseleaf reduced; forehead with a fleshy outgrowth (“visor”) (Fig. 52);upper lips without fold; nasal and maxilla orients vertically and nasal

aperture locate at the base of the cranium giving the skull a distinctly “ape-like” appearance .........................................Sphaeronycteris toxophyllum

2’. Hoja nasal desarrollada; sin protuberancia carnosa en la frente; labio superiorcon un pliegue de piel que da el aspecto de labio doble (Fig. 53); nasal ymaxilar diferentes a lo descrito arriba / Noseleaf well developed; no fleshyoutgrowth on forehead; fold on the upper lip giving the appearance of adouble upper lip (Fig. 53); nasal and maxillar different than above ...................

Pygoderma bilabiatum

Fig. 52 Fig. 53

3. Incisivos superiores centrales de tamaño similar o levemente mayores a loslaterales / Upper inner incisors subequal or slightly larger than outer ones...................................................................................................................4

3’. Incisivos superiores centrales claramente más largos que los laterales / Upper inner incisors clearly larger than the outer .................................14

4. Dorso con una línea media de color claro; rostro muy elevado, trago cortoy ancho / Pale middorsal line present; rostrum elevated; tragus short and broad ........................................................... Género / Genus Uroderma…5



60


4’. Dorso sin línea media; rostro normal, trago largo y estrecho / Pale middorsalline absent; rostrum normal; tragus long and narrow .............................6

5. Dorso grisáceo; línea media dorsal suave; líneas faciales blancas muy

marcadas; uropatagio prácticamente desnudo / Dorsum grayish with a faintly pale middorsal stripe; facial stripes prominent; uropatagium practically naked ......................................................Uroderma bilobatum

5’. Dorso pardo claro jaspeado; línea media dorsal bien marcada; líneas facialestenues; uropatagio cubierto de pelos que sobrepasan las rodillas / Dorsum pale marbled drab with a well marked middorsal stripe; facial stripes not prominent; uropatagium hairy to beyond level of knees ............................. ....................

Uroderma magnirostrum

6. Antebrazo mayor a 55 mm / Forearm more than 55 mm .........................7

6’. Antebrazo menor a 55 mm / Forearm less than 55 mm .........................107. Líneas faciales muy marcadas; margen inferior de las orejas y trago muy

pálidos; antebrazo mayor de 70 mm / Facial stripes prominent and welldefined; lower edge of ear and tragus pale; forearm more than 70 mm .... ....................

Artibeus lituratus7. Líneas faciales débiles o ausentes; margen inferior de las orejas y trago no

pálidos, antebrazo menor de 70 mm / Facial stripes weakly defined toabsent; lower edge of ear and tragus not pale; forearm less than 70 mm ....................

8

8. Dorso negruzco, pelos dorsales largos (más de 8 mm); antebrazo menorde 63 mm / Dorsum blackish; fur long (more than 8 mm on mid-dorsum); forearm less than 63 mm ...............................................Artibeus obscurus

8’. Dorso pardo, pelos dorsales cortos (menos de 8 mm); antebrazo mayor de63 mm / Dorsum brownish; fur short (less than 8 mm on mid-dorsum); forearm more than 63 mm.........................................................................9

9. Coloración grisácea oscura; patas desnudas; hoja nasal con borde inferiorgeneralmente libre (Fig. 54); M3 diminuto / Coloration dark gray; legs

naked; horseshoe of noseleaf usually free (Fig. 54); M3 reduced .............. ................... Artibeus planirostris

9’. Coloración marrón oscura, o marrón grisácea; patas peludas; hoja nasalcon borde inferior generalmente soldado al labio y con una cresta transversa(Fig. 55); M3 ausente, raramente presente / Coloration dark brown tograyish brown; legs hairy; horseshoe of noseleaf usually bound down toupper lip, and with a transverse ridge (Fig. 55); M3 absent or rarely present .........................................................................Artibeus fimbriatus



61


Fig. 54 Fig. 55

10. Tamaño mediano, antebrazo 43-53 mm; pelos dorsales tricolor; procesosparaoccipitales poco evidentes o ausentes / Size medium, forearm 43-53mm; dorsal hairs tricolored; paraoccipital processes poorly evident or absent ....................................................... Artibeus ( Koopmania) concolor

10’. Tamaño menor, antebrazo menos de 43 mm; pelos dorales bicolor; procesosparaoccipitales pequeños a moderados / Smaller, forearm less than 43 mm;dorsal hairs bicolored; paraoccipital processes moderately developed ..... .........

11

11. Coloración marrón chocolate oscuro; incisivos superiores centrales simples(Fig. 56), molares 3/3, M3 grande / Coloration dark chocolate brown;upper inner incisors simple (Fig. 56) , molars 3/3, M3 large ................................

Enchisthenes hartii11. Coloración grisácea o amarillenta; incisivos superiores bífidos (Fig. 57),

molares 2/3 o 2/2, M3 diminuto o ausente / Coloration grayish or yellowish;upper inner incisors bifids, molars 2/3 or 2/2, M3 tiny or absent ........................

Género / Genus Dermanura...12

Fig. 56 Fig. 57



62


14. Pelaje con pelos de bases muy claras; borde del uropatagio con fleco depelos (Fig. 59) / Hairs whitish at the base; uropatagium with a fringe of hairs along the margin (Fig. 59) ............................................................. 15

14’. Pelaje con pelos bases oscuras; borde del uropatagio sin fleco de pelos / Hairs with dark bases; edge of uropatagium not fringed ........................22

12. Región supraorbital muy abultada, molares 2/3 / Supraorbital region highlyvaulted, molars 2/3 ................................................. Dermanura anderseni

12’. Región supraorbital poco o nada abultada, molares 2/2 / Supraorbital regionlittle or not vaulted, molars 2/2 ...............................................................13

13. Coloración marrón pálida o marrón grisácea; líneas faciales notorias y biendefinidas; margen posterior del uropatagio en forma de U (Fig. 58a); bordeinterno de la fosa pterigoidea con fuertes crestas, produciendo unangostamiento de la fosa mesopterigoidea / Coloration pale brown or grayish brown; facial stripes well defined; posterior margin of uropatagiumU-shaped (Fig. 58a); internal edge of pterygoid fossa strongly ridged narrowing mesopterygoid fossa .................................Dermanura gnomus

13’. Coloración grisácea oscura o negruzca; líneas faciales menos definidas;margen posterior del uropatagio en forma de V (Fig. 58b); borde interno

de la fosa pterigoidea con crestas obsoletas, no producen un angostamientode la fosa mesopterigoidea / Coloration dark grayish or blackish; facialstripes not well defined; posterior margin of uropatagium V-shaped (Fig.58b); internal pterygoid ridge obsolete not narrowing mesopterygoid fossa ...................................................................................

Dermanura glaucus

Fig. 58



63


15. Dorso pardo canela; líneas rostrales muy conspicuas, blancas; dos molaressuperiores / Dorsum cinnamon brown; facial stripes conspicuous and white;two upper molars ................................................... Vampyrodes caraccioli

15’. Dorso de coloración variada, pero no pardo canela; líneas faciales poco

marcadas, blancas o marrón anteadas; tres molares superiores / Dorsalcoloration variable; facial stripes less evident, white or buffy brown; threeupper molars ........................................Género / Genus Platyrrhinus…16

Fig 59

16. Antebrazo mayor de 54 mm / Forearm more than 54 mm ......................17

16’. Antebrazo menor de 54 mm / Forearm less than 54 mm ........................18

17. Coloración marrón negruzca; líneas dorsal y faciales evidentes; pelajedorsal largo, más de 8 mm; dorso del pie con pelos largos y densos; p2 concuspúlido posterolabial largo; m2 con cuspúlido estilar entre metacónidoy protocónido / Coloration blackish brown; dorsal and facial stripes evident;dorsal fur long more than 8 mm; dense and long hairs on the dorsum of the feet; p2 with a long posterolabial cuspulid; m2 with stylid cuspulid between metaconid and protoconid ........................Platyrrhinus albericoi

17’. Coloración anteada a marrón oscuro; líneas dorsal y faciales poco evidentes;pelaje dorsal corto menos de 6.3 mm; dorso del pie con pelos cortos yescasos; p2 con cuspúlido posterolabial corto; sin cuspúlido estilar entremetacónido y protocónido del m2 / Coloration buffy to dark brown; dorsaland facial stripes poorly evident; dorsal fur short less than 6.3 mm; sparseand short hairs on the dorsum of the feet; p2 with a short posterolabialcuspulid; no stylid cuspulid between metaconid and protoconid in m2 ...............

Platyrrhinus infuscus



64


18. Líneas faciales blancas, generalmente evidentes / Facial stripes white,usually evident ......................................................................................... 19

18’. Líneas faciales anteadas / Facial stripes buffy ........................................21

19. Antebrazo menor de 40 mm / Forearm less than 40 mm........................2019’. Antebrazo mayor de 45 mm / Forearm more than 45 mm ..............................................

Platyrrhinus lineatus

20. Coloración pardo oscura, líneas faciales muy tenues; p2 con dos cúspidesaccesorias en el margen anterior (Fig. 60); depresión rostral muy evidente / Coloration dark brown, facial stripes very pale; anterior margin of p2with two accessory cusps (Fig. 60); rostral depression clearly evident ..........................

Platyrrhinus brachycephalus20’. Coloración pardo clara, líneas faciales blancas muy marcadas; p2 con una

cúspide accesoria en el margen anterior (Fig. 61); depresión rostral menospronunciado / Coloration pale brown, facial stripes white and prominent; anterior margin of p2 with one accessory cusp (Fig. 61); rostral depressionless pronounced .......................................................Platyrrhinus incarum

Fig. 60 Fig. 61

21. Antebrazo 40-47 mm; cuatro vibrisas submentonianas a cada lado de laquijada (Fig. 62a); incisivos superiores externos sin lóbulos (Fig. 63a) / Forearm 40-47 mm; four submental vibrissae on each side of chin (Fig.62a); upper outer incisors unlobed (Fig. 63a).......... Platyrrhinus nigellus

21’. Antebrazo 46-51 mm; tres vibrisas submentonianas a cada lado de la quijada(Fig. 62b); incisivos superiores externos bilobados (Fig. 63b ) / Forearm46-51 mm; three submental vibrissae on each side of chin (Fig. 62b); upper outer incisors bilobed (Fig. 63b) ..................................Platyrrhinus masu



65


Fig. 63

Fig. 62

22. Antebrazo mayor de 38 mm; incisivos superiores centrales cilíndricos (Fig.64) y unicuspidados; hueso nasal en forma de lira; calcar 3/4 del largo dela pata / Forearm more than 38 mm; inner upper incisors cylindrical (Fig.

64) , unicuspidate; nasal bone lyra-shaped; calcar 3/4 the length of the foot Género / Genus................................................................ Chiroderma...23

22’. Antebrazo menor de 38 mm; incisivos superiores centrales con dos cúspides;nasal sin forma de lira; calcar la mitad de la longitud de la pata / Forearmless than 39 mm; inner upper incisors bilobed; nasal bones not lyra-shaped;calcar half the length of foot ...................................................................26

Fig. 64

23. Tamaño pequeño, antebrazo menos de 43 mm / Size small, forearm less

than 43 mm............................................................. Chiroderma trinitatum



66


23’. Tamaño mayor, antebrazo mayor de 43 mm / Larger; forearm more than43 mm ...................................................................................................... 24

24. Línea dorsal y faciales tenues; antebrazo menor de 47 mm / Facial and dorsal stripes tenuous; forearm less than 47 mm .....Chiroderma villosum

24’. Línea dorsal y faciales conspicuas; antebrazo mayor de 47 mm / Facialand dorsal stripes conspicuous; forearm greater than 47 mm ................25

25. Antebrazo menor de 52 mm / Forearm less than 52 mm ............................ ....................Chiroderma salvini

25’. Antebrazo mayor de 52 mm / Forearm greater than 52 mm ...................... ...................Chiroderma doriae

26. Líneas faciales ausentes; línea dorsal ausente; antebrazo 25-36 mm; m3

presente / Facial and middorsal stripes absent; forearm 25-36 mm; m3 present .................................................................Mesophylla macconnelli

26’. Líneas faciales presentes ; línea dorsal presente o ausente ; antebrazo 30-38 mm; m3 presente o ausente / Facial stripe present, middorsal stripes present or absent ; forearm 30-38 mm; m3 present or absent ................27

27. Trago con pelos en la unión lateral (Fig. 65a), línea media dorsal presente;primer premolar inferior no caniniforme; tercer molar inferior generalmentepresente / Tragus with hairs on the lateral union (Fig. 65a) ; middorsal

stripe present; lower first premolar not caniniform; lower third molar usually present ............................................................Vampyriscus bidens27’. Trago sin pelos (Fig. 65b); línea media dorsal ausente; primer premolar

inferior caniniforme; tercer molar inferior ausente / Tragus naked (Fig.65b); middorsal stripe absent; lower first premolar caniniform; lower third molar absent .......................................... Género / Genus Vampyressa…28

Fig. 65



67


28. Tamaño mayor, antebrazo mayor de 33 mm / Larger; forearm more than33 mm .......................................................................... Vampyressa pusilla

28’. Tamaño menor, antebrazo menos de 33 mm / Smaller, forearm less than33 mm ..........................................................................Vampyressa thyone

FAMILIA MORMOOPIDAE / FAMILY MORMOOPIDAE

1. Orejas cortas y redondeadas, unidas por una prominente banda; estructurasfoliadas muy notorias en el labio inferior (Fig. 14b); trago complejo conun notable pliegue secundario / Ears short, rounded, and connected by a prominent band of skin; leaflike appendages protrude from the lower lips(Fig. 14b); tragus complex with a pronounced secondary fold ................... .........

Mormoops megalophylla1’. Orejas alargadas y puntiagudas, notablemente separadas, aunque pueden

estar conectadas por una cresta muy baja; labio inferior con verrugas perosin pliegues(Fig. 14a) ; trago con un pliegue secundario pequeño / Earslong and pointed, clearly separated but in some species connected by alow ridge (Fig. 14a); lower lip with warts but without folds.........Género / Genus ................................................................................. Pteronotus…2

2. Alas unidas en la parte media dorsal, dándole una apariencia desnuda a laespalda (Fig. 66a); ancho rostral mayor que la hilera maxilar de dientes / Wing membranes fused on middorsal line of the back, giving a naked

appearence (Fig. 66a); rostral breadth more than length of maxillarytoothrow ....................................................................................................3 2’. Alas unidas a los lados del cuerpo, con el dorso cubierto de pelos (Fig.

66b); ancho rostral menor o igual que la longitud de la hilera maxilar dedientes / Wings do not meet on back midline (Fig. 66b) , hairy back; rostralwidth less or equal than length of maxillary toothrow ..............................4

Fig. 66



68


3. Antebrazo mayor de 49 mm; pelaje ventral unicoloreado o apenasbicoloreado, pelos cortos (4 mm) / Forearm more than 49 mm; ventral pelage unicolored or sligthly bicolored; short hairs (4mm)........................ ....................

Pteronotus gymnonotus3’. Antebrazo menor de 49 mm; pelaje ventral bicoloreado, pelos largos (8

mm) / Forearm less than 49 mm; ventral pelage bicolored; longer hairs(8 mm) ..............................................................................Pteronotus davyi

4. Antebrazo mayor de 50 mm; incisivos superiores internos bilobados (Fig.67a); basioccipital estrecho entre las bullas auditivas / Forearm greater than 50 mm; upper inner incisor bilobated (Fig. 67a); bassioccipitalconstricted between auditory bullae .....................Pteronotus rubiginosus

4’. Antebrazo menor de 50 mm; incisivos superiores internos trilobados (Fig.67b); basioccipital ancho entre las bullas auditivas / Forearm less than 50

mm; upper inner incisor trilobated (Fig. 67b); bassioccipital not constricted between auditory bullae ..........................................Pteronotus personatus

Fig. 67



69


FAMILIA NOCTILIONIDAE / FAMILY NOCTILIONIDAE

Cabeza y cuerpo menos de 100 mm, antebrazo menor de 70 mm, pata menosde 20 mm; envergadura alar alrededor de 400 mm / Head and body lengthless than 100 mm, forearm less than 70 mm; foot less than 20 mm; wing

span near 400 mm .................................................... Noctilio albiventrisCabeza y cuerpo más de 100 mm; antebrazo mayor de 70 mm; pata más de 25

mm; envergadura alar alrededor de 500 mm / Head and body length morethan 100 mm; forearm greater than 70 mm; foot greater than 25 mm;wing span near 500 mm ............................................. Noctilio leporinus

FAMILIA FURIPTERIDAE / FAMILY FURIPTERIDAE

Hocico romo, prácticamente desnudo, nariz rodeada arriba y lateralmente por

un anillo carnoso conspicuo; mentón y labio inferior con protuberanciastipo verrugas; paladar largo, sobrepasa el último molar / Snout blunt not thickly furred, nose bordered above and laterally by a conspicuous fleshyrim; chin and lower lip with fleshy wart-like structures; palate long,extending behind last molar ............................Amorphochilus schnablii

Hocico simple y peludo; mentón y labio inferior sin protuberancias; paladarcorto, no se extiende más allá del último molar / Snout simple and well furred, chin and lower lip without fleshy structures; palate short, not extendind beyond last molar .....................................Furipterus horrens

FAMILIA THYROPTERIDAE / FAMILY THYROPTERIDAE

Pequeño, antebrazo 31-36 mm; vientre pardo castaño, similar al dorso o levementemás claro; orejas amarillentas; margen posterior del calcar con un sólolóbulo cartilaginoso / Small, forearm 31-36 mm; venter chestnut brownsimilar to the dorsum o slightly paler; ears yellowish; posterior edge of calcar with one cartilaginous lobule ......................Thyroptera discifera

Mediano, antebrazo 32-39; vientre blanquecino que contrasta con el dorso;

orejas oscuras; margen posterior del calcar con dos protuberancias (Fig.10b) / Medium size, forearm 32-39 mm; venter whitish, sharply contrastingwith the dorsum; ears dark; posterior edge of calcar with two cartilaginouslobules (Fig. 10b) ......................................................Thyroptera tricolor



70


FAMILIA MOLOSSIDAE / FAMILY MOLOSSIDAE

1. Antebrazo con granulaciones o pequeñas protuberancias (Fig. 68); cráneoachatado; incisivos superiores separados por un espacio / Wart-likegranulations on the forearms (Fig. 68); skull flattened; upper incisor

separated by a gap ....................................Neoplatymops mattogrossensis1’. Antebrazo sin granulaciones; cráneo no achatado; incisivos superiores en

contacto / No granulations on forearms; skull not flattened; upper incisor in contact with each other .........................................................................2

Fig. 68

2. Labios con arrugas y pliegues profundos (Fig. 69); extremo anterior delpaladar emarginado (Fig. 70) / Lips wrinkled, with deep folds (Fig. 69);anterior edge of palate emarginate (Fig. 70) ............................................3

Fig. 69 Fig. 70

2’. Labios lisos, sin pliegues o arrugas (Fig. 71); extremo anterior del paladarentero, no emarginado (Fig. 72) / Lips smooth (Fig. 71); anterior edge of

palate not emarginate (Fig. 72).................................................................7



71


Fig. 71 Fig. 72

3. Un premolar superior; sólo en Chile / One upper premolar; it is only found in Chile .............................................................. Mormopterus kalinowskii

3’. Dos premolares superiores / Two upper premolars ...................................4

4. Orejas separadas por un espacio diminuto; extendidas hacia adelante no

sobrepasan el extremo anterior del hocico; segunda falange del cuarto dedomayor de 7 mm; cráneo con rostro corto, fosetas basiesfenoides pocoprofundas; incisivos 1/3, puntas de los incisivos superiores convergentes(Fig. 73) / Ears separated by a small space, not extending beyond the tipof the snout when laid forward; second phalange of fourth finger longer than 7 mm; skull with rostrum short, basisphenoid pits shallow; incisors1/3, upper incisors convergent at the tips (Fig. 73) ..............................................

Tadarida brasiliensis

Fig. 73 Fig. 74

4’. Orejas unidas; extendidas hacia adelante sobrepasan el extremo anteriordel hocico; segunda falange del cuarto dedo menos de 5 mm; cráneo con

rostro alargado, fosetas basiesfenoides profundas, incisivos 1/2, incisivossuperiores paralelos entre sí (Fig. 74) / Ears joined at base; extendingbeyond the tip of the snout when laid forward; second phalange of fourth finger less than 5 mm; skull with rostrum enlarged and narrow, basisphenoid pits deep, incisors 1/2, upper incisors parallel to each other (Fig. 74) ...... ........

Género / Genus Nyctinomops...5

5. Antebrazo mayor de 55 mm; foseta basiesfenoides grandes y profundas / Forearm more than 55 mm; basisphenoid pits large and deep ................... .........

Nyctinomops macrotis



72


5’. Antebrazo menor a 55 mm; fosetas basiesfenoides superficiales / Forearmless than 55 mm; basisphenoid pits shallow ............................................. 6

6. Antebrazo mayor de 47 mm / Forearm more than 47 mm .......................... .................... Nyctinomops aurispinosus

6’. Antebrazo menor de 47 mm / Forearm less than 47 mm ............................ .................... Nyctinomops laticaudatus

7. Rostro con una quilla media a lo largo del hocico, por detrás de los orificiosnasales (Fig. 2); antitrago con una notable constricción en la base / Rostrumwith an elevated medial keel that extends along the snout behind the nostrils(Fig. 2); antitragus with a notable constriction at the base ......................8

7’. Rostro sin quilla media en el hocico; antitrago sin constricción notable enla base / Rostrum without medial keel; antitragus without notable constriction

at the base ...............................................................................................13

8. Rostro muy convexo (Fig. 75); cola larga y calcares largos que llegan hastala cola; base del quinto metacarpal con pelos; paladar cóncavo abovedado;30 dientes, incisivos 1/2 / Rostrum strongly domed (Fig. 75); tail long; thelong calcars border the uropatagium until they contact the margin of thetail; base of fifth metacarpal furred; palate strongly domed; 30 teeth,incisors 1/2 ................................................... Género / Genus Promops...9

Fig. 75 Fig. 76

8’. Rostro recto (Fig. 76), elevado suavemente; cola más corta y calcares cortosque no alcanzan la cola; base del quinto metacarpal con menos pelos;paladar más plano; 26 dientes, incisivos 1/1 / Rostrum slightly or not domed (Fig. 76); tail short and calcars short not reaching the tail; base of fifthmetacarpal less furred; palate not domed; 26 teeth, incisors 1/1 ..................................

Género / Genus Molossus...10



73


9. Antebrazo más de 50 mm / Forearm more than 50 mm .............................. ......... Promops centralis

9’. Antebrazo menos de 50 mm / Forearm less than 50 mm ............................ ......... Promops nasutus

10. Antebrazo mayor de 47 mm / Forearm more than 47 mm ................................... Molossus rufus

10’.Antebrazo menor de 47 mm / Forearm less than 47 mm.........................11

11. Longitud de los pelos en el centro de la espalda 3 mm; marcado contrasteentre la base y el extremo de los pelos dorsales / Pelage 3 mm in legth oncenter of back; evident constrast between basals and tips of dorsal hairs ..........

12

11’. Longitud de los pelos en el centro de la espalda 2 mm; escaso contrasteentre la base y el extremo de los pelos dorsales / Pelage 2 mm in legth oncenter of back; little constrast between basals and tips of dorsal hairs ...............

Molossus pretiosus

12. Antebrazo generalmente menor de 40 mm; longitud cóndilobasal menosde 16 mm; coloración marrón grisáceo / Forearm usually less than 40 mm;condylobasal length less than 16 mm; dorsal coloration grayish brown .... .........

Molossus molossus12’. Antebrazo generalmente mayor de 40 mm, longitud cóndilobasal más de

16 mm; coloración marrón rojiza / Forearm usually larger than 40 mm;condylobasal length more than 16 mm; dorsal coloration brown reddish ...........

Molossus currentium

13. Orejas grandes, anchas y expandidas lateralmente, unidas en la frente, ycon una quilla interna muy marcada; tamaño corporal mediano a muygrande; 30 dientes / Ears large, broad and laterally expanded, united onthe forehead, and with the inner ridge pronounced; size medium to verylarge; 30 teeth ............................................... Género / Genus Eumops...14

13’. Orejas pequeñas, puntiagudas o redondeadas, separadas en la frente por unespacio generalmente mayor de 1.5 mm, y con quilla menos marcada;tamaño corporal pequeño a mediano / Ears small, pointed or rounded,separated on the forehead by at least 1.5 mm, and with a less pronounced inner ridge; size small to medium ...........................................................21

14. Antebrazo mayor de 70 mm / Forearm more than 70 mm ......................1514’.Antebrazo menor de 70 mm / Forearm less than 70 mm ........................16



74


15. Orejas extendidas hacia adelante no sobrepasan el extremo anterior delhocico (Fig. 77) / Ears not extending beyond the tip of the snout when laid forward (Fig. 77)........................................................... Eumops dabbenei

15’. Orejas extendidas hacia adelante sobrepasan el extremo anterior del hocico(Fig. 78) / Ears extending beyond the tip of the snout when laid forward

(Fig. 78) .............................................................................Eumops perotis

Fig 77 Fig. 78

16. Antebrazo mayor de 55 mm / Forearm greater than 55 mm ..................1716’. Antebrazo menor de 50 mm / Forearm less than 50 mm ........................19

17. Orejas largas (35-44 mm); trago grande, ancho y cuadrado; fosetasbasiesfenoides profundas / Ears long (35-44 mm); tragus large, broad and square; basisphenoid pits deep .....................................Eumops trumbulli

17’. Orejas cortas (17-34 mm); trago pequeño, en punta o cuadrado; fosetasbasiesfenoides superficiales / Ears short (17-34 mm); tragus small, pointed,or square; basisphenoid pits shallow ......................................................18

18. Coloración canela grisácea; trago desarrollado de forma más o menoscuadrada (Fig. 79) / Dorsal coloration cinnamon grayish; tragus squarish(Fig. 79) ........................................................................Eumops glaucinus

Fig 79 Fig. 80

18’. Coloración canela negruzca; trago reducido de forma más o menos triangular(Fig. 80) / Dorsal coloration chestnut blackish; tragus reduced and triangular

(Fig. 80) .................................................................. Eumops auripendulus



75


21. Orejas triangulares (Fig. 83), antitrago subcuadrado; incisivos inferiores1/1 / Ears triangular, antitragus almost squarish; incisors 1/1 (Fig. 83) ... .........

Género / Genus Molossops...2221’. Orejas redondeadas (Fig. 84, 85, 86), antitrago redondeado y ancho; incisivos

1/2 / Ears rounded, antitragus rounded and wide (Figs. 84-86); incisors1/2 ........................................................... Género / Genus Cynomops...23

19. Coloración dorsal café oscuro a negruzca; antebrazo 37 a 42 mm / Dorsalcoloration dark blackish brown; forearm 37 to 42 mm............................... ........

Eumops hansae19’. Coloración más clara, grisácea, o rojiza; antebrazo mayor de 42 mm /

Dorsal coloración paler, grayish or reddish; forearm more than 42 mm ...........20

20. Antebrazo 46-49 mm; quilla interna de la oreja termina por detrás del bordeposterior del antitrago (Fig. 81); coloración rojiza / Forearm 46-49 mm;inner keel of the ear terminating behind the posterior border of the antitragus(Fig. 81); reddish coloration ......................................Eumops bonariensis

20’. Antebrazo 43-47 mm; quilla interna de la oreja no sobrepasa el bordeposterior del antitrago; coloración grisácea (Fig. 82) / Forearm 43-47 mm;inner keel of the ear not extending behind the posterior border of the

antitragus (Fig. 82); grayish coloration ...................Eumops patagonicus

Fig 81 Fig. 82

Fig 83 Fig. 84



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22. Antebrazo menor de 34 mm; constricción postorbital menor de 4 mm;coloración grisácea o marrón grisácea / Forearm less than 34 mm; postorbitalconstriction less than 4 mm; coloration grayish or brown grayish............. ...................

Molossops temminckii22’. Antebrazo mayor de 36 mm; constricción postorbital mayor de 4.5 mm;

coloración rojiza / Forearm greater than 36 mm; postorbital constrictiongreater than 4.5 mm; reddish coloration ...................Molossops neglectus

23. Antebrazo mayor de 40 mm; longitud total del cráneo mayor de 19 mm / Forearm greater than 40 mm; total length of skull more than 19 mm ............................

Cynomops abrasus23’. Antebrazo menor de 37 mm; longitud total del cráneo menor a 19 mm /

Forearm 37 mm or less; total length of skull less than 19 mm ...............24

24. Pecho y vientre con notable mancha blanca o crema; labio superior anchoy proyectado hacia delante; orejas apenas separadas por un espacio de 1o 2 mm (Fig. 85) / Chest and venter with a prominent white or creamishspot; upper lip broad and projected forward; ears almost touching at base,separated by only 1-2 mm (Fig. 85) .......................Cynomops planirostris

24’. Pecho más claro pero sin formar una mancha notoria; orejas claramenteseparadas (Fig. 86) / Chest paler but not forming a prominent spot; earsclearly separated (Fig. 86) ..........................................Cynomops paranus

Fig. 85 Fig. 86



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FAMILIA VESPERTILIONIDAE / FAMILY VESPERTILIONIDAE

1. Uropatagio densamente cubierto de pelos por el lado dorsal, completamenteo hasta la mitad (Figs. 88-90); orejas cortas y redondeadas / Uropatagiumdensely furred on the dorsum, either completely or for up to half its length

(Figs. 88-99); ears short and rounded ......................................................21’. Uropatagio desnudo (Fig. 87), o con pelos muy finos sólo en la región

pegada al cuerpo; orejas más largas y de formas diferentes / Uropatagiumnaked (Fig. 87) or with very fine hairs next to body; ears longer and not rounded ......................................................................................................5

2. Uropatagio cubierto de pelos hasta la mitad por el lado dorsal (Fig. 88);coloración olivácea amarillenta / Basal half of the dorsum of the uropatagiumdensely furred (Fig. 88); body color yellowish-olivaceous ......................... ........

Dasypterus ega2’. Uropatagio casi totalmente cubierto de pelos por el lado dorsal (Figs. 89,

90); coloración general escarchada / Dorsal part of uropatagium almost totally or totally furred (Fig. Figs. 89, 90); general coloration frosted ...............

Género / Genus Lasiurus...3

3. Coloración dominante rojiza, algo escarchada; uropatagio cubierto conpelos que sobrepasan el borde (Fig. 90) / Dorsal coloration reddish withlittle frosting; dorsal part of uropatagium completely furred, with fur extending beyond the edge (Fig. 90) ..................................Lasiurus varius

3’. Coloración escarchada con predominio de pelos grises y rojizos o amarillentosmezclados; uropatagio cubierto de pelos que no sobrepasan el borde (Fig.89) / Coloration frosted, with gray and reddish or yellowish color predominating; dorsal part of the uropatagium completely furred but fur not extending beyond the edge (Fig. 89) ...................................................4

Fig 87 Fig. 88



78


Fig. 89 Fig. 90

Fig. 91 Fig. 92

4. Antebrazo mayor de 50 mm; coloración escarchada con predominio depelos grises y amarillentos / Forearm greater than 50 mm; coloration frosted, with gray and yellowish color predominating .. Lasiurus cinereus

4’. Antebrazo menor de 45 mm; coloración escarchada con predominio depelos grises y rojizos / Forearm less than 45 mm; coloration frosted, withgray and reddish color predominating .......................Lasiurus blossevillii

5. Orejas muy grandes, generalmente más de 20 mm, extendidas hacia adelantesobrepasan el extremo del hocico / Ears very long, generally more than 20mm, extending beyond tip of snout when laid forward ................................ ...................

Género / Genus Histiotus...65’. Orejas medianas, generalmente menores de 20 mm, extendidas hacia

adelante no alcanzan el extremo del hocico / Ears of medium size, generallyless than 20 mm, not extending beyond tip of snout when laid forward ..........................

10

6. Orejas con puntas afinadas (Fig. 91), unidas entre sí por una membrananotoria; coloración general oscura; poco contraste entre la base y la puntade los pelos / Ears pointed (Fig. 91) , connected by a well-developed membrane; general coloration dark; slight contrast between the tips of thehairs and their bases ........................................................Histiotus velatus

6’. Orejas con puntas redondeadas (Fig. 92), unidas o separadas; coloraciónmás pálida pero el contraste entre las bases y las puntas de los pelos dorsalesmás evidente / Ears rounded (Fig. 92) , united or separated ; body color

paler, but contrast between the tips and bases of the hairs more pronounced ................................................................................................................... 7



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7. Índice Longitud Cabeza y Cuerpo/Longitud Oreja menor de 2.1; longitudde la bulla menos de 4 mm / Ratio of Head and Body Length/Ear Lengthless than 2.1; tympanic bullae length less than 4 mm ...............................8

7’. Índice Longitud Cabeza y Cuerpo/Longitud Oreja más de 2.3; longitud de

la bulla más de 4 mm / Ratio of Head and Body Length/Ear Length greater than 2.3; tympanic bullae length greater than 4 mm ................................9

8. Pelos de la región ventral generalmente con puntas gris claro o blanquecinasen la mayoría de los ejemplares; orejas muy oscuras y con banda de uniónausente o poco desarrollada; distancia externa entre los M3 más de 7 mm / Ventral hairs generally with the tips light gray or whitish in most specimens;ears very dark, the connecting band absent or poorly developed; externalwidth across M3 greater than 7 mm .............................Histiotus macrotus

8’. Pelos de la región ventral con puntas generalmente amarillentas; orejas

pálidas con banda de unión evidente; distancia externa entre M3 menos de7 mm / Ventral hairs generally yellowish; ears pale and with an evident connecting band; external width across M3 less than 7 mm ....................... .........

Histiotus laephotis

9. Orejas menos de 25 mm; sin banda de unión, claramente separadas;coloración dorsal y ventral muy oscura / Ear length less than 25 mm, earsclearly separated; dorsal and ventral coloration very dark ...............................

Histiotus magellanicus9’. Orejas mayores de 25 mm; conectadas con una banda diminuta; coloración

variable pero ventralmente más pálida, blanquecina en la mayoría de losejemplares / Ear length greater than 25 mm, ears generally connected bya small band; coloration variable, but venter paler, whitish in most specimens .....................................................................................

Histiotus montanus

10. Un incisivo superior; pelaje dorsal con dos bandas / One upper incisor;dorsal fur with two bands ......................................................Rhogeessa io

10’. Dos incisivos superiores; pelaje dorsal sin bandas notorias / Two upper incisors; dorsal fur without notorious bands ..........................................11

11. Uropatagio sin pelos en el área próxima al cuerpo; incisivos superioresinternos mayores que los externos y sin espacio evidente entre canino ypremolar (Fig. 93) / Uropatagium without hairs next to body; upper inner incisors larger than the outer incisors and no space between canine and premolar (Fig. 93) ........................................Género/ Genus Eptesicus...12



80


11’. Uropatagio con pelos en el área próxima al cuerpo; incisivos superiores detamaño similar entre sí, P1 y P2 diminutos dando el aspecto de un diastemaentre el canino y el P3 (Fig. 94) / Uropatagium with hairs next to body;upper incisors similar in size, P1 and P2 reduced giving the aspect of diastema between the canine and P3 (Fig. 94)...............................................................

Género/ Genus Myotis...16

Fig. 93 Fig. 94

12. Tamaño pequeño, antebrazo menor de 37 mm; hilera inferior de dientesmenor de 5.4 mm; longitud de la mandíbula menor de 10.1 mm / Size small, forearm less than 37 mm; length of mandible toothrow less than 5.4 mm;length of mandible less than 10.1 mm ........................ Eptesicus diminutus

12’. Tamaño mayor, antebrazo mayor de 40 mm; hilera inferior de dientes mayorde 5.4 mm; longitud de la mandíbula mayor de 10.1 mm / Size larger, forearm more than 40 mm; length of the mandible toothrow greater thanmayor de 5.4 mm; length of mandible greater than 10.1 mm .................13

13. Tamaño mediano, antebrazo mayor de 41 mm / Size medium, forearmgreater than 41 mm .................................................................................14

13’. Tamaño menor, antebrazo menor de 41 mm / Size smaller, forearm lessthan 41 mm ...................................................................Eptesicus furinalis

14. Pelaje dorsal corto, menos de 8 mm de longitud / Dorsal fur short, lessthan 8 mm; dorsal coloration light brown .............. Eptesicus brasiliensis

14’. Pelaje dorsal largo, más de 8 mm de longitud / Dorsal fur long, more than8 mm in length .........................................................................................15

15. Cresta sagital y lambdoideas poco desarrolladas y sin formar un triángulo(Fig. 95) / Sagittal and lambdoideal crests not well developed not forminga triangular plate (Fig. 95) ...........................................Eptesicus andinus

15’. Cresta sagital y lambdoideas bien desarrolladas, formando un triángulo alintersectarse (Fig. 96) / Sagittal and lambdoideal crests well developed forming a triangular plate of bone at the intersection of them (Fig. 96) .... ....................

Eptesicus chiriquinus



81


Fig. 95 Fig. 96

16. Coloración dorsal con tonos rojos o naranja amarillentos / Dorsal colorationwith reddish or orange-yellowish tones .................................................. 17

16’. Coloración dorsal diferente, con tonos no muy marcados / Dorsal colorationdifferent, colors not very prominent .......................................................18

17. Pelaje corto (2 mm) y afelpado, de tonalidades naranja-amarillentas;plagiopatagio unido a la altura del tobillo (Fig. 97) / Fur short (2 mm) and velvety, orange-yellowish colored; insertion of plagiopatagium at the ankle(Fig. 97) .................................................................................Myotis simus

Fig. 97 Fig. 9817’. Pelaje más largo (3 mm) y suave, fuertemente rojo; plagiopatagio unido

a la altura de los dedos (Fig. 98) / Fur longer (3 mm) and fine, reddishcolored; insertion of plagiopatagium at the toes (Fig. 98).......................... ........

Myotis ruber

18. Dorso escarchado con pelos pálidos / Dorsum clearly frosted with palehairs.........................................................................................................19

18’. Dorso no escarchado o levemente escarchado / Dorsum slightly frosted or

not frosted ................................................................................................20



82


19. Dorso fuertemente escarchado; vientre blanquecino; membranas alarespálidas; patas robustas y redondeadas; cráneo con curvatura frontal acentuaday sin cresta sagital (Fig. 99) / Dorsum strongly frosted; venter whitish; wingmembranes pale; feet robust and rounded; skull with a pronounced frontalcurvature and sagittal crest absent (Fig. 99)................... Myotis albescens

19’. Dorso no escarchado fuertemente, pero con algunos pelos pálidos esparcidos;vientre no blanquecino; membranas alares oscuras; patas de tamaño y formanormal; cráneo sin curvatura frontal acentuada y con cresta sagital baja(Fig. 100) / Dorsum not strongly frosted, but with some scattered palehairs; venter not whitish; wing membranes dark; size and form of feet normal; skull without a pronounced frontal curvature and low sagittal crest present (Fig. 100) ...............................................................Myotis riparius

Fig. 99 Fig. 100

20. Borde del uropatagio pálido, generalmente blanco y con un fleco de pelosdiminutos, apenas perceptibles / Margin of uropatagium pale, generallywhite and with a fringe of hairs barely visible ........................................ 21

20’. Borde del uropatagio no blanco y sin flecos de pelos / Margin of uropatagiumnot pale and without a fringe of hairs .....................................................22

21. Puntas de los pelos dorsales más claras, generalmente amarillentas; anchocigomático menor de 9 mm / Tips of dorsal hairs yellowish; zygomaticbreadth less than 9 mm ........................................................Myotis dinellii

21’. Puntas de los pelos dorsales marrones; ancho cigomático mayor de 9 mm / Tips of dorsal hairs brown; zygomatic breadth more than 9 mm .............. ...................

Myotis levis

22. Coloración dorsal oscura, pelos unicoloreados o suavemente bicoloreados / Dorsal coloration dark, hairs unicolored or slightly bicolored ............23

22’. Coloración dorsal más clara con pelos fuertemente bi o tricoloreados / Dorsal coloration lighter with hairs strongly bi- or tricolored ...............24



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24. Pelos dorsales tricoloreados / Dorsal hairs tricolored .......... Myotis aelleni24’. Pelos dorsales bicoloreados / Dorsal hairs bicolored .............................25

25. Coloración café oscuro, pelos con escaso contraste entre bases y puntas / Coloration dark coffee, bases of the hairs slightly contrasting with the tips ............................................................................................

Myotis oxyotus25’. Coloración marrón claro, gris amarronado u ocre pálido, pelos con contraste

entre base y punta / Coloration pale brown, gray-brown or pale ochraceous,bases of hairs strongly contrasting with the tips ....................................26

26. Coloración ocre pálido, pelos dorsales con bases oscuras y puntas rubias;presente sólo en el norte de Chile y sudeste de Perú / Coloration paleochraceous, dorsal hairs with dark bases and ligth tips; only distributed in northern Chile and southeastern Peru ...................Myotis atacamensis

26’. Coloración marrón claro o grisáceo amarronado; hasta ahora sólo conocidapara el centro y sur de Chile y sur de Argentina / Coloration pale brownor gray-brown; it has been cited only from central and southern Chile and southern Argentina ..........................................................Myotis chiloensis

23. Antebrazo mayor de 40 mm; tercio del lado dorsal del uropatagio cubiertode pelos que sobrepasan las rodillas (Fig. 101) / Forearm greater than 40mm; hair covering the basal third of the dorsum of the uropatagium,extending below the knees (Fig. 101).................................... Myotis keaysi

23’. Antebrazo menor de 36 mm; uropatagio con pelos, pero no sobrepasan lasrodillas (Fig. 102) / Forearm less than 36 mm; hair on the dorsum of theuropatagium not extending below the knees (Fig. 102) .............................. .........

Myotis nigricans

Fig. 101 Fig. 102



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LITERATURA CITADA / LITERATURE CITED

Achaval, F., M. Clara, & A. Olmos. 2004. Mamíferos de la República Oriental del

Uruguay. Una guía fotográfica. Imprimex. Montevideo, 1-176.Acosta y Lara, E. 1950. Quirópteros del Uruguay. Comunicaciones Zoológicas delMuseo de Historia Natural de Montevideo, 3(58):1-71.

Acosta y Lara, E. 1951. Un nuevo quiróptero para el Uruguay. ComunicacionesZoológicas del Museo de Historia Natural de Montevideo, 3(64):1-4.

Acosta y Lara, E & I. Muñoa. 1962. Quirópteros del Uruguay. Revisión de nomenclatura.Comunicaciones Zoológicas del Museo de Historia Natural de Montevideo, 7(96):1-15.

Aguirre, L. F. 2007. Historia natural, distribución y conservación de los murciélagos

de Bolivia. Fundación Simón I. Patiño, 400 pp.Aguirre, L. F., A. Vargas & S. Solari. 2009. Clave de campo para la identificación delos murciélagos de Bolivia. Centro de Estudios en Biología Teórica y Aplicada.Cochabamba, 38 pp.

Aguirre, L. F., C. J. Mamani, K. Barboza-Marquez & H. Mantilla-Meluk. 2010. Listaactualizada de los murciélagos de Bolivia. Revista Boliviana de Ecología yConservación Ambiental, 27:1-7.

Aguirre, L. F., X. Velez-Liendo, A. Muñoz & A. Selaya. 2003. Patrones de distribucióny zoogeografía de los murciélagos de Bolivia. Revista Boliviana de Ecología yConservación Ambiental, 14:3-17.

Anderson, S. 1985. Lista preliminar de mamíferos bolivianos. Cuadernos de la AcademiaNacional de Ciencias de Bolivia, 65:5-16.

Angulo, S. R. & M. M. Díaz. 2004. Nuevos registros de Sphaeronycteris toxophyllumpara la cuenca Amazónica de Perú. Mastozoología Neotropical, 11:233-236.

Azurduy, H. & L. Emmons. 2005. Nota sobre dos nuevas especies de murciélagos paraBolivia. Ecología en Bolivia, 40(2):53-57.

Barquez, R. M. 1987. Los murciélagos de Argentina. Tesis Doctoral. Facultad deCiencias Naturales e Instituto Miguel Lillo, Universidad Nacional de Tucumán,Argentina, 2 Vols., 525 pp.

Barquez, R. M. 2006. Orden Chiroptera. Pp. 56-86, en: Mamíferos de ArgentinaSistemática y distribución (R. M. Barquez, M. M. Díaz y R. A. Ojeda, eds.).SAREM (Sociedad Argentina para el Estudio de los Mamíferos), Mendoza,Argentina.

Barquez, R. M. & M. M. Díaz. 2001. Bats of the Argentine Yungas: A systematic anddistributional analysis. Acta Zoológica Mexicana, 82:1-81.

Barquez, R. M. & M. M. Díaz. 2009. Clave de Identificación de los Murciélagos deArgentina. Publicación Especial N° 1, PCMA (Programa de Conservación de losMurciélagos de Argentina), Editorial Magna, Tucumán, Argentina, 80 pp.



85


Barquez, R. M., M. S. Sánchez & C. Bracamonte. 2009. Nueva especie de Eptesicus(Chiroptera, Vespertilionidae) para la Argentina. Mastozoología Neotropical,16(1):199-203.

Barquez, R. M., N. P. Giannini & M. A. Mares. 1993. Guía de Murciélagos de Argentina.Oklahoma Museum of Natural History, University of Oklahoma, 119 pp.

Barquez, R. M., M. A. Mares & J. K. Braun. 1999a. The bats of Argentina. SpecialPublications, Museum of Texas Tech University, 4:1-275.

Barquez, R. M., J. K. Braun, M. A. Mares, J. P. Jayat, & D. A. Flores. 1999b. Firstrecord for Argentina for a bat in the genus Micronycteris. Mammalia, 63:368-372.

Botto, G. 2009. Promops centralis nuevo género y nueva especie de murciélagos paraUruguay. Boletín Electrónico del GIM (Grupo de Investigaciones y Conservaciónde los Murciélagos de Uruguay), p 4.

de Souza, J. & R. Pavé. 2009. Nuevos registros de quirópteros para la provincia deEntre Ríos, Argentina. Mastozoología Neotropical, 16:291-298.

de Souza, J., R. Pavé & M. L. Calderón. 2008. Primer registro de Eumops dabbenei(Thomas, 1914) (Chiroptera, Molossidae) para la provincia de Entre Ríos, Argentina.Mastozoología Neotropical, 15:189-191.

Devincenzi, G. J. 1935. Mamíferos del Uruguay. Anales del Museo de Historia Naturalde Montevideo (Segunda serie), 4:1–96.Díaz, M. M. & R. M. Barquez. 2002. Los Mamíferos de Jujuy, Argentina. L.O.L.A.(Literature of Latin America), Buenos Aires, Argentina, 326 pp.

Díaz, M. M. & R. M. Barquez. 2009. Primer registro de Micronycteris microtis(Phyllostomidae, Phyllostominae) para la Argentina. Chiroptera Neotropical,

15(2):461-465.Eger, J. L. 2007. Family Molossidae. Pp. 399-440, en: Mammals of South America,

Volume 1. Marsupials, xenarthrans, shrews, and bats (A. L. Gardner, ed.). TheUniversity of Chicago Press, Chicago.

Gantz, A. & R. Martínez. 2000. Orden Chiroptera. Pp. 53-66, en: Mamíferos de Chile(Muñoz-Pedreros, A. & J. Yañez, eds.). Ediciones CEA, Valdivia, Chile, 464 pp.

Gardner AL. 2007. Mammals of South America, Volume 1. Marsupials, xenarthrans,shrews, and bats. The University of Chicago Press, Chicago, 669 pp.

Gardner, A. L. & C. O. Handley Jr. 2007. Genus Lasiurus. Pp. 457-468, en: Mammals

of South America, Volume 1. Marsupials, xenarthrans, shrews, and bats. (A. L.Gardner, ed.). The University of Chicago Press, Chicago.

González, E. M. 2001. Guía de campo de los mamíferos de Uruguay. Introducción alestudio de los mamíferos. Vida Silvestre Ed., 339 pp.

González, J. C. 1977. Sobre la presencia de Tadarida molossus Pallas (Chiroptera,Molossidae), en el Uruguay. Revista de Biología del Uruguay, 5(1):27-30.

González, J. C. 1989. Guía para la identificación de los murciélagos del Uruguay. Mus.D. A. Larrañaga (Serie Divulgación), 2:1-50.

González, J. C. & S. Vallejo. 1980. Notas sobre Vampyrops lineatus (Geoffroy) del



86


Uruguay, (Phyllostomidae, Chiroptera). Comunicaciones Zoológicas del Museode Historia Natural de Montevideo, 10(144):1-8.

Goodwin, G. G. & A. M. Greenhall. 1961. A Review of the Bats of Trinidad and Tobago.Bulletin of the American Museum of Natural History, 122:187-302.

Gregorin, R. & A. D. Ditchfield. 2005. New genus and species of nectar-feeding batin the tribe Lonchophyllini (Phyllostomidae: Glossophaginae) from NortheasternBrazil. Journal of Mammalogy, 86:403-414.

Husson, A. M. 1962. The bats of Suriname. Zoologische Verhandelingen Rijksmuseumvan Natuurlijke Historie te Leiden 58:1-282.

Iriarte, A. 2008. Mamíferos de Chile. Lynx Editions. Barcelona, España, 420 pp.Larsen, P. A., S. R. Hoofer, M. C. Bozeman, S. C. Pedersen, H. H. Genoways, C. J

Phillips, D. E. Pumo & R. J. Baker. 2007. Phylogenetics and phylogeography of the Artibeus jamaicensis complex based on cytochrome-b DNA sequences. Journalof Mammalogy, 88:712-727.

Lim, B. K., M. D. Engstrom, T. E. Lee Jr., J. C. Patton, & J. Bickham. 2004. Moleculardifferentiation of large species of fruit-eating bats ( Artibeus) and phylogeneticrelationships based on the cytochrome b gene. Acta Chiropterologica, 6:1-12.

López-González, C. 1998. Systematics and zoogeography of the bats of Paraguay.Unpublished Ph.D. Thesis, Texas Tech University, Lubbock.

López-González, C. 2005. Murciélagos del Paraguay. Publicaciones del Comité Españoldel Programa Hombre y Biosfera-Red IberMaB, UNESCO, no. 9.

López-González, C. & S. J. Presley. 2001. Taxonomic status of Molossus bondae J. A.Allen, 1904 (Chiroptera: Molossidae), with description of a new subspecies.

Journal of Mammalogy, 82:760-774.López-González, C., S. J. Presley, R. D. Owen & M. R. Willig. 1998. Noteworthy

records of bats from Paraguay. Mastozoología Neotropical, 5:41-45.Lutz, M. A. & M. L. Merino. 2010. Eptesicus furinalis (Chiroptera: Vespertilionidae)

en la provincia de San Luis, Argentina. Mastozoología Neotropical, 17:147-152.Mann Fischer, G. 1978. Los pequeños mamíferos de Chile. Gayana, Zoología, 40:1-

342.Mantilla-Meluk, H. & R. J. Baker. 2006. Systematics of small Anoura (Chiroptera:

Phyllostomidae) from Colombia, with description of a new species. Occasional

Papers of the Museum of Texas Tech University, 261:1-17.Mantilla-Meluk, H. & R. J. Baker. 2010. New species of Anoura (Chiroptera:

Phyllostomidae) from Colombia, with systematic remarks and notes on thedistribution of the A. geoffroyi complex. Occasional Papers of the Museum of Texas Tech University, 292:1-19

Merino, M. L., D. E. Udrizar Sauthier & A. M. Abba. 2000. Primer registro del murciélagoleonado Dasypterus ega (Gervais) (Mammalia: Chiroptera) para la Provincia deEntre Ríos, Argentina. Natura Neotropicalis, 31:87-88.

Merino, M. L., D. E. Udrizar Sauthier & A. M. Abba. 2003. New distributional records



87


of bats species in the provinces of Buenos Aires and Entre Ríos, Argentina.Biogeographica, 79:85-95.

Osgood, W. 1943. The mammals of Chile. Field Museum of Natural History, ZoologySeries, 30:1-268.

Pacheco, V., S. Solari & P. M. Velazco. 2004. A new species of Carollia (Chiroptera:Phyllostomidae) from Peru and Bolivia. Occasional Papers Museum of Texas TechUniversity 236:1-15.

Peterson, R. L. 1968. A new bat of the genus Vampyressa from Guyana, South America,with a brief systematic review of the genus. Life Science Contributions, RoyalOntario Museum, 73:1-17.

Sánchez M. S., L. V. Carrizo & R. M. Barquez. 2008. Nuevo género de murciélago(Phyllostomidae, Stenodermatinae) para la Argentina. XXII Jornadas Argentinasde Mastozoología, SAREM (Sociedad Argentina para el Estudio de los Mamíferos),Villa Giardino, Córdoba, Argentina.

Sánchez-Hernández, C., M. L. Romero-Almaraz & G. D. Schnell. 2005. New speciesof Sturnira (Chiroptera: Phyllostomidae) from northern South America. Journalof Mammalogy, 86: 866-872.

Siles, L., A. Muñoz, & L. F. Aguirre. 2003. Nuevos reportes del vampiro de pataspeludas Diphylla ecaudata (Chiroptera: Desmodontinae) para los departamentosde Cochabamba y Santa Cruz. Ecología en Bolivia, 38(2):161-165.

Simmons, N. B. 2005. Order Chiroptera. Pp. 312-529, en: Mammal species of theWorld: a taxonomic and geographic reference, 3rd edition (D. E. Wilson and D.M. Reeder, eds.). Johns Hopkins University Press, Baltimore.

Simmons, N. B. & R. S. Voss. 1998. The mammals of Paracou, French Guiana: aneotropical lowland rainforest fauna, part 1. Bats. Bulletin of the American Museumof Natural History, 237:1-219.

Solari, S. & R. J. Baker. 2006. Mitochondrial DNA sequence, karyotypic, andmorphological variation in the Carollia castanea species complex (Chiroptera:Phyllostomidae) with description of a new species. Occasional Papers, Museumof Texas Tech University, 254: 1-16.

Stevens, R. D., C. López-González & S. J. Presley. 2007. Geographical ecology of Paraguayan bats: spatial integration and metacommunity structure of interactingassemblages. Journal of Animal Ecology, 76: 1086-1093.

Stevens, R. D., C. López-González, E. Mcculloch, F. Netto, & M. L. Ortiz. 2010. Myotislevis (Geoffroy Saint-Hilaire) indeed occurs in Paraguay. Mastozoología Neotropical,17:195-200.

Tejedor, A. 2011. Systematics of funnel-eared bats (Chiroptera: Natalidae). Bulletinof the American Museum of Natural History, 353:1-140.

Udrizar Sauthier, D. E., A. M. Abba, J. B. Bender & P. M. Simon. 2008. Mamíferos delArroyo Perucho Verna, Entre Ríos, Argentina. Mastozoología Neotropical, 15:75-84.

Velazco, P. M. 2005. Morphological phylogeny of the bat genus Platyrrhinus Saussure,



88


1860 (Chiroptera: Phyllostomidae) with the description of four new species.Fieldiana: Zoology, 105:1-53.

Velazco, P. M., A. L. Gardner, & B. D. Patterson. 2010. Systematics of the Platyrrhinushelleri species complex (Chiroptera: Phyllostomidae), with description of two newspecies. Zoological Journal of the Zoological Linnean Society, 159: 785–812.

Williams, S. L., M. R. Willig & F. A. Reid. 1995. Review of the Tonatia bidensComplex (Mammalia: Chiroptera), with Descriptions of Two New Subspecies.Journal of Mammalogy, 76: 612-626.

Ximénez, A. 1969. Dos nuevos géneros de quirópteros para el Uruguay (Phyllostomidae- Molossidae). Comunicaciones Zoológicas del Museo de Historia Natural deMontevideo, 10(125):1-8.

Ximénez, A., A. Langguth & R. Praderi. 1972. Lista sistemática de los mamíferos deUruguay. Anales del Museo Nacional de Historia Natural, 2(7)5:1-49.



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Apéndice 1 / Appendix 1

PAÍSES DEL CONO SUR DE SUDAMÉRICA / COUNTRIES OF THE SOUTHERN CONE OF SOUTH AMERICA



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Apéndice 2 / Appendix 2

EXPLICACIÓN DE LAS FIGURAS / DESCRIPTION OF FIGURES

Fig. 01.- Morfología y morfometría externa / External morphology and morphometry

Fig. 02.- Medidas y caracteres del rostro y orejas / Measurements and characters of the ears and rostrum

Fig. 03.- Morfología y Morfometría Craneal / Cranial morphology and morphometry

Fig. 04.- Rostro de Sturnira oporaphilum(EG) / Face of Sturnira oporaphilumFig. 05.- Rostro de Diaemus youngi (EG) / Face of Diaemus youngiFig. 06.- Cola y patas de Nyctinomops macrotis (EG) / Tail and hind feet of Nyctinomops

macrotis

Fig. 07.- Patas, uropatagio y cola de Noctilio leporinus (NPG) / Hind feet, uropatagiumand tail of Noctilio leporinusFig. 08.- Rostro de Noctilio leporinus (NPG) / Face of Noctilio leporinusFig. 09.- Patas, uropatagio y cola de Myotis albescens (EG) / Feet, uropatagium and

tail of Myotis albescensFig. 10.- Discos de succión en pulgar y pata de Thyropteridae (RMB) / Suction disks

on thumb and foot of ThyropteridaeFig. 11.- Saco o estructura glandular en el uropatagio (MMD) / Glandular structure

or sac in uropatagium

Fig. 12.- Pulgar de Furipteridae (MMD modificado de Goodwin y Greenhall, 1961) / Thumb of Furipteridae

Fig. 13.- Rostro de Natalus (RMB) / Face of NatalusFig. 14.- Rostros de Pteronotus (a), y Mormoops (b) (MMD) / Faces of Pteronotus (a)

and Mormoops (b)Fig. 15.- Pulgar de Diclidurinae (RMB) / Thumb of DiclidurinaeFig. 16.- Antebrazo de Rhynchonycteris naso (RMB) / Forearm of Rhynchonycteris

nasoFig. 17.- Saco alar en a) Cormura, b) Peropteryx, c) Saccopteryx (RMB modificado

de Goodwin y Greenhall, 1961) / Wing sac in a) Cormura, b) Peropteryx, c)Saccopteryx

Fig. 18.- a) alas unidas a la pata en Cormura, b) alas unida a la tibia en Peropteryx ySaccopteryx (MMD) / a) Wing attached to the foot in Cormura b) Wingattached to the tibia in Peropteryx and Saccopteryx

Fig. 19.- Pulgar normal / Thumb normal (RMB)Fig. 20.- Pulgar alargado en Desmodus rotundus (NPG) / Thumb long of Desmodus

rotundusFig. 21.- Rostro de Anoura caudifer (EG) / Face of Anoura caudifer



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Fig. 22.- Vista lateral de la hemimaxila de Glossophaga soricina (RMB) / Lateral viewof the hemimaxillae of Glossophaga soricina

Fig. 23.- Incisivos superiores de a) Glossophaga, y b) Anoura (MMD modificado deHusson, 1962) / Upper incisors of : a) Glossophaga and b) Anoura

Fig. 24.- Incisivos superiores de Lonchophylla (MMD modificado de Husson, 1962) / Upper incisors of LonchophyllaFig. 25.- Vista lateral de la hemimaxila de Sturnira lilium (RMB) / Lateral view of the

hemimaxillae of Sturnira liliumFig. 26.- Patas de Sturnira lilium (EG) / Legs of Sturnira liliumFig. 27.- Hoja nasal y quijada de: a) Carollia perspicillata (NPG), b) Tonatia bidens

(EG), c) Chrotopterus auritus (MMD) / Nose leaf and chin of : a) Carolliaperspicillata, b) Tonatia bidens and c) Chrotopterus auritus

Fig. 28.- a) membrana alar unida a los metatarsales en Rhinophylla, b) membrana alar

unida al tarso en Carollia, c) mentón en Rhinophylla, d) mentón en Carollia(MMD) / a) Wings attached to metatarsals in Rhinophylla, b) Wings attached to the tarsus in Carollia, c) chin of Rhinophylla, d) chin of Carollia

Fig. 29.- Incisivos superiores of Rhinophylla pumilio (MMD) / Upper incisors of Rhinophylla pumilio

Fig. 30.- Incisivos superiores de Rhinophylla fisherae (MMD) / Upper incisors of Rhinophylla fisherae

Fig. 31.- Incisivos, canino, y primer premolar de Carollia manu (MMD modificadode Pacheco et al., 2004) / Incisors, canine, and first premolar of Carolliamanu

Fig. 32.- Incisivos, canino y primer premolar de Carollia perspicillata (MMD modificadode Pacheco et al., 2004) / Incisors, canine, and first premolar of Carolliaperspicillata

Fig. 33.- Mandibula de: a) Carollia benkeithi, b) Carollia brevicauda (MMD) / Mandibleof : a) Carollia benkeithi, b) Carollia brevicauda

Fig. 34.- Pulgar de Diaemus youngi (RMB) / Thumb of Diaemus youngiFig. 35.- Pulgar de Desmodus rotundus (NPG) / Thumb of Desmodus rotundusFig. 36.- Vista frontal de los incisivos de: a) Glossophaga soricina, b) Anoura caudifer

(MMD modificado de Husson, 1962) / Frontal view of the incisors of : a)Glossophaga soricina, b) Anoura caudifer

Fig. 37.- Uropatagio de: a) Glossophaga soricina, b) Anoura caudifer (EG) / Uropatagium of : a) Glossophaga soricina, b) Anoura caudifer

Fig. 38.- Ala unida a la pata en: a) Linchonycteris degener , b) Choeroniscus minor (MMD) / Wing membrane attached to the foot in: a) Linchonycteris degener,b) Choeroniscus minor

Fig. 39.- a) Cráneo de Platalina genovensium, b) Molares de Lonchophylla, c) Molaresde Platalina (MMD modificados de Gregorin y Ditchfield, 2005) / a) Skullof Platalina genovensium, b) Molars of Lonchophylla, c) Molars of Platalina



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Fig. 40.- Membrana alar unida a la pata en: a) Lionycteris spurrelli, b) Lonchophyllasp. (MMD) / Wing membrane attached to the foot in: a) Lionycteris spurrelli,b) Lonchophylla sp.

Fig. 41.- Rostro de Lonchorhina aurita (MMD) / Face of Lonchorhina aurita

Fig. 42.- Uropatagio, cola y patas de Macrophyllum macrophyllum (NPG) / Uropatagium, tail and legs of Macrophyllum macrophyllumFig. 43.- Rostro de Mimon crenulatum (RMB) / Face of Mimon crenulatumFig. 44.- Orejas de Tonatia bidens (NPG) / Ears of Tonatia bidensFig. 45.- Orejas de Micronycteris (MMD, modificado del original de NPG) / Ears of

MicronycterisFig. 46.- Dentición superior de a) Tonatia bidens, b) Tonatia saurophila (RMB

modificado de Williams et al., 1995) / Upper dentition of a) Tonatia bidens,b) Tonatia saurophila

Fig. 47.- Rostro de Trachops cirrhosus (MMD) / Face of Trachops cirrhosusFig. 48.- Orejas de: a) Micronycteris microtis, b) Trinycteris nicefori (MMD) / Ears

of: a) Micronycteris microtis, b) Trinycteris niceforiFig. 49.- Hoja nasal de: a) Trinycteris nicefori, b) Lampronycteris brachyotis (MMD)

/ Nose leaf of: a) Trinycteris nicefori, b) Lampronycteris brachyotisFig. 50.- Hilera inferior de dientes de: a) Sturnira lilium, b) Sturnira erythromos (RMB)

/ Lower toothrow of: a) Sturnira lilium, b) Sturnira erythromosFig. 51.- Hilera superior de dientes de: a) Sturnira oporaphilum, b) Sturnira erythromos

(RMB) / Upper toothrow of : a) Sturnira oporaphilum, b) Sturnira erythromos

Fig. 52.- Rostro de Sphaeronycteris toxophyllum (MMD) / Face of Sphaeronycteristoxophyllum

Fig. 53.- Rostro de Pygoderma bilabiatum (RMB, modificado del original de NPG) / Face of Pygoderma bilabiatum

Fig. 54.- Hoja nasal de Artibeus planirostris (RMB) / Nose leaf of Artibeus planirostrisFig. 55.- Hoja nasal de Artibeus fimbriatus (RMB) / Nose leaf of Artibeus fimbriatusFig. 56.- Incisivos superiores de Enchisthenes hartii (MMD modificado de Husson,

1962) / Upper incisors of Enchisthenes hartiiFig. 57.- Incisivos superiores de Dermanura (RMB modificado de Husson, 1962) /

Upper incisors of DermanuraFig. 58.- Uropatagio de: a) Dermanura gnomus, b) Dermanura glaucus (MMD) /

Uropatagium of: a) Dermanura gnomus, b) Dermanura glaucusFig. 59.- Vista dorsal de Platyrrhinus lineatus (RMB, modificado del original de NPG)

/ Dorsal view of Platyrrhinus lineatusFig. 60.- Segundo premolar inferior de Platyrrhinus brachycephalus (MMD) / Lower

second premolar of Platyrrhinus brachycephalusFig. 61.- Segundo premolar inferior de Platyrrhinus incarum (MMD) / Lower second

premolar of Platyrrhinus incarum



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Fig. 62.- Vibrisas submentonianas de: a) Platyrrhinus nigellus, b) Platyrrhinus masu(MMD) / Submental vibrissae of : a) Platyrrhinus nigellus, b) Platyrrhinusmasu

Fig. 63.- Incisivos superiores de: a) Platyrrhinus nigellus, b) Platyrrhinus masu (MMD) / Upper incisors of : a) Platyrrhinus nigellus, b) Platyrrhinus masu

Fig. 64.- Incisivos superiores de Chiroderma (RMB modificado de Husson, 1962) / Upper incisors of Chiroderma

Fig. 65.- Trago de: a) Vampyriscus bidens, b) Vampyressa (MMD modificado dePeterson, 1968) / Tragus of: a) Vampyriscus bidens, b) Vampyressa

Fig. 66.- Vista dorsal de: a) Pteronotus gymnonotus, b) Pteronotus personatus (MMD) / Dorsal view of: a) Pteronotus gymnonotus, b) Pteronotus personatus

Fig.67.- Incisivos superiores de: a) Pteronotus rubiginosus, b) Pteronotus personatus(MMD) / Upper incisors of: a) Pteronotus rubiginosus, b) Pteronotus personatus

Fig. 68.- Antebrazo de Neoplatymops mattogrossensis (MMD) / Forearm of Neoplatymops mattogrossensisFig. 69.- Rostro de Tadarida brasiliensis (NPG) / Face of Tadarida brasiliensisFig. 70.- Paladar de Tadarida brasiliensis (RMB) / Palate of Tadarida brasiliensisFig. 71.- Rostro de Eumops glaucinus (NPG) / Face of Eumops glaucinusFig. 72.- Paladar de Molossops (RMB) / Palate of MolossopsFig. 73.- Incisivos y caninos superiores de Tadarida brasiliensis (RMB) / Upper incisors

and canines of Tadarida brasiliensisFig. 74.- Incisivos y caninos superiores de Nyctinomops laticaudatus (RMB) / Upper

incisors and canines of Nyctinomops laticaudatusFig. 75.- Rostro de Promops nasutus (NPG) / Face of Promops nasutusFig. 76.- Rostro de Molossus rufus (NPG) / Face of Molossus rufusFig. 77.- Vista dorsal de la cabeza de Eumops dabbenei (RMB, modificado del original

de NPG) / Dorsal view of the head of Eumops dabbeneiFig. 78.- Vista dorsal de la cabeza de Eumops perotis (RMB, modificado del original

de NPG) / Dorsal view of the head of Eumops perotisFig. 79.- Trago de Eumops glaucinus (RMB, modificado del original de NPG) / Tragus

of Eumops glaucinusFig. 80.- Trago de Eumops auripendulus (RMB, modificado del original de NPG) /

Tragus of Eumops auripendulusFig. 81.- Rostro de Eumops bonariensis (NPG) / Face of Eumops bonariensisFig. 82.- Rostro de Eumops patagonicus (NPG)/ Face of Eumops patagonicusFig. 83.- Rostro (orejas triangulares) de Molossops neglectus (NPG) / Face and triangular

ears of Molossops neglectusFig. 84.- Rostro y orejas redondeada de Cynomops planirostris (NPG) / Face and

rounded ears of Cynomops planirostris



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Fig. 85.- Orejas de Cynomops planirostris (NPG) / Ears of Cynomops planirostrisFig. 86.- Orejas de Cynomops paranus (NPG) / Ears of Cynomops paranusFig. 87.- Uropatagio de Myotis nigricans (EG) / Uropatagium of Myotis nigricansFig. 88.- Uropatagio de Dasypterus ega (EG) / Uropatagium of Dasypterus ega

Fig. 89.- Uropatagio de Lasiurus blossevillii (EG) / Uropatagium of Lasiurus blossevilliiFig. 90.- Uropatagio de Lasiurus varius (RMB, modificado del original de NPG) /

Uropatagium of Lasiurus variusFig. 91.- Orejas de Histiotus velatus (EG) / Ears of Histiotus velatusFig. 92.- Orejas de Histiotus laephotis (RMB, modificado del original de NPG) / Ears

of Histiotus laephotisFig. 93.- Dentición superior de Eptesicus furinalis (RMB) / Upper dentition of Eptesicus

furinalisFig. 94.- Dentición superior de Myotis dinellii (RMB) / Upper dentition of Myotis

dinelliiFig. 95.- Vista dorsal del cráneo de Eptesicus andinus (MMD, modificado de Simmons

y Voss, 1998) / Dorsal view of the skull of Eptesicus andinusFig. 96.- Vista dorsal del cráneo de Eptesicus chiriquinus (MMD, modificado de

Simmons y Voss, 1998) / Dorsal view of the skull of Eptesicus chiriquinusFig. 97.- Plagiopatagio de Myotis simus (RMB) / Plagiopatagium of Myotis simusFig. 98.- Plagiopatagio de Myotis ruber (RMB) / Plagiopatagium of Myotis ruberFig. 99.- Vista lateral del cráneo de Myotis albescens (RMB) / Lateral view of the skull

of Myotis albescensFig. 100.-Vista lateral del cráneo de Myotis nigricans (RMB) / Lateral view of the skullof Myotis nigricans

Fig. 101.-Uropatagio of Myotis keaysi (EG) / Uropatagium of Myotis keaysiFig. 102.-Uropatagio of Myotis nigricans (EG) / Uropatagium of Myotis nigricans

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